孫 海,李 樂,徐成路,張亞玉
(中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院特產(chǎn)研究所, 吉林 長(zhǎng)春130112)
人參(Panax ginseng C.A.Mey.)為五加科多年生草本植物,同時(shí)也是吉林省特色優(yōu)勢(shì)名貴中藥材。園參栽培過程中具有連作障礙現(xiàn)象,連作導(dǎo)致人參植株長(zhǎng)勢(shì)減弱,產(chǎn)量、品質(zhì)和抗病能力明顯降低。針對(duì)人參連作障礙機(jī)制研究較多,一是認(rèn)為土壤酸化、營養(yǎng)失衡、土壤有益微生物和有益酶類減少等因素是連作障礙產(chǎn)生的直接原因[1-4]。也有一些學(xué)者認(rèn)為,人參生長(zhǎng)過程中根系脫落、根系分泌的有機(jī)酸等小分子物質(zhì)的積累是連作障礙產(chǎn)生的根源[5-7]。1998年國家實(shí)施“天保工程”以來,伐林栽參以及客土(伐林土)栽參受到限制,而老參地的不可重復(fù)利用成為園參發(fā)展的瓶頸。因此,采取合理的種植方式,以緩解人參連作障礙受到人們的關(guān)注。
在生產(chǎn)實(shí)踐中,我國通常采用土壤改良消除連作障礙的產(chǎn)生,主要是通過土壤消毒、施用有機(jī)肥、微生物肥料以及有機(jī)無機(jī)復(fù)合肥等途徑改良土壤肥力,進(jìn)而緩解連作障礙帶來的不利影響[8-10],但是效果并不明顯。加拿大采用烤煙和人參輪作的方式進(jìn)行改土,效果較好,而烤煙中性提取條件下主要有有機(jī)酸、酯類、酰胺類、烷烴類、甘油、煙堿等物質(zhì)[11]。推測(cè)烤煙種植過程中改良了土壤的微環(huán)境,使其適宜人參生長(zhǎng)發(fā)育。在種子植物的生活史中,種子萌發(fā)是植物對(duì)環(huán)境響應(yīng)的開始階段[12]。明確種子萌發(fā)能力可以反映植物對(duì)環(huán)境的適應(yīng)能力,種子能否順利萌發(fā)出苗,環(huán)境因素是否能夠滿足種子內(nèi)正常的生理代謝是植物生長(zhǎng)啟動(dòng)的關(guān)鍵。鑒于此,本研究利用不同濃度烤煙水提液進(jìn)行人參種子萌發(fā)實(shí)驗(yàn),為闡明烤煙對(duì)人參土壤改良作用提供依據(jù)。
人參種子為撫松縣人參研究所提供的隔年裂口種子,種子裂口率達(dá)到98%。選擇胚芽長(zhǎng)度一致(肉眼可見,長(zhǎng)度約1mm)的人參種子作為實(shí)驗(yàn)材料。
烤煙水提液制備:烤煙在55℃烘箱中干燥至衡重,粉碎后過100目篩。準(zhǔn)確稱取烤煙粉末1g于100mL超純水中,超聲30min,放置過夜,次日繼續(xù)超聲2次,每次15min,2次間隔30min,超聲結(jié)束后過濾,濾液即為1g/100mL烤煙水提液原液。
本實(shí)驗(yàn)采用培養(yǎng)皿培養(yǎng)進(jìn)行人參種子發(fā)芽試驗(yàn),試驗(yàn)為7個(gè)處理3次重復(fù),每個(gè)重復(fù)30粒種子,培養(yǎng)時(shí)間為6d。7個(gè)處理培養(yǎng)液濃度分別為0,0.1,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0g/100mL。處理 A 每天統(tǒng)計(jì)胚根長(zhǎng)度,培養(yǎng)結(jié)束后統(tǒng)計(jì)不同處理下人參種子霉斑數(shù)量、胚根長(zhǎng)、子葉發(fā)生數(shù)以及種子培養(yǎng)過程中MDA、可溶性糖、SOD的含量。
胚根長(zhǎng)度測(cè)量方法:將人參胚根拉直,測(cè)量絕對(duì)長(zhǎng)度。
胚根MDA和SOD含量測(cè)定參見文獻(xiàn)[13],可溶性糖含量測(cè)定方法見文獻(xiàn)[14]。
試驗(yàn)數(shù)據(jù)處理采用 Excel 2010和SAS 9.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。
由圖1可以看出,1~3d人參種子萌發(fā)相對(duì)緩慢,但胚根長(zhǎng)度呈直線生長(zhǎng),4~6d萌發(fā)速率較前3d要快一些,到第6天人參胚根長(zhǎng)度達(dá)到了15.31mm。
圖1 人參種子萌發(fā)速率
種子萌發(fā)速率主要體現(xiàn)在胚根和子葉生長(zhǎng)速度。隨著烤煙水提液濃度增大人參胚根生長(zhǎng)受到影響,0.8 g/100mL和1.0g/100mL烤煙水提液處理,人參胚根長(zhǎng)度顯著小于0g/100mL(對(duì)照)和0.1g/100mL處理。由此可見,烤煙水提液一定程度上抑制了人參胚根的生長(zhǎng)。不同濃度烤煙水提液處理對(duì)人參子葉形成呈現(xiàn)“低促高抑”的趨勢(shì)(圖2),當(dāng)烤煙水提液濃度為0.4g/100mL處理時(shí)子葉形成占總數(shù)的百分比最高,為34.44。
圖2 不同濃度烤煙水提液處理下人參胚根長(zhǎng)度及子葉形成百分比
不同濃度烤煙水提液處理下影響了種子胚根的生長(zhǎng)和子葉的發(fā)生,進(jìn)一步分析了人參種子內(nèi)生理代謝響應(yīng)過程,種子內(nèi)MDA、可溶性糖及SOD生理指標(biāo)如圖3~圖5。
圖3 不同濃度烤煙水提液處理下MDA含量
圖4 不同濃度烤煙水提液處理下可溶性糖含量
不同濃度烤煙水提液處理下,人參種子內(nèi)MDA和可溶性糖含量均呈現(xiàn)逐漸升高的趨勢(shì),0g/100mL處理時(shí),MDA和可溶性糖含量最低,分別為0.006 8 μmol/g 和 0.017mmol/g;1.0g/100mL 處 理 時(shí),MDA和可溶性糖含量最高,分別為0.011μmol/g和0.026mmol/g。
不同濃度烤煙水提液處理下,種子內(nèi)SOD酶活性呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢(shì),0.4g/100mL處理下SOD酶活性最高,為0.040U/g,當(dāng)烤煙水提液濃度繼續(xù)增大時(shí),SOD酶活性隨之降低。
圖5 不同濃度烤煙水提液處理下SOD酶活性
烤煙水提液濃度逐漸增大,人參種子霉菌數(shù)百分比升高。當(dāng)濃度達(dá)到0.6g/100mL時(shí),霉菌發(fā)生率為51.11%,濃度達(dá)到0.8g/100mL和1.0g/100mL時(shí),人參種子霉菌發(fā)生率為100%。隨著烤煙水提液濃度的增大,胚根腐爛數(shù)也逐漸增多,濃度為0.8g/100mL和1.0g/100mL時(shí),胚根腐爛數(shù)最多,為27個(gè)。
表1 人參種子霉菌百分比和胚根腐爛數(shù)
植物種子能否在合適的時(shí)間和地點(diǎn)萌發(fā)對(duì)植物進(jìn)行幼苗建植至關(guān)重要,它直接關(guān)系到幼苗建植成功與否[15]??緹煴旧砗卸喾N活性組分[11],活性組分具有化感自毒效應(yīng),特別是烤煙葉的水提液自毒效應(yīng)最強(qiáng)[16],本研究中0.8g/100mL 和1.0g/100mL 處 理下,胚根長(zhǎng)度顯著低于對(duì)照(0g/100mL)和0.1g/100 mL處理,與烤煙水提液以萵苣為靶向的化感自毒效應(yīng)一致??緹熕嵋簩?duì)子葉發(fā)生表現(xiàn)出低濃度促進(jìn)高濃度抑制作用,推測(cè)烤煙水提液中含有生長(zhǎng)素類物質(zhì),目前沒有相應(yīng)報(bào)道,需進(jìn)一步研究證實(shí)。
烤煙水提液對(duì)人參萌發(fā)屬于逆境條件,抑制胚根的生長(zhǎng)。種子正常萌發(fā)過程中活性氧濃度維持在一個(gè)較低水平,隨著烤煙水提液濃度的增大,脅迫程度加大,導(dǎo)致胚根中活性氧的產(chǎn)生和清除系統(tǒng)平衡被打破導(dǎo)致活性氧的積累,引發(fā)膜脂過氧化,最終致使組織氧化損傷或細(xì)胞程序性死亡[17]。SOD可以清除活性氧的傷害,減輕植物細(xì)胞膜系統(tǒng)上膜脂過氧化作用,降低膜結(jié)構(gòu)破壞程度,減少膜內(nèi)物質(zhì)向外滲漏,從而減輕植物遭受低溫傷害的程度[18],隨著烤煙水提液濃度的增大,SOD酶活性逐漸升高,在0.4g/100mL時(shí)SOD酶活性達(dá)到最大。但是植物清除活性氧的能力是有限的,隨著烤煙水提液濃度進(jìn)一步增大植物嚴(yán)重受損,最終由于活性氧過度積累導(dǎo)致膜質(zhì)過氧化,植物生長(zhǎng)發(fā)育受到影響,1.0g/100mL烤煙水提液處理時(shí),SOD酶活性最低,為0.032U/g。由表1可以直觀的看出種子霉菌數(shù)和胚根腐爛數(shù)達(dá)到最大,嚴(yán)重地影響種子的正常生長(zhǎng)發(fā)育。丙二醛含量和膜穩(wěn)定性指數(shù)常常被人們用來衡量植物的氧化損傷程度[19]。人參胚根中MDA含量隨烤煙水提液濃度增大而逐漸提高,表明1.0g/100mL水提液對(duì)胚根損傷程度最嚴(yán)重。
烤煙水提液的活性組分中存在大量的含有碳和氮的化合物。而微生物繁衍首要滿足的是碳源和氮源[20],再加上培養(yǎng)過程中培養(yǎng)箱溫度為22℃,為微生物繁衍提供了相對(duì)適宜的條件,致使霉菌數(shù)量隨烤煙水提液濃度增加呈增多趨勢(shì)(表1),同時(shí)加速胚根的腐爛速度。
[1]Xiao C P,Yang L M,Zhang L X,et al.Effects of cultivation ages and modes on microbial diversity in the rhizosphere soil of Panax ginseng[J].Journal of Ginseng Research,In Press,Uncorrected Proof,Available online 30April 2015.
[2]Ying Y X,Ding W L,Zhou D Y,et al.Influence of Panax ginseng continuous cropping on metabolicfunction of soil microbial communities[J].Chinese Herbal Medicines,2012,4(4):329-334.
[3]賈書剛,王淑平,竇森.栽培人參對(duì)床土化學(xué)性質(zhì)的影響[J].吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),1992,14(2):42-47.
[4]張亞玉,孫海,宋曉霞,等.農(nóng)田栽培人參根區(qū)土壤主要養(yǎng)分與土壤酶活性的研究[J].特產(chǎn)研究,2010(4):43-46.
[5]Li Y,Ying Y X,Zhao D Y,et al.Influence of allelochemicals on microbial community in ginseng cultivating soil[J].Chinese Herbal Medicines,2014,4(6):313-318.
[6]黃小芳,李勇,易茜茜,等.五種化感物質(zhì)對(duì)人參根系酶活性的影響[J].中草藥,2010,41(1):117-121.
[7]邵財(cái),王英平,許世泉,等.人參根系分泌物對(duì)其根源愈傷組織化感效應(yīng)研究[J].中藥材,2009,32(12):1 798-1 801.
[8]曹志強(qiáng),金慧,許永華,等.微生物菌劑用于連續(xù)移栽人參實(shí)驗(yàn)研究[J].微生物學(xué)雜志,2005,25(3):105-107.
[9]郭春景,關(guān)兆紅,李玉文,等.生物有機(jī)肥料對(duì)人參重茬栽培地土壤微生態(tài)環(huán)境的影響研究[J].生物技術(shù),2004,14(3):55-56.
[10]孫海,張亞玉,逄世峰,等.多功能微生物制劑對(duì)移栽人參產(chǎn)量和土壤容重的影響研究[J].中國林副特產(chǎn),2010(4):22-23.
[11]郭亞利,李明海,吳洪田,等.烤煙根系分泌物對(duì)烤煙幼苗生長(zhǎng)和養(yǎng)分吸收的影響[J].植物營養(yǎng)與肥料學(xué)報(bào),2007,13(3):458-463.
[12]Gutterman Y.Strategies of seed dispersal and germination in plants inhabiting deserts[J].The Botanical Review,1994,60(4):373-425.
[13]李合生,孫群,趙世杰,等.植物生理生化實(shí)驗(yàn)原理及技術(shù)[M].北京:高等教育出版社,2000:134-261.
[14]喬富廉.植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)分析測(cè)定技術(shù)[M].北京:中國農(nóng)業(yè)科學(xué)技術(shù)出版社,2002:112.
[15]Bu Y Y,Kou J,Sun B,et al.Adverse effet of urease on salt stress during seed germination in Arabidopsis thaliana[J].FEBS Letters,2015,589(12):1 308-1 313.
[16]耿銳梅,羅成剛,熊萍,等.不同烤煙品種對(duì)萵苣的化感作用研究[J].中國煙草科學(xué),2012,33(1):48-51.
[17]Karuppanapandian T,Moon J C,Kim C,et al.Reactive oxygen species in plants:their generation,signal transduction,and scavenging mechanisms[J].Australian Journal of Crop Science,2011,5(6):709-725.
[18]Baek K H,Skinner D Z.Differential expression of manganese superoxide dismutase sequence variants in near isogenic lines of wheat during cold acclimation[J].Plant Cell Rep,2006,25:223-230.
[19]Hichema H,Mounirb D,Naceurc E A.Differential responses of two maize(Zea mays L.)varieties to salt stress:Changes on polyphenols composition of foliage and oxidative damages[J].Industrial Crops and Products,2009,30:144-151.
[20]楊凱,朱教君,張金鑫,等.不同林齡落葉松人工林土壤微生物量碳氮的季節(jié)變化[J].生態(tài)學(xué)報(bào),2009,29(10):5 500-5 507.