侯慧敏,陳云,陳偉,母智深
(內(nèi)蒙古蒙牛乳業(yè)(集團)股份有限公司研發(fā)中心,內(nèi)蒙古呼和浩特011500)
酵母β-葡聚糖是一種具有增強免疫力、抗腫瘤炎癥與降血脂膽固醇等諸多營養(yǎng)價值和生理功能[1]。這使得酵母β-葡聚糖在食品行業(yè)有了更為廣泛的應(yīng)用前景[2]。
本實驗主要對添加有酵母β-葡聚糖的牛奶中的酵母β-葡聚糖的回收方法進行了深入研究,并引用美國藥典FCC的葡聚糖原料檢測方法對回收得到的酵母β-葡聚糖質(zhì)量分數(shù)進行檢測,建立了了牛奶中酵母β-葡聚糖的檢測方法。該法精密度較高,重復(fù)性良好,解決了準確測定添加在牛奶中的酵母β-葡聚糖含量的難題。
酵母β-葡聚糖(純度≥70%),添加有0.06%的酵母β-葡聚糖的牛奶樣品,溶壁酶(也可使用相同品質(zhì)的其他產(chǎn)品),1,6-葡聚糖酶溶液,拋光酶混合溶液(E-EXBGL 200 U/mL,200 U/bottle),葡糖氧化酶/過氧化物酶緩沖液(Megazyme,200 U/bottle),葡聚糖氧化酶/過氧化物酶試劑(GOPOD溶液),堿性蛋白酶(酶活2.4 U/g),中性蛋白酶(酶活0.8 U/g)。
himac CR212GⅡ冷凍離心機,Xs204天平,恒溫水浴鍋,渦旋振蕩器,紫外分光光度計,冷凍干燥機,水浴搖床。離心機(轉(zhuǎn)速6 000 r/min),50 mL尖底離心管,0.45 μm 微孔水相濾膜,天平(感量 0.1 g,1 mg,0.1 mg)。
1.2.1 蛋白酶解法
a、稱取25 g液態(tài)乳,置于50 mL尖底離心管中,加入堿性蛋白酶0.048 U和中性蛋白酶0.016 U,充分振蕩混合后于約50℃水浴加熱2~3個小時,得到水解液;
b、將水解液振蕩混合均勻后,于6 000 r/min離心,去掉上清液,保留沉淀物及上層脂肪;
c、向步驟b得到的沉淀物和上層脂肪中加入的去離子水,振蕩混合均勻后,于6 000 r/min離心,去掉上清液及上層脂肪,保留沉淀;
d、將步驟c中得到的沉淀用水清洗一至兩次,得到提取物;用水清洗的方法為:加入去離子水,振蕩混合均勻后,于6 000 r/min離心,去掉上清液,保留沉淀;
e、將步驟d得到的提取物冷凍干燥,冷凍干燥,得到干燥提取物。
回收得到的葡聚糖沉淀參考美國藥典FCC的葡聚糖原料檢測方法對回收的酵母β-葡聚糖經(jīng)過酶解轉(zhuǎn)換為葡萄糖溶液[3]。
1.2.2 葡萄糖檢測
(1)標準曲線的制備。葡萄糖梯度溶液為0,0.05,0.125,0.25,0.5 g/L(均為質(zhì)量濃度),溶劑是水;繪制標準曲線。
(2)GOPOD法檢測[4]。向上述得到的待測液和葡萄糖梯度溶液中分別加入3 mL GOPOD溶液,40℃水浴中保持20 min;最后冷卻至室溫并在510 nm下測定吸光值,測定采用分光光度計,其中紫外吸收波長為510 nm,檢測器為Super Emulsion TSM-09,購自太陽化學(xué)株式會社。根據(jù)葡萄糖梯度溶液對應(yīng)的吸光值繪制標準曲線,并根據(jù)標準曲線斜率計算出待測液中葡萄糖的含量,具體計算公式為
C=(ABSX-ABSS)/slop,
式中:ABSX為待測液對應(yīng)的吸光值;ABSS為空白對照樣對應(yīng)的吸光值;slop為標準曲線斜率;C為待測液中葡萄糖的質(zhì)量濃度,g/L。
(3)計算待測液態(tài)乳中酵母β-葡聚糖的質(zhì)量分數(shù)
X=100%×C/{[(WTs/F1)(F2/F3)]/A},
式中:X為待測液態(tài)乳中酵母β-葡聚糖的質(zhì)量分數(shù),mg/100 g;C為比色皿中葡萄糖質(zhì)量濃度,g/L;WTs=樣品質(zhì)量,mg;F1=試管中細胞酶酶解時的體積,2.6 mL;F2=在(1,6)葡聚糖酶解過程是轉(zhuǎn)移至新試管中的樣品,0.130 mL;F3=β-葡聚糖酶、葡聚糖苷酶酶解時的總體積,0.845 mL;A為待測液稀釋系數(shù)。
葡萄糖的標準曲線方程為y=1.088x+0.019,R2=0.99。三種成品蛋白酶前處理方法得到的葡聚糖質(zhì)量分數(shù)檢測結(jié)果為0.31087,0.3035,0.2991 mg/g,平均值為0.3045 mg/g,相對標準偏差RSD為5.1%。
由上述可以看出,蛋白酶處理的樣品葡聚糖回收率較高,質(zhì)量分數(shù)達到了產(chǎn)品要求的檢出量0.30 mg/g,并且偏差也較小。從實驗可以分析得出,使用蛋白酶處理樣品更適合作為提取葡聚糖的前處理方法,但是此方法還需進一步優(yōu)化。
基于實驗的結(jié)果,試選用堿性蛋白酶和中性蛋白酶共同作用水解牛奶蛋白。堿性蛋白酶和中性蛋白酶是使用較多的蛋白酶,單酶水解能力有限,水解度不高,采用雙酶協(xié)同水解可在較短時間內(nèi)獲得較高水解度,生成相對分子量較小的多肽。在蛋白質(zhì)的酶催化水解中,蛋白質(zhì)的水解度是衡量蛋白質(zhì)水解程度的一個重要指標。采用pH-state法研究了中性蛋白酶/堿性蛋白酶復(fù)合酶的用量和酶解時間對佑益牛奶蛋白水解度的影響??疾炝?.02%,0.05%,0.1%,0.15%與0.2%中性/堿性蛋白酶添加量,酶解6 h的蛋白水解率,結(jié)果顯示0.1%的中性/堿性復(fù)合蛋白酶用量為最佳??疾?.1%中性/堿性蛋白酶用量,酶解0.5,1.0,2.0,3.0,4.0,6.0 h的牛奶水解度,結(jié)果表明,酶解最佳時長為3 h。
通過上述研究,確定了新養(yǎng)道佑益牛奶中酵母葡聚糖檢測的最佳條件:以堿性蛋白酶0.048 U和中性蛋白酶0.016 U;確定了最佳水解條件:水解溫度為55℃,水解時間3 h。
按照優(yōu)化后的蛋白酶解方法進行精密度驗證實驗。制得6份平行試樣溶液,測得葡聚糖質(zhì)量分數(shù)為0.3336,0.3322,0.3273,0.3298,0.3304,0.3417 mg/g;RSD為1.5%。
由此可以看出,經(jīng)優(yōu)化后的蛋白酶解法的葡聚糖回收率得到了提高,相對標準偏差RSD為1.5%,說明檢測結(jié)果穩(wěn)定很好。
將牛奶樣品制作為添加量為0.06%的70%,100%,130%的酵母β-葡聚糖牛奶。每個添加質(zhì)量重復(fù)3次實驗,結(jié)果如表1所示。
通過對不同添加量的葡聚糖牛奶經(jīng)過回收率測定驗證后發(fā)現(xiàn),檢測到的回收率都很高,并在添加量較多的牛奶中葡聚糖回收率更高。通過此驗證,發(fā)現(xiàn)該方法的檢測穩(wěn)定性較高,RSD值均≤5%。
對樣品進行了日間重復(fù)性的驗證實驗,結(jié)果如表2所示。由表2可以看出,檢測方法的重復(fù)性較高,結(jié)果較穩(wěn)定。
表1 牛奶中葡聚糖加標回收率(n=6)
表2 日間重現(xiàn)性實驗
本文建立的酶解法測定牛奶中酵母β-葡聚糖質(zhì)量分數(shù)的檢測方法,其前處理方法更簡單,回收率較高,結(jié)果重復(fù)性好。用該方法檢測到的含量值達到了產(chǎn)品要求的檢出量30 mg/100 g。檢測精密度和穩(wěn)定性高,均能滿足檢驗要求,適用于作為牛奶中酵母β-葡聚糖質(zhì)量分數(shù)的測定方法。
[1]KOGAN G.(1-3,1-6)D-Glucans of yeasts and fungi and their biological activity[J].Studies in Natural Products Chemistry,2000(23):107-152.
[2]MAGNELLI P,CIPOLLO J F,ABEIJON C.A refined method for the determination of saccharomyces cerecisiae cell wall composition and beta-1,6-glucan fine structure[J].Analytical Biochemistry,2002,301(1):136-150.
[3]Glucan Enzymatic Method(GEMTM)Third Supplement,F(xiàn)CC7:1687-1689.
[4]MARIA J M,AIDA S,XENIA B,et al.Adaptation of the standard enzymatic protocol(Megazyme method)to microplaque format for β-(1,3)(1,4)-d-glucan determination in cereal based samples with a wide range of β-glucan content[J].Journal of Cereal Science,2014,59(2):224-227
[5]陳少峰,望忠福.高效液相色譜法測定酵母β-葡聚糖[J].食品科技,2009(7):278-280
[6]李江林,謝愛英,劉勁文.酵母葡聚糖在低脂牛奶中的應(yīng)用研究[J].農(nóng)業(yè)與技術(shù),2012,32(7):7-8.