朱保硯 楊成雄 嚴秀平
摘 要 通過Mn摻雜ZnS量子點表面的羧基與人IgG表面的氨基進行酰胺縮合,制備了人IgG功能化的Mn摻雜ZnS量子點(IgG-QDs)。通過金納米粒子和羊抗人IgG之間的靜電相互作用,合成了羊抗人IgG功能化的金納米粒子。利用IgG-QDs和羊抗人IgG功能化的金納米粒子之間的熒光共振能量轉(zhuǎn)移效應,建立了人血清中人IgG的室溫磷光檢測新方法。本方法的線性范圍為1~10 μg/mL,檢出限為0.45 μg/mL。由于引入了室溫磷光檢測,本方法有效避免了機體自發(fā)熒光和基質(zhì)散射光等背景信號的干擾,成功實現(xiàn)了人血清樣品中人IgG的檢測。
關(guān)鍵詞 Mn摻雜ZnS量子點; 免疫球蛋白G; 金納米粒子; 磷光
1 引 言
量子點作為一種新型熒光探針,與有機熒光染料相比,具有吸收光譜寬、發(fā)射光譜窄和抗光漂白性好等優(yōu)點,在諸多領(lǐng)域得到了廣泛研究和應用[1~11]。而傳統(tǒng)的熒光量子點用于生物傳感時,常受到基體自發(fā)熒光和基質(zhì)散射光的干擾[12]。因此,需要將量子點光信號和背景光信號區(qū)分開。目前已報道的可避免背景干擾的量子點主要有兩類,近紅外量子點[13~15]和磷光量子點[16~22]。近紅外量子點的發(fā)射波長較長,可以避開發(fā)射波長在550 nm左右的背景信號干擾。磷光量子點由于發(fā)光壽命較長,可在發(fā)光時間上避開短壽命的背景信號干擾。
Mn摻雜ZnS量子點是磷光量子點的典型代表,其光學性質(zhì)優(yōu)異,在生物傳感中具有良好的應用潛力。已有的基于Mn摻雜ZnS量子點的生物傳感方法,大多依賴分析物與量子點之間直接[22]或者間接[21]的相互作用。IgG(免疫球蛋白G,IgG)是血清主要的抗體成分,在機體免疫中起保護作用,其指標對疾病診斷具有重要意義。IgG等生物活性蛋白與量子點并沒有明顯的相互作用,又需要保持其四級結(jié)構(gòu)來執(zhí)行生物學功能,開發(fā)基于Mn摻雜ZnS量子點的可用于人IgG等生物活性蛋白的低背景檢測方法具有重要意義。
本研究通過Mn摻雜ZnS量子點表面的羧基與人IgG表面的氨基進行酰胺縮合, 制備了人IgG功能化的Mn摻雜ZnS量子點(IgG-QDs); 通過金納米粒子和羊抗人IgG之間的靜電相互作用, 制備了羊抗人IgG金納米粒子。利用IgG-QDs和羊抗人IgG功能化的金納米粒子之間的熒光共振能量轉(zhuǎn)移效應,構(gòu)建了人體血清中人IgG的室溫磷光檢測新方法。本方法的線性范圍為1~10 μg/mL,檢出限為0.45 μg/mL。由于引入了室溫磷光檢測,本方法可有效避免基體自發(fā)熒光和基質(zhì)散射光等背景信號的干擾。同時,由于引入了IgG-QDs和羊抗人IgG功能化的金納米粒子之間的熒光共振能量轉(zhuǎn)移效應, 因此本方法可用于高選擇性檢測生物體液中的人IgG。本方法低毒低背景,有望用于構(gòu)建其它檢測體系, 用于生物體液中的重要生物活性物質(zhì)的檢測。
2 實驗部分
2.1 儀器與試劑
Rigaku D/max-2500 X-射線衍射光譜儀(日本理光公司); Tecnai G2 F20高分辨場發(fā)射透射電子電鏡(荷蘭菲利普公司); UV-3600紫外-可見-近紅外分光光度計(日本島津公司); FL-4500熒光光譜儀(日本日立公司)。
所用試劑至少為分析純。超純水(電阻率18.2 MΩ cm)由WaterPro水純化系統(tǒng)(美國Labconco 公司)制備。檸檬酸鈉、巰基丙酸(MPA)和氯金酸(阿拉丁試劑); 吐溫-20、ZnSO4·7H2O、Mn(Ac)2·4H2O和Na2S·9H2O(天津市光復精細化工研究所);C6H5Na3O7·2H2O(天津富辰化學試劑研究所);1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亞胺鹽酸鹽(EDC)和N-羥基琥珀酰亞胺(NHS),購于上海 Medpep公司;人IgG和羊抗人IgG (Ab,北京拜耳迪生物科技有限公司);氨基酸和人血清白蛋白(HSA)購于北京普博欣試劑公司。
2.2 實驗方法
2.2.1 Mn摻雜ZnS量子點的制備
參考文獻[23]制備Mn摻雜ZnS量子點。在100 mL圓底三口燒瓶中加入0.5 mmol ZnSO4和0.02 mmol Mn(Ac)2,室溫磁力攪拌混合均勻。加入2 mmol MPA,待攪拌均勻后用1.5 mol/L NaOH調(diào)至pH 11,以去離子水調(diào)節(jié)體系總體積至45 mL。室溫磁力攪拌下通氬氣30 min,在隔絕空氣的條件下加入5 mL Na2S溶液(0.05 mmol/L)。反應20 min后,將體系敞開,并在50℃的恒溫水浴中陳化2 h。以無水乙醇沉降所得量子點,離心(10000 r/min,10 min),再用無水乙醇洗滌沉淀兩次,離心收集沉淀。所得沉淀室溫真空干燥24 h,得到Mn摻雜ZnS量子點。
2.2.2 人IgG功能化Mn摻雜ZnS量子點(IgG-QDs)的制備
參考文獻[24~26]制備人IgG功能化Mn摻雜ZnS量子點。用10 mmol/L PBS(pH 7.4)稀釋人IgG原液,得到5.0 mg/mL人IgG溶液,備用。稱取10 mg Mn摻雜ZnS量子點,4 mg EDC和2 mg NHS,溶解在1.0 mL 10 mmol/L PBS(pH 7.4)中。所得混合液在室溫下磁力攪拌30 min,使Mn摻雜ZnS量子點表面羧基充分活化。向上述混合液中加入1.0 mL 5.0 mg/mL人IgG溶液,室溫下磁力攪拌2 h。隨后將反應液于4℃放置過夜,讓未反應的EDC水解而失去活性。2500 r/min離心10 min,棄去上清液。將得到的沉淀用10 mmol/L PBS(pH 7.4)洗滌兩次。隨后將得到的沉淀溶解于20 mL 10 mmol/L PBS緩沖溶液(pH 7.4)中,于4℃放置備用。
2.2.3 金納米粒子(AuNPs)的制備
參考文獻[27~30]制備AuNPs。稱取115 mg檸檬酸鈉,以10 mL去離子水溶解, 得1%的檸檬酸鈉溶液。在100 mL圓底燒瓶中加入25 mL去離子水和250 μL 1% 氯金酸溶液,磁力攪拌下加熱至沸騰。向體系中快速加入1 mL 1% 檸檬酸鈉溶液,反應2 min后,反應液由金黃色變?yōu)榫萍t色。待反應液保持沸騰10 min后撤去加熱源,室溫下攪拌15 min,得到所需的AuNPs溶液。
2.2.4 羊抗人IgG功能化AuNPs(Ab-AuNPs)的制備
參考文獻[25]制備羊抗人IgG功能化的金納米粒子。以0.1 mol/L Na2CO3溶液調(diào)節(jié)AuNPs溶液至pH 9.0,取此溶液10 mL,與300 μL 1 mg/mL 羊抗人IgG溶液混合,室溫下磁力攪拌反應1 h。12000 r/min離心30 min,收集沉淀,溶解于10 mL 10 mmol/L硼酸鹽緩沖液中。隨后向體系中加入60 μL 1 mg/mL HSA溶液,室溫磁力攪拌40 min,使AuNPs表面的未結(jié)合位點得到封閉。將此反應液12000 r/min離心30 min,傾出上層清液。收集紅色沉淀,溶解于5 mL 10 mmol/L硼酸鹽緩沖液中,得Ab-AuNPs溶液,于4℃放置備用。
2.2.5 測定條件的優(yōu)化
在1.5 mL 離心管中加入10 μL IgG-QDs溶液和不同量(0, 50, 100, 150, 200和250 μL)的Ab-AuNPs溶液,用含0.05% 吐溫-20的10 mmol/L PBS溶液(pH 7.4)調(diào)節(jié)體積至500 μL。將離心管放入37℃的搖床中,振蕩反應1 h后,進行熒光光譜測定(PMT電壓950 V,激發(fā)波長300 nm,激發(fā)和發(fā)射狹縫寬度均為10.0 nm)。
2.2.6 人IgG的測定
在1.5 mL 離心管中加入150 μL Ab-AuNPs溶液和不同體積(0, 20, 50, 100, 150 , 200, 250和300 μL)的25 μg/mL人IgG溶液。用含 0.05% 吐溫-20的10 mmol/L PBS溶液(pH 7.4)調(diào)節(jié)體積至490 μL。將離心管放入37℃的搖床中,振蕩反應1 h后,加入10 μL IgG-QDs溶液,于37℃的搖床中繼續(xù)振蕩反應1 h。反應結(jié)束后,進行熒光光譜測定(PMT電壓950 V,激發(fā)波長300 nm,激發(fā)和發(fā)射狹縫寬度均為10.0 nm)。
2.2.7 共存干擾實驗
在1.5 mL 離心管中加入150 μL Ab-AuNPs溶液、100 μL 25 μg/mL人IgG溶液和適量的共存干擾物溶液。用含0.05% 吐溫-20的10 mmol/L PBS溶液(pH 7.4)調(diào)節(jié)體積至490 μL。將離心管放入37℃搖床中振蕩反應1 h后,加入10 μL IgG-QDs溶液,于37℃的搖床中繼續(xù)振蕩反應1 h。反應結(jié)束后,進行熒光光譜測定(PMT電壓950 V,激發(fā)波長300 nm,激發(fā)和發(fā)射狹縫寬度均為10.0 nm)。
2.2.8 實際樣品的測定
6份人血清樣品取自當?shù)蒯t(yī)院。將血清樣品用含0.05% 吐溫-20的10 mmol/L PBS溶液(pH 7.4)稀釋400倍。在1.5 mL 離心管中加入150 μL Ab-AuNPs溶液,250 μL 待測樣品和適量(0, 20和40 μL) 25 μg/mL人IgG溶液。用含0.05%吐溫-20的10 mmol/L PBS溶液(pH 7.4)調(diào)節(jié)體積至490 μL。將離心管放入37℃的搖床中,振蕩反應1 h后,加入10 μL IgG-QDs溶液,于37℃的搖床中繼續(xù)振蕩反應1 h。反應結(jié)束后,進行熒光光譜測定(PMT電壓950 V,激發(fā)波長300 nm,激發(fā)和發(fā)射狹縫寬度均為10.0 nm)。3 結(jié)果與討論
3.1 Mn摻雜ZnS量子點和AuNPs的表征
SEM結(jié)果表明Mn摻雜ZnS量子點顆粒接近球形,粒徑約3.5 nm(圖1A)。XRD譜圖中衍射峰有明顯的寬化現(xiàn)象,表明所合成的Mn摻雜ZnS量子點粒子粒徑較小。3個衍射峰分別對應于立方型閃鋅礦結(jié)構(gòu)的(111)、(220)和(311)3個晶面的衍射,說明所制備的Mn摻雜ZnS量子點為立方形結(jié)構(gòu)。
圖1 Mn摻雜ZnS量子點的(A)SEM和(B)XRD圖
Fig.1 (A) SEM image and (B) XRD pattem of Mn doped ZnS quantum dots (QDs)
Mn摻雜ZnS量子點的室溫磷光發(fā)射(RTP)在與IgG偶聯(lián)后,峰形幾乎不變,光強略微降低(圖2A)。AuNPs的紫外光譜吸收峰在與羊抗人IgG偶聯(lián)后有所紅移,強度略微降低(圖2B)。IgG-QDs的RTP發(fā)射光譜和Ab-AuNPs的紫外吸收光譜有部分重疊,有可能發(fā)生熒光共振能量轉(zhuǎn)移(FRET)作用(圖2C)。
圖2 (A)Mn摻雜ZnS量子點(…)和IgG-QDs(—)的RTP發(fā)射光譜;(B)AuNPs(…)和Ab-AuNPs(—)的紫外吸收光譜;(C)IgG-QDs的室溫磷光(RTP)發(fā)射光譜和Ab-AuNPs的紫外吸收光譜
Fig.2 (A) Room temperature phosphorescence (RTP) emission spectra of Mn-doped ZnS QDs and IgG-QDs; (B) Absorption spectra of AuNPs and Ab-AuNPs; (C) RTP emission spectrum of IgG-QDs and absorption spectrum of Ab-AuNPs
3.2 Ab-AuNPs和IgG-QDs比例優(yōu)化
考察了Ab-AuNPs和IgG-QDs比例對IgG-QDs磷光淬滅的影響(圖3),當IgG-QDs和Ab-AuNPs的比例為1∶15時,淬滅效果最好。為保持抗體活性,體系pH=7.4,溫度為37℃。
圖3 Ab-AuNPs和IgG-QDs比例對IgG-QDs磷光強度的影響
Fig.3 Effect of the ratio of Ab-AuNPs to IgG-QDs on RTP intensity of IgG-QDs
3.3 傳感機理
體系RTP的強度與待測樣品中人IgG濃度之間的定量關(guān)系可由Forster偶極-偶極相互作用模型解釋(圖4)。當IgG-QDs表面的人IgG與Ab-AuNPs表面的羊抗人IgG特異性結(jié)合后,IgG-QDs與Ab-AuNPs之間的距離被拉近,從而發(fā)生FRET效應,引起IgG-QDs RTP淬滅。而當IgG-QDs表面的人IgG不與Ab-AuNPs表面的羊抗人IgG特異性結(jié)合時,IgG-QDs與Ab-AuNPs之間的距離較遠,從而不發(fā)生FRET作用,不會引起IgG-QDs RTP淬滅。
當待測樣品與Ab-AuNPs溶液混合時,一些Ab-AuNPs表面的羊抗人IgG會與樣品中的人IgG結(jié)合。體系中加入IgG-QDs后,已經(jīng)結(jié)合了人IgG的Ab-AuNPs無法再結(jié)合IgG-QDs。待測樣品中人IgG的量決定了被占據(jù)的Ab-AuNPs的量,進而決定了能與Ab-AuNPs結(jié)合的IgG-QDs的量, 由此可確定未與Ab-AuNPs結(jié)合的IgG-QDs的量。體系RTP強度與待測樣品中人IgG濃度之間存在定量關(guān)系。因此,通過監(jiān)測體系的RTP強度,就可得出人體血清中的人IgG濃度。
3.4 分析特征量
IgG-QDs用于檢測IgG的線性范圍為1.0~10 μg/mL,線性相關(guān)系數(shù)R2=0.9943,檢出限為0.45 μg/mL(見圖5)。人IgG濃度為5.0 μg/mL時,11次重復測定的精密度為1.5%。
圖5 IgG-QDs的磷光強度隨IgG濃度的變化(A)和線性關(guān)系圖(B)
Fig.5 (A) RTP spectra of AuNPs-quenched IgG-QDs in the presence of various concentrations of IgG; (B) corresponding calibration curve
3.5 共存干擾
考察了金屬離子、陰離子、葡萄糖、氨基酸和蛋白質(zhì)等對體系RTP強度的影響(表1)。結(jié)果表明,由于人IgG與羊抗人IgG之間的特異性結(jié)合,本方法表現(xiàn)出對人IgG高的選擇性。
3.6 血清樣品中人IgG的測定
將本方法用于檢測實際人血清樣品中人IgG,加標回收率在98%~113%之間(表2)。此外,由于采用磷光模式檢測可以消除血清樣品背景干擾,而熒光模式下血清樣品背景干擾比較明顯(圖6)。
2.1[BHDFG1*2,WKZQ0W][BG)W][HT5][]
4 結(jié) 論
制備了IgG-QDs和羊抗人IgG功能化的金納米粒子,利用IgG-QDs和羊抗人IgG功能化的金納米粒子之間的熒光共振能量轉(zhuǎn)移效應,構(gòu)建了人體血清中人IgG的室溫磷光檢測新方法。本方法可有效避免基體自發(fā)熒光和基質(zhì)散射光等背景信號的干擾,可用于高選擇性檢測生物體液中的人IgG。
References
1 Bruchez M, Moronne M, Gin P, Weiss S, Alivisatos A P. Science, 1998, 281(5385): 2013-2016
2 Green M. Angew. Chem. Int. Ed., 2004, 43(32): 4129-4131
3 Medintz I L, Uyeda H T, Goldman E R, Mattoussi H. Nat. Mater., 2005, 4(6): 435-446
4 Michalet X, Pinaud F F, Bentolila L A, Tsay J M, Doose S, Li J J, Sundaresan G, Wu A M, Gambhir S S, Weiss S. Science, 2005, 307(5709): 538-544
5 Pathak S, Davidson M C, Silva G A. Nano Lett., 2007, 7(7): 1839-1845
6 XING Shi-Ge, XIONG Qi-Rong, ZHONG Qiang, ZHANG Yue, BIAN Su-Min, JIN Yong, CHU Xiao-Gang. Chinese J. Anal. Chem., 2013, 43(6): 949-955
邢仕歌, 熊奇榮, 鐘 強, 張 悅, 卞素敏, 金 涌, 儲曉剛. 分析化學, 2013, 41(6): 949-955
7 Ruedas-Rama M J, Hall E A H. Anal. Chem., 2008, 80(21): 8260-8268
8 Smith A M, Nie S. Acc. Chem. Res., 2010, 43(2): 190-200
9 Wang X, Ruedas-Rama M J, Hall E A H. Anal. Lett., 2007, 40(8): 1497-1520
10 Zhong W W. Anal. Bioanal. Chem., 2009, 394(1): 47-59
11 Zrazhevskiy P, Sena M, Gao X. Chem. Soc. Rev., 2010, 39(11): 4326-4354
12 Ambrosi A, Castaneda M T, Killard A J, Smyth M R, Alegret S, Merkoci A. Anal. Chem., 2007, 79(14): 5232-5240
13 Chen S J, Chang H T. Anal. Chem., 2004, 76(13): 3727-3734
14 Thomas J, Sherman D B, Amiss T J, Andaluz S A, Pitner J B. Bioconjugate Chem., 2007, 18(6): 1841-1846
15 Zhang Y, Li Y, Yan X P. Anal. Chem., 2009, 81(12): 5001-5007
16 He Y, Wang H F, Yan X P. Anal. Chem., 2008, 80(10): 3832-3837
17 Ren H B, Wu B Y, Chen J T, Yan X P. Anal. Chem., 2011, 83(21): 8239-8244
18 CHEN Juan, SUN Jie-Fang, GUO Lei, XIE Jian-Wei, SUN Guo-Xiang. Chinese J. Anal. Chem., 2012, 40(11): 1680-1685
陳 娟, 孫潔芳, 郭 磊, 謝劍煒, 孫國祥. 分析化學, 2012, 40(11): 1680-1685
19 Wang H F, He Y, Ji T R, Yan X P. Anal. Chem., 2009, 81(4): 1615-1621
20 DU Bao-An, LIU Cheng, CAO Yu-Hong, CHEN Li-Na. Spectroscopy and Spectral Analysis, 2014, 34(4): 1070-1074
杜保安, 劉 澄, 曹雨虹, 陳麗娜. 光譜學與光譜分析, 2014, 34(4): 1070-1074
21 Wang H F, Li Y, Wu Y Y, He Y, Yan X P. Chem. Eur. J., 2010, 16(43): 12988-12994
22 Wu P, He Y, Wang H F, Yan X P. Anal. Chem., 2010, 82(4): 1427-1433
23 Yan H, Wang H F. Anal. Chem., 2011, 83(22): 8589-8595
24 Zhuang J Q, Zhang X D, Wang G, Li D M, Yang W S, Li T J. J. Mater. Chem., 2003, 13(7): 1853-1857
25 Liang G X, Pan H C, Li Y, Jiang L P, Zhang J R, Zhu J J. Biosen. Bioelectron., 2009, 24(12): 3693-3697
26 Wang S P, Mamedova N, Kotov N A, Chen W, Studer J. Nano Lett., 2002, 2(8): 817-822
27 Zhu D, Jiang X X, Zhao C, Sun X L, Zhang J R, Zhu J J. Chem. Commun., 2010, 46(29): 5226-5228
28 Liu J M, Li Y, Jiang Y, Yan X P. J. Proteome Res., 2010, 9(7): 3545-3550
29 Ojea-Jimenez I, Puntes V. J. Am. Chem. Soc., 2009, 131(37): 13320-13327
30 Zhang C, Wu F B, Zhang Y Y, Wang X, Zhang X R. J. Anal. At. Spectrom., 2001, 16(12): 1393-1396