馮璐，王玉國，溫銀元，高佳佳，劉圓，賀美琳

(山西農(nóng)業(yè)大學(xué) 農(nóng)學(xué)院，山西 太谷 030801)

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外源激素對紫馬鈴薯試管苗快繁的影響

馮璐，王玉國*，溫銀元，高佳佳，劉圓，賀美琳

(山西農(nóng)業(yè)大學(xué) 農(nóng)學(xué)院，山西 太谷 030801)

摘要：[目的]為研究不同外源激素及其配比對紫馬鈴薯試管苗生長的影響。[方法]以紫馬鈴薯的無菌試管苗為試驗材料，在添加不同濃度的生長素(IBA、NAA、2,4-D)和細(xì)胞分裂素(TDZ、6-BA、ZT)的MS培養(yǎng)基上培養(yǎng)，觀察并分析各項生長指標(biāo)。[結(jié)果]IBA、NAA兩種生長素對根系生長的影響較大，IBA 1.0 mg·L-1時有利于紫馬鈴薯試管苗根的生長，對根系作用效果明顯，NAA濃度在0.5 mg·L-1以上時不利于根系生長；2,4-D 0.5～2.0 mg·L-1時試管苗株高增加、莖纖細(xì)、根系極不發(fā)達(dá)，產(chǎn)生乳白色、塊狀愈傷組織。0.5 mg·L-1的TDZ或ZT可促進(jìn)不定芽產(chǎn)生，利于芽增殖；單獨使用6-BA時，無不定芽產(chǎn)生，也不利于試管苗生長。[結(jié)論]紫馬鈴薯試管苗生長的最適培養(yǎng)基成分：MS+IBA 1.0 mg·L-1+6-BA 1.0 mg·L-1、MS+NAA 0.5 mg·L-1+6-BA 0.2～0.5 mg·L-1。

關(guān)鍵詞：紫馬鈴薯；試管苗；植物激素；快繁

馬鈴薯(Solanum tuberosumL.)為茄科(Solanaceae)茄屬(Solanum)，一年生雙子葉草本植物，可作一年生或一年兩季栽培[1]，目前已成為繼玉米、水稻和小麥之后的世界第四大糧食作物。紫色馬鈴薯原產(chǎn)于南美洲玻利維亞，不僅具有營養(yǎng)豐富、易于消化吸收、適應(yīng)性強(qiáng)等特點，還含有普通品種所沒有的天然花青素，具有一定的藥理保健作用，同時作為天然著色劑應(yīng)用于現(xiàn)代食品工業(yè)[2，3]。在中國，隨著馬鈴薯主糧化的推進(jìn)，馬鈴薯種植范圍廣、產(chǎn)業(yè)發(fā)展迅速，已經(jīng)成為我國調(diào)整種植結(jié)構(gòu)、解決糧食安全的重要部分[4]。然而，中國馬鈴薯的單產(chǎn)水平不到歐美等發(fā)達(dá)國家的一半，其主要原因在于馬鈴薯是無性繁殖作物，其繁殖過程中病毒逐代積累而危害馬鈴薯產(chǎn)量和品質(zhì)[5]。因此，目前利用植物組織培養(yǎng)技術(shù)，培育出優(yōu)質(zhì)的新品種馬鈴薯種苗、種薯是解決該問題的根本方法。

近年來，對馬鈴薯種苗莖尖脫毒、微型種薯誘導(dǎo)等方面的研究已有很大的進(jìn)展，但在微型種薯繁育及種質(zhì)保存等研究及應(yīng)用中仍存在大量的問題[6]，脫毒種薯繁種數(shù)量少、質(zhì)量差、增產(chǎn)效果有限，試管苗保存中出現(xiàn)葉片小、徒長、莖細(xì)弱、分枝減少等現(xiàn)象。脫毒種薯的產(chǎn)量、品質(zhì)依賴于品種及試管苗質(zhì)量，因此，選擇培育優(yōu)質(zhì)品種及提高試管苗質(zhì)量成為生產(chǎn)優(yōu)質(zhì)馬鈴薯試管苗和微型種薯的重要環(huán)節(jié)[7]。本試驗選擇優(yōu)質(zhì)的紫馬鈴薯，研究不同外源激素對新品種試管苗生長的影響，建立激素的最佳配比，為進(jìn)一步優(yōu)化繼代培養(yǎng)基配方，提高紫馬鈴薯試管苗質(zhì)量，進(jìn)而增強(qiáng)種薯品質(zhì)提供參考。

1材料與方法

1.1材料

材料：以紫馬鈴薯具有腋芽的節(jié)間或幼嫩莖段為外植體。

試劑：MS基本培養(yǎng)基；蔗糖；瓊脂； 吲哚丁酸IBA、α-萘乙酸NAA、2,4-二氯苯氧乙酸2,4-D；噻二唑苯基脲TDZ、6-芐基腺嘌呤6-BA、玉米素ZT；

將上述激素配置成1.0g·L-1的溶液，存放于4 ℃冰箱中備用。

1.2無菌試管苗的獲得

取紫馬鈴薯的幼嫩莖段，利用肥皂水沖洗20min，然后在超凈工作臺上進(jìn)行外植體消毒；用無菌水涮洗2次，將幼嫩莖段轉(zhuǎn)入無菌瓶中，用75%酒精浸30s，用無菌水沖洗3～4次，利用3%NaClO消毒10min，再用無菌水沖洗5～6次，處理過程中輕輕晃動無菌瓶；消毒完成，待用。

將已消毒的外植體接入MS基本培養(yǎng)基，最終獲得無菌苗。選擇經(jīng)過5次繼代培養(yǎng)的同一無性系組培苗為試驗材料。

1.3接種與培養(yǎng)

選擇同一無性系試管苗的中間部位，切成長度約0.5cm含一個腋芽的莖段。將切成的莖段接種于各處理培養(yǎng)基中，每瓶約8個外植體，每個處理6瓶，重復(fù)3次。

培養(yǎng)條件為溫度(25±2) ℃，光照強(qiáng)度2 000～3 000Lx，光照時間14h·d-1，相對濕度70%～80%，定期觀察其生長情況。

1.4試驗設(shè)計

1.4.1單因子生長素

試驗共設(shè)計4種處理：①MS+IBA(0.5、1.0、1.5、2.0mg·L-1)；②MS+NAA(0.5、1.0、1.5、2.0mg·L-1)；③MS+2,4-D(0.5、1.0、1.5、2.0mg·L-1)；④MS為對照。觀察不同濃度生長素對紫馬鈴薯試管苗的影響，35d后，測量并記錄株高、莖粗、生根數(shù)，觀察試管苗素質(zhì)等。

1.4.2單因子細(xì)胞分裂素

試驗共設(shè)計4種處理：①MS+TDZ(0.5、1.0、1.5、2.0mg·L-1)；②MS+ZT(0.5、1.0、1.5、2.0mg·L-1)；③MS+6-BA(0.5、1.0、1.5、2.0mg·L-1)；④MS為對照。觀察不同濃度細(xì)胞分裂素對紫馬鈴薯試管苗的影響，30d后，記錄苗芽長及芽增殖數(shù)等。

1.4.3生長素與細(xì)胞分裂素配比

根據(jù)單因子激素的試驗結(jié)果，選擇最佳的生長素IBA、NAA的濃度與不同濃度的6-BA配比，試驗設(shè)計為2種：①MS+IBA(1.0mg·L-1)+6-BA(0、0.2、0.5、1.0、1.5、2.0mg·L-1)；②MS+NAA(0.5mg·L-1)+6-BA(0、0.2、0.5、1.0、1.5mg·L-1)。觀察不同外源激素配比對紫馬鈴薯試管苗的影響，35d后測量并記錄株高、莖粗、生根數(shù)及生根率等。

以上培養(yǎng)基均為固體培養(yǎng)基，含3%蔗糖，0.5%瓊脂，pH值6.0。

1.5試管苗生長指標(biāo)測定

試驗用尺子、游標(biāo)卡尺等工具，測量株高、莖粗、根長、根粗、芽長等；

鮮重、干重：取出材料，用電子天平稱鮮重；經(jīng)105 ℃下殺青 15min后，于80 ℃條件下烘干至衡重, 再稱干重；

增殖倍數(shù)=(增殖總芽數(shù)-接種數(shù))/接種數(shù)，試驗記錄不定芽數(shù)；

生根率=生根苗數(shù)/接種數(shù)×100%。

1.6數(shù)據(jù)統(tǒng)計

試驗數(shù)據(jù)在MicrosoftExcel及DPS7.5統(tǒng)計軟件中處理，各濃度處理間進(jìn)行多重比較用Duncan法分析。

2結(jié)果與分析

2.1生長素對紫馬鈴薯試管苗的影響

2.1.1IBA對紫馬鈴薯試管苗生長的影響

從表1中看出，隨著IBA濃度的增高，紫馬鈴薯試管苗的根條數(shù)增加、根變短增粗，同時其株高、莖粗也有一定變化。與對照相比，加入IBA0.5mg·L-1的培養(yǎng)基中，紫馬鈴薯試管苗的根長減少6.67cm、直徑增加0.16mm、根條數(shù)增加1.33條。IBA0.5～1.0mg·L-1的試管苗根健壯、苗增高、莖稍粗，可提高試管苗的質(zhì)量，有利于移栽成活。隨著IBA濃度的升高，試管苗的鮮重、干重等與對照相比均增加，IBA1.0mg·L-1時影響最大，平均鮮重、干重分別增加0.41g、0.024g。IBA1.0～2.0mg·L-1時試管苗質(zhì)量表現(xiàn)為處理間無顯著差異。同時觀察發(fā)現(xiàn)，在IBA2.0mg·L-1時試管苗基部膨大，周圍有少量愈傷組織產(chǎn)生，呈乳白色，根正常生長。綜合考慮，添加一定濃度的IBA，有利于紫馬鈴薯試管苗根的生長，IBA1.0mg·L-1時處理效果最好，對根部作用效果明顯。

表1　IBA對紫馬鈴薯試管苗生長的影響

注：數(shù)據(jù)以“平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差”的形式表示，同列數(shù)字旁不同小寫字母表示差異顯著(p<0.05)。下同

Note:Thedataisexpressedintheformof“mean+standarddeviation”,andthedifferencebetweenthedifferentsmalllettersinthesamecolumnissignificant(p<0.05).Thesameasfollows

2.1.2NAA對試管苗生長的影響

植物激素NAA對紫馬鈴薯試管苗的根部作用較大，影響根條數(shù)、根長、根粗等，但與IBA不完全相同。由表2可知，隨著NAA濃度的增加根條數(shù)分別減少0.33、1.34、4.66、5.67條；根分別縮短7.33cm、10.47cm、11.00cm、11.1cm；同時根增粗，直徑分別增加0.83mm、1.10mm、1.13mm、1.10mm。NAA濃度在 1.5～2.0mg·L-1時，處理間無顯著差異。通過觀察發(fā)現(xiàn)，NAA0.5mg·L-1時，試管苗基部稍膨大，有少量愈傷存在，根正常生長(圖1a)；在1.0～2.0mg·L-1，隨NAA濃度的升高基部膨大程度增大，周圍有明顯的愈傷組織，呈乳白色，嚴(yán)重影響根生長，1.5～2.0mg·L-1時長出透明的不正常根(圖1b、1c)。結(jié)果表明，NAA濃度大于0.5mg·L-1時不利于紫馬鈴薯試管苗生長，當(dāng)濃度為1.5～2.0mg·L-1時紫馬鈴薯苗愈傷化更加嚴(yán)重。

2.1.32,4-D對試管苗的影響

將莖段接種到含2,4-D0.5mg·L-1的培養(yǎng)基中，莖段形態(tài)學(xué)下端5d左右開始膨大，有根產(chǎn)生，地上部開始生長；20d左右基部愈傷明顯呈乳白色、塊狀、緊致，植株地上部分枝少，根短，有透明的不正常根產(chǎn)生；30d左右，試管苗平均株高12.5cm，根長0.8～1.0cm，基部愈傷乳白(圖2a)。當(dāng)加入2,4-D1.0～2.0mg·L-1時，7d左右莖段形態(tài)學(xué)下端接觸培養(yǎng)基的部位膨大并產(chǎn)生乳白帶紫斑點、塊狀、緊密的愈傷組織；光照20d左右成乳白色，且愈傷組織面積逐漸擴(kuò)大，同時植株細(xì)長；30d左右愈傷組織大小穩(wěn)定，乳白色、致密，其地上部分生長，莖纖細(xì)、無分枝、無根產(chǎn)生，尤其2,4-D濃度增加到 1.5～2.0mg·L-1時非常明顯(圖2b、2c)；之后，愈傷開始褐化；45d左右發(fā)現(xiàn)部分愈傷周圍有新的淡綠色愈傷產(chǎn)生(圖2d、2e)。表明濃度為0.5～2.0mg·L-1的2,4-D使試管苗株高增加，莖部纖細(xì)、根系極不發(fā)達(dá)，基部產(chǎn)生塊狀愈傷，尤其2,4-D1.5～2.0mg·L-1時表現(xiàn)明顯。

表2　NAA對紫馬鈴薯試管苗生長的影響

圖1　不同濃度的NAA對紫馬鈴薯試管苗的影響Fig.1　Effects of different concentration of NAA on the test tube seedling of purple potato 注： a. MS+ NAA 0.5 mg·L-1、 b. MS+ NAA 1.5 mg·L-1、 c. MS+NAA 2.0 mg·L-1，培養(yǎng)基中培養(yǎng)30 d 觀察Note： Figure 1 of a.b.c are expressed that the plantlets are cultured in MS with NAA 0.5 mg·L-1, 1.5 mg·L-1, 2.0 mg·L-1 and observed after 30 days

2.2細(xì)胞分裂素對紫馬鈴薯試管苗的影響

2.2.1TDZ、ZT對試管苗的影響

從表3中看出，對照培養(yǎng)基無不定芽產(chǎn)生；添加不同濃度的TDZ對試管苗不定芽增殖及芽長影響不同，TDZ1.5mg·L-1的芽長高于其他TDZ濃度處理的，但增殖倍數(shù)不高，僅1.04倍，TDZ0.5mg·L-1時處理效果明顯，增殖倍數(shù)高達(dá)7.13倍；不同濃度的ZT間相比，處理間差異顯著，0.5mg·L-1時芽長最短，平均2.01cm，但增殖倍數(shù)最高達(dá)5.63倍，ZT2.0mg·L-1時無不定芽產(chǎn)生。在基本培養(yǎng)基不變時，隨著TDZ、ZT濃度的升高，不定芽增殖數(shù)逐漸降低、芽長增加，且TDZ優(yōu)于ZT。通過觀察發(fā)現(xiàn)，加入TDZ或ZT1.5～2.0mg·L-1時紫馬鈴薯試管苗與對照相比，葉片數(shù)減少、葉片稍大、莖增粗；TDZ0.5～1.0mg·L-1和ZT0.5～1.5mg·L-1的莖段基部(接觸培養(yǎng)基部位)均有膨大呈深綠色。結(jié)果表明，培養(yǎng)基中添加0.5mg·L-1的TDZ或ZT均有利于芽增殖，促進(jìn)擴(kuò)繁，同時高濃度的TDZ或ZT可優(yōu)化繼代培養(yǎng)基配方。

2.2.26-BA對試管苗生長的影響

細(xì)胞分裂素6-BA對紫馬鈴薯試管苗的影響與TDZ、ZT不同，6-BA0.5～2.0mg·L-1無不定芽產(chǎn)生，無芽增殖。隨著6-BA濃度的增加，試管苗的葉片展開變大，但植株矮弱、不生根、分枝少。表4中，除對照外，不同濃度的6-BA處理間無顯著差異，單獨使用6-BA造成試管苗矮弱、不生根，不利于其生長。

圖2　不同濃度的2,4-D對紫馬鈴薯試管苗的影響Fig.2　Effects of different concentration of 2,4-D on the test tube seedling of purple potato　　注：試管苗分別在a. MS+2,4-D 0.5 mg·L-1、 b. MS+2,4-D 1.5 mg·L-1、 c. MS+2,4-D 2.0 mg·L-1，培養(yǎng)基中培養(yǎng)30 d 觀察； d. MS+2,4-D 1.5 mg·L-1、e. MS+2,4-D 2.0 mg·L-1 培養(yǎng)45 d觀察Note: Figure 2. a, b, c are expressed that the plantlets are cultured in MS with 2,4-D 0.5 mg·L-1, 1.5 mg·L-1, 2.0 mg·L-1 and observed after 30 days; Figure 2 of d. e are expressed that the plantlets are cultured in MS with 2,4-D 1.5 mg·L-1, 2.0 mg·L-1 and observed after 45 days

Table3EffectsofTDZandZTontheproliferationandbudlengthofpurplepotato

濃度ConcentrationTDZ/mg·L-1ZT/mg·L-1平均芽長/cmAverageshootlength培養(yǎng)30d后增殖芽數(shù)/瓶After30dculture,budnumber增殖倍數(shù)Multipli-cation000000.502.47±0.751d57.01±1.00a7.131.002.68±0.252d22.33±0.577c2.791.504.27±0.153c8.20±0.755d1.042.003.63±0.153c2.77±0.208f0.3500.52.01±0.361d45.00±0.400b5.6301.05.84±0.289b6.87±0.153e0.8601.56.73±0.252a1.33±0.577g0.1702.0000

注：數(shù)據(jù)以“平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差”的形式表示，同列數(shù)字旁不同小寫字母表示差異顯著(p<0.05)。表中為培養(yǎng)30d后平均每瓶增殖芽數(shù)。

Note:Thedataisexpressedintheformof“mean+standarddeviation”,andthedifferencebetweenthedifferentsmalllettersinthesamecolumnissignificant(p<0.05),thesamebelow。Thetableforthecultureof30daveragebudnumberperbottle.

2.3不同生長素與6-BA配比對紫馬鈴薯試管苗的影響

由表5可知，對照MS+IBA1.0mg·L-1時，紫馬鈴薯試管苗平均根條數(shù)17條、生根率100%與表1試驗結(jié)果基本相符；培養(yǎng)基MS+IBA(1.0mg·L-1)+ 6-BA(0.2～2.0mg·L-1)，隨6-BA濃度的增加，試管苗的株高、根條數(shù)、生根率均降低。其中，添加6-BA2.0mg·L-1效果明顯，生根率下降87.50%，單株根條數(shù)減少高達(dá)16.33條，幾乎無根產(chǎn)生。觀察發(fā)現(xiàn)，MS+IBA(1.0mg·L-1)+6-BA(1.0～2.0mg·L-1)與對照相比，試管苗葉片伸展、葉片多而大，植株稍矮、根粗壯，基部膨大呈深綠色。綜合考慮，當(dāng)MS+IBA(1.0mg·L-1)+6-BA(1.0mg·L-1)時植株長勢良好，莖粗、葉片伸展、葉片多而大，為試管苗生長的最適組合。

表6中對照MS+NAA0.5mg·L-1平均株高9.90cm、單株根條數(shù)12.33條、生根率100%；與對照相比，MS+NAA(0.5mg·L-1)+6-BA(0.2～1.0mg·L-1)隨著6-BA濃度的增加，株高逐漸降低、根條數(shù)減少、生根率下降。通過觀察發(fā)現(xiàn)，加入6-BA0.2～0.5mg·L-1的培養(yǎng)基中紫馬鈴薯試管苗植株葉片展開、葉片變大，平均株高降低、根條數(shù)減少、根粗壯；在6-BA0.2～1.0mg·L-1時試管苗基部膨大明顯呈深綠色。表明培養(yǎng)基MS+NAA(0.5mg·L-1)+6-BA(0.2～0.5mg·L-1)有利于紫馬鈴薯試管苗的生長，比單獨添加NAA效果好。

表4　6-BA對紫馬鈴薯試管苗生長的影響

表5　不同濃度6-BA與IBA配比對紫馬鈴薯試管苗生長的影響

表6　不同濃度6-BA與NAA配比對紫馬鈴薯試管苗生長的影響

綜上所述，MS+IBA(1.0mg·L-1)+6-BA(1.0mg·L-1)、MS+NAA(0.5mg·L-1)+6-BA(0.2～0.5mg·L-1)，降低紫馬鈴薯試管苗的株高、根條數(shù)、生根率，促進(jìn)葉片展開，使試管苗葉片多而大，有利于其生長。

3討論與結(jié)論

植物激素(內(nèi)源激素)作為重要的生理活性物質(zhì)，對于調(diào)節(jié)植物體各種生長發(fā)育過程和環(huán)境應(yīng)答具有十分重要的意義[8]。在植物離體培養(yǎng)過程中起著至關(guān)重要的作用，尤其是生長素和細(xì)胞分裂素，采用適當(dāng)激素配比可提高接種外植體快繁系數(shù)。不同作物類型、品種、外植體離體培養(yǎng)中對激素組成的要求不同[9～11]，本試驗利用優(yōu)質(zhì)紫馬鈴薯，研究不同濃度的生長素、細(xì)胞分裂素及其配比對新品種馬鈴薯試管苗生長的影響。

生長素IBA、NAA、2,4-D對紫馬鈴薯試管苗的作用效果各不相同。周珊等[12]在研究紫心馬鈴薯品種黑美人的組織培養(yǎng)過程中，發(fā)現(xiàn)NAA在0～0.6mg·L-1范圍內(nèi)，較適宜的生根培養(yǎng)基為MS+NAA0.4mg·L-1；金建鈞等[13]通過添加單一激素NAA0～0.2mg·L-1培養(yǎng)荷蘭薯與川薯3號兩個品種，在NAA0.2mg·L-1時根條數(shù)量生長速度高達(dá)0.75cm·d-1，對根部作用明顯；鮑紅春等[14]對馬鈴薯品種隴薯5號進(jìn)行了莖段的離體再生培養(yǎng)，觀察發(fā)現(xiàn)誘導(dǎo)試管苗生根的最佳培養(yǎng)基為MS+IBA0.5mg·L-1。本試驗結(jié)果表明：IBA、NAA均有利于試管苗根的生長，但I(xiàn)BA優(yōu)于NAA。IBA1.0mg·L-1時效果明顯，試管苗株高增加1.33cm、根條數(shù)增加6.67條、根粗增加0.36mm，此結(jié)論與鮑紅春等[14]的試驗結(jié)果不完全相同，可能由于不同品種間存在差異，對外源激素IBA的敏感度不同；添加NAA的濃度高于0.5mg·L-1時，不利于根的生長，該結(jié)果與前人的研究基本相一致。在MS培養(yǎng)基中加入2,4-D試管苗莖纖細(xì)、根系極不發(fā)達(dá)，基部產(chǎn)生愈傷；分別添加2,4-D、NAA1.0～2.0mg·L-1時均有利于產(chǎn)生愈傷組織，2,4-D的作用效果明顯，通常將2,4-D、NAA與適量6-BA配比誘導(dǎo)愈傷產(chǎn)生[15～16]。

對于細(xì)胞分裂素TDZ、ZT對馬鈴薯試管苗生長的影響研究比較少，使用ZT通常與NAA、IAA、6-BA等配比[17～18]，單一外源激素TDZ、ZT對試管苗的作用很少有報道。蒲秀琴[18]對青海省主栽的青薯2號、青薯9號、費烏瑞它等3個馬鈴薯品種進(jìn)行愈傷誘導(dǎo)，結(jié)果發(fā)現(xiàn)MS+2mg·L-1ZT+1mg·L-1IAA對3個品種的愈傷誘導(dǎo)作用強(qiáng)。楊春[18]以晉薯7號馬鈴薯為材料，誘導(dǎo)莖尖不定芽分化時MS+6-BA2.0mg·L-1+ZT2.0mg·L-1+NAA0.5mg·L-1+GA35.0mg·L-1的培養(yǎng)基效果明顯。本試驗表明，單一外源激素TDZ或ZT0.5mg·L-1均有利于紫馬鈴薯芽增殖，增殖倍數(shù)達(dá)7.13和5.63倍，同時可促進(jìn)愈傷形成，利用TDZ或ZT的這種作用可優(yōu)化其繼代增殖培養(yǎng)、愈傷組織誘導(dǎo)的培養(yǎng)基配方。金建鈞等[14]的研究中6-BA0～1.5mg·L-1時，隨著6-BA濃度增加，根條數(shù)與株高呈下降趨勢，高濃度的6-BA對試管苗生長有一定的抑制作用，6-BA濃度小于0.1mg·L-1為宜。在本試驗中發(fā)現(xiàn)單獨使用6-BA0.5～2.0mg·L-1并未促進(jìn)芽增殖，而是使試管苗不生根、分枝少、苗矮弱，此現(xiàn)象與金建鈞等[14]試驗結(jié)論一致。

選擇不同生長素IBA、NAA分別與6-BA配比的試驗中，隨著6-BA濃度的增加，生根率降低，同時，紫馬鈴薯組培苗的單株根條數(shù)也顯著減少，與單獨使用IBA、NAA相比不利于根的生長；但添加一定濃度的6-BA可促進(jìn)試管苗葉片展開，葉片增大，有利于試管苗的生長。結(jié)果表明當(dāng)培養(yǎng)基為MS+IBA1.0mg·L-1+6-BA1.0mg·L-1、MS+NAA0.5mg·L-1+6-BA0.2～0.5mg·L-1時有利于紫馬鈴薯試管苗的生長。

綜上，不同濃度的外源激素對紫馬鈴薯試管苗的作用不同，同一類激素對其作用也不盡相同。因此，研究不同外源激素對紫馬鈴薯試管苗生長的影響顯得尤為重要，這為選擇激素的最佳配比條件，進(jìn)一步優(yōu)化繼代培養(yǎng)基配方，進(jìn)而提高馬鈴薯試管苗質(zhì)量，促進(jìn)種薯生產(chǎn)提供依據(jù)。

參考文獻(xiàn)

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(編輯：邢國芳)

收稿日期：2016-04-08 修回日期：2016-05-11

作者簡介：馮璐(1993-)，女(漢)，山西運(yùn)城人，碩士研究生，研究方向：植物生理與分子生物學(xué) *通訊作者：王玉國，教授，博士生導(dǎo)師。Tel:13835462639;E-mail: tgwygn@126.com

基金項目：山西省農(nóng)業(yè)技術(shù)推廣示范項目(SNJTGSFXD201301)

中圖分類號：S532

文獻(xiàn)標(biāo)識碼：A

文章編號：1671-8151(2016)08-0544-07

Effectsofexogenoushormonesonrapidpropagationofpurplepotatoplantletsin vitro

FengLu,WangYuguo*,WenYinyuan,GaoJiajia,LiuYuan,HeMeilin

(College of Agriculture, Shanxi Agricultural University, Taigu 030801， China)

Abstract:[Objective]In order to research the effects of different exogenous hormones and their ratio on the growth of purple potato test tube seedling. [Methods]The new varieties purple potato of sterile test tube seedling was cultured on MS medium with different concentrations of auxins (IBA, NAA, 2,4-D) , cytokines (TDZ, 6-BA, ZT) . [Results] The two kinds of auxin IBA and NAA had effects on the root growth. When the concentration of IBA was 1.0 mg·mL-1, the growth of purple potato root in vitro was significantly better than the other treatments. It was not beneficial to the root growth when the concentration of NAA was more than 0.5 mg·mL-1. Adding 2,4-D 0.5 to 2.0mg·mL-1to MS medium made the height of the plant increased, stem became slender, root became extremely developed, and produced milk white, massive callus. 0.5 mg·mL-1TDZ or ZT could promote adventitious bud formation and was beneficial to bud proliferation. When 6-BA was used exclusively, there was no adventitious bud and it's also unfavorable for the growth of test tube seedlings. [Conclusion]In conclusion，the best optimal medium for growth was MS+IBA 1.0 mg·L-1+6-BA 1.0 mg·L-1and MS+NAA 0.5 mg·L-1+6-BA 0.2 to 0.5 mg·L-1.

Key words:Purple potato； Test tube seedling； Plant hormone； Rapid propagation