謝 景,孟 欣,王燕燕,何小飛,鄭 珊
(1.貴陽(yáng)市護(hù)理職業(yè)學(xué)院醫(yī)學(xué)類(lèi)基礎(chǔ)部,貴陽(yáng) 550003;2.貴陽(yáng)市金陽(yáng)醫(yī)院,貴陽(yáng) 550081)
5-氮雜-2’-脫氧胞苷對(duì)Molt-4細(xì)胞RASSF10基因啟動(dòng)子甲基化狀態(tài)的影響研究
謝 景1,孟 欣2,王燕燕1,何小飛1,鄭 珊1
(1.貴陽(yáng)市護(hù)理職業(yè)學(xué)院醫(yī)學(xué)類(lèi)基礎(chǔ)部,貴陽(yáng) 550003;2.貴陽(yáng)市金陽(yáng)醫(yī)院,貴陽(yáng) 550081)
目的:Molt-4細(xì)胞應(yīng)用5-氮雜-2’-脫氧胞苷進(jìn)行處理,并觀察期對(duì)Molt-4細(xì)胞RASSF10基因啟動(dòng)子甲基化狀態(tài)的影響。方法:于體外進(jìn)行Molt-4細(xì)胞培養(yǎng),并采用不同濃度5-氮雜-2’-脫氧胞苷處理。然后采用MTT法檢測(cè)性別增殖抑制率,同時(shí)采用RT-PCR法檢測(cè)RASSF10 mRNA表達(dá)情況。采用COBRA檢測(cè)RASSF10甲基化水平;Westernblot法檢測(cè)RASSF10蛋白表達(dá)情況。結(jié)果:經(jīng)檢測(cè)發(fā)現(xiàn),采用一定濃度5-氮雜-2’-脫氧胞苷作用于Molt-4細(xì)胞后,細(xì)胞增殖抑制率明顯升高;且表現(xiàn)為劑量依賴(lài)性和時(shí)間性。然對(duì)照組Molt-4細(xì)胞R中未檢測(cè)出RASSF10 mRNA、蛋白表達(dá)情況。然經(jīng)5-氮雜-2’-脫氧胞苷處理后,RASSF10基因出現(xiàn)部分甲基化。結(jié)論:臨床應(yīng)用5-氮雜-2’-脫氧胞苷處理Molt-4細(xì)胞,其可經(jīng)對(duì)RASSF10基因去甲基化來(lái)恢復(fù)RASSF10表達(dá),最終達(dá)到抑制Molt-4細(xì)胞增殖效果。
5-氮雜-2’-脫氧胞苷;Molt-4細(xì)胞;甲基化
DNA甲基化異常是一種表觀遺傳學(xué)現(xiàn)象,同時(shí)也是細(xì)胞癌變過(guò)程中的早期及頻發(fā)事件,此外,其還是一個(gè)可逆性的生物學(xué)過(guò)程[1]。因此,臨床可將甲基化特異基因來(lái)作為診斷及治療腫瘤疾病的分子標(biāo)志。并對(duì)特異基因?qū)嵤┘谆幚砗罂蛇_(dá)到治療腫瘤效果。RASSF10為RASSF家族成員,據(jù)相關(guān)報(bào)道稱(chēng)[2],RASSF10啟動(dòng)子甲基化頻繁出現(xiàn)于前列腺癌及甲狀腺癌等腫瘤中。本次為研究5-氮雜-2’-脫氧胞苷對(duì)Molt-4細(xì)胞RASSF10基因啟動(dòng)子甲基化狀態(tài)的影響,特進(jìn)行以下研究。
1 一般資料 試劑:5-氮雜-2’-脫氧胞苷由Sigma公司生產(chǎn);RPMI1640培養(yǎng)基由Hyclone公司提供;RNA提取及RT-PCR試劑盒(TAKARA 公司)?;蚪MDNA提取試劑盒(Qiagen公司)、DNA甲基化試劑盒(Millipore公司)、DNAmarker及引物(上海生工公司)、RASSF10多克隆抗體(Abgent公司)。
1.2 方法 細(xì)胞培養(yǎng):將Molt-4細(xì)胞放置于含有10%的胎牛血清RPMI1640培養(yǎng)液中,然后置于溫度37℃、5%CO2孵箱中進(jìn)行培養(yǎng)。采用倒置顯微鏡對(duì)其生長(zhǎng)情況進(jìn)行觀察。
四唑鹽比色法(MTT):選取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞用于檢測(cè),然后將藥物濃度調(diào)整為1×105/mL并對(duì)細(xì)胞進(jìn)行處理,接種于96孔板上[3]。然后使用5-氮雜-2’-脫氧胞苷對(duì)其進(jìn)行作用24h、48h、72h后取出,然后于每孔中加入5g/LMTT150ul,并放置于溫度為37℃孵箱中繼續(xù)培養(yǎng),時(shí)間為4h[4]。然后取出進(jìn)行離心處理,并取上清液,再加入DMSO150il,震蕩混勻后于酶標(biāo)儀570nm下進(jìn)行測(cè)定其吸光度(A),并計(jì)算細(xì)胞增殖抑制率。細(xì)胞增殖抑制率(%)=(A對(duì)照-A實(shí)驗(yàn))/A對(duì)照×100.0%[5]。
逆轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(RT-PCR):采用5-氮雜-2’-脫氧胞苷作用72h后,Trizol提取總RNA,并使用紫外分光光度計(jì)對(duì)RNA純度進(jìn)行檢測(cè)[6]。
免疫印跡法(Western blot):收集經(jīng)5-氮雜-2’-脫氧胞苷處理72 h后Molt-4細(xì)胞的總蛋白,按100ug/孔上樣[7]。10% SDS-PAGE 電泳后轉(zhuǎn)膜至NC膜上[8]。5%脫脂牛奶封閉1 h,封I抗RASSF10(1∶500)4℃過(guò)夜[9]。次日TBST、TBS洗膜。封HRP標(biāo)記的羊抗兔II抗(1∶2000)45 min,同法洗膜[10]。ECL化學(xué)發(fā)光,將膜置于暗盒中,暗室內(nèi)膠片曝光,沖洗膠片[11]。
亞硫酸氫鈉聯(lián)合限制性?xún)?nèi)切酶分析法(COBRA):取對(duì)照組、10umol/L經(jīng)5-氮雜-2’-脫氧胞苷處理72 h后的Molt-4細(xì)胞[12]。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 數(shù)據(jù)采用SPSS20.0軟件統(tǒng)計(jì)與分析,采用t、卡方檢驗(yàn)。結(jié)果以P<0.05表示具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 5-氮雜-2’-脫氧胞苷對(duì)Molt-4細(xì)胞增殖影響
Molt-4細(xì)胞經(jīng)不同濃度5-氮雜-2’-脫氧胞苷處理后,其增殖抑制率明顯低于藥物處理組(P<0.05);且不同濃度組間比較(P<0.05)。由此而說(shuō)明5-氮雜-2’-脫氧胞苷對(duì)Molt-4細(xì)胞增殖有一定抑制作用,且表現(xiàn)為劑量依賴(lài)性及時(shí)間性。
2.2 5-氮雜-2’-脫氧胞苷對(duì)RASSF10 蛋白表達(dá)
影響 對(duì)照組細(xì)胞中并無(wú)RASSF10表達(dá);經(jīng)5-氮雜-2’-脫氧胞苷處理后,各組RASSF10蛋白表達(dá)量出現(xiàn)明顯上調(diào),且與5-氮雜-2’-脫氧胞苷濃度有關(guān)(P<0.05)。比較對(duì)照組與5-氮雜-2’-脫氧胞苷各濃度組細(xì)胞的內(nèi)參GAPDH表達(dá)量(P>0.05)。見(jiàn)表1。
表1 5-氮雜-2’-脫氧胞苷對(duì)RASSF10 蛋白表達(dá)影響
2.3 5-氮雜-2’-脫氧胞苷對(duì)RASSF10 mRNA表達(dá)影響 擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳顯示,RASSF10 mRNA于對(duì)照組Molt-4細(xì)胞中不表達(dá),但經(jīng)2.5 μmol/L、5.0 μmol/L、10.0 μmol/L5-氮雜-2’-脫氧胞苷處理后,其重新表達(dá),且其表達(dá)強(qiáng)度與5-氮雜-2’-脫氧胞苷濃度呈正比(P<0.05)。RASSF10相對(duì)表達(dá)量采用ARASSF10/ AGAPDH表示。如表2。
表2 5-氮雜-2’-脫氧胞苷對(duì)RASSF10 mRNA表達(dá)影響
2.3 5-氮雜-2’-脫氧胞苷對(duì)RASSF10基因啟動(dòng)子甲基化狀態(tài)影響 經(jīng)檢測(cè)發(fā)現(xiàn),采用Molt-4細(xì)胞被處理前后,其RASSF10基因啟動(dòng)子區(qū)域甲基化狀態(tài)如圖4。對(duì)照組消化的DNA條帶較為明顯,因此而說(shuō)明對(duì)照組存在啟動(dòng)子甲基化現(xiàn)象。采用PCR擴(kuò)增后,含有TaqI識(shí)別位點(diǎn)可被TaqI消化水解,并出現(xiàn)水解條帶。但經(jīng)10 μmol/L5-氮雜-2’-脫氧胞苷作用72 h后則可見(jiàn)清晰且未被TaqI消化水解的條帶,消化水解的DNA條帶不明顯;因此而說(shuō)明啟動(dòng)子存在甲基化與非甲基化共存的情況,且原有甲基化RASSF10基因啟動(dòng)子區(qū)域可大部分被去甲基化。
本次研究發(fā)現(xiàn),不同濃度所處理后的Molt-4細(xì)胞增殖抑制程度存在明顯差異性,因此說(shuō)明5-氮雜-2’-脫氧胞苷可有效抑制白血病細(xì)胞增殖、生長(zhǎng)。本次研究為降低5-氮雜-2’-脫氧胞苷自身對(duì)本次研究細(xì)胞所產(chǎn)生的毒性作用而導(dǎo)致研究結(jié)果受到影響,所以選擇濃度較小的5-氮雜-2’-脫氧胞苷處理Molt-4細(xì)胞。對(duì)照組Molt-4細(xì)胞中RASSF10基因啟動(dòng)子是被甲基化修飾的,而RASSF10 mRNA、蛋白在Molt-4細(xì)胞中不表達(dá)。但經(jīng)采用510 umol/L-氮雜-2’-脫氧胞苷處理后,RASSF10基因啟動(dòng)子部分發(fā)生去甲基化作用,其RASSF10 mRNA及蛋白重新出現(xiàn)表達(dá)。因此而說(shuō)明抑癌基因RASSF10失表達(dá)的主要機(jī)制為RASSF10基因啟動(dòng)子的高度甲基化修飾。5-氮雜-2’-脫氧胞苷主要是通過(guò)抑癌基因RASS F10基因發(fā)生去甲基化,最終使得RASSF10重新恢復(fù)表達(dá),并發(fā)揮其抗白血病作用。
綜上所述,5-氮雜-2’-脫氧胞苷可降低Molt-4細(xì)胞RASSF10基因的甲基化程度,同時(shí)可誘導(dǎo)其重新表達(dá),進(jìn)而有效抑制Molt-4細(xì)胞增殖。
[1] 易斌, 張浩, 周宏, 等. 高糖誘導(dǎo)人腎小球系膜細(xì)胞CTGF啟動(dòng)子去甲基化及基因表達(dá)[J]. 細(xì)胞與分子免疫學(xué)雜志, 2011, 27(7): 747-750.
[2] 宋君君, 李穎, 楊澤松, 等. 慢性粒細(xì)胞白血病骨髓細(xì)胞的SFRP2基因啟動(dòng)子高甲基化[J]. 第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào), 2011, 33(24): 2583-2586.
[3] 吳明彩, 蔣明, 李大彩, 等. 5-氮-2'脫氧胞苷對(duì)Reh細(xì)胞增殖及RUNX3基因啟動(dòng)子區(qū)甲基化狀態(tài)的影響[J]. 皖南醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2011, 30(6): 436-439.
[4] 張旻, 肖新強(qiáng), 梁云生, 等. 甲基化抑制劑5-雜氮胞苷對(duì)T淋巴細(xì)胞株程序性死亡受體-1基因啟動(dòng)子區(qū)域甲基化水平及其表達(dá)的影響[J]. 中南大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版), 2011, 36(12): 1163-1169.
[5] 吳川清, 韓高雄, 帥曉明, 等. 5-氮雜-2'-脫氧胞苷對(duì)人胃癌SGC-7901細(xì)胞株生長(zhǎng)及EDNRB基因啟動(dòng)子異常甲基化的影響[J].世界華人消化雜志, 2010, 18(36): 3843-3847.
[6] 葉靜, 李明華, 張芳婷, 等. 5氮雜脫氧胞苷對(duì)鼻咽癌細(xì)胞RASSF1A基因甲基化和mRNA表達(dá)的影響[J]. 癌變·畸變·突變, 2012,24(3): 179-182.
[7] 耿月華, 秦旭, 劉清, 等. 5-Aza-CdR對(duì)食管鱗癌甲基化基因的影響[J]. 疾病預(yù)防控制通報(bào), 2011, 26(5): 5-9.
[8] 毛良勤, 劉穎春, 謝海, 等. 5-Aza-CdR對(duì)肝癌細(xì)胞DAPK基因甲基化的影響[J]. 中國(guó)肝臟病雜志(電子版), 2012, 4(4): 1-5.
[9] 胡曼, 戴立里, 曾維政. 普魯卡因與5′-氮雜-2′-脫氧胞苷對(duì)人肝腫瘤細(xì)胞株HepG_2中Wif-1基因啟動(dòng)子甲基化影響的比較研究[J]. 四川大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版), 2013, 44(1): 27-30+41.
[10] 田筱青, 孫丹鳳, 趙樹(shù)靚, 等. EYA4基因在結(jié)直腸癌中的甲基化狀態(tài)及其意義[J]. 胃腸病學(xué), 2013, 18(11): 672-675.
[11] 鄒惠, 賀湘玲, 黃淑桂, 等. Zebularine對(duì)HL-60及K562細(xì)胞株WWOX基因甲基化的影響[J]. 湖南師范大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版), 2014, 9(3): 5-9.
[12] 劉勝姿, 劉英姿, 全梅芳, 等. 5, 7-DMF對(duì)MDA-MB-453細(xì)胞凋亡和14-3-3σ基因表達(dá)的影響[J]. 湖南師范大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版),2011, 8(4): 9-12.
5-aza-2'-deoxycytidine Impact on Molt-4 cells RASSF10 gene promoter methylation status
Xie Jing1, Meng Xin2, Wang Yan-yan1, He Xiao-fei1, Zheng Shan1
(1.Guiyang City Career Academy Department of Medicine Basic Nursing ,Guiyang 550003, China; 2.Department of Nnternal Medicine, Jinyang Hospital of Guiyang City, Guiyang 550081, China)
Objective Discussion and Analysis of 5-aza-2’-deoxycytidine impact on Molt-4 cells RASSF10 gene promoter methylation status. Methods Molt-4 cells were cultured in vitro and the use of different concentrations of 5-aza-2’-deoxycytidine treatment. Then using the MTT assay gender proliferation inhibition rate, while using RT-PCR assay RASSF10 mRNA expression. COBRA detection RASSF10 using methylation level; Westernblot RASSF10 protein expression was detected. Results After testing found that the use of certain concentration 5-aza-2’-deoxycytidine acting on the Molt-4 cells,cell proliferation was significantly increased ; and showed a dose-dependent and time-sensitive. However, Molt-4 cells in the control group was not detected in the R RASSF10 mRNA, protein expression. However, by 5-aza-2’-deoxycytidine treatment after, RASSF10 appear partially methylated genes. Conclusion Clinical application of 5-aza-2’-deoxycytidine treated Molt-4 cells, which may be of RASSF10 gene demethylation to restore RASSF10 expression, and ultimately achieve the effect of inhibiting the proliferation of Molt-4 cells.
5-aza-2’-deoxycytidine; Molt-4 cells; Methylation
R256.1
A
1673-016X(2016)01-0008-03
2015-02-02
謝景,E-mail: dftttr@163.com