張燕,修心宇(長江師范學(xué)院生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,重慶涪陵,408100)
莖瘤芥種子和葉片中硫苷的提取與純化
張燕,修心宇
(長江師范學(xué)院生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,重慶涪陵,408100)
研究了不同料液比(1∶5、1∶10、1∶15、1∶20)、提取時間(10、15、20、25 min)、提取溫度(50、60、70、80℃)對莖瘤芥種子和葉片中硫苷提取量的影響。試驗結(jié)果表明,種子與葉子的硫苷在質(zhì)譜儀中出峰時間均在1 min內(nèi),種子內(nèi)的硫苷含量和純度均高于葉片。當料液比為1∶15(g∶mL)、溫度70℃、時間20 min時,提取的硫苷量最大。
莖瘤芥;硫代葡萄糖苷;提取;純化
硫代葡萄糖苷(glucosinolates,簡稱硫苷)是一類含硫次級代謝物,多數(shù)分布在海綿體、高等植物、紅棗等450多種生物中,在蕓薹屬植物中含量最高[1,2]。在已發(fā)現(xiàn)的120多種硫苷中[3,4],十字花科植物含有62種,其中有19種在蕓薹屬作物中被檢測出。硫苷本身較為穩(wěn)定,細胞液泡中含量最高,當植物體遭遇傷害時,硫苷會降解[5],減緩傷害作用。硫苷及其降解產(chǎn)物的生化特性較為活躍,在抗癌領(lǐng)域已吸引了眾多研究者的關(guān)注,并得到了廣泛的認同[6~8]。研究發(fā)現(xiàn),食用十字花科蔬菜可以降低癌癥的發(fā)病率,減少癌癥對人體健康的危害[9~14]。
20世紀70年代以前,主要是利用紙色譜和薄層色譜法對硫苷進行分離[15]。20世紀90年代后,硫苷的分析方法主要是高效色譜質(zhì)譜聯(lián)用法(LC-MS),但這種方法要對樣品原料實施脫硫處理,消耗的時間較長。而反相離子對色譜的出現(xiàn),解決了上述種種問題,成為一種較為理想的分離方法。
十字花科植物中硫苷及其降解產(chǎn)物的生物活性極其活躍,在抗腫瘤和抑菌活性領(lǐng)域已得到眾多研究者的關(guān)注和證實。莖瘤芥 (Brassica juncea(L.)Czern.et Coss.var.tumidaTsen et Lee)為十字花科蔬菜,目前未見莖瘤芥內(nèi)硫苷提取、純化的報道。因此,以莖瘤芥的種子和葉片為材料,對二者所含硫苷進行提取和分化,為其抗癌領(lǐng)域的應(yīng)用提供支撐。
1.1試驗材料
莖瘤芥種子,儲藏期3 a,由重慶市涪陵綠原農(nóng)業(yè)科技發(fā)展公司提供;葉片,購于涪陵超市,品種名稱均為永安小葉。
1.2試驗儀器
KH-250DB型數(shù)控超聲波清洗器,南京溫諾儀器設(shè)備有限公司生產(chǎn);Xevo G2-S QTof質(zhì)譜儀,沃特世科技(上海)有限公司生產(chǎn);RE-52C真空旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,西安博奧儀器有限公司生產(chǎn);LGJ-10型真空冷凍干燥機,MIT三豐儀器科技有限公司生產(chǎn)。
1.3試驗方法
①工藝流程莖瘤芥葉片清洗、風(fēng)干→將種子、葉片在電熱鼓風(fēng)干燥箱內(nèi)干燥→研成粉末→乙醚脫脂→甲醇提取→離心取上層清液→真空旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)去甲醇→質(zhì)譜儀檢測→葡聚糖凝膠離子交換柱除雜→色譜儀純化→真空冷凍干燥機濃縮。
②試驗前處理莖瘤芥種子和葉片購回后,將葉片洗凈,并用細線串聯(lián)起來,于室內(nèi)自然風(fēng)干7 d,待葉片表面枯干后,同種子一起放入95℃的電熱鼓風(fēng)干燥箱內(nèi),烘干時間為24 h。待種子和葉片徹底干燥后,取出置于研缽內(nèi)研磨,研磨得越細越好。
1.4硫苷的脫脂
取10個規(guī)格相同的索氏提取器,每5個為一組,用橡皮管串聯(lián)起來。種子與葉片粉末各取5 g,并依次用濾紙包裹起來,分別放在每組的索氏提取器內(nèi),同時將無水乙醚倒入蒸發(fā)瓶內(nèi)。
取2個數(shù)顯恒溫水浴鍋通電,溫度設(shè)置為60℃,待水浴鍋溫度恒定,將串聯(lián)的索氏提取器分別置于2個水浴鍋內(nèi)。因為乙醚是毒性物質(zhì),并且揮發(fā)性極強,所以整個脫脂過程需要在通風(fēng)櫥內(nèi)操作。
脫脂的時間大概為5 h。剛開始脫脂時,虹吸出來的溶液顏色為深綠色,隨著脫脂虹吸次數(shù)的增加,溶液顏色由深綠色漸漸變淺。由于脫脂時間較長,且乙醚的揮發(fā)性極強,所以在脫脂過程中,要及時向蒸發(fā)瓶內(nèi)添加乙醚。當虹吸出來的溶液為無色時,結(jié)束脫脂。按此方法,將種子與葉片粉末各脫脂12次。脫脂結(jié)束后,取出索氏提取器內(nèi)的原料包,并將濾紙打開置于通風(fēng)處,自然揮發(fā)15min即可去除原料中的乙醚。
1.5硫苷的提取
硫苷的提取劑為70%的甲醇溶液。為了確定提取的最佳方法,首先將種子和葉片粉末與70%甲醇溶劑混合,料液比1∶15(g∶mL,下同),在50、60、70、80℃的數(shù)控超聲波清洗器內(nèi)分別振蕩提取,20 min后結(jié)束振蕩,然后上述提取過程重復(fù)1次。最后種子和葉片粉末以料液比1∶15于70℃數(shù)控超聲波清洗器內(nèi)分別提取10、15、20、25 min后結(jié)束震蕩。
種子和葉片原料提取后,在3 000 r/min下離心15 min,結(jié)束后,將上層清液分別盛于小燒杯中。
由于分離后的上層清液中含有大量甲醇,所以采用真空旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)法去除。將種子與葉片分離后的上層清液分別倒入蒸發(fā)瓶內(nèi),打開冷凝裝置的進水閥門,并開啟真空泵,同時蒸發(fā)儀的條件設(shè)置為100 r/min,溫度為50℃。當冷凝過程中,甲醇溶液不在滴落,即結(jié)束蒸發(fā)。整個蒸發(fā)過程大概需要150 min,蒸發(fā)后的溶液為深綠色油狀物質(zhì)即硫苷的粗提取物,最后將硫苷的粗提物置于冰箱內(nèi)低溫保鮮。
1.6質(zhì)譜檢測
選取相同條件提取的種子與葉片粗提物,再一次離心分離,并取上層清液進行真空抽濾,再通過質(zhì)譜儀進行檢測,檢測條件為:流動相為乙腈∶水=20∶80;色譜柱:反相C18柱;離子極性:負離子;檢測波長:229nm。
1.7硫苷的純化、濃縮
取粗提物倒入DEAE Sephadex A-25葡聚糖凝膠離子交換柱中,當粗提物流盡時,用 40 mL 0.02 mol/L醋酸鈉溶液洗滌,然后用40 mL水沖洗。最后以40 mL 0.5 mol/L硫酸鉀溶液洗脫[16],收集到的液體通過色譜儀分析純化,要求為:流動相為乙腈∶水=20∶80;檢測波長:229nm;色譜柱:反相C18(4.6mm×150mm)分析柱;流速:1mL/min。找出與質(zhì)譜圖相同的硫苷峰,在反相C18(10 mm×250 mm)制備柱,流速3 mL/min的條件下多次收集該時間段的硫苷峰,將收集到的溶液盛裝在錐形瓶內(nèi)并于冰箱內(nèi)冷凍。
開啟真空冷凍干燥機,將盛裝樣品的錐形瓶置于干機罩內(nèi),當屏幕顯示-25℃時開啟真空泵。干燥時間大概3~5d,當錐形瓶內(nèi)無液體,出現(xiàn)結(jié)晶時干燥結(jié)束,此結(jié)晶即為樣品濃縮后的硫苷純品。
2.1種子樣品的檢測分析
粗提物的硫苷以鉀鹽的形式存在,在負離子模式下,得到0.7 min時的硫苷碎片峰。如圖1所示,從質(zhì)譜圖中可以發(fā)現(xiàn)種子原料較為純凈,各離子峰的出現(xiàn)較為穩(wěn)定。m/z(質(zhì)荷比)為358.028 48處的離子峰響應(yīng)最高,而此峰與黑芥子苷鉀鹽的[M-K]-相一致,由此可以說明,m/z為358.028 48處的峰即為本試驗需要檢測的硫苷峰。
圖1 種子硫苷的質(zhì)荷比
2.2葉片樣品的檢測分析
在負離子模式下掃描,得到1 min時放大的硫苷離子碎片峰。如圖2所示,從質(zhì)譜圖中可以發(fā)現(xiàn)葉片原料不是很純凈,離子峰的出現(xiàn)較為雜亂。將1min內(nèi)所有的離子峰進行放大處理,發(fā)現(xiàn)了m/z為358.028 48處的峰,而此峰與黑芥子苷鉀鹽的[M-K]-相對應(yīng),由此可以說明,m/z為358.02848處的峰即為本試驗所需檢測的硫苷峰。但是峰帶在133.014 64、153.023 29、197.80882等時,峰值高,是由于純化效果不是很好,另外,在同等量的料液比中葉片內(nèi)硫苷含量極低。
圖2 葉片硫苷的質(zhì)荷比
2.3HPLC制備后的硫苷分析
取15 μL粗提取的硫苷液進樣,通過反相C18(10 mm×250 mm)制備柱制備后,再由反相 C18(4.6 mm×150 mm)分析柱分析,得到分離、純化后的分析色譜圖。如圖3所示,硫苷峰的響應(yīng)值較高,且峰形較好。分析得到硫苷出峰時間約為1.399 min,說明多次收集此處硫苷峰即可得到分離純化后的硫苷純品。
圖3 純硫苷的HPLC圖譜
2.4提取條件對硫苷量的影響
①料液比如圖4所示,料液比為1∶5~1∶15時,種子硫苷提取量呈勻速上升趨勢,1∶15時硫苷量最高。繼續(xù)增加料液比,硫苷量基本保持不變。料液比為1∶5~1∶15時,葉片硫苷提取量也逐漸上升,料液比為1∶10~1∶15時,硫苷提取量上升最快,當比例為1∶15時,硫苷提取量達到最高,之后隨著比例的增大,硫苷提取量幾乎保持不變。說明,料液比為1∶15為硫苷提取的最佳比例。
②時間如圖5所示,當提取時間不斷增加,硫苷的提取量持續(xù)增大,提取時間達到20min時,硫苷提取量達到最高;繼續(xù)增加提取時間,硫苷提取量幾乎不發(fā)生變化,說明硫苷提取量最佳提取時間為20min。
③溫度如圖6所示,當溫度為60~70℃時,種子和葉片中硫苷提取量隨著溫度的上升而增加,當溫度為70℃時硫苷提取量最大,溫度為70~80℃時硫苷提取量變化不明顯,當溫度高于80℃時,硫苷提取量逐漸降低,這可能是由于溫度過高導(dǎo)致部分硫苷的分解所致。說明,70℃為硫苷提取量的最佳溫度。
本研究首次對莖瘤芥種子和葉片進行硫苷的提取與純化,通過甲醇溶劑的提取后,得到了硫苷的粗提物,其為深綠色油狀物質(zhì),并伴有特殊刺激性氣味。對硫苷的粗提物進行離心分離、旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)去甲醇、真空抽濾后采用質(zhì)譜檢測,通過種子和葉子粉末以料液比分別為(1∶5、1∶10、1∶15、1∶20)(g∶mL)進行等量提取,由圖1、2可知,發(fā)現(xiàn)種子的硫苷離子碎片峰和葉子的離子碎片峰均在1 min內(nèi)出現(xiàn),種子的峰值高于葉子,說明種子要高于葉子中的硫苷含量。將粗提物通過DEAE SephadexA-25葡聚糖凝膠離子交換柱除雜,經(jīng)高效液相色譜分離純化,找到與質(zhì)譜中相同的硫苷峰,并多次收集1.399min時間段的硫苷物,將收集液冷凍,再通過真空冷凍干燥3~5d,最終得到了晶體物質(zhì),即為硫苷純品。在多次試驗后,得到并證實了莖瘤芥種子和葉片中硫苷的最佳提取條件:原料與甲醇劑量的比例為1∶15(g∶mL),提取溫度70℃,提取時間20min。而鄧艷美等[17]試驗發(fā)現(xiàn),原料與提取劑比例為1∶7(g∶mL)、提取時間25 min、提取溫度80℃時,青花菜中硫苷的提取量達到最大,由此說明雖然同屬于十字花科類植物,但物種的不同,導(dǎo)致硫苷的提取條件也不同。因此,在提取不同種類植物內(nèi)硫苷物質(zhì)時,應(yīng)該確定最佳的提取方法。
圖4 硫苷提取量與料液比的關(guān)系
圖5 硫苷提取量與時間的關(guān)系
圖6 硫苷提取量與溫度的關(guān)系
硫苷存在于十字花科植物中,降解后能夠防御害蟲,而當前最為引人注目的就是異硫代氰酸鹽的抗癌作用,因此,研究硫苷的提取與純化有重要的意義。本研究在原料的選取上進行了創(chuàng)新,成功地對莖瘤芥種子和葉子進行提取、純化,下一步將開展莖瘤芥中硫苷酶解研究,為今后試驗提供相應(yīng)的理論依據(jù)。
[1]季宇彬,武曉丹,鄒翔.硫代葡萄糖苷的研究[J].哈爾濱商業(yè)大學(xué)學(xué)報,2005,21(5):550-562.
[2]王忠英,王向陽.硫代葡萄糖苷及其降解產(chǎn)物異硫代氰酸鹽[J].生命的化學(xué),2005,25(4):342-344.
[3]李鮮,陳昆松,張明方,等.十字花科植物中硫代葡萄糖苷的研究進展[J].園藝學(xué)報,2006,33(3):675-679.
[4]Troyer J K,Stephenson K K,F(xiàn)ahey J W.Analysis of glucosinolates from broccoli and other cruciferous vegetables by hydrophilic interaction liquid chromatography[J].Journal of Chromatography A,2001,919:299-304.
[5]周錦蘭,俞開潮.油菜籽中主要硫苷的提純與抗腫瘤活性[J].應(yīng)用化學(xué),2005,22(10):1 075-1 078.
[6]申樹芳,張英峰,馬子川.西蘭花中硫代葡萄糖苷的抗癌藥理[J].化學(xué)教學(xué),2009,2(7):19-22.
[7]Talalay P,Zhang Y.Chemoprotection against cancer byisothiocyanates and glucosinolate bioehem[J].Biochemical Society transactions,1996,24:806-810.
[8]鄒翔,季宇彬,武曉丹,等.西蘭花中葡萄糖異硫氰酸鹽對S180小鼠抗氧化功能的影響[J].中國天然藥物,2007,5(2):134-136.
[9]李志邈,曹家樹.蔬菜的抗癌特性[J].北方園藝,2001(4):4-6.
[10]汪俏梅,曹家樹.芥子油苷研究進展及其在蔬菜育種上的應(yīng)用前景[J].園藝學(xué)報,2001(28):669-675.
[11]王永飛,馬三梅,聶紅.蔬菜的抗癌作用研究進展[J].北方園藝,2004,7(2):7-8.
[12]宋曙輝,薛穎.十字花科蔬菜防癌作用的初步研究[J].中國腫瘤,1997,6(1):19-20.
[13]張清峰,姜子濤,李榮.辣根等十字花科蔬菜中硫甙水解產(chǎn)物異硫氰酸酯的生物活性[J].食品研究與開發(fā),2005,26(3):83-88.
[14]黃建,孫靜.葡萄糖異硫氰酸酯的生物利用率及對人體健康的意義[J].國外醫(yī)學(xué),2003,30(2):94-97.
[15]袁麗鳳,郭偉強,王志剛.液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用分離、鑒定硫代葡萄糖苷[J].浙江大學(xué)學(xué)報:理學(xué)版,2004,31(2):180-183.
[16]石林娟,潘見,謝慧明,等.高效液相色譜法測定西蘭花籽提取物中蘿卜硫苷含量[J].食品科技,2013,38(6):231-236.
[17]鄧艷美,王紅妹,萬從慶.青花菜中硫代葡萄糖苷的提取工藝[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2013,41(6):254-256.
Extraction and Purification of Glucosinolates in Tumorous Stem Mustard Seeds and Leaves
ZHANG Yan,XIU Xinyu
(Life Science and Technology College,Yangtze Normal University,Chongqing,408100)
This paper studied the effects of different material-water ratio(1∶5,1∶10,1∶15,1∶20),extracted time(10,15,20,25 min)and extracted temperature(50,60,70,80℃)on glucosinolates extraction capacity of tumorous stem mustard seeds and leaves.The results showed that both retention time of seeds and leaves of glucosinolates were less than 1 min,and the content and purity of glucosinolates of seeds was higher than leaves.When the conditions were 1∶15(g∶mL)of material-water ratio,70℃ of temperature and 20 min of time,the extraction of the glucosinolates is of the largest amount.
Tumorous stem mustard;Glucosinolates glycosidase;Extraction;Purification
R284.2
A
1001-3547(2015)18-0045-05
10.3865/j.issn.1001-3547.2015.18.019
重慶市應(yīng)用開發(fā)計劃項目B類:從榨菜葉中提取異硫代氰酸鹽的技術(shù)研究與應(yīng)用(cstc2013yykfA10003)
張燕(1977-),女,講師,碩士,主要從事細胞與分子生物學(xué)研究,電話:18716890293,E-mail:28789155@qq.com
2015-06-26