令利軍,馮 蕾,雷 蕾,何 楠,丁 蘭
(西北師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,甘肅蘭州 730070)
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地衣芽孢桿菌TG116誘導(dǎo)黃瓜抗病性相關(guān)防御酶系的研究
令利軍,馮 蕾,雷 蕾,何 楠,丁 蘭
(西北師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,甘肅蘭州 730070)
為了探討地衣芽孢桿菌TG116誘導(dǎo)黃瓜抗病性機(jī)理,研究其對(duì)黃瓜葉片防御酶活性的影響.采用比色法測(cè)定了地衣芽孢桿菌TG116誘導(dǎo)黃瓜根部后對(duì)葉片中多酚氧化酶(PPO)、過氧化物酶(POD)、苯丙氨酸解氨酶(PAL)等3種防御酶活性及丙二醛(MDA)含量的影響.結(jié)果顯示,經(jīng)地衣芽孢桿菌TG116灌根處理后,黃瓜葉片中的POD、PPO、PAL等防御酶類活性升高,MDA含量略有下降并達(dá)到新的平衡;經(jīng)黃瓜枯萎病病原菌灌根處理后,黃瓜葉片中的POD、PPO、PAL等防御酶活性及MDA含量迅速上升;尤其同時(shí)接種TG116和黃瓜枯萎病病原菌后,3種防御酶類活性上升的幅度比單獨(dú)接種要高,同時(shí)黃瓜葉片中MDA含量比單獨(dú)接種黃瓜枯萎病病原菌有所降低,減輕植株細(xì)胞膜脂過氧化損傷.研究表明,地衣芽孢桿菌TG116在一定程度上能夠誘導(dǎo)黃瓜的系統(tǒng)抗病性.
地衣芽孢桿菌;防御酶系;誘導(dǎo)系統(tǒng)抗性;誘導(dǎo)抗病性
誘導(dǎo)植物抗性是生防菌防治植物病害的主要作用機(jī)制之一,一些微生物可作為植物激活劑,誘導(dǎo)植物產(chǎn)生系統(tǒng)抗性,因而具有良好的防病效果[1-5].其作用機(jī)制是通過組織木質(zhì)化從而增強(qiáng)細(xì)胞機(jī)械屏障,以及產(chǎn)生植保素、積累酚類等物質(zhì)[6-7],這些過程是通過防御酶系應(yīng)答而實(shí)現(xiàn),防御酶活力往往與抗病性呈正相關(guān)[8].寄主植物的防御酶系主要包括苯丙氨酸解氨酶(PAL)、多酚氧化酶(PPO)、過氧化物酶(POD)、β-1,3-葡聚糖酶和超氧化物歧化酶(SOD)等.
近年來研究發(fā)現(xiàn)芽孢桿菌(Bacillusssp)是生防菌的優(yōu)勢(shì)菌種,誘導(dǎo)植物抗性是其生防作用實(shí)現(xiàn)的重要機(jī)制之一[7-9]. 高偉[10]研究發(fā)現(xiàn),海洋芽孢桿菌B-9987菌株能誘導(dǎo)番茄(Solanumlycopersicum)PAL,PPO,POD,CAT和SOD等5種防御酶的酶活性增強(qiáng);陳劉軍等[11]用蠟質(zhì)芽孢桿菌(Bacilluscereus)處理水稻(Oryzasativa)后發(fā)現(xiàn),水稻的SOD,POD,PAL和CAT酶活力明顯增加;孫建波等[12]研究指出,香蕉經(jīng)內(nèi)生枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)XBl6灌根處理后,香蕉假莖中PPO及POD的活性相對(duì)于清水對(duì)照和接種病原菌均顯著提高,且與抗病性密切相關(guān).生防菌處理植物后誘導(dǎo)其體內(nèi)發(fā)生一系列有益于植物抗病性增強(qiáng)的生理反應(yīng)現(xiàn)象,這對(duì)于農(nóng)作物健康生長和防治植物病害具有重要意義.
TG116是由本課題組從獨(dú)角蓮(Typhoniumgiganteum)塊莖分離到的1株地衣芽孢桿菌(Bacilluslicheniformis),其在平板對(duì)峙實(shí)驗(yàn)中表現(xiàn)出對(duì)植物病原真菌的廣譜抗性,尤其對(duì)黃瓜枯萎病菌(Fusariumoxysporum)有較強(qiáng)的抑菌作用[13].本文闡述了在單獨(dú)接種生防菌TG116及單獨(dú)接種黃瓜枯萎病病原菌和先接種生防菌TG116再接種黃瓜枯萎病病原菌等3種不同情況下,黃瓜葉片PAL、PPO和POD酶活性及MDA含量的變化趨勢(shì),以期揭示TG116誘導(dǎo)黃瓜產(chǎn)生抗病性的作用機(jī)制,為進(jìn)一步研究并闡明TG116對(duì)黃瓜植株的誘導(dǎo)抗性奠定基礎(chǔ).
1.1 材料
地衣芽孢桿菌TG116由本實(shí)驗(yàn)室分離并保存.
黃瓜枯萎病菌由甘肅省農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所李繼平研究員惠贈(zèng).
1.2 培養(yǎng)基
PDA培養(yǎng)基:馬鈴薯 200 g,瓊脂 18 g,葡萄糖 20 g,蒸餾水1 000 mL,pH為7.0左右[14].
營養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基:牛肉浸膏 3 g,氯化鈉 5 g,蛋白胨 10 g,蒸餾水1 000 mL,pH為7.0~7.2[15].
1.3 植物病原真菌和誘抗細(xì)菌的培養(yǎng)及菌懸液的制備
TG116菌液的制備:將菌株TG116接種于營養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基中,30 ℃、200 r·min-1振蕩培養(yǎng)24 h,用無菌水配制成濃度為108CFU·mL-1的菌懸液.
植物病原真菌接種物的制備:將黃瓜枯萎病菌接種在PDA培養(yǎng)基上,25 ℃條件下培養(yǎng)7 d后,用無菌水洗脫孢子并配制成濃度為106CFU·mL-1的游動(dòng)孢子懸浮液.
1.4 黃瓜的種植和誘導(dǎo)處理
用無菌水將籽粒飽滿的黃瓜種子沖洗干凈,置于55 ℃恒溫水浴中浸泡15 min后30 ℃培養(yǎng)箱中催芽,挑選出芽情況一致的種子每盆2粒播種于裝有滅菌營養(yǎng)土的花盆(80 mm×110 mm)中,待黃瓜幼苗長至3片真葉期時(shí)進(jìn)行誘導(dǎo)處理[16].實(shí)驗(yàn)設(shè)4個(gè)處理:1)單獨(dú)澆灌無菌水作為對(duì)照(CK);2)單獨(dú)接種菌株TG116;3)單獨(dú)接種黃瓜枯萎病菌(P);4)接種菌株TG116后間隔24 h再接種黃瓜枯萎病菌(TG116+ P).
1.5 PAL、PPO、POD活性和MDA含量的測(cè)定
PAL活性測(cè)定參照黃雪梅等[17]的苯丙氨酸法; PPO活性測(cè)定參照林植芳等[18]的鄰苯二酚法; POD活性和MDA含量測(cè)定參照魏學(xué)玲等[19]的愈創(chuàng)木酚法和硫代巴比妥酸法進(jìn)行測(cè)定.實(shí)驗(yàn)設(shè)3次獨(dú)立重復(fù)試驗(yàn).
2.1 PAL活性變化
由圖1可知,在0~9 d內(nèi),對(duì)照組黃瓜葉片PAL活性變化平穩(wěn)且處于較低水平.單獨(dú)接種病原菌時(shí),PAL活性在1~5 d內(nèi)逐漸上升,而后緩慢下降,其酶活峰值(5.60 U·gFW-1)明顯高于對(duì)照組(3.51 U·gFW-1).而經(jīng)菌株TG116單獨(dú)處理植株后,PAL活性在1~5 d快速升高至峰值,第7 d有明顯的下降,但至第9 d時(shí)PAL酶活仍是對(duì)照組的1.49倍.TG116+P組PAL酶活變化趨勢(shì)與單獨(dú)接種TG116相似,但是酶活性要比對(duì)照組明顯升高,同樣在第5 d時(shí)PAL活性達(dá)到峰值(8.95 U·gFW-1),此時(shí)的PAL酶活分別是單獨(dú)接種TG116和對(duì)照處理的1.20倍和2.55倍.實(shí)驗(yàn)表明,單獨(dú)接種病原菌和TG116能夠誘導(dǎo)黃瓜葉片中PAL活性的升高,而且在病原菌脅迫下,植物可以通過TG116誘導(dǎo)獲得更高的PAL活性,以緩解生物脅迫造成的傷害.
圖1 菌株TG116誘導(dǎo)處理對(duì)黃瓜葉片中 PAL酶活力的影響Fig 1 The activity of PAL in cucumber leaves after strain TG116 treatment
2.2 PPO活性變化
由圖2可知,經(jīng)菌株TG116單獨(dú)誘導(dǎo)處理,PPO活性在1~3 d內(nèi)逐漸上升達(dá)到峰值后再適度下降,至第9 d時(shí)酶活性又有所回升且保持在較高水平.TG116+P組PAL活性升幅最大,在第5 d時(shí)PPO活性達(dá)到峰值(15.43 U·gFW-1),分別是單獨(dú)接種TG116和對(duì)照處理的1.27倍和1.87倍.病原菌單獨(dú)接種后,葉片中PPO活性的增加幅度遠(yuǎn)小于單獨(dú)接種TG116處理組及TG116+P處理組,且PPO活性回調(diào)速度比后2組要迅速,說明TG116誘導(dǎo)接種有利于PPO的積累.TG116處理組和TG116+P處理組相比,說明在病原菌的脅迫下,TG116有利于抗病相關(guān)酶PPO的積累,從而有利于植物對(duì)脅迫產(chǎn)生積極應(yīng)答.
圖2 菌株TG116誘導(dǎo)處理對(duì)黃瓜葉片中 PPO酶活力的影響Fig 2 The activity of PPO in cucumber leaves after strain TG116 treatmen
2.3 POD活性變化
由圖3可知,TG116處理黃瓜葉片后,黃瓜葉片中POD酶活性明顯增高,其中以TG116+P處理組POD酶活性升高最為明顯,5 d后POD酶活性達(dá)到峰值(20.82 U·gFW-1),為CK的1.69倍.與之相比,單獨(dú)接種病原菌組,黃瓜葉片POD活性明顯高于對(duì)照組,但出現(xiàn)了上升、下降交替變化趨勢(shì),說明TG116誘導(dǎo)接種對(duì)黃瓜葉片中POD酶活性的表達(dá)有促進(jìn)和穩(wěn)定表達(dá)作用,在植株感病情況下,經(jīng)TG116誘導(dǎo)可產(chǎn)生并積累更多的POD,幫助植株對(duì)病原菌等生物脅迫產(chǎn)生積極應(yīng)答.
圖3 菌株TG116誘導(dǎo)處理對(duì)黃瓜葉片中 POD酶活力的影響Fig 3 The activity of POD in cucumber leaves after strain TG116 treatment
2.4 MDA活性變化
由圖4可知,單獨(dú)接種病原菌黃瓜葉片中MDA含量明顯上升,于第3 d達(dá)到最大值后逐漸下降,但5~9 d其含量仍高于對(duì)照組、單獨(dú)接種TG116和TG116+P組.TG116+P組較單獨(dú)接種病原菌相比,黃瓜葉片中MDA含量有較大幅度降低,并在第3 d后逐步恢復(fù)至接近正常水平.單獨(dú)接種TG116,MDA含量在1~3 d內(nèi)呈緩慢下降趨勢(shì),3 d后開始回升達(dá)到新的動(dòng)態(tài)平衡,與對(duì)照相比略有下降.這可能是因?yàn)門G116菌液中含有某種保護(hù)膜脂過氧化的物質(zhì),也可能因其能夠誘導(dǎo)黃瓜苗產(chǎn)生系統(tǒng)抗性激發(fā)黃瓜苗體內(nèi)其他的活性氧代謝途徑從而降低了細(xì)胞的膜脂過氧化程度,減少了MDA的生成,從而達(dá)到植物組織免受破壞作用.
圖4 菌株TG116誘導(dǎo)處理對(duì)黃瓜葉片中 MDA酶含量的影響Fig 4 The content of MDA in cucumber leaves after strain TG116 treatment
誘導(dǎo)植物抗性現(xiàn)已成為植物病害生物防治和現(xiàn)代農(nóng)藥發(fā)展的新理念.研究發(fā)現(xiàn)[20],參與植物體內(nèi)多種防衛(wèi)反應(yīng)的PAL、PPO及POD等酶系與植物抗病性密切相關(guān).PAL活性升高有利于植物抗病作用的發(fā)揮,它是莽草酸途徑的限速酶,由該途徑合成的中間產(chǎn)物都是植物體內(nèi)一些重要的抗菌物質(zhì),如酚類物質(zhì)、植保素和木質(zhì)素等[21];POD能夠清理植物體內(nèi)的活性氧,同時(shí)可催化酚類物質(zhì)的前體合成木質(zhì)素,加固植物細(xì)胞壁,形成防衛(wèi)屏障從而抵御病原物的入侵[22-23];PPO可以氧化酚類物質(zhì)生成具有更強(qiáng)毒性的醌類物質(zhì),直接毒殺入侵的病原菌[20].
很多研究表明[24-27],誘導(dǎo)抗性可使植株內(nèi)PAL、PPO及POD活性增強(qiáng),如短小芽孢桿菌(Bacilluspumilus)203-6和203-7誘導(dǎo)甜菜的抗病性與POD活性提高密切相關(guān)[24].徐韶等[25]研究發(fā)現(xiàn),內(nèi)生枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)B6和木霉(Trzchocerma)T23復(fù)合接種能夠誘導(dǎo)甜瓜根系PAL、POD和PPO活性有不同程度的提高.這些酶類的活性與植株抗病性呈正相關(guān),在植物的抗病反應(yīng)中起到非常重要的作用[24-27],因此通常以這3種酶作為衡量植物體內(nèi)防御反應(yīng)的重要指標(biāo).
本研究結(jié)果表明,TG116灌根處理黃瓜后,黃瓜葉片中PPO、POD及PAL活性均比無菌水對(duì)照組和接種病原菌明顯提高,這與前人相關(guān)的研究結(jié)果相吻合[24-27].TG116與病原菌共同接種后, PPO、POD及PAL酶活性升高的幅度均高于單獨(dú)接種病原菌,說明接種TG116有利于誘導(dǎo)植株抗性相關(guān)酶系的表達(dá).MDA含量可以反映細(xì)胞的膜脂過氧化程度[28],單獨(dú)接種植物病原真菌后MDA含量明顯升高,菌株TG116和病原菌共同接種的處理MDA含量較單獨(dú)接種植物病原真菌低,說明TG116能夠抑制因病原菌脅迫而誘發(fā)的MDA含量升高,從而通過降低生物脅迫誘發(fā)的膜脂過氧化程度而達(dá)到保護(hù)植株的作用.以上結(jié)果均表明,TG116誘導(dǎo)的系統(tǒng)抗性可能是其生物防治作用的防治機(jī)制之一.
王淑霞等[26]用哈茨木酶(Trichodermaharzianum, Tr-92)誘導(dǎo)處理黃瓜根部后測(cè)定相關(guān)酶活力變化,發(fā)現(xiàn)施用生防菌后可促進(jìn)相關(guān)酶活力的提高,與本實(shí)驗(yàn)結(jié)果的變化趨勢(shì)一致.但是經(jīng)哈茨木酶Tr-92單獨(dú)誘導(dǎo)處理,POD、PPO及PAL酶活力均在第2 d達(dá)到峰值;經(jīng)哈茨木酶Tr-92+H誘導(dǎo)處理,PAL于第3 d達(dá)到酶活峰值.本實(shí)驗(yàn)TG116單獨(dú)誘導(dǎo)處理組和TG116+H誘導(dǎo)處理組POD、PPO、PAL酶活力均在第5 d達(dá)到高峰,說明不同的生防菌對(duì)同一種植物進(jìn)行誘導(dǎo)處理時(shí),酶活力高峰出現(xiàn)的時(shí)間是不同的.林陳強(qiáng)等[27]指出,枯草芽孢桿菌(Bsubtilis)CSl6誘導(dǎo)香蕉(Musanana)抗病性相關(guān)防御酶系的研究中發(fā)現(xiàn),CS16也可以誘導(dǎo)香蕉葉片中PAL、POD和PPO酶活性的上升,但CS16誘導(dǎo)處理香蕉葉片中的PPO酶活性在第8 d已低至對(duì)照水平,而用地衣芽孢桿菌TG116處理黃瓜葉片PPO酶活性在第9 d仍明顯高于對(duì)照水平.周林等[28]在枯草芽孢桿菌(Bsubtilis)TR21對(duì)香蕉抗病相關(guān)酶活的誘導(dǎo)作用的研究中發(fā)現(xiàn),灌根處理TR21后測(cè)定香蕉葉片中3種防御酶類的活性表明,經(jīng)TR21發(fā)酵液處理后葉片中PPO、POD和PAL活性均顯著高于清水對(duì)照,但是TR21誘導(dǎo)處理香蕉葉片中的POD、PPO在第5 d已低至對(duì)照水平,PAL在第7 d明顯降低.地衣芽孢桿菌TG116處理黃瓜葉片PAL,PPO,POD酶活性在第9 d處于較高水平,這些均說明地衣芽孢桿菌TG116誘導(dǎo)處理具有較好的持效性.
綜上所述,地衣芽孢桿菌TG116發(fā)酵液不僅具有抑菌作用[11],還可以通過誘導(dǎo)植物防御酶系活性的提高從而增強(qiáng)植株的抗病性.有關(guān)地衣芽孢桿菌TG116發(fā)酵液中不同成分在防治黃瓜病害的過程中所起的作用還有待于進(jìn)一步研究和探討.
[1] LIU L,KLOEPPER J W,TUZUN S.Induction of systemic resistance in cucumber againstFusariumwilt by plant growth-promoting rhizobacteria[J].Phytopathology,1995,85(6):695.
[2] DE MEYER G,BIGIRIMANA J,ELAD Y,et al.Induced systemic resistance inTrichodermaharzianumT39 biocontrol ofBotrytiscinerea[J].EuropeanJournalofPlantPathology,1998,104(3):279.
[3] WEI G,KLOEPPER J W,TUZUN S.Induction of systemic resistance of cucumber toColletotrichumorbiculareby select strains of plant growth-promoting rhizobacteria[J].Phytopathology,1991,81(11):1508.
[4] MEERA M S,SHIVANA M B,KAGEYAMA K,et al.Plant growth promoting fungi from zoysiagrass rhizosphere as potential inducers of systemic resistance in cucumbers[J].Phytopathology,1994,84(12):1399.
[5] TIAN S,HARMAN G.Defense response induced by seed treatment withTrichodermaharzianumin Maize Mo17[J].ActaPhytopathologicaSinica,2008,38(6):626.
[6] 孔慶科,丁愛云,劉招艦,等.根際細(xì)菌誘導(dǎo)的系統(tǒng)抗性[J].山東科學(xué),2001,14(4):18.
[7] 齊愛勇,趙緒生,劉大群.芽孢桿菌生物防治植物病害研究現(xiàn)狀[J].中國農(nóng)學(xué)通報(bào),2011,27(12):277.
[8] ZHU Q,DABI T,BEECHE A,et al.Cloning and properties of a rice gene encoding phenylalanine ammonia-lase[J].PlantMolecularBiology,1995,29(3):535.
[9] 朱玥妍,劉姣,杜春梅.芽孢桿菌生物防治植物病害研究進(jìn)展[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2013,40(34):16635.
[10] 高偉.海洋芽孢桿菌B-9987生物防治機(jī)制研究[D].青島:青島科技大學(xué),2009.
[11] 陳劉軍,俞儀陽,王超,等.蠟質(zhì)芽孢桿菌AR156防治水稻紋枯病機(jī)理初探[J].中國生物防治學(xué)報(bào),2014,30(1):107.
[12] 孫建波,王宇光,趙平娟,等.抗菌XB16在香蕉體內(nèi)的定殖及對(duì)抗菌相關(guān)酶活性的影響[J].熱帶作物學(xué)報(bào),2010,31(2):212.
[13] 令利軍,雷蕾,馮蕾,等.獨(dú)角蓮內(nèi)生細(xì)菌TG116的分離鑒定及抑菌特性研究[J].西北師范大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2014,50(5):91.
[14] 竇桂銘.植物病原真菌拮抗菌株的篩選與幾丁質(zhì)酶基因的克隆[D].海口:??诖髮W(xué),2013.
[15] 任建國,王俊麗.芒果炭疽病拮抗菌J-15的鑒定及其生物學(xué)特性研究[J].廣東農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,37(7):101.
[16] 黃亞麗,王淑霞,杜曉哲,等.一株具有誘導(dǎo)抗性木霉菌株的篩選及其對(duì)黃瓜灰霉病誘導(dǎo)抗性的初步探究[J].植物保護(hù),2013,39(1):38.
[17] 黃雪梅,張昭其,季作梁.青香蕉和黃熟香蕉果皮感病過程中5種酶活性的變化[J].果樹學(xué)報(bào),2006,22(6):662.
[18] 林植芳,李雙順.采后荔枝果皮色素,總酚及有關(guān)酶活性的變化[J].植物學(xué)報(bào)(英文版),1988,30(1):40.
[19] 魏學(xué)玲,史如霞,楊穎麗,等.Pb 2+脅迫對(duì)兩種小麥幼苗生理特性影響的研究[J].植物研究,2009,29(6):714.
[20] 林陳強(qiáng),李占飛,張慧,等.枯草芽孢桿菌CS16誘導(dǎo)香蕉抗病性相關(guān)防御酶系的研究[J].福建農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2013,28(6):570.
[21] 王金生.分子植物病理學(xué)[M].北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,2001:270.
[22] 陳世蘋,高玉葆,梁宇,等.水分脅迫下內(nèi)生真菌感染對(duì)黑麥草葉內(nèi)保護(hù)酶系統(tǒng)活力的影響[J].應(yīng)用與環(huán)境生物學(xué)報(bào),2001,7(4):348.
[23] 李德全,陳志誼,聶亞峰.生防菌Bs-916及高效突變菌株抗菌物質(zhì)及其對(duì)水稻抗性誘導(dǎo)作用的研究[J].植物病理學(xué)報(bào),2008,38(2):192.
[24] KLOEPPER J W,RYU C M,ZHANG S.Induced systemic resistance and promotion of plant growth byBacillusspp[J].Phytopathology,2004,94(11):1259.
[25] 徐韶,莊敬華,高增貴,等.內(nèi)生細(xì)菌與木霉復(fù)合處理誘導(dǎo)甜瓜對(duì)枯萎病的抗性[J].中國生物防治,2005,21(4):254.
[26] 王淑霞,張麗萍,黃亞麗,等.哈茨木霉 Tr-92 誘導(dǎo)黃瓜對(duì)灰霉病系統(tǒng)抗性的研究[J].中國生物防治學(xué)報(bào),2013,29(2):242.
[27] 林陳強(qiáng),李占飛,張慧,等.枯草芽孢桿菌CSl6誘導(dǎo)香蕉抗病性相關(guān)防御酶系的研究[J].福建農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2013,28(6):570.
[28] 周林,程萍,喻國輝,等.枯草芽孢桿菌TR21對(duì)香蕉抗病相關(guān)酶活的誘導(dǎo)作用[J].中國農(nóng)學(xué)通報(bào),2011,27(2):185.
(責(zé)任編輯 俞詩源)
Induction of defense-related enzymes in cucumber roots byBacilluslicheniformisStrain TG116
LING Li-jun,FENG Lei,LEI Lei,HE Nan,DING Lan
(College of Life Science,Northwest Normal University,Lanzhou 730070,Gansu,China)
To probe into the biocontrol mechanism ofBacilluslicheniformisStrain TG116 and develop effective biocontrol agents,we determine the activities of polyphenol oxidase(PPO),peroxidase(POD),phenylalanine(PAL) and content of maleic dialdehye(MDA) of cucumber after being inoculated with strain TG116.Results suggest that after inoculation of cucumber roots with TG116,activities of POD,PPO,PAL in cucumber leaves are increased,content of MDA is decreased slightly and reached a new equilibrium.After inoculation of cucumber roots withFusariumoxysporum,activities of defense enzymes and content of MDA in cucumber leaves are increased,especially after inoculated both strain TG116 andFusariumoxysporum,the ascensional range of three kinds of defense enzymes’ activities is higher than that of single inoculation.Meanwhile,the content of MDA in cucumber leaves after being inoculated Strain TG116 is decreased,it reduces the plant cell membrane lipid peroxidation damage.Our results suggest thatBacilluslicheniformisstrain TG116 can induce disease resistance of cucumber.
Bacilluslicheniformis;defensive enzymes;induced systemic resistance;induced resistance
10.16783/j.cnki.nwnuz.2016.01.019
2015-10-08;修改稿收到日期:2015-11-27
甘肅省科技支撐計(jì)劃資助項(xiàng)目(1304NKCA143);甘肅省高??蒲许?xiàng)目(2013A-011);西北師范大學(xué)青年教師提升計(jì)劃資助項(xiàng)目(NWNU-LKQN-10-18)
令利軍(1975—),男,甘肅天水人,副教授,博士,碩士研究生導(dǎo)師.主要研究方向?yàn)橹参锱c微生物互作.
E-mail:linglijun@nwnu.edu.cn
Q 935
A
1001-988Ⅹ(2016)01-0100-05