魏俊燕趙佳趙仕琪周棋贏袁正仿李先文
(1.信陽(yáng)師范學(xué)院生命科學(xué)學(xué)院,信陽(yáng) 464000;2. 信陽(yáng)師范學(xué)院華銳學(xué)院,信陽(yáng) 464000)
植物ICE1-CBF冷反應(yīng)通路的激活與調(diào)控研究進(jìn)展
魏俊燕1趙佳2趙仕琪1周棋贏1袁正仿1李先文1
(1.信陽(yáng)師范學(xué)院生命科學(xué)學(xué)院,信陽(yáng) 464000;2. 信陽(yáng)師范學(xué)院華銳學(xué)院,信陽(yáng) 464000)
植物細(xì)胞可能是通過(guò)細(xì)胞膜流動(dòng)性的改變引起胞質(zhì)Ca2+濃度變化來(lái)感受低溫信號(hào)的。胞質(zhì)Ca2+濃度升高引起胞內(nèi)多種鈣調(diào)節(jié)蛋白的活性變化,再經(jīng)過(guò)級(jí)聯(lián)反應(yīng)激活冷反應(yīng)基因,增強(qiáng)植物的抗低溫能力。目前,已基本清楚,冷反應(yīng)基因激活的一條主要途徑是ICE1-CBF調(diào)節(jié)通路。概括介紹了近年來(lái)植物低溫信號(hào)感受、轉(zhuǎn)導(dǎo)、冷反應(yīng)基因的表達(dá)激活和調(diào)節(jié)方面的研究概況,旨在為植物冷馴化的進(jìn)一步研究奠定理論基礎(chǔ)。
植物;冷反應(yīng)基因;信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo);表達(dá)調(diào)節(jié)
據(jù)估計(jì),每年世界主要農(nóng)作物產(chǎn)量損失的一半以上是由非生物脅迫造成,低溫冷害是其中一個(gè)主要的脅迫類(lèi)型。因?yàn)榈厍蜿懙孛娣e中,大約有42%的區(qū)域要經(jīng)歷階段性或長(zhǎng)期的-20℃以下的低溫。所以,研究植物對(duì)低溫的反應(yīng)機(jī)制有重要的理論意義和應(yīng)用價(jià)值。經(jīng)過(guò)多年的探索,人們對(duì)植物的低溫反應(yīng)機(jī)理已有了一些認(rèn)識(shí),本文是對(duì)植物冷反應(yīng)基因(cold-responsive genes,CORs)的激活與調(diào)節(jié)等方面的研究進(jìn)展作一綜述,旨在為植物冷馴化的進(jìn)一步研究奠定理論基礎(chǔ)。
低溫寒凍是從亞熱帶到寒帶等廣大地區(qū)植物生長(zhǎng)和發(fā)育的重要限制因素,是影響農(nóng)林業(yè)生產(chǎn)的嚴(yán)重自然災(zāi)害。但這些地區(qū)的多種植物經(jīng)過(guò)長(zhǎng)期的進(jìn)化,已對(duì)低溫環(huán)境產(chǎn)生了一定的適應(yīng)能力,進(jìn)化出一套適應(yīng)低溫的冷馴化機(jī)制,即它們?cè)诮?jīng)受一段時(shí)間的非傷害低溫作用后,可使其耐低溫能力大大提升[1,2]。如黑麥在未經(jīng)低溫馴化處理時(shí),-5℃條件下就會(huì)被凍死,而經(jīng)過(guò)一段時(shí)間的低溫馴化后,植株體可在-30℃條件下生存;北美杜鵑在冷馴化前后的耐凍能力分別為-7℃和-53℃[3]。
植物冷馴化的關(guān)鍵在于激活了大量的CORs,合成了多種冷誘導(dǎo)蛋白,從而啟動(dòng)了多重增強(qiáng)植物抗凍性的生理機(jī)制[1,3]。Lee等[4]用微陣列分析揭示,擬南芥的24 000個(gè)基因中可被低溫誘導(dǎo)表達(dá)的基因有655個(gè),下調(diào)表達(dá)的有284個(gè),CORs在其基因組中約占20%;對(duì)茶樹(shù)低溫誘導(dǎo)轉(zhuǎn)錄組的分析也發(fā)現(xiàn),有1 770個(gè)CORs(其中1 162個(gè)表達(dá)上調(diào),602個(gè)被下調(diào))[5]。至于CORs編碼產(chǎn)物的功能,目前的研究已表明,它們參與細(xì)胞的結(jié)構(gòu)和代謝的多個(gè)環(huán)節(jié),有信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)相關(guān)蛋白[如磷脂酶C(PLC)和鈣調(diào)素(CaM)等]、轉(zhuǎn)錄因子[如CBF(C-repeat binding factor)和ICE(inducer of CBF expression)等]以及多種與初級(jí)和次級(jí)代謝有關(guān)的酶(如甘油二酯激酶、過(guò)氧化物酶和脫水素等)。
植物CORs的激活涉及其冷馴化期間一系列復(fù)雜的信號(hào)感受、信息傳遞、基因表達(dá)和代謝模式改變等生理生化及分子生物學(xué)水平的復(fù)雜變化過(guò)程。對(duì)植物細(xì)胞低溫感受器的大量研究顯示,其低溫感知可能源自原生質(zhì)膜物理化學(xué)性質(zhì)的改變,因低溫可降低膜的流動(dòng)性、增加其僵硬程度。如實(shí)驗(yàn)證明,一種膜硬化劑——二甲基亞砜(DMSO)在25℃下也能誘導(dǎo)CORs基因,而增加膜流動(dòng)性的苯甲醇甚至可在0℃下阻止CORs基因的表達(dá);對(duì)擬南芥中油酸脫氫酶基因受損的fad2突變體的研究表明,野生型擬南芥植株的甘油二酯(DAG)激酶被誘導(dǎo)表達(dá)的溫度是14℃,而fad2突變體(其膜脂的飽和度變高)和亞油酸去飽和酶基因高表達(dá)的轉(zhuǎn)基因擬南芥植株的甘油二酯激酶分別在18℃和12℃時(shí)表達(dá)[6]。
低溫信號(hào)被植物細(xì)胞感受后,其信號(hào)傳遞的第二信使很可能是胞質(zhì)Ca2+水平的變化。冷誘導(dǎo)的胞質(zhì)Ca2+濃度增加可能是通過(guò)膜上機(jī)械張力敏感的或配體激活的Ca2+通道來(lái)實(shí)現(xiàn)的。例如,用一種機(jī)械張力敏感的鈣離子通道阻滯劑——鉬酸釓處理膜硬化的細(xì)胞,可阻斷或減弱胞質(zhì)Ca2+信號(hào)和CORs基因的表達(dá)。利用膜片鉗技術(shù)對(duì)擬南芥葉肉細(xì)胞原生質(zhì)體質(zhì)膜冷誘導(dǎo)的膜電位變化的研究也顯示,冷活化的Ca2+通道才是胞質(zhì)Ca2+信號(hào)的發(fā)源地[7,8]。而在紫花苜蓿(Alfalfa)和油菜(Brassica napus)研究中還發(fā)現(xiàn),Ca2+通道開(kāi)啟和細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度增加還與冷誘導(dǎo)的質(zhì)膜僵硬引起的細(xì)胞微絲骨架重排有關(guān)[8]。總之,植物抗凍性對(duì)胞質(zhì)Ca2+濃度變化存在著依賴(lài)性。
Ca2+涌入細(xì)胞即激活了磷脂酶C和磷脂酶D(PLD),催化產(chǎn)生的肌醇-1,4,5-三磷酸(IP3)等可進(jìn)一步活化存在于胞內(nèi)鈣庫(kù)膜上的IP3門(mén)控Ca2+通道而放大Ca2+信號(hào)。細(xì)胞內(nèi)Ca2+信號(hào)的接受者(或稱(chēng)Ca2+感受器)有多個(gè)成員,如鈣依賴(lài)型蛋白激酶(CDPK)、CaM、鈣調(diào)磷酸酶B類(lèi)蛋白(CBL)或類(lèi)鹽高敏感蛋白-3(類(lèi)SOS3)、蛋白磷酸酶2C(PP2C)等。冷脅迫產(chǎn)生的Ca2+信號(hào)就是通過(guò)它們而向下傳遞,從而引起COR基因的表達(dá)變化和植物耐冷性的增強(qiáng)[9,10]。CDPK(Ca2+dependent protein kinase)是一類(lèi)絲/蘇氨酸蛋白激酶,依賴(lài)Ca2+但不依賴(lài)CaM,因?yàn)樵谶@類(lèi)蛋白激酶的C端有一段類(lèi)似于CaM的結(jié)構(gòu)域。在細(xì)胞內(nèi),CDPK幾乎遍布于所有細(xì)胞器中,并在非生物脅迫時(shí)被誘導(dǎo)或激活[11]。
現(xiàn)已基本查明擬南芥等植物的冷信號(hào)的進(jìn)一步轉(zhuǎn)導(dǎo)至少可通過(guò)依賴(lài)CBF和不依賴(lài)CBF兩條途徑來(lái)完成。依賴(lài)CBF的冷信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路(又稱(chēng)ABA非依賴(lài)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑)已被證實(shí)是賦予植物低溫抗性的主效途徑,因而使其成為低溫抗性領(lǐng)域研究的熱點(diǎn)之一。該信號(hào)途徑可較好的解釋草本植物的冷馴化過(guò)程。即植物在感知低溫后,啟動(dòng)CBF基因表達(dá),其編碼蛋白再激活下游啟動(dòng)子中包含有C-重復(fù)(C-repeat,CRT)/DRE元件(dehydration responsive element)的冷反應(yīng)基因(CORs)表達(dá)。CBF屬于乙烯反應(yīng)元件結(jié)合因子/APETALA2(ERF/AP2)型轉(zhuǎn)錄因子家族。受CBF調(diào)控的CORs已發(fā)現(xiàn)至少有幾十種(如rd29、corl5A和cor47等),它們的編碼蛋白在低溫下合成后,引起組織細(xì)胞一系列生理生化變化,穩(wěn)定細(xì)胞或蛋白的結(jié)構(gòu),恢復(fù)植物體內(nèi)物質(zhì)和能量代謝平衡,增強(qiáng)植物對(duì)低溫環(huán)境的適應(yīng)性。因此,人們把CBF轉(zhuǎn)錄因子看作冷馴化的開(kāi)關(guān)。而冷馴化時(shí)被激活的許多基因都屬于CBF調(diào)節(jié)的下游基因[1,4]。
擬南芥的CBF基因家族包括CBF1、CBF2和CBF3三個(gè)基因,聚集在擬南芥第4染色體短臂上[1,12]。實(shí)驗(yàn)表明,擬南芥的3種CBF轉(zhuǎn)錄因子雖然都能啟動(dòng)下游CORs的表達(dá),但功能有一定差別,CBF1和CBF3的表達(dá)要先于CBF2基因,并對(duì)CBF2的表達(dá)起促進(jìn)作用;而CBF2蛋白是CBFI和CBF3表達(dá)的負(fù)調(diào)節(jié)子。這樣也許可以保證幾個(gè)CBF基因表達(dá)是瞬時(shí)的、可控的,同時(shí)能確保其表達(dá)水平適合于誘導(dǎo)下游基因的表達(dá),使擬南芥獲得抵抗寒冷和相關(guān)脅迫的能力。通常,當(dāng)?shù)蜏卣T導(dǎo)時(shí),CBF1和CBF3基因優(yōu)先表達(dá),當(dāng)積累到一定水平時(shí),CBF2基因開(kāi)始表達(dá),產(chǎn)生的CBF2蛋白抑制CBF1和CBF3基因的表達(dá),使CBF蛋白保持在適合需要的水平[1,12]。
CBF基因也受低溫誘導(dǎo),在植物遭受低溫時(shí),CBF轉(zhuǎn)錄本在15 min內(nèi)即開(kāi)始積累,2 h后含有CRT/DRE元件的一組CORs基因開(kāi)始表達(dá)。但是,CBF基因的啟動(dòng)子中不含CRT/DRE元件,且表達(dá)先于帶有DRE/CRT順式元件的CORs基因,因此,Gilmour等[13]提出,在正常生長(zhǎng)溫度下,細(xì)胞內(nèi)已存在有識(shí)別CBF啟動(dòng)子的轉(zhuǎn)錄激活因子,并將這種未知的激活因子命名為“ICE”(inducer of CBF expression)蛋白。Chinnusamy于2003年分離得到了一個(gè)ICE1轉(zhuǎn)錄因子,它能識(shí)別CBF3啟動(dòng)子區(qū)域的ICE盒子[14]。同年Daniel等[15]通過(guò)CBF2啟動(dòng)子突變分析,鑒定出了兩個(gè)ICE盒:ICEr1(CACATG)和ICEr2(ACTCCG),而且,在ICEr1中存在一個(gè)保守的bHLH堿性螺旋-環(huán)-螺旋(basic helixloop-helix)轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)(CANNTG)。ICEr1或ICEr2單獨(dú)存在時(shí),對(duì)低溫的響應(yīng)很弱,但當(dāng)它們同時(shí)存在時(shí)對(duì)低溫的響應(yīng)能力大大增強(qiáng)。現(xiàn)已查明,ICE1屬于組成型表達(dá)基因,編碼含bHLH的MYC類(lèi)(MYC-like transcription factors)轉(zhuǎn)錄激活因子。在正常環(huán)境溫度時(shí)ICE1蛋白處于無(wú)活性狀態(tài),低溫下被活化,特異性結(jié)合到CBF啟動(dòng)子的順式作用元件(CANNTG)上,以主效開(kāi)關(guān)的作用控制著CBF信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑各組分的表達(dá)水平。大約40%的CORs和46%的冷調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)錄因子基因被ICE1調(diào)節(jié),說(shuō)明盡管植物的冷馴化機(jī)制相當(dāng)復(fù)雜,ICE1是CORs表達(dá)的主要調(diào)節(jié)者[12,16]。對(duì)ICE1和CBF轉(zhuǎn)基因植物抗寒性的研究,人們發(fā)現(xiàn)將CamV35S控制下的ICE1基因轉(zhuǎn)入擬南芥中,所得到的轉(zhuǎn)基因植株抗凍性與野生型植株相比有很大的提高;超表達(dá)LeCBF1和AtCBF3的轉(zhuǎn)基因番茄和擬南芥植株抗寒性也都明顯增強(qiáng),但組成型表達(dá)CBF的轉(zhuǎn)基因植株(包括擬南芥、油菜、番茄、土豆和水稻等不同物種)都導(dǎo)致在正常條件下嚴(yán)重生長(zhǎng)遲滯和開(kāi)花延遲[1,7]。這些研究結(jié)果改變了過(guò)去人們將植物耐寒性當(dāng)作數(shù)量性狀,認(rèn)為由微效多基因共同控制,單獨(dú)改變其中幾個(gè)基因?qū)χ仓甑哪秃杂绊懖淮蟮挠^(guān)點(diǎn)。
CBF基因啟動(dòng)子內(nèi)除有MYC(如ICE)轉(zhuǎn)錄因子的識(shí)別區(qū)域外,還存在MYB類(lèi)轉(zhuǎn)錄因子的識(shí)別區(qū)域[13],研究表明MYB和MYC兩類(lèi)轉(zhuǎn)錄因子協(xié)同調(diào)控CBF的表達(dá),MYC主要表現(xiàn)為激活作用,而MYB主要表現(xiàn)為抑制作用。MYB15結(jié)合到CBF啟動(dòng)子上抑制CBF及其調(diào)節(jié)元基因的表達(dá)。而ICE1負(fù)調(diào)節(jié)MYB15表達(dá)。Su等[17]在水稻發(fā)現(xiàn)了一條新的冷適應(yīng)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑,他們通過(guò)功能缺失和獲得實(shí)驗(yàn)分析發(fā)現(xiàn),一個(gè)結(jié)合DNA單一重復(fù)的、介導(dǎo)水稻糖信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)的MYB轉(zhuǎn)錄因子——MYBS3,在水稻耐冷適應(yīng)也起著關(guān)鍵作用,它對(duì)于提高水稻耐冷性是充分和必要的。組成型表達(dá)MYBS3的轉(zhuǎn)基因水稻至少可耐受一周的4℃低溫,與正常條件下的植株相比不產(chǎn)生明顯的差異。并通過(guò)過(guò)表達(dá)或抑制MYBS3表達(dá)的轉(zhuǎn)基因水稻的轉(zhuǎn)錄分析,鑒定出了多個(gè)MYBS3介導(dǎo)的冷信號(hào)途徑的基因,其中包括一些以前已被證明的可被MYBS3和冷所誘導(dǎo)激活的基因。而且發(fā)現(xiàn),在水稻中MYBS3在轉(zhuǎn)錄水平上抑制著名的CBF依賴(lài)的冷信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑。CBF反應(yīng)迅速而短暫,但MYBS3對(duì)冷脅迫反應(yīng)慢,由此暗示水稻為適應(yīng)短期和長(zhǎng)期的冷脅迫可采用不同的補(bǔ)償途徑。
另外,調(diào)節(jié)CBF表達(dá)的蛋白還有HOS1(High expression of osmotically responsive gene)、LOS4(Low expression of osmotically responsive genes 4)和MYB15等。HOS1是一種環(huán)指型泛素E3連接酶(RING E3 ligase)。適宜溫度下,HOS1進(jìn)入細(xì)胞核,使ICE1和CBF多聚泛素化而被蛋白酶體降解。在HOS1組成型表達(dá)的轉(zhuǎn)基因植物中ICE1含量低,CBF及下游基因的表達(dá)受到抑制,植物的抗寒性大大降低[18],所以HOS1是ICE和CBF的負(fù)調(diào)節(jié)子。SUMO(一種分子量約為11 kD的泛素類(lèi)似蛋白)化翻譯后修飾也控制著ICE1依賴(lài)的冷信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),ICE1和CBF的SUMO化阻斷了它們的多聚泛素化,表明泛素化和SUMO化修飾在功能上是競(jìng)爭(zhēng)的。LOS4編碼一個(gè)DEAD-box RNA解旋酶(dead-box RNA heliease),可調(diào)節(jié)CBF基因的表達(dá)。FIERY2(FRY2)編碼一個(gè)轉(zhuǎn)錄抑制因子,此蛋白包含有兩個(gè)雙鏈RNA的結(jié)合域和1個(gè)與RNA酶ⅡC 末端起催化作用的結(jié)構(gòu)同源的區(qū)域,RNA酶Ⅱ的這個(gè)區(qū)域在酵母和動(dòng)物中可以調(diào)節(jié)基因的表達(dá),說(shuō)明FRY2可能調(diào)節(jié)抗逆基因的轉(zhuǎn)錄;CAX1(calcium exchanger 1)編碼液泡中的一個(gè)Ca2+/H+反轉(zhuǎn)運(yùn)子,而此轉(zhuǎn)運(yùn)子可以調(diào)節(jié)細(xì)胞內(nèi)部的Ca2+水平。正常條件下,CAX1突變體植株的抗旱、耐鹽和抗寒能力與對(duì)照植株無(wú)明顯區(qū)別,但在冷馴化的條件下,CBF及其下游靶基因的表達(dá)都有所提高,說(shuō)明CAX1通過(guò)控制CBF及其下游基因的表達(dá),來(lái)保證擬南芥冷馴化的精確性[12,18,19]。最近,Shan等[20]在研究丙烯誘導(dǎo)香蕉果實(shí)的耐冷性與MaNAC1(香蕉的一種NAC類(lèi)轉(zhuǎn)錄因子)基因的關(guān)系時(shí)發(fā)現(xiàn),可被冷脅迫顯著誘導(dǎo)、在冷藏期間也被丙烯處理而顯著誘導(dǎo)的MaNAC1基因是MaICE1的一個(gè)新的直接靶點(diǎn),MaNAC1是ICE1冷信號(hào)通路的一個(gè)下游組件。而MaICE1 與MaNAC1啟動(dòng)子的結(jié)合能力可被MaICE1磷酸化和冷脅迫增強(qiáng)。這一研究結(jié)果豐富了人們對(duì)ICE1冷信號(hào)傳導(dǎo)在CBF之外的一個(gè)新的直接靶點(diǎn)、新的反應(yīng)支路的認(rèn)識(shí)。
植物對(duì)低溫等非生物逆境脅迫反應(yīng)的調(diào)控還涉及脫落酸(abscisic acid,ABA)介導(dǎo)的信號(hào)途徑。該途徑是通過(guò)上游轉(zhuǎn)錄因子與ABA合成基因啟動(dòng)子中的DRE(dehydration-responsive element)順式元件結(jié)合,激活A(yù)BA合成相關(guān)基因的表達(dá),引起植株體內(nèi)ABA含量上升,從而增強(qiáng)對(duì)低溫等逆境脅迫的耐受能力。但有時(shí)候這兩條途徑也存在交叉與互作[19]。
冷誘導(dǎo)基因的轉(zhuǎn)錄后調(diào)節(jié)還涉及前體mRNA加工和從細(xì)胞核輸出的轉(zhuǎn)錄后調(diào)控環(huán)節(jié),最近在擬南芥和水稻的研究中已證明,小分子非編碼RNA(miRNA和siRNA)是造成轉(zhuǎn)錄后基因沉默的關(guān)鍵因子,在其冷響應(yīng)基因表達(dá)的轉(zhuǎn)錄后調(diào)節(jié)中發(fā)揮著重要作用[19,21-23]。
Lee等[23]的研究還表明,在冷處理6 h以?xún)?nèi),被上調(diào)的早期冷反應(yīng)基因主要與轉(zhuǎn)錄和細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)相關(guān)。在冷脅迫早期有多個(gè)轉(zhuǎn)錄因子被誘導(dǎo),而表達(dá)被抑制的轉(zhuǎn)錄因子基因很少,說(shuō)明植物對(duì)冷的反應(yīng)最初主要是通過(guò)基因的轉(zhuǎn)錄激活,而不是轉(zhuǎn)錄抑制。而晚期(24 h冷處理)冷反應(yīng)基因多與基因轉(zhuǎn)錄及代謝活動(dòng)相關(guān),此時(shí)所誘導(dǎo)的一些冷調(diào)節(jié)的受體樣蛋白激酶可能涉及到由早期冷反應(yīng)所產(chǎn)生的次級(jí)信號(hào)的感受。另外,美國(guó)亞利桑拉大學(xué)的Lee等[24]在研究植物的低溫信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)時(shí)發(fā)現(xiàn),線(xiàn)粒體復(fù)合物I的缺損降低了核基因在低溫條件下的表達(dá),由此提出了“核基因的冷誘導(dǎo)表達(dá)還受線(xiàn)粒體功能的調(diào)節(jié)”的觀(guān)點(diǎn)。
盡管擬南芥等草本植物冷馴化的分子機(jī)理已得到較深入地研究,但木本植物的冷馴化與草本植物有所不同,其冷馴化能力更大,冷馴化機(jī)制也更復(fù)雜。Wisniewskia等[25]發(fā)現(xiàn),篩選到的蘋(píng)果的冷反應(yīng)基因中,盡管有70%左右與數(shù)據(jù)庫(kù)中的CORs高度相似,但還有超過(guò)20%的基因是全新的。目前,已有多種木本植物(如茶樹(shù)、藍(lán)莓、北美杜鵑、蘋(píng)果、楊樹(shù)和海濱松等)的低溫反應(yīng)表達(dá)序列標(biāo)簽(EST)被通過(guò)不同途徑篩選了出來(lái),其中也有不少基因已得到了進(jìn)一步研究[25-27],可以預(yù)期在不久的將來(lái),該領(lǐng)域必定會(huì)出現(xiàn)一些振奮人心的研究成果。
[1] Novil1o F, Alonso JM, Ecker JR, et al. CBF2/DREB1C is a negative regulator of CBF1/DREB1B and CBF3/DREB1A expresion and plays a central role in stress tolerance in Arabidopsis[J]. Proc Nat Acad Sci USA, 2004, 101(11):3985-3990.
[2] Maruyama K, Sakuma Y, Kasuga M, et al. Identification of coldinducible downstream genes of the Arabidopsis DREB1A/CBF3 transcriptional factor using two microarray systems[J]. Plant J,2004, 38(6):982-993.
[3] Wei H, Dhanaraj AL, Rowland LJ, et al. Comparative analysis of expressed sequence tags from cold-acclimated and non-acclimated leaves of Rhododendron catawbiense Michx[J]. Planta, 2005,221:406-416.
[4]Lee SC, Huh KW, An K, et al. Ectopic expression of a cold-inducibletranscription factor, CBF1/DREB1B, in transgenic rice(Oryza sativa L. )[J]. Mol Cells, 2004, 18(1):107-114.
[5]Wang XC, Zhao QY, Ma CL, et al. Global transcriptome profiles of Camellia sinensis during cold acclimation[J]. BMC Genomics 2013, 14:415.
[6] Chinnusamy V, Zhu JK, Sunkar R. Gene regulation during cold stress acclimation in plants[J]. Methods Mol Biol, 2010, 639:39-55.
[7] Carpaneto A, Ivashikina N, Levchenko V, et al. Cold transiently activates calcium-permeable channels in Arabidopsis mesophyll cells[J]. Plant Physiol, 2007, 143(1):487-494.
[8]Sangwan V, Foulds I, Singh J, et al. Cold-activation of Brassica napus BN115 promoter is mediated by structural changes in membranes and cytoskeleton, and requires Ca2+influx[J]. Plant J, 2001, 27:1-12.
[9]T?r?k Z, Crul T, Maresca B, et al. Plasma membranes as heat stress sensors:from lipid-controlled molecular switches to therapeutic applications[J]. Biochim Biophys Acta, 2013, 12:454-459.
[10]Soares DA, Oliveira MB, Evangelista AF, et al. Phospholipase gene expression during Paracoccidioides brasiliensis morphological transition and infection[J]. Mem Inst Oswaldo Cruz, 2013, 108(6):808-811.
[11]Lissarre M, Ohta M, Sato A, et al. Cold-responsive gene regulation during cold acclimation in plants[J]. Plant Signal Behav, 2010,5(8):948-952.
[12]Haake V, Cook D, Riechmann JL, et al. Transcription factor CBF4 is a regulator of drought adaptation in Arabidopsis[J]. Plant Physiol, 2002, 130(2):639-648.
[13]Gilmour SJ, Zarka DG, Stockinger EJ, et al. Low temperature regulation of the Arabidopsis CBF family of AP2 transcriptional activators as an early step in cold-induced COR gene expression[J]. Plant J, 1998, 16(4):433-442.
[14]Chinnusamy V, Ohta M, Kanrar S, et al. ICE1:a regulator of coldinduced transcriptome and freezing tolerance in Arabidopsis[J]. Genes Devel, 2003, 17:1043-1054.
[15]Daniel GZ, Jonathan TV, Daniel C, et al. Cold induction of Arabidopsis CBF genes involves multiple ICE(Inducer of CBF Expression)promoter elements and a cold-regulatory circuit that is desensitized by low temperature[J]. Plant Physiology, 2003,133:910-918.
[16]Miura K, Jin JB, Lee J, et al. SIZ1-mediated sumoylation of ICE1 controls CBF3/DREB1A expression and freezing tolerance in Arabidopsis[J]. The Plant Cell, 2007, 19:1403-1414.
[17]Su CF, Wang YC, Hsieh TH, et al. A novel MYBS3-dependent pathway confers cold tolerance in rice[J]. Plant Physiol, 2010,153(1):145-158.
[18]Luis OS, Jonathan PA, Jodi Y, et al. AtERF14, a member of the ERF family of transcription factors, plays a nonredundant role in plant defense[J]. Plant Physiology, 2007, 143:400-409.
[19]Zhu JH, Dong CH, Zhu JK. Interplay between cold-responsive gene regulation, metabolism and RNA processing during plant cold acclimation[J]. Current Opinion in Plant Biology, 2007, 10:290-295.
[20] Shan W, Kuang JF, Lu WJ, Chen JY. Banana fruit NAC transcription factor MaNAC1 is a direct target of MaICE1 and involved in cold stress through interacting with MaCBF1[J]. Plant Cell Environ, 2014, 37(9):2116-2127.
[21] Knight H, Zarka DG, Okamoto H, et al. Abseisic acid induces CBF gene transcription and subsequent induction of cold-regulated genes via the CRT promoter element[J]. Plant Physiol, 2004,135(7):1710-1717.
[22] Agarrwal M. A R2R3-Type MYB transcription factor is involved in the cold regulation of CBF genes and in acquired freeding tolerance[J]. J Biol Chem, 2006, 281(49):37636-37645.
[23]Lee SC, Lee MY, Kim SJ, et al. Characterization of an abiotic stressinducible dehydrin gene, OsDhn1, in rice(Oryza sativa L.)[J]. Mol Cells, 2005, 19(2):212-218.
[24]Lee BH, Lee H, Xiong L, et al. A mitochondrial complex I defect impairs cold-regulated nuclear gene expression[J]. Plant Cell,2002, 14(6):1235-1251.
[25]Wisniewskia M, Bassett C, Norelli J, et al. Expressed sequence tag analysis of the response of apple(Malus×domestica ‘Royal Gala’)to low temperature and water deficit[J]. Physiologia Plantarum, 2008, 133:298-317.
[26]Li X W, Feng ZG, Yang HM, et al. A novel cold-regulated gene from Camellia sinensis, CsCOR1, enhances salt- and dehydrationtolerance in tobacco[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2010,394(2):354-359.
[27] Zhu Q, Zhang J, Gao X, et al. The Arabidopsis AP2/ERF transcription factor RAP2. 6 participates in ABA, salt and osmotic stress responses[J]. Gene, 2010, 457(1-2):1-12.
(責(zé)任編輯 馬鑫)
Activation and Regulation on the Cold Response Pathway of ICE1-CBF in Plants
Wei Junyan1Zhao Jia2Zhao Shiqi1Zhou Qiying1Yuan Zhengfang1Li Xianwen1
(1. College of Life Sciences,Xinyang Normal University,Xinyang 464000;2. Hua-Rui College,Xinyang Normal University,Xinyang 464000)
Cold stress signal is sensed while changes of cell membrane fluidity in plant cells cause the changes of Ca2+influx. The rising of Ca2+in cytoplasm leads to the changes of activities of various calcium-regulating proteins in plant cells, then cold-responsive genes are activated by cascade reactions, and thus plant resistance to low temperature is enhanced. At present, it is almost certain that the main path of activating cold-responsive genes is ICE1-CBF regulatory pathway. In this paper. We review the recent studies of the cold signal sensing and transduction,expression activation and regulation of cold-responsive genes in plant cells, which lays the theoretical foundation for the further study of cold acclimation of plants.
plants;cold-responsive genes;signal transduction;regulation of gene expression
10.13560/j.cnki.biotech.bull.1985.2015.06.016
2014-10-20
國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(31270727,U1404319),河南省重點(diǎn)科技攻關(guān)項(xiàng)目(082102150009)
魏俊燕,女,碩士研究生,研究方向:植物分子生物學(xué);E-mail:1039752416@qq.com
李先文,男,博士,教授,研究方向:植物脅迫生理學(xué)與分子生物學(xué);E-mail:xianwenli01@sina.com