張晉平,于 鵬,鄭 晟,丁艷平,趙 瀟,張 會
(西北師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,甘肅蘭州 730070)
MicroRNA 調(diào)控胚胎植入研究進展
張晉平,于 鵬,鄭 晟,丁艷平,趙 瀟,張 會
(西北師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,甘肅蘭州 730070)
植入是胚胎與子宮內(nèi)膜識別、接觸并依附于子宮內(nèi)膜上或進一步侵入、包埋于子宮內(nèi)膜中的過程,是哺乳動物生殖生理的重要環(huán)節(jié),這一過程對于胚胎能夠在子宮持續(xù)的發(fā)育并最終獲得成功的妊娠是必需的。成功的植入需要同步發(fā)育的正常胚胎、容受性的子宮內(nèi)膜及母胎的和諧對話來實現(xiàn)。胚胎植入過程復(fù)雜而短暫,參與調(diào)控的因素有很多,包括microRNA。論文介紹了與植入相關(guān)microRNA的最新研究進展,包括microRNA對胚胎發(fā)育、子宮內(nèi)膜的容受性等方面的作用,將為我們理解植入機制提供新的視角。
microRNA;胚胎;子宮內(nèi)膜容受性;胎盤;植入
現(xiàn)階段我們對植入的認識還非常有限。microRNA(miRNA,miR)是在真核生物中發(fā)現(xiàn)的一類高度保守的、長度約為20個~24個核苷酸的非編碼單鏈小RNA分子,在轉(zhuǎn)錄后水平負責(zé)調(diào)節(jié)靶基因的表達,其靶基因數(shù)目眾多,生物學(xué)功能廣泛,參與生命過程中一系列的重要進程,包括早期發(fā)育,細胞的增殖、分化、凋亡和死亡,脂肪代謝和癌癥的產(chǎn)生等。本文對microRNA在植入中的作用進行綜述,這將為我們更好的理解植入的機理提供新的視角。為主動干預(yù)和調(diào)節(jié)人類生殖過程提供理論指導(dǎo),有助于防止人類流產(chǎn)、早產(chǎn)、胎兒發(fā)育遲緩等產(chǎn)科疾病的發(fā)生。
新生兒的誕生是胚胎植入后胚胎與可容受的子宮之間和諧對話的結(jié)果,在這一過程中有許多蛋白和生長因子起基礎(chǔ)作用[1],包括microRNA,已預(yù)測超過50 000個microRNA可能存在于哺乳動物細胞中[2]并且改變了上千個基因的mRNA和蛋白的合成[3]。MicroRNA與哺乳動物發(fā)育密切相關(guān),特別是表觀基因組的重編程[4]。研究表明microRNA靶向幾百種關(guān)鍵基因,這些基因的表達或抑制決定著胚胎的命運。
胚胎質(zhì)量問題(包括胚胎染色體的異常與基因的突變)被認為是植入失敗的主要原因。而microRNA在早期胚胎發(fā)育中的重要性已經(jīng)在一系列的物種中得到證實,例如隱桿線蟲和哺乳動物[5-6]。有證據(jù)表明在這些生物體中microRNA介導(dǎo)的基因調(diào)控是正常胚胎發(fā)生所必需的,microRNA突變的胚胎存活率也隨之降低。例如,MiR-370在小鼠胚胎發(fā)育過程中通過調(diào)控DNA甲基轉(zhuǎn)移酶(Dnmt3a)的表達水平在小鼠發(fā)育過程中對不同器官的形成起重要作用,miR-370的水平降低將影響胚胎中腦和腎上腺的形成[7]。進化上高度保守的miR-302家族在哺乳動物早期胚胎發(fā)育期表達,缺失miR-302的小鼠晚期胚胎具有致命的表型。敲除miR-302的小鼠胚胎開始具有神經(jīng)管閉合的缺陷,隨后伴隨出現(xiàn)增厚的神經(jīng)上皮,神經(jīng)上皮顯示出細胞增殖數(shù)目增加而死亡數(shù)目減少,早熟的神經(jīng)元分化[8]。RT-PCR表明86個microRNA在豬MⅡ期卵母細胞和胚胎中表達,8-細胞胚胎中的microRNA比MⅡ期卵母細胞和囊胚少,21個microRNA在MⅡ期卵母細胞和8-細胞胚胎、以及8-細胞胚胎和囊胚或MⅡ期卵母細胞和囊胚之間差異表達。轉(zhuǎn)錄靶向表達不同的microRNA使得與細胞發(fā)育和分化相關(guān)的基因種類豐富化。同時microRNA水平隨豬胚發(fā)育的不同階段而改變,RT-PCR表明只有miR-24的水平隨著培養(yǎng)環(huán)境的變化而發(fā)生改變,在體內(nèi)較體外胚胎低,其可能成為篩選IVF胚胎質(zhì)量的候選標記物[9]。
Tan M H等[10]的研究強調(diào)microRNA在植入前小鼠胚胎中是多能性的調(diào)控因子,并具有重要功能。其研究表明microRNA-290-295簇由Oct4和Nanog直接控制,通過靶向Rbl2 mRNA以調(diào)控DNA甲基化并通過Rbl-2調(diào)控植入前胚胎中Dnmt3b的轉(zhuǎn)錄。由于受精率的降低和早期胚胎的丟失使得奶牛的生育力逐年下降。為了解決受精問題和更好的研究植入前胚胎的發(fā)育,體外生產(chǎn)系統(tǒng)被應(yīng)用于胚胎質(zhì)量的評估,但僅僅是根據(jù)胚胎的形態(tài)來評價,這種評價標準本身對于胚胎的發(fā)育潛力并不是很強的指針。目前,還沒有生物標記物可以作為胚胎能夠發(fā)育及建立妊娠的潛力的非侵入性指針,因此Kropp J等[11]研究了培養(yǎng)基質(zhì)中不同發(fā)育潛力胚胎內(nèi)的microRNA,發(fā)現(xiàn)11個差異表達的microRNA均在退化胚胎的培養(yǎng)基中具有較高的含量,對miR-24的功能分析表明,向桑椹胚的培養(yǎng)基中添加一個模擬的miR-24將導(dǎo)致發(fā)育至囊胚的胚胎數(shù)目降低27.3%。MiR-24的靶基因CDKN1b(細胞周期依賴性激酶阻滯基因)在未添加模擬miR-24的胚胎生長培養(yǎng)基中被抑制。這說明退化的胚胎細胞會釋放miR-24,而細胞外的miR-24會抑制胚胎的發(fā)育,因此,miR-24可能可以被用于評估胚胎的質(zhì)量。
microRNA在早期發(fā)育中的作用,特別是母源mRNA的轉(zhuǎn)錄后調(diào)節(jié)作用仍有爭議。數(shù)據(jù)表明microRNA的水平在受精后降低,在植入前胚胎發(fā)育的晚期microRNA的活性降低,同時通過分析在囊胚大量表達的不同前體和成熟的特異性microRNA:例如miR-292-3p和miR-292-5p,發(fā)現(xiàn)microRNA與靶mRNA結(jié)合可能作為潛在儲備的microRNA。一旦需要,這些儲備microRNA將直接為胚胎提供成熟且具有功能的microRNA[12]。
在植入窗口期,子宮內(nèi)膜容受性是一個復(fù)雜的事件。成功妊娠需要來自胎兒的滋養(yǎng)層細胞(trophoblast)對子宮基質(zhì)的侵入。滋養(yǎng)層細胞與子宮內(nèi)膜上皮細胞和基質(zhì)細胞之間、上皮細胞和基質(zhì)細胞之間的“對話”精確的調(diào)節(jié)滋養(yǎng)層細胞的增殖分化和子宮內(nèi)膜的蛻膜化,從而保證滋養(yǎng)層細胞的適度侵入。
在植入窗口期,子宮內(nèi)膜發(fā)育成具有允許胚胎粘附和侵入其上皮的特點,microRNA在調(diào)節(jié)子宮內(nèi)膜容受性中具有一定的作用。在小鼠胚胎植入過程中,microRNA調(diào)節(jié)子宮內(nèi)膜基因的表達。Li Z H等[13]發(fā)現(xiàn)Ankrd46為miR-451的靶基因,抑制miR-451導(dǎo)致小鼠胚胎植入數(shù)目的減少,但對受精沒有影響,且miR-451在小鼠胚胎植入期的表達特異性的上調(diào),推測其可能在小鼠胚胎植入中具有重要的作用。抑制miR-126a-3p的功能是使體內(nèi)植入位點顯著降低,推測miR-126a-3p可能是通過調(diào)節(jié)tga11在小鼠胚胎植入過程中起作用,而tga11可能具有抑制小鼠子宮內(nèi)膜細胞的遷移和侵入能力[14]。 采用microRNA芯片對接受前期和接受期大鼠子宮中的microRNA表達譜進行全面篩查,發(fā)現(xiàn)在接受期,28個microRNA出現(xiàn)上調(diào),29個microRNA出現(xiàn)下調(diào),差異倍數(shù)至少在2倍以上,且miR-29a只在植入期大鼠子宮中高水平表達,促凋亡因子基因Bak1和Bmf以及抗凋亡因子基因Bcl-w均為miR-29a的靶基因,且miR-29a和抗凋亡因子基因Mcl1的3′端非編碼區(qū)結(jié)合力較弱[15]。過表達miR-29a會抑制大鼠子宮內(nèi)膜基質(zhì)細胞的晚期凋亡,可能是由于miR-29a與促凋亡因子的3′端非編碼區(qū)的結(jié)合能力比其與抗凋亡因子的3′端非編碼區(qū)結(jié)合能力強造成的。即miR-29a通過同時調(diào)控促凋亡因子和抗凋亡因子在大鼠胚胎植入中發(fā)揮重要作用。MiR-29a可能主要與促凋亡因子結(jié)合,從而抑制細胞的凋亡,進而控制大鼠子宮內(nèi)膜的容受性。MiR-98的水平在妊娠d5-d6低于d3-d4和d7-d8,在延遲植入中miR-98的表達顯著降低。MiR-98下調(diào)促進了子宮內(nèi)膜間質(zhì)細胞的增殖并抑制其凋亡,miR-98水平上調(diào)顯示出相反的作用。進一步的研究表明miR-98能夠與Bcl-xl的3′端非編碼區(qū)結(jié)合而抑制Bcl-xl的翻譯??傊诖笫笞訉m接受期,miR-98的下調(diào)與靶向Bcl-xl的細胞增殖數(shù)量的增加有關(guān)[16]。Northern blot結(jié)果表明[17]:miR-143在大鼠妊娠早期表達,妊娠d5-d8 miR-143在大鼠子宮表達水平高于妊娠d3-d4。MiR-143主要表達在基質(zhì)表面初級蛻膜區(qū)的腔上皮和腺上皮。MiR-143未被假孕顯著影響,但激活延遲植入及誘導(dǎo)蛻膜化顯著提高了miR-143的表達水平。MiR-143可能與Lifr的3′UTR區(qū)相結(jié)合從而抑制Lifr的翻譯。因此,子宮的miR-143可能通過調(diào)節(jié)Lifr參與成功的妊娠,特別是囊胚植入的過程。
Hossain M M等[18]的研究表明克隆移植和體外受精的牛異常胎盤中有大量microRNA被下調(diào),很可能是由于這一原因使得牛胚胎滋養(yǎng)層分化期間的重編程失敗,最終導(dǎo)致了胚胎丟失。這一研究和其他幾個關(guān)于牛的研究[19-20]強調(diào)了異常microRNA在異常胎盤發(fā)生過程中扮演遺傳和后生修飾調(diào)節(jié)者的角色。胰島素樣生長因子2 (IGF2)在胎盤中的表達,在妊娠中的母胎發(fā)育中具有重要作用,基因突變導(dǎo)致的IGF2在胎盤過表達會引起小鼠軀體的過度生長和胎盤的異常。當宮內(nèi)生長受限時胎盤IGF2的水平大幅度下降,敲除Igf2的小鼠往往胎盤很小。研究發(fā)現(xiàn)在小鼠滋養(yǎng)層干細胞中miR141-3p和miR-200a-3p過表達將抑制內(nèi)源的IGF2表達,而miR141-3p和miR-200a-3p通過降低Akt的活性而使基因IGF2沉默[21]。
由于胚胎植入過程短暫而復(fù)雜,參與調(diào)控的因素也很多,因此,胚胎植入的機理尚未明確,人類體外授精和胚胎移植(IVF-ET)的體外授精率雖然可高達90%,但臨床植入率和出生率卻只有30%左右。除人類IVF-ET外,人體疾病的轉(zhuǎn)基因動物模型和克隆動物的培育都急待提高胚胎的植入率,特別是異種間動物克隆更面臨解決胚胎植入的難關(guān),因此,胚胎植入機理的闡明對生命科學(xué)研究具有深遠而現(xiàn)實的意義。microRNA能否被作為早期植入異常的標記物是最近的研究熱點。
植入失敗和胎盤發(fā)育不足是不孕,流產(chǎn)和其他妊娠相關(guān)疾病的主要原因。本文綜述了與植入相關(guān)的microRNA的一些最新的研究進展,包括microRNA在胚胎發(fā)育、子宮內(nèi)膜的接受性及胎盤發(fā)育中的作用,證明了有活力的胚胎發(fā)育過程中microRNA介導(dǎo)了基因的表達調(diào)控,盡管它們確切的作用還未知,但子宮內(nèi)膜microRNA很可能通過調(diào)節(jié)基因表達來參與植入、早期胎盤形成以及妊娠過程,這為我們理解植入的機制提供了理論基礎(chǔ),在這些非侵入性的microRNA成為臨床評估胚胎和子宮內(nèi)膜健康的標記物,以降低植入失敗率之前還需要進行大量的試驗。
[1] Cha J, Vilella F, Dey S K, et al. Molecular interplay in successful implantation. In: Sanders S, editor. Ten critical topics in reproductive medicine[M]. Science/AAAS, 2013:44-48.
[2] Berezikov E, Guryev V, van de Belt J, et al. Phylogenetic shadowing and computational identification of human microRNA genes[J]. Cell, 2005, 120(1): 21-24.
[3] Selbach M, Schwanhausser B, Thierfelder N, et al. Widespread changes in protein synthesis induced by micro-RNAs[J]. Nature, 2008, 455(7209): 58-63.
[4] Suh N, Baehner L, Moltzahn F, et al. Micro-RNA function is globally suppressed in mouse oocytes and early embryos[J].Curr Biol, 2010, 20(3): 271-277.
[5] Reinhart B J, Slack F J, Basson M, et al. The 21-nucleotide let-7 RNA regulates developmental timing inCaenorhabditiselegans[J]. Nature, 2000, 403(6772): 901-906.
[6] Suh N, Blelloch R. Small RNAs in early mammalian development: from gametes to gastrulation[J]. Development, 2011, 138(9): 1653-1661.
[7] Qi L, Hongjuan H, Ning G, et al. MiR-370 is stage-specifically expressed during mouse embryonic development and regulates Dnmt3a[J]. FEBS Lett, 2013, 587(6): 775-781.
[8] Parchem R J, Moore N, Fish J L, et al. MiR-302 is required for timing of neural differentiation, neural tube closure, and embryonic viability[J]. Cell Rep, 2015, 12(5): 760-773.
[9] Stowe H M, Curry E, Calcatera S M, et al. Cloning and expression of porcine Dicer and the impact of developmental stage and culture conditions on microRNA expression in porcine embryos[J].Gene, 2012, 501(2): 198-205.
[10] Tan M H, Au K F, Leong D E, et al. An Oct4-Sall4-Nanog network controls developmental progression in the preimplantation mouse embryo[J]. Mol Syst Biol, 2013, 9: 632.
[11] Kropp J, Khatib H. Characterization of microRNA in bovineinvitroculture media associated with embryo quality and development[J]. J Dairy Sci, 2015, 98(9): 6552-6563.
[12] García-López J, del Mazo J. Expression dynamics of microRNA biogenesis during preimplantation mouse development[J]. Biochim Biophys Acta,2012, 1819(8): 847-854.
[13] Li Z H, Jia J, Gou J, et al. MicroRNA-451 plays a role in murine embryo implantation through targeting Ankrd46, as implicated by a microarray-based analysis[J]. Fertil Steril, 2015, 103(3): 834-844.
[14] Li Z H, Jia J, Gou J, et al. Mmu-miR-126a-3p plays a role in murine embryo implantation by regulating Itga11[J]. Reprod Bio Med, 2015, 31(3): 384-393.
[15] Xia H F, Jin X H, Cao Z F, et al. MicroRNA expression and regulation in uterus during embryo implantation in rat[J]. FEBS J, 2014, 281(7): 1872-1891.
[16] Xia H F, Jin X H, Cao Z F, et al. MiR-98 is involved in rat embryo implantation by targeting Bcl-xl[J]. FEBS Lett, 2014, 588(4): 574-583.
[17] Tian S, Su X, Qi L, et al. MiR-143 and rat embryo implantation[J]. Biochim Biophys Acta, 2015, 1850(4): 708-721.
[18] Hossain M M, Tesfaye D, Salilew-Wondim D, et al. Massive deregulation of miRNAs from nuclear reprogramming errors during trophoblast differentiation for placentogenesis in cloned pregnancy[J]. BMC Genomics, 2014, 15: 43.doi: 10.1186/1471-2164-15-43.
[19] Salilew-Wondim D, Tesfaye D, Hossain M, et al. Aberrant placenta gene expression pattern in bovine pregnancies established after transfer of cloned orinvitroproduced embryos[J]. Physiol Genomics , 2013, 45(1): 28-46.
[20] Liu F J, Jin L J, Ma X G, et al. Differentially expressed microRNA and affected signaling pathways in placentae of transgenic cloned cattle[J].Theriogenology, 2014, 82(2): 338-346.
[21] Saha S, Choudhury J, Ain R. MicroRNA-141-3p and miR-200a-3p regulate insulin-like growth factor 2 during mouse placental development[J]. Mol Cell Endocrinol,2015, 414:186-193.
Progress on MicroRNA in Regulation of Embryo Implantation
ZHANG Jin-ping, YU Peng,ZHENG Sheng,DING Yan-ping, ZHAO Xiao,ZHANG Hui
(CollegeofLifeScience,NorthwestNormalUniversity,Lanzhou,Gansu,730070,China)
Implantation is a process which animal blastocyst and endometrium recognize, contacts, and attach to the endometrium or further invade and embedd in the endometrium. This process is an important part of the mammalian reproductive physiology and it is essential to continued embryonic development within the uterus for achieving successful pregnancy. Synchronized development of the embryo to the active stage of the blastocyst, differentiation of the uterus to the receptive state, and a harmonious crosstalk between the blastocyst and uterine luminal epithelium are essential to a successful implantation process. Embryo implantation process is complicated and short, there are many factors involved in the implantation regulation, including microRNA. In this article, we introduced the latest research progress on microRNA in the regulation of embryo implantation, including the role of microRNA in embryo development, endometrial receptivity, and so on.It will provide a new perspective on our understanding of implantation mechanism.
microRNA; embryo; endometrial receptivity; placent; implantation
2015-09-25
甘肅省科技計劃項目(145RJYA258);,西北師范大學(xué)青年教師科研能力提升計劃項目(NWNU-LKQN-14-23)
張晉平(1981-),女,山西平遙人,副教授,博士,主要從事醫(yī)學(xué)生物工程研究。
S821.36;Q492.6
A
1007-5038(2016)05-0099-04