吉慧珍,孫琦,楊靜,邢小平
1中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院 北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院 北京協(xié)和醫(yī)院內(nèi)分泌科 衛(wèi)生部內(nèi)分泌重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京100730
2山西醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院內(nèi)分泌科,太原030001
內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激與微小核糖核酸在胰島β細(xì)胞凋亡中的作用
吉慧珍1,2,孫琦1,楊靜2,邢小平1
1中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院 北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院 北京協(xié)和醫(yī)院內(nèi)分泌科 衛(wèi)生部內(nèi)分泌重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京100730
2山西醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院內(nèi)分泌科,太原030001
內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激;微小核糖核酸;胰島β細(xì)胞;凋亡
胰島β細(xì)胞功能障礙是2型糖尿病由臨床前期向臨床期進(jìn)展的關(guān)鍵環(huán)節(jié),主要表現(xiàn)為胰島素合成分泌的減少以及胰島β細(xì)胞數(shù)量的下降。研究顯示,2型糖尿病患者的胰島β細(xì)胞數(shù)量較同體重指數(shù)的肥胖以及非肥胖人群分別減少63%及41%,而β細(xì)胞凋亡水平分別是肥胖及非肥胖人群的3倍和10倍[1],因此胰島β細(xì)胞凋亡在2型糖尿病發(fā)生發(fā)展中具有十分重要的作用。在2型糖尿病中有多種機(jī)制參與胰島β細(xì)胞的凋亡,包括近年的研究熱點(diǎn)——內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激(endoplasmic reticulum stress,ERS)與微小核糖核酸(microRNA,miRNA)。研究發(fā)現(xiàn)ERS與miRNA密切相關(guān),兩者的相互作用也影響著細(xì)胞的凋亡水平。本文就ERS與miRNA在胰島β細(xì)胞凋亡中的作用展開綜述。
內(nèi)質(zhì)網(wǎng)是真核細(xì)胞內(nèi)多數(shù)蛋白質(zhì)合成、折疊、修飾以及轉(zhuǎn)運(yùn)的場所,其需要足量且活性正常的功能蛋白、高濃度的鈣離子及一定的氧化環(huán)境來完成生理功能。在正常情況下,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)對(duì)新合成多肽鏈進(jìn)行折疊、修飾并通過囊泡轉(zhuǎn)運(yùn)至高爾基體,而錯(cuò)誤折疊的蛋白則通過內(nèi)質(zhì)網(wǎng)相關(guān)降解途徑進(jìn)行清除。當(dāng)細(xì)胞內(nèi)外環(huán)境受到干擾時(shí),內(nèi)質(zhì)網(wǎng)對(duì)蛋白的處理能力受損,使得錯(cuò)誤折疊或未折疊蛋白在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中堆積,即ERS。
ERS通過激活位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜上的三種跨膜蛋白——肌醇需求激酶1α(inositol-requiring enzyme 1α,IRE1α)、PKR樣內(nèi)質(zhì)網(wǎng)調(diào)節(jié)激酶(protein kinase RNA-like endoplasmic reticulum kinase,PERK)及活化轉(zhuǎn)錄因子6(activating transcription factor 6,ATF6)來啟動(dòng)適應(yīng)性未折疊蛋白反應(yīng)(unfolded protein response,UPR),進(jìn)而改善ERS,包括擴(kuò)張內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的容積,提高內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的蛋白折疊能力,減少基因的轉(zhuǎn)錄翻譯,以及增強(qiáng)對(duì)錯(cuò)誤及未折疊蛋白的清除。當(dāng)促適應(yīng)反應(yīng)無法恢復(fù)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)穩(wěn)態(tài)時(shí),UPR則啟動(dòng)細(xì)胞的凋亡途徑[2-4]。研究表明,IRE1α以及PERK信號(hào)通路參與UPR促凋亡反應(yīng)的啟動(dòng)。IRE1α是一類具有核糖核酸酶活性的跨膜蛋白,在ERS誘導(dǎo)凋亡的階段,IRE1α的核糖核酸酶活性增強(qiáng),一方面通過啟動(dòng)IRE1α依賴的mRNA降解程序(regulated IRE1-dependent decay,RIDD),降解與細(xì)胞功能相關(guān)蛋白的mRNA,促進(jìn)細(xì)胞凋亡[5];另一方面通過裂解miR-17等miRNA的前體,使得其靶蛋白caspase 2的表達(dá)水平增高,誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[6];同時(shí)miR-17的減少也使得另一個(gè)靶蛋白硫氧還原蛋白相互作用蛋白(thioredoxin-interacting protein,TXNIP)的表達(dá)水平迅速增加,從而促進(jìn)NOD樣受體蛋白3(NOD-like receptor protein 3,NLRP3)炎癥小體介導(dǎo)的細(xì)胞凋亡[7]。此外,激活的IRE1α還可以通過與其他功能蛋白的結(jié)合調(diào)控細(xì)胞凋亡。研究發(fā)現(xiàn),IRE1α可以與凋亡相關(guān)的Bcl-2家族蛋白以及腫瘤壞死因子受體相關(guān)因子2 (TNF receptor associated factor 2,TRAF2)相作用,而IRE1α-TRAF2可以激活與細(xì)胞凋亡相關(guān)的凋亡信號(hào)調(diào)節(jié)激酶1/C-Jun氨基末端蛋白激酶(apoptosis signalregulating kinase 1/C-Jun N-terminal kinase,ASK1/JNK)和核因子-κB(nuclear factor κB,NF-κB)信號(hào)通路[8-10]。另一條UPR信號(hào)通路PERK則主要通過其下游的活化轉(zhuǎn)錄因子4(activating transcription factor 4,ATF4)蛋白參與細(xì)胞凋亡的誘導(dǎo)。研究發(fā)現(xiàn)過表達(dá)ATF4可以促進(jìn)細(xì)胞凋亡[11],這可能與ATF4對(duì)C/EBP同源蛋白(C/EBP homologous protein,CHOP)的誘導(dǎo)以及對(duì)凋亡蛋白抑制因子(inhibitor of apoptosis proteins,IAPs)的抑制相關(guān)[12],而CHOP作為UPR促凋亡途徑的關(guān)鍵蛋白,可以調(diào)節(jié)Bcl-2家族蛋白的表達(dá)水平。此外PERK也可通過誘導(dǎo)TXNIP的表達(dá)促進(jìn)細(xì)胞凋亡[13]。
胰島β細(xì)胞因合成分泌胰島素,極易發(fā)生ERS。除基因突變等遺傳因素外,多種環(huán)境因素,如高糖、飽和游離脂肪酸、炎癥因子、缺氧等均能誘導(dǎo)胰島β細(xì)胞ERS的發(fā)生,其中過重的胰島素蛋白負(fù)荷是形成慢性ERS的重要機(jī)制。研究顯示,2型糖尿病患者及相關(guān)動(dòng)物模型中胰島β細(xì)胞長期處于ERS狀態(tài)[14],而與急性ERS促進(jìn)β細(xì)胞胰島素的合成及釋放相對(duì)比,持續(xù)的ERS損傷胰島β細(xì)胞的功能并促進(jìn)其凋亡[15]。UPR促凋亡信號(hào)通路參與了ERS介導(dǎo)的胰島β細(xì)胞凋亡。研究發(fā)現(xiàn),CHOP蛋白的表達(dá)水平在高糖、高脂、缺氧以及毒胡蘿卜素誘導(dǎo)的胰島β細(xì)胞ERS中顯著增加,而抑制CHOP的表達(dá)可以減少胰島β細(xì)胞的凋亡[16-18]。此外,在胰島β細(xì)胞中PERK以及IRE1α還可以通過促進(jìn)TXNIP的表達(dá),激活NLRP3炎癥小體誘導(dǎo)細(xì)胞的凋亡[7,13],但是Wali等[19]卻發(fā)現(xiàn)激活和抑制NLRP3炎性小體并不影響ERS作用下的細(xì)胞凋亡,表明ERS誘導(dǎo)的胰島β細(xì)胞凋亡并不依賴于NLRP3炎性小體途徑。這可能與兩項(xiàng)研究的應(yīng)激源類型與研究對(duì)象的不同相關(guān)。同時(shí)IRE1α的另外兩條凋亡相關(guān)通路caspase 2以及JNK也被證實(shí)不參與ERS誘導(dǎo)的胰島β細(xì)胞凋亡。Němcová-Fürstová等[20]分別抑制人胰島β細(xì)胞的JNK及caspase 2表達(dá),發(fā)現(xiàn)胰島β細(xì)胞的凋亡水平?jīng)]有發(fā)生改變,但兩者的抑制可以降低ERS相關(guān)蛋白——免疫球蛋白重鏈結(jié)合蛋白(immuno-globulin heavy chains binding protein,Bip)的表達(dá)水平,提示其參與了ERS的調(diào)節(jié)。由此可見,盡管ERS及UPR幾乎存在于所有的細(xì)胞中,但其表達(dá)以及對(duì)細(xì)胞凋亡的影響可能因細(xì)胞類型而異,同時(shí)不同的應(yīng)激也可能導(dǎo)致不同信號(hào)通路的激活,因此NLRP3、JNK以及caspase 2是否參與胰島β細(xì)胞的凋亡還需作更深入研究。
UPR的促凋亡通路也參與2型糖尿病中胰島β細(xì)胞的凋亡。研究發(fā)現(xiàn),在2型糖尿病患者的胰島中,CHOP以及Bcl-2蛋白家族中促凋亡蛋白的表達(dá)水平均有所增加[16-18],同時(shí)通過ERS干預(yù)以及基因敲除的方法降低2型糖尿病小鼠CHOP蛋白的表達(dá),可以減少胰島β細(xì)胞的凋亡[21-22]。但是,近年來一些學(xué)者對(duì)此提出不同觀點(diǎn)。Marchetti等[23]通過對(duì)體重指數(shù)相匹配的2型糖尿病患者和非糖尿病患者的胰島進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)盡管糖尿病患者胰島β細(xì)胞內(nèi)的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)數(shù)量增多,但兩組的UPR相關(guān)蛋白的表達(dá)水平無顯著差別,提出糖尿病患者的胰島β細(xì)胞內(nèi)雖然存在ERS及UPR,但還不足以引起胰島β細(xì)胞的凋亡。而Omikorede等[24]對(duì)雌性Zucker糖尿病肥胖大鼠(female Zucker diabetic fatty rat,fZDF)研究發(fā)現(xiàn),在高脂飲食誘導(dǎo)的fZDF肥胖大鼠向fZDF糖尿病大鼠轉(zhuǎn)化的過程中,ERS相關(guān)的促適應(yīng)反應(yīng)蛋白以及促凋亡蛋白,包括CHOP蛋白的表達(dá)水平無明顯改變,甚至有些蛋白的表達(dá)減少,因而提出在由肥胖向糖尿病進(jìn)展的過程中,可能是由于UPR反應(yīng)無法進(jìn)一步增強(qiáng)滿足細(xì)胞的需求而導(dǎo)致胰島β細(xì)胞的功能障礙和凋亡,并非由慢性ERS引起。此外,對(duì)2型糖尿病患者以及db/db小鼠動(dòng)物模型的研究也表明胰島β細(xì)胞內(nèi)UPR不足[25-26]。但是遺憾的是,上述研究并未直接探討胰島β細(xì)胞的凋亡狀況。而最近Chan等[27]發(fā)現(xiàn)在糖尿病誘導(dǎo)的ERS相關(guān)β細(xì)胞凋亡中,與促適應(yīng)反應(yīng)相關(guān)的XBP1s蛋白和與促凋亡反應(yīng)相關(guān)的CHOP蛋白的相對(duì)平衡較兩者的絕對(duì)表達(dá)水平對(duì)細(xì)胞凋亡的影響更為重要。這也部分解釋了上述研究中肥胖糖尿病大鼠的CHOP表達(dá)水平較肥胖大鼠無明顯增加,而凋亡明顯增加的原因。
miRNA是一類由18~25個(gè)核苷酸組成的單鏈非編碼RNA,在轉(zhuǎn)錄后水平負(fù)性調(diào)節(jié)蛋白編碼基因的表達(dá)水平。在哺乳動(dòng)物細(xì)胞內(nèi),miRNA調(diào)控超過60%的基因mRNA,是細(xì)胞內(nèi)最重要的調(diào)控物質(zhì)[28]。有研究表明,miRNA可以調(diào)控胰島β細(xì)胞的多種生命過程,包括細(xì)胞的增殖、分化、凋亡以及胰島素的合成、分泌。目前發(fā)現(xiàn)的與胰島β細(xì)胞凋亡相關(guān)的miRNA多以促凋亡以及抗凋亡蛋白為靶目標(biāo)。
炎性因子是2型糖尿病中誘導(dǎo)胰島β細(xì)胞凋亡的重要因素。Roggli等[29-30]在炎性因子(白細(xì)胞介素-1β為主)誘導(dǎo)的胰島β細(xì)胞的凋亡中發(fā)現(xiàn),miR-34a、miR-29、miR-21及miR-146a表達(dá)水平均顯著增加,而過表達(dá)miR-29、miR-34a、miR-146a以及抑制miR-21可以增加炎性因子誘導(dǎo)的胰島β細(xì)胞凋亡。研究顯示,miR-34a抑制抗凋亡蛋白Bcl-2的表達(dá)[31],miR-29抑制抗凋亡蛋白Mcl-1的表達(dá)[29],這些都促進(jìn)了細(xì)胞的凋亡;而miR-21則通過抑制其靶蛋白程序性細(xì)胞死亡因子4(programmed cell death 4,PDCD 4)表達(dá),減少了PDCD 4對(duì)促凋亡蛋白Bax的激活,從而抑制炎性因子誘導(dǎo)的胰島β細(xì)胞凋亡[32]。目前尚未明確miR-146的凋亡誘導(dǎo)機(jī)制,但已有的研究表明miR-146a可直接由NF-κB誘導(dǎo)產(chǎn)生,并參與NF-κB下游信號(hào)通路。此外還有一些miRNA的表達(dá)與炎性因子介導(dǎo)的胰島β細(xì)胞凋亡相關(guān)。其中,過表達(dá)miR-199a-3p及抑制miR-203、miR-210和miR-383的表達(dá)可以促進(jìn)炎性因子誘導(dǎo)的胰島β細(xì)胞凋亡;而過表達(dá)miR-132、miR-338-3p和miR-451及抑制miR-184的表達(dá)則可以減少炎性因子誘導(dǎo)的胰島β細(xì)胞凋亡,但是這些miRNA的具體作用機(jī)制目前仍未明確[33-34]。除炎性因子誘導(dǎo)的胰島β細(xì)胞凋亡外,miR-375還參與棕櫚酸誘導(dǎo)的胰島β細(xì)胞凋亡[35]。Li等[35]在其研究中發(fā)現(xiàn)過表達(dá)miR-375可以通過抑制肌營養(yǎng)素(myotrophin)蛋白的表達(dá),促進(jìn)棕櫚酸誘導(dǎo)的胰島β細(xì)胞凋亡。
Guay等[36]的研究則從另一方面證明了miRNA與胰島β細(xì)胞凋亡的關(guān)系。研究發(fā)現(xiàn),胰島β細(xì)胞可以分泌含有miRNA的分泌小體至細(xì)胞間隙來影響周圍細(xì)胞的代謝。用細(xì)胞因子刺激胰島β細(xì)胞后發(fā)現(xiàn)培養(yǎng)液中分泌小體內(nèi)的miRNA水平發(fā)生改變,提取這些分泌小體,將其置于正常胰島β細(xì)胞的培養(yǎng)液中則可以增加胰島β細(xì)胞的凋亡,這表明miRNA不僅可以調(diào)節(jié)自身細(xì)胞的凋亡,還可以通過分泌的形式調(diào)控周圍細(xì)胞的凋亡。
多項(xiàng)研究發(fā)現(xiàn)ERS與miRNA密切相關(guān)。在ERS中,PERK-eIF2α信號(hào)通路的激活可以促進(jìn)富含miRNA-mRNA復(fù)合體、Ago蛋白以及多種miRNA活性調(diào)節(jié)因子的囊泡-應(yīng)激小體的形成,提示miRNA參與ERS介導(dǎo)的翻譯抑制[37-38]。同時(shí),一些miRNA的表達(dá)變化可以調(diào)節(jié)或受到UPR信號(hào)通路蛋白的調(diào)節(jié),發(fā)揮促凋亡或促適應(yīng)的作用[39]。目前已經(jīng)發(fā)現(xiàn)數(shù)十個(gè)miRNA與ERS及UPR介導(dǎo)的細(xì)胞凋亡相關(guān),這些miRNA作為UPR信號(hào)通路的一部分,或者由UPR相關(guān)蛋白調(diào)控其表達(dá)水平,或者由其他信號(hào)通路誘導(dǎo),最終通過調(diào)節(jié)UPR信號(hào)通路相關(guān)蛋白的表達(dá)水平來介導(dǎo)細(xì)胞的促凋亡反應(yīng)。此外,miRNA還可以通過影響凋亡通路來改變ERS誘導(dǎo)凋亡的作用,而對(duì)其他應(yīng)激誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡無明顯作用[40]。
在胰島β細(xì)胞的凋亡中也存在ERS與miRNA的相互作用。TXNIP是UPR信號(hào)通路的下游分支。Filios等[41]在其研究中發(fā)現(xiàn),在胰島β細(xì)胞內(nèi)TXNIP除自身誘導(dǎo)胰島β細(xì)胞的凋亡外,還可以增加miR-200b的表達(dá)水平,而miR-200b的高表達(dá)可以通過抑制鋅指增強(qiáng)子結(jié)合蛋白1(zinc finger E-box-binding homeobox 1,Zeb1)的表達(dá)來促進(jìn)胰島β細(xì)胞的凋亡。目前關(guān)于胰島β細(xì)胞內(nèi)ERS與miRNA的關(guān)系研究還很少,而作為細(xì)胞內(nèi)保守存在的細(xì)胞調(diào)控機(jī)制,ERS與miRNA之間必然通過相互影響,調(diào)節(jié)細(xì)胞的凋亡等代謝過程,但是由于ERS以及miRNA對(duì)細(xì)胞的影響與細(xì)胞組織的類型以及應(yīng)激的類型相關(guān),因此還需要更多的研究來明確及驗(yàn)證胰島β細(xì)胞的凋亡中ERS與miRNA的具體關(guān)系。
ERS與miRNA是介導(dǎo)胰島β細(xì)胞凋亡的重要機(jī)制。ERS通過啟動(dòng)UPR介導(dǎo)高糖、高脂、炎癥因子、缺氧等因素誘導(dǎo)的胰島β細(xì)胞凋亡。研究表明,UPR促凋亡信號(hào)通路的激活以及促適應(yīng)反應(yīng)的不足均參與了誘導(dǎo)胰島β細(xì)胞的凋亡,因此除抑制UPR的促凋亡途徑外,也可通過增強(qiáng)UPR的促適應(yīng)反應(yīng)來減少胰島β細(xì)胞的凋亡。miRNA是近年來的研究熱點(diǎn),已有研究表明,胰島β細(xì)胞的凋亡與某些特定miRNA的表達(dá)水平有關(guān)。但是目前大部分miRNA的凋亡調(diào)節(jié)機(jī)制還未明確,同時(shí)部分凋亡相關(guān)的miRNA還參與胰島素合成、分泌的調(diào)節(jié),因此以miRNA為靶點(diǎn)的凋亡干預(yù)仍需進(jìn)一步研究。目前已經(jīng)在非胰島β細(xì)胞中證實(shí),ERS與miRNA之間通過多種途徑相互影響,共同調(diào)節(jié)細(xì)胞的凋亡。因此可以將miRNA作為ERS的干預(yù)靶點(diǎn),或者以ERS/UPR作為改變miRNA表達(dá)水平的途徑,來干預(yù)細(xì)胞的凋亡。在胰島β細(xì)胞的凋亡中也存在著ERS與miRNA的相互作用關(guān)系。已有研究表明,ERS/UPR的下游通路TXNIP可以通過miR-200b誘導(dǎo)胰島β細(xì)胞的凋亡,而這一發(fā)現(xiàn)也為胰島β細(xì)胞凋亡的干預(yù)提供了新的研究思路。但目前為止,關(guān)于胰島β細(xì)胞的研究較少,還需要更多的研究來明確胰島β細(xì)胞凋亡中ERS與miRNA的具體關(guān)系。
[1]Butler AE,Janson J,Bonner-Weir S,et al.Beta-cell deficit and increased beta-cell apoptosis in human with type 2 diabetes[J].Diabetes,2003,52:102-110.
[2]Schroder M,Kaufman RJ.The mammalian unfolded protein response[J].Annu Rev Biochem,2005,74:739-789.
[3]Bernales S,Papa FR,Walter P,et al.Intracellular signaling by the unfolded protein response[J].Annu Rev Cell Dev Biol,2006,22:487-508.
[4]Ron D,Walter P.Signal integration in the endoplasmic reticulum unfolded protein response[J].Nat Rev Mol Cell Biol,2007,8:519-529.
[5]Han D,Lerner AG,Vande Walle L,et al.IRE1alpha kinase activation modes control alternate endoribonuclease outputs to determine divergent cell fates[J].Cell,2009,138: 562-575.
[6]Upton JP,Wang L,Han D,et al.IRE1α cleaves select microRNAs during ER stress to derepress translation of proapoptotic Caspase-2[J].Science,2012,338:818-822.
[7]Lerner AG,Upton JP,Praveen PV,et al.IRE1α induces thioredoxin-interacting protein to activate the NLRP3 inflammasome and promote programmed cell death under irremediable ER stress[J].Cell Metab,2012,16:250-264.
[8]Hetz C,Bernasconi P,F(xiàn)isher J,et al.Proapoptotic BAX and BAK modulate the unfolded protein response by a direct interaction with IRE1alpha[J].Science,2006,312:572-576.
[9]Urano F,Wang X,Bertolotti A,et al.Coupling of stress in the ER to activation of JNK protein kinases by transmembrane protein kinase IRE1[J].Science,2000,287:664-666.
[10]Hu P,Han Z,Couvillon AD,et al.Autocrine tumor necrosis factor alpha links endoplasmic reticulum stress to the membrane death receptor pathway through IRE1alpha-mediated NF-kappaB activation and down-regulation of TRAF2 expression[J].Mol Cell Biol,2006,26:3071-3084.
[11]Lange PS,Chavez JC,Pinto JT,et al.ATF4 is an oxidative stress-inducible,prodeath transcription factor in neurons in vitro and in vivo[J].J Exp Med,2008,205:1227-1242.
[12]Hiramatsu N,Messah C,Han J,et al.Translational and posttranslational regulation of XIAP by eIF2α and ATF4 promotes ER stress-induced cell death during the unfolded protein response[J].Mol Biol Cell,2014,25:1411-1420.
[13]Oslowski CM,Hara T,O'Sullivan-Murphy B,et al.Thioredoxin-interacting protein mediates ER stress-induced β cell death through initiation of the inflammasome[J].Cell Metab,2012,16:265-273.
[14]Laybutt DR,Preston AM,Akerfeldt MC,et al.Endoplasmic reticulum stress contributes to beta cell apoptosis in type 2 diabetes[J].Diabetologia,2007,50:752-763.
[15]Lipson KL,F(xiàn)onseca SG,Ishigaki S,et al.Regulation of insulin biosynthesis in pancreatic beta cells by an endoplasmic reticulum-resident protein kinase IRE1[J].Cell Metab,2006,4:245-254.
[16]Wali JA,Rondas D,Thomas HE,et al.The proapoptotic BH3-only proteins Bim and Puma are downstream of endoplasmic reticulum and mitochondrial oxidative stress in pancreatic islets in response to glucotoxicity[J].Cell Death Dis,2014,5:e1124.
[17]Zheng X,Zheng X,Pereira TS,et al.Acute hypoxia induces apoptosis of pancreatic β-cell by activation of the unfolded protein response and upregulation of CHOP[J].Cell Death Dis,2012,3:e322.
[18]Hirata T,Kawai T,Itoh H,et al.Palmitic acid-rich diet suppresses glucose-stimulated insulin secretion(GSIS)and induces endoplasmic reticulum(ER)stress in pancreatic islets in mice[J].Endocr Res,2015,13:1-8.
[19]Wali JA,Gurzov EN,Thomas HE,et al.Activation of the NLRP3 inflammasome complex is not required for stress-induced death of pancreatic islets[J].PLoS One,2014,9:e113128.
[20]Němcová-Fürstová V,Balu?íková K,Srámek J,etal.Caspase-2 and JNK activated by saturated fatty acids are not involved in apoptosis induction but modulate ER stress in human pancreatic β-cells[J].Cell Physiol Biochem,2013,31:277-289.
[21]Song B,Scheuner D,Ron D,et al.Chop deletion reduces oxidative stress,improves β cell function,and promotes cell survival in multiple mouse models of diabetes[J].J Clin Invest,2008,118:3378-3389.
[22]孫琦,向若蘭,張文龍,等.4-苯基丁酸抗內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導(dǎo)胰島B細(xì)胞凋亡[J].解剖學(xué)報(bào),2012,43:784-788.
[23]Marchetti P,Bugliani M,Lupi R,et al.The endoplasmic reticulum in pancreatic beta cells of type diabetes patients[J].Diabetologia,2007,50:2486-2494.
[24]Omikorede O,Qi C,Herbert TP,et al.ER stress in rodent islets of Langerhans is concomitant with obesity and beta-cell compensation but not with beta-cell dysfunction and diabetes[J].Nutr Diabetes,2013,3:e93.
[25]Chan JY,Luzuriaga J,Laybutt DR,et al.Failure of the adaptive unfolded protein response in islets of obese mice is linked with abnormalities in beta-cell gene expression and progression to diabetes[J].Diabetes,2013,62:1557-1568.
[26]Engin F,Nguyen T,Yermalovich A,et al.Aberrant islet unfolded protein response in type 2 diabetes[J].Sci Rep,2014,4:4054.
[27]Chan JY,Luzuriaga J,Maxwell EL,et al.The balance between adaptive and apoptotic unfolded protein responses regulates b-cell death under ER stress conditions through XBP1,CHOP and JNK[J].Mol Cell Endocrinol,2015,413: 189-201.
[28]Friedman RC,F(xiàn)arh KK,Burge CB,et al.Most mammalian mRNAs are conserved targets of microRNAs[J].Genome Res,2009,19:92-105.
[29]Roggli E,Gattesco S,Caille D,et al.Changes in micro-RNA expression contribute to pancreatic β-cell dysfunction in prediabetic NOD mice[J].Diabetes,2012,61:1742-1751.
[30]Roggli E,Britan A,Gattesco S,et al.Involvement of microRNAs in the cytotoxic effects exerted by proinflammatory cytokines on pancreatic beta-cells[J].Diabetes,2010,59: 978-986.
[31]Lin X,Guan H,Huang Z,et al.Downregulation of Bcl-2 expression by miR-34a mediates palmitate-induced Min6 cells apoptosis[J].J Diabetes Res,2014,2014:258695.
[32]Ruan Q,Wang T,Kameswaran V,et al.The microRNA-21-PDCD4 axis prevents type 1 diabetes by blocking pancreatic beta cell death[J].Proc Natl Acad Sci,2011,108: 12030-12035.
[33]Jacovetti C,Abderrahmani A,Parnaud G,et al.MicroRNAs contribute to compensatory beta cell expansion during pregnancyandobesity[J].JClinInvest,2012,122: 3541-3551.
[34]Nesca V,Guay C,Jacovetti C,et al.Identification of particular groups of microRNAs that positively or negatively impact on beta cell function in obese models of type 2 diabetes[J].Diabetologia,2013,56:2203-2212.
[35]Li Y,Xu X,Liang Y,et al.miR-375 enhances palmitateinduced lipoapoptosis in insulin-secreting NIT-1 cells by repressing myotrophin(V1)protein expression[J].Int J Clin Exp Pathol,2010,3:254-264.
[36]Guay C,Menoud V,Rome S,et al.Horizontal transfer of exosomal microRNAs transduce apoptotic signals between pancreatic beta-cells[J].Cell Commun Signal,2015,19: 13-17.
[37]Hofmann S,Cherkasova V,Bankhead P,et al.Translation suppression promotes stress granule formation and cell survival in response to cold shock[J].Mol Biol Cell,2012,23: 3786-3800.
[38]Leung AK,Calabrese JM,Sharp PA.Quantitative analysis of Argonaute protein reveals microRNA-dependent localization to stress granules[J].Proc Natl Acad Sci USA,2006,103: 18125-18130.
[39]Bartoszewska S,Kochan K,Madanecki P,et al.Regulation of the unfolded protein response by microRNAs[J].Cell Mol Biol Lett,2013,18:555-578.
[40]Cawley K,Logue SE,Gorman AM,et al.Disruption of microRNA biogenesis confers resistance to ER stress-induced cell death upstream of the mitochondrion[J].PLoS One,2013,8:e73870.
[41]Filios SR,Xu G,Chen J,et al.MicroRNA-200 is induced by thioredoxin-interacting protein and regulates Zeb1 protein signaling and beta cell apoptosis[J].J Biol Chem,2014,289:36275-36283.
孫琦電話:010-69155084,E-mail:sunqi@pumch.cn
R587.1;Q756
A
1674-9081(2016)01-0048-05
10.3969/j.issn.1674-9081.2016.01.010
2015-08-04)