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白色脂肪棕色化的調(diào)控因素及其潛在治療*

2017-01-13 11:16李佳綜述格日力審校
關(guān)鍵詞:產(chǎn)熱丁酸脂肪組織

李佳綜述,格日力審校

(青海大學(xué)醫(yī)學(xué)院高原醫(yī)學(xué)研究中心;青海省高原醫(yī)學(xué)應(yīng)用基礎(chǔ)重點(diǎn)實驗室; 青?!q他聯(lián)合重點(diǎn)實驗室,青海 西寧 810001)

白色脂肪棕色化的調(diào)控因素及其潛在治療*

李佳綜述,格日力◎?qū)徯?/p>

(青海大學(xué)醫(yī)學(xué)院高原醫(yī)學(xué)研究中心;青海省高原醫(yī)學(xué)應(yīng)用基礎(chǔ)重點(diǎn)實驗室; 青?!q他聯(lián)合重點(diǎn)實驗室,青海 西寧 810001)

高原物種完好適應(yīng)高原低壓、低氧、寒冷極端環(huán)境的能量代謝機(jī)制是怎樣的,他們?nèi)绾卧诤涞臓顟B(tài)下避免低體溫?fù)p傷研究作為高原醫(yī)學(xué)研究的一個熱點(diǎn)問題得到關(guān)注。近年來,有關(guān)研究發(fā)現(xiàn),通過寒冷刺激,人或動物的棕色脂肪被激活,并誘導(dǎo)白色脂肪發(fā)生“棕色化”反應(yīng),從而有效調(diào)節(jié)體溫[1],改善糖脂代謝,保持機(jī)體能量平衡。目前國內(nèi)外已發(fā)現(xiàn)很多與白色脂肪棕色化有關(guān)的信號通路及多種參與調(diào)控棕色化的因素,但機(jī)制并不十分明確。哺乳動物有兩種類型的脂肪組織,即白色脂肪組織(WAT)和棕色脂肪組織(BAT)[2]。WAT主要是儲存過剩的能量以及分泌瘦素、脂聯(lián)素等內(nèi)分泌因子[3],脂肪細(xì)胞分泌的激素和細(xì)胞因子對糖代謝、脂代謝都有重要意義[4]。BAT的主要功能是產(chǎn)熱及保持機(jī)體能量平衡,其通過解耦聯(lián)蛋白-1(UCP-1)解耦聯(lián)線粒體氧化呼吸過程中三磷酸腺苷(ATP)的合成,使ATP轉(zhuǎn)換成熱能[5],最終以非顫抖性產(chǎn)熱的方式釋放能量[6],從而起到保暖及保持機(jī)體能量代謝平衡的作用[7]。因此,研究參與白色脂肪“棕色化”的因素具有重要意義。本文將從白色脂肪棕色化的含義、調(diào)控因素及其潛在治療作一綜述。

1 脂肪組織及白色脂肪棕色化

1.1 脂肪組織

1.1.1 白色脂肪組織

WAT主要分布在腹股溝區(qū)、腰腹部和下肢等。脂肪組織脂滴大,線粒體含量少。其主要功能是提供長時間的代謝燃料,在人們從事勞動活動時及時補(bǔ)給;在需要能量補(bǔ)充,或沒有能量攝取的情況下,經(jīng)儲存的甘油三酯釋放脂肪酸,通過脂肪酸氧化維持組織能量平衡[8,9]。WAT在機(jī)體主要有兩種存在形式:即內(nèi)臟WAT(vWAT)和皮下WAT(scWAT)[10],二者都具有儲存脂滴、分泌激素、強(qiáng)化免疫及支撐周圍組織的作用。多項研究證實皮下白色脂肪的積累可以改善胰島素敏感性及減少2型糖尿病的危險因素,而內(nèi)臟脂肪的增加更容易導(dǎo)致2型糖尿病和心血管并發(fā)癥[11]。

1.1.2 棕色脂肪組織

BAT主要分布在肩胛區(qū)、頸部、外周血管區(qū)、腎周和心外膜等。與WAT不同的是,其主要功能是產(chǎn)熱。BAT幾乎存在于所有哺乳動物體內(nèi)[12,13]。其產(chǎn)熱功能是新生哺乳動物和嬰兒對寒冷刺激的一種天然防護(hù)。BAT不僅具備天然的抗低溫作用,還可以通過解耦連線粒體ATP的合成調(diào)節(jié)質(zhì)子梯度。許多研究表明,寒冷刺激或飲食介導(dǎo)促使UCP-1表達(dá),用以調(diào)節(jié)能量平衡,包括增加葡糖糖和自由脂肪酸氧化,導(dǎo)致產(chǎn)熱增加,保護(hù)機(jī)體對抗低溫環(huán)境[14,15]。BAT由許多小的脂滴組成,含有大量線粒體[16,17]。以甘油三酯形式儲存在脂滴里的能量易于快速水解和脂肪酸氧化[18]。BAT前體細(xì)胞來源于與肌細(xì)胞同源的Myf5陽性細(xì)胞[19],與肌細(xì)胞不同的是,BAT在生長發(fā)育的過程中表達(dá)PRDM16(含PR結(jié)構(gòu)域的蛋白16)和BMP7(骨形成蛋白7),這兩種轉(zhuǎn)錄因子促使它們成為成熟的棕色脂肪細(xì)胞[20]。近年來發(fā)現(xiàn)BAT也存在于成年人體內(nèi),而且可以顯著降低體質(zhì)量指數(shù)(BMI),其大量的血管分布利于機(jī)體產(chǎn)熱和甘油三酯代謝,對體重有顯著的影響,并調(diào)節(jié)代謝平衡[21,22]。當(dāng)寒冷感知信號神經(jīng)元傳遞到下丘腦視交叉前區(qū)時,激活交感神經(jīng)系統(tǒng)釋放去甲腎上腺素,刺激UCP-1表達(dá)和激活BAT。

1.2 白色脂肪棕色化

米色脂肪組織,即白色脂肪發(fā)生“棕色化”,這類脂肪細(xì)胞是介于白色脂肪和棕色脂肪細(xì)胞中間狀態(tài)的脂肪細(xì)胞,其來源于WAT本身。棕色變的白色脂肪具有與棕色脂肪相似的生理功能,即增加產(chǎn)熱,保護(hù)機(jī)體在寒冷環(huán)境下避免低體溫?fù)p傷以及改善機(jī)體代謝平衡。WAT中出現(xiàn)BAT揭示了“棕色化”的真正含義。眾所周知,不管是皮下白色脂肪還是內(nèi)臟白色脂肪的過度增加都會發(fā)展為2型糖尿病和肥胖,從而導(dǎo)致心血管并發(fā)癥。所以,BAT和白色脂肪棕色化對人體及哺乳動物是十分有利的。因此,探明調(diào)控白色脂肪棕色化的因素具有深遠(yuǎn)意義。

2 影響棕色化的因素

自從20世紀(jì)科學(xué)家們開始聚焦于“棕色化”以來,這一領(lǐng)域重要的標(biāo)志性研究就是對寒冷暴露的人和動物的研究。許多類似模型的研究都顯著表明,人類BAT的激活是在極度寒冷的條件下通過刺激交感神經(jīng)誘導(dǎo)的[23]。然而,也有一些觀點(diǎn)認(rèn)為不僅僅是交感神經(jīng)系統(tǒng)起作用,還有一些神經(jīng)遞質(zhì)的影響??v觀所有研究,調(diào)控UCP-1基因產(chǎn)熱的條件不僅有寒冷暴露或交感神經(jīng)激活,還包括低氧、運(yùn)動、飲食以及激素刺激[24]。通過這些調(diào)節(jié)因子,我們找到了一些調(diào)節(jié)棕色化過程的信號通路,包括過氧化物酶體增殖物受體γ共激活因子-1(PGC-1a)、過氧化物酶體增殖物激活受體γ(PPARγ[25])、PRDM16[26],活化轉(zhuǎn)錄因子2(ATF2),以及TFAM(線粒體轉(zhuǎn)錄因子A)等信號途徑。此外,其他轉(zhuǎn)錄和共調(diào)節(jié)因子包括鳶尾素(IRISIN),成纖維細(xì)胞生長因子(FGF21)[27,28],離子電位通道V型蛋白-4(TRPV4)以及一些微小RNA(microRNAs)[29]。

2.1 環(huán)境因素

2.1.1 寒冷

寒冷環(huán)境刺激BAT的激活和招募[30],不僅促進(jìn)BAT增殖,而且使WAT發(fā)生棕色化改變。這是由于寒冷刺激外周感覺神經(jīng)元的瞬時感受器電位(TRP),激活交感神經(jīng)系統(tǒng)釋放去甲腎上腺素,通過PKA/p38-MAPK信號通路激活BAT。這些信號通路還可通過轉(zhuǎn)錄因子PGC1α、CREB以及ATF2激活UCP-1的表達(dá)。目前,研究者主要著眼于去甲腎上腺素和β-腎上腺素激動劑對BAT的作用,卻忽略了交感神經(jīng)系統(tǒng)神經(jīng)末端除了釋放去甲腎上腺素,還釋放一些神經(jīng)遞質(zhì),它們也會對BAT的功能起到一定的調(diào)節(jié)作用。此外,寒冷刺激可誘導(dǎo)白色脂肪和BAT中的巨噬細(xì)胞分泌兒茶酚胺,進(jìn)而增加能量代謝。因此,寒冷對白色脂肪棕色化的作用受多種因素調(diào)控,明確這些因素的調(diào)控機(jī)理具有重要意義。

2.1.2 低氧

PPARγ在調(diào)節(jié)WAT和BAT的分化過程中有不可替代的作用。臨床上PPARγ的作用主要表現(xiàn)在它的激動劑促進(jìn)脂聯(lián)素的表達(dá),尤其是在治療胰島素抵抗和2型糖尿病方面具有顯著療效[31]。Ohno[32]等在他們的研究中發(fā)現(xiàn)完全PPAR受體激動劑, 例如羅格列酮,可以結(jié)合和穩(wěn)定PPARγ配體結(jié)合域,促使PRDM16[33]的積累。PRDM16對皮下白色脂肪細(xì)胞棕色化有關(guān)鍵作用。PGC-1α是參與調(diào)控機(jī)體糖脂代謝、線粒體發(fā)生、適應(yīng)性產(chǎn)熱等生理過程的關(guān)鍵轉(zhuǎn)錄共激活分子。有研究發(fā)現(xiàn),低氧暴露下,PGC-1α表達(dá)增加,與PGC-1β、PPARγ等共同作用,可有效促進(jìn)WAT與BAT轉(zhuǎn)化[34],與常氧下“白色脂肪棕色化”[35]作用效果一致。低氧刺激可通過代償激活一系列細(xì)胞應(yīng)答反應(yīng),促使機(jī)體不同組織PGC-1α表達(dá)及介導(dǎo)細(xì)胞信號通路,進(jìn)而改善機(jī)體能量代謝體系。有研究發(fā)現(xiàn),運(yùn)動過程中,缺氧可誘導(dǎo)骨骼肌中PGC-1α表達(dá),表明缺氧刺激可促使PGC-1α調(diào)節(jié)氧化代謝[36]。但目前對此研究甚少。Yin等[37]構(gòu)建大鼠新生兒缺氧缺血性腦損傷模型中,分別于6 h和24 h檢測大鼠神經(jīng)線粒體基因和PGC-1α的表達(dá),發(fā)現(xiàn)大鼠神經(jīng)線粒體基因表達(dá)增加,而PGC-1α表達(dá)未曾發(fā)生變化。Lu等[38]對3T3-L1脂肪細(xì)胞進(jìn)行4 h/d短暫性低氧處理,發(fā)現(xiàn)短暫性低氧可通過AMPK及其相關(guān)基因(如PGC-1α、PPARγ、GLUT1等)重組脂肪細(xì)胞分化,增強(qiáng)其胰島素敏感性。在低氧刺激下,PGC-1α調(diào)控脂肪細(xì)胞產(chǎn)熱、線粒體生成、糖脂代謝,以及在脂肪細(xì)胞分化過程發(fā)揮重要作用[39]。隨著肥胖人群的增多,低氧刺激白色脂肪“棕色化”有望成為干預(yù)肥胖的靶向措施[40]。目前由于低氧刺激對機(jī)體PGC-1α調(diào)控作用的研究較少,而且很多研究結(jié)果存在爭議,甚至有研究者認(rèn)為低氧抑制白色脂肪棕色化通路。有研究結(jié)果證實,脂肪組織HIF-1α通過抑制BAT作用導(dǎo)致肥胖的發(fā)生[41]。筆者認(rèn)為產(chǎn)生這些分歧的原因可能與實驗的設(shè)計和低氧時間、低氧濃度及海拔等因素有關(guān)。因此,尚需進(jìn)一步研究與探討其作用機(jī)制,以探明PGC-1α與HIF-1α間如何作用,進(jìn)而影響機(jī)體糖脂代謝、線粒體生成、脂肪酸氧化。

2.2 運(yùn)動

運(yùn)動不僅促進(jìn)棕色化進(jìn)程,還能改善身體機(jī)能。研究表明運(yùn)動增加與代謝密切相關(guān)蛋白GLUT4和PGC-1a的表達(dá),運(yùn)動期間,中樞神經(jīng)系統(tǒng)的激活可以促進(jìn)兒茶酚胺的釋放。因此,β-腎上腺受體激動劑可以促進(jìn)UCP-1在急性(脂質(zhì)分解)和慢性(線粒體合成、WAT棕色化)狀態(tài)下的激活[42]。Stanford[43]等人認(rèn)為,運(yùn)動對白色脂肪的改變意義重大,包括增加線粒體合成基因的表達(dá)及線粒體活性,促進(jìn)皮下白色脂肪棕色化以及改變WAT脂肪因子特性。另一些研究表明,人和嚙齒類動物在運(yùn)動過程中骨骼肌產(chǎn)生的許多肌細(xì)胞因子,包括肌抑素、β-氨基異丁酸也可以促進(jìn)棕色化進(jìn)程。一項針對人的初步研究發(fā)現(xiàn),經(jīng)過12周的運(yùn)動訓(xùn)練,骨骼肌PGC1a和Fndc5 mRNA的表達(dá)增加,同時血漿IRISIN濃度降低。他們發(fā)現(xiàn)長時運(yùn)動對棕色化基因影響很小,而且并未發(fā)現(xiàn)IRISIN水平與皮下脂肪組織UCP1 mRNA的含量有何關(guān)聯(lián)[44]。因此,IRISIN是否能促進(jìn)人白色脂肪棕色化仍有許多爭議[45,46]。

2.3 營養(yǎng)素

2.3.1 辣椒素

辣椒素是辣椒屬植物中的一種生物堿,其主要引發(fā)辣椒的燒灼感,很久之前就被證實可以誘導(dǎo)白色脂肪棕色化。辣椒素誘導(dǎo)棕色化的機(jī)制最近才被Baskaran等闡明[47]。他們的研究發(fā)現(xiàn)通過給高脂誘導(dǎo)飲食的小鼠補(bǔ)充辣椒素后,在不減少食物攝取的條件下可以控制體重增長。這種作用是通過過表達(dá)瞬時受體電位陽離子通道(TRPV1)實現(xiàn)的,TRPV1的表達(dá)在給予高脂飲食后通常下調(diào)[48]。另一項體外實驗證實,辣椒素可以刺激鈣離子進(jìn)入皮下脂肪細(xì)胞內(nèi)表達(dá)TRPV1。鈣離子首先激活鈣離子依賴的蛋白激酶Ⅱ,進(jìn)而激活A(yù)MPK通路,促進(jìn)脂肪分解。

2.3.2 γ-氨基丁酸

γ-氨基丁酸也是促進(jìn)棕色化的重要因素。近年來的研究表明,γ-氨基丁酸不僅具有潛在的抗氧化作用,還可以調(diào)節(jié)高血糖血癥,但作用機(jī)理不清楚[49]。Xie[50]等使用不同的γ-氨基丁酸補(bǔ)充劑,應(yīng)用不同的計量對高脂飲食的小鼠做了許多的類似的實驗。結(jié)果發(fā)現(xiàn),使用γ-氨基丁酸治療后,在不同程度上促進(jìn)肌肉氧化還原反應(yīng),導(dǎo)致高脂飲食小鼠的自由氨基酸紊亂,這可能是導(dǎo)致血糖快速降低的原因。當(dāng)然,研究者建議一定要注意控制γ-氨基丁酸的計量,尤其是應(yīng)用在抵抗肥胖時。然而,Braun[51]等認(rèn)為γ-氨基丁酸通過活化γ-氨基丁酸受體,減少胰島素的胞外分泌起作用。Nakamura[52]等的實驗證實,γ-氨基丁酸受體-1B亞基可以作為與生活方式相關(guān)疾病治療的靶向干預(yù)措施,他們發(fā)現(xiàn)γ-氨基丁酸受體-1B亞基在脂肪細(xì)胞中的表達(dá)十分普遍,且最初是在轉(zhuǎn)錄水平調(diào)節(jié)瘦素的表達(dá)。筆者認(rèn)為,產(chǎn)生這些差異結(jié)果可能與實驗的設(shè)計和γ-氨基丁酸的給藥方式、給藥劑量以及物種的反應(yīng)有關(guān)。因此,尚需尋找標(biāo)準(zhǔn)化的實驗方案,用以探討γ-氨基丁酸在調(diào)控白色脂肪棕色化過程的作用機(jī)理。

2.3.3 β-氨基異丁酸

Roberts[53]首次證明β-氨基異丁酸是一種新型的小型細(xì)胞因子,是由PGC-1α調(diào)節(jié)的,能夠增加棕色脂肪細(xì)胞特異性基因表達(dá)。他們提出新的假設(shè),即β-氨基異丁酸在人類多潛能造血干細(xì)胞(Hphsc)分化為成熟的白色脂肪細(xì)胞中是否能誘導(dǎo)棕色化反應(yīng)。結(jié)果證實,β-氨基異丁酸能在Hphsc分化為白色脂肪細(xì)胞過程中促進(jìn)棕色化基因表達(dá),并增加線粒體活性。給予β-氨基異丁酸治療后,通過PPARγ信號通路促進(jìn)UCP-1表達(dá)增加的機(jī)制尚未明確。同時,熒光定量PCR的結(jié)果顯示,在腹股溝區(qū)白色組織中,棕色脂肪特異性基因UCP-1、CIDEA高表達(dá),而且經(jīng)過β-氨基異丁酸治療后PGC-1a和細(xì)胞色素酶C也出現(xiàn)高表達(dá)。這些結(jié)果證明,β-氨基異丁酸可以在體內(nèi)誘導(dǎo)增加棕色或米色脂肪細(xì)胞特異性基因的表達(dá)。綜上所述,β-氨基異丁酸是非腎上腺受體激活條件下誘導(dǎo)WAT棕色化的新型的小分子物質(zhì)。

另一個新的發(fā)現(xiàn)就是β-氨基異丁酸對糖尿病的作用。Shi[54]等的研究表明,口服β-氨基異丁酸減輕高質(zhì)飲食誘導(dǎo)的2型糖尿病小鼠肝臟內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的壓力,凋亡和糖脂代謝紊亂,是通過AMPK信號通路調(diào)控。這些結(jié)果證實,β-氨基異丁酸對2型糖尿病及其他代謝性疾病靶點(diǎn)是通過有效減輕肝臟線粒體壓力和糖、脂代謝實現(xiàn)的。然而,Jung[55]等報道β-氨基異丁酸減輕胰島素抵抗、炎癥反應(yīng),以及誘導(dǎo)脂肪酸氧化是通過骨骼肌AMPK-PPARγ信號通路實現(xiàn)的。筆者認(rèn)為,產(chǎn)生這種差異的原因可能與實驗設(shè)計、給藥途徑及個體敏感性有關(guān)。

2.4 內(nèi)源性調(diào)控因子

2.4.1 肌肉素

肌肉素[56]是骨骼肌在運(yùn)動后產(chǎn)生的一種被稱為運(yùn)動因子的肽類,可以在血液中檢測到[57]。同時被認(rèn)為是骨骼肌特有的因子,能促進(jìn)骨骼肌線粒體合成以及保持運(yùn)動持久性。Liu[58]等發(fā)現(xiàn)肌肉素可以減少骨骼肌葡萄糖的攝入,這種作用是通過抑制Akt/PKB信號通路實現(xiàn)的。同時他們提出當(dāng)暴露在肌肉素狀態(tài)時,PPARγ和肝臟X受體a[59](LXRa)也可以導(dǎo)致骨骼肌對葡萄糖的攝入減少。Nishizawa也有同樣的發(fā)現(xiàn)[60]。因此認(rèn)為,肌肉素對線粒體合成和PPARγ調(diào)節(jié)的作用暗示它可能有促進(jìn)棕色化反應(yīng)的作用。

2.4.2 鳶尾素

在過去的許多年里,鳶尾素[61](一種由FNDC5[62]蛋白分泌的激素)引起了廣泛關(guān)注,認(rèn)為它也是促進(jìn)棕色化過程的一個因子。運(yùn)動使鳶尾素釋放入血,通過表達(dá)UCP-1促進(jìn)棕色化。給小鼠注射含鳶尾素微粒的腺病毒時,UCP-1基因高表達(dá),從而增加產(chǎn)熱和改善肥胖和糖穩(wěn)態(tài)[63]。然而,關(guān)于人類鳶尾素的起源、調(diào)節(jié)和作用仍有許多爭議。Kurdiova[64]等針對FNDC5基因和鳶尾素蛋白做了兩項臨床研究:一項研究是關(guān)于藥物對2型糖尿病患者的治療,另一項研究是運(yùn)動對久坐、超重或肥胖個體的影響。根據(jù)這兩項研究,他們得出如下結(jié)論,首先,臨床研究與細(xì)胞培養(yǎng)都證實了糖尿病患者體內(nèi)Fndc5/IRISIN減少,但體外培養(yǎng)的骨骼肌細(xì)胞未發(fā)生變化。這一結(jié)果揭示:有許多與糖尿病相關(guān)的因素調(diào)節(jié)體內(nèi)Fndc5/IRISIN的水平;其次,許多導(dǎo)致糖尿病的因素,包括高血糖癥、高甘油三脂血癥和內(nèi)臟性肥胖,以及肌細(xì)胞內(nèi)脂肪沉積均與脂肪組織FNDC5和循環(huán)中鳶尾素水平負(fù)相關(guān)。同時體外模擬糖尿病,給予肌細(xì)胞棕櫚酸脂和葡萄糖可以降低FNDC5的表達(dá)。當(dāng)然,鳶尾素活性與肌細(xì)胞質(zhì)量,肌肉收縮能力和代謝狀態(tài)有關(guān)[65]。同時,肌生成抑制蛋白和瘦素對鳶尾素誘導(dǎo)的棕色化的調(diào)控也呈現(xiàn)出負(fù)向調(diào)控作用。

2.4.3 甲狀腺激素

甲狀腺素調(diào)節(jié)UCP-1的合成不依賴于腎上腺素刺激,但甲狀腺激素和腎上腺素的信號通路相互關(guān)聯(lián),并以一種協(xié)同合作的方式存在[66]。甲狀腺激素(T3)可直接誘導(dǎo)線粒體的生物活性和ucp-1的表達(dá)。T3主要通過甲狀腺分泌,脂肪細(xì)胞可以通過DIO2使T4向T3轉(zhuǎn)化。DIO2是通過腎上腺素刺激激活,并且易被其底物T4抑制[67],在甲狀腺功能減低時抑制腎上腺素對BAT的作用,而甲狀腺功能亢進(jìn)則增加腎上腺素對BAT的作用[68]。脂肪細(xì)胞有兩種T3核受體,即TRα和TRβ,后者可以刺激ucp-1的表達(dá),且與脂肪細(xì)胞內(nèi)T3濃度成正比。甲狀腺激素作為一種交感神經(jīng)系統(tǒng)激動劑,在中樞水平誘導(dǎo)ucp-1的表達(dá)[69]。

2.5 微小核糖核酸

微小核糖核酸(MicroRNAs)是一類僅有18~25個核苷酸的小RNA,是促進(jìn)白色脂肪棕色化的重要影響因素。Zheng[70]等在他們的研究中證實了microRNAs在促進(jìn)白色脂肪棕色化,尤其是附睪白色脂肪棕色化過程中的重要作用。他們的研究揭示了對UCP-1具有潛在靶向作用的microRNAs miR-9 和miR-338-3p,在促進(jìn)附睪脂肪組織棕色化的進(jìn)程中起重要作用,這種作用是通過對UCP-1基因的轉(zhuǎn)錄后抑制發(fā)揮作用的[71]。Liu等研究表明miR-133a抑制白色脂肪棕色化,且負(fù)向調(diào)節(jié)PRDM16。根據(jù)這些研究,他們發(fā)現(xiàn)miR-133a敲除小鼠存在特殊的代謝表型,包括誘導(dǎo)白色脂肪棕色化,改善糖代謝,增加胰島素敏感性[72]。同樣,另一個研究小組的研究暗示miR-34a對肥胖相關(guān)的代謝紊亂可提供有效治療,尤其是抑制miR-34a的表達(dá)可增加UCP-1在所有脂肪組織的表達(dá)。這一作用是通過下調(diào)miR-34a改善肝臟FGF21信號通路和脂質(zhì)氧化[73]。另一個對肥胖和2型糖尿病起作用的microRNA是miR-155,盡管這項研究尚處于初級階段,但對小鼠的研究表明,減少50%的miR-155,可以增加米色脂肪細(xì)胞的招募和BAT的分化。所以,減少miR-155的表達(dá)可能是治療代謝紊亂的又一措施[74]。因為microRNA是一個大家族,目前只有小部分microRNA在代謝領(lǐng)域的作用被證實。例如miR-196a、miR-26和miR-30在肥胖和2型糖尿病等復(fù)雜疾病中起正向調(diào)控作用,而miR-155、miR-133、miR-27b和miR-34則起負(fù)向調(diào)控作用[75,76]。因此,需要設(shè)計更加完整的實驗,探討和發(fā)現(xiàn)更多調(diào)控白色脂肪棕色化的microRNA。

3 脂肪組織在代謝性疾病中的作用

現(xiàn)代社會的一些生活方式,包括久坐、高熱量飲食、缺乏運(yùn)動等很容易導(dǎo)致肥胖和一些代謝性疾病的發(fā)生,包括2型糖尿病、胰島素抵抗、血脂紊亂、心臟病以及癌癥等[77]。改變生活習(xí)慣是代謝紊亂病人最迫切的需求,但這很難付諸實踐,且只有少數(shù)人能做到。因此,在過去的很長時間里,研究者們投入了大量的精力和物力來尋找肥胖及相關(guān)性疾病潛在的治療方案。然而,現(xiàn)在的許多研究表明,解決這一問題的關(guān)鍵可能是脂肪組織本身。迄今為止,已有大量研究正著眼于BAT如何干預(yù)以及以哪種方式干預(yù)肥胖和2型糖尿病。盡管棕色脂肪細(xì)胞和米色脂肪細(xì)胞都有產(chǎn)熱作用,但他們?nèi)杂性S多不同之處。當(dāng)然,它們也有許多相似的地方,比如都含有在激活后具有產(chǎn)熱功能的UCP-1蛋白。UCP-1基因激活后解耦連呼吸鏈中合成三磷酸腺苷的電子傳遞鏈,以能量釋放的方式產(chǎn)熱[78]。所以,超重的病人在寒冷刺激后能更好地激活BAT是容易理解的,而且這也更加證明其能逆轉(zhuǎn)BMI。許多研究證實對于極度肥胖的病人,其BAT的分布和激活程度很低,但是通過外科手術(shù)干預(yù)以后,BAT的活性也隨之增加[79]。一項研究表明,在環(huán)境溫度處于14 ℃~15 ℃的寒冷條件下暴露10天的8名患有2型糖尿病患者的外周胰島素敏感度增加43%[80]。最近一項針對小鼠的研究也表明,寒冷暴露可以改善糖尿病小鼠肝臟X受體激動劑抗糖尿病的作用。這項研究表明,通過寒冷刺激FGF21、IRISIN以及神經(jīng)調(diào)節(jié)蛋白4(Nrg4)等促進(jìn)白色脂肪棕色化可能是干預(yù)胰島素依賴型糖尿病的有效措施[81]。同樣,有研究團(tuán)隊證實了FGF21在促進(jìn)棕色化進(jìn)程中的重要性,他們詳細(xì)地闡明了FGF21調(diào)節(jié)慢性適應(yīng)性產(chǎn)熱是通過增加產(chǎn)熱基因的轉(zhuǎn)錄以及增強(qiáng)棕色化脂肪的產(chǎn)熱能力實現(xiàn)[82]。上個世紀(jì),科學(xué)家們通過應(yīng)用化學(xué)解偶聯(lián)劑2,4-二硝基酚模擬UCP-1的作用,當(dāng)給予高劑量時,造成了幾乎所有細(xì)胞不規(guī)律的解耦連呼吸,結(jié)果導(dǎo)致許多不良后果,包括低體溫和死亡。因此,探索和發(fā)現(xiàn)無副作用的白色脂肪棕色化進(jìn)程任重道遠(yuǎn)。

4 結(jié)語與展望

綜上所述,交感神經(jīng)激活不是活化BAT的唯一因素,還有許多潛在的新因素促進(jìn)棕色化反應(yīng)。然而,它們的作用機(jī)制尚不清楚,同時我們或許會發(fā)現(xiàn)這些研究對人體并不像對嚙齒類動物那樣有效。因此,21世紀(jì)的任務(wù)就是要在BAT的指引下發(fā)現(xiàn)更多器官可能的分泌功能。盡管我們已經(jīng)明確以上許多因素都可以促進(jìn)白色脂肪棕色化,然而,尋找有效干預(yù)措施仍是一個大問題。在未來的研究道路上,隨著對影響棕色化因素的深入研究,去發(fā)現(xiàn)更加有效的分子,減少其他因素的干擾是一項重要工作。最終通過增加BAT的招募以及誘導(dǎo)白色脂肪棕色化,有效實現(xiàn)白色脂肪棕色化。

[1]Zhang L,Liu P,Zhu W,et al.Variations in thermal physiology and energetics of the tree shrew(Tupaiabelangeri)in response to cold acclimation[J].Comp.Physiol.B,2014,182:167-176.

[2]Gil A,Olza J,Gil-Campos M,et al.Is adipose tissue metabolically different at different sites[J].Int J PediatrObes,2011,6:13-20.

[3]Y Bai,Q Sun.Macrophage recruitment in obese adipose tissue[J].Obesity reviews,2015,16:127-136.

[4]Hajer GR,van Haeften TW,Visseren FL.Adipose tissue dysfunction in obesity,diabetes,and vascular diseases[J].Eur Heart,2008,29:2959-2971.

[5]Cannon B,Nedergaard J.Brown adipose tissue:function and physiological significance[J].Physiol Rev,2004,84:277-359.

[6]Seale P,Lazar MA.Brown fat in humans:Turning up the heat on obesity[J].Diabetes,2009,58:1482-1484.

[7]Bartelt A,Bruns OT,ReimerR,et al.Brown adipose tissue activity controls triglyceride clearance[J].Nat.Med,2011,17:200-205.

[8]Vazquez-Vela ME,Torres N,Tovar AR.White adipose tissue as endocrine organ and its role in obesity[J].Arch Med Res,2008,39:715-728.

[9]Wang P,Mariman E,Renes J,et al.The secretory function of adipocytes in the physiology of white adipose tissue[J].Cell Physiol,2008,216:3-13.

[10]Stanford KI,Middelbeek RJ,Goodyear LJ.Exercise effects on white adipose tissue:Beiging and metabolic adaptations[J].Diabetes,2015,64:2361-2368.

[11]Roman S,Agil A,Peran M,et al.Brown adipose tissue and novel therapeutic approaches to treat metabolic disorders[J].Transl Res,2015,165:464-479.

[12]Giralt M,Villarroya F.White,brown,beige/brite:Different adipose cells for different functions[J].Endocrinology,2013,154:2992-3000.

[13]Nedergaard J,Cannon B.The browning of white adipose tissue:Some burning issues[J].Cell Metab,2014,20:396-407.

[14]Algire C,Medrikova D,Herzig S.White and brown adipose stem cells:From signaling to clinical implications[J].BiochimBiophysActa,2013,1831:896-904.

[15]Sidossis L,Kajimura S.Brown and beige fat in humans:Thermogenic adipocytes that control energy and glucose homeostasis[J].Clin Invest,2015,125:478-486.

[16]Kiefer FW,Cohen P,Plutzky J.Fifty shades of brown:Perivascular fat,thermogenesis,and atherosclerosis[J].Circulation,2012,126:1012-1015.

[17]Rezaee F,Dashty M.Role of adipose tissue in metabolic system disorders:Adipose tissue is the initiator of metabolic diseases[J].Diabetes Metab,2013,13:8.

[18]Warner A,Mittag J.Breaking BAT:Can browning create a better white[J].Endocrinol,2016,228:19-29.

[19]Giralt M,Villarroya F.Mitochondrial uncoupling and the regulation of glucose homeostasis[J].Curr Diabetes Rev,2016,12:1-9.

[20]Zafrir B.Brown adipose tissue:Research milestones of a potential player in human energy balance and obesity[J].HormMetab Res,2013,45:774-785.

[21]Reddy NL,Tan BK,Barber TM,et al.Brown adipose tissue:Endocrine determinants of function and therapeutic manipulation as a novel treatment strategy for obesity[J].BMC Obes,2014,1:13.

[22]Tharp KM,Stahl A.Bioengineering beige adipose tissue therapeutics[J].Front Endocrinol(Lausanne),2015,6:164.

[23]Cannon B,Nedergaard J.Brown adipose tissue:Function and physiological significance[J].Physiol Rev,2004,84:277-359.

[24]Moisan A,Lee YK,Zhang JD,et al.White-to-brown metabolic conversion of human adipocytes by JAK inhibition[J].Nat Cell Biol,2015,17:57-67.

[25]Petrovic N,Walden TB,Shabalina IG,et al.Chronic peroxisome proliferator-activated receptor gamma(PPARgamma)activation of epididymally derived white adipocyte cultures reveals a population of thermogenicallycompe-tent,UCP1-containing adipocytes molecularly distinct from classic brown adipocytes[J].Biol Chem,2010,285(10):7153-7164.

[26]Cohen P,Levy J D,Zhang Y,et al.Ablation of PRDM16 and beige adipose causes metabolic dysfunction anda subcutaneous to visceral fat switc[J].Cell 2014,156,304-316.

[27]Lee P,Linderman J D,Smith S,et al.Irisin and FGF21 are cold-induced endocrine activators of brown fat function inhumans[J].CellMetab,2014,19,302-309.

[28]Fisher F M,Kleiner S,Douris N,et al.FGF21 regulates PGC-1alpha and browning of white adipose tissues in adaptive thermogenesis[J].Genes Dev,2012,26,271-281.

[29]Lo KA,Sun L.Turning WAT into BAT:A review on regulators controlling thebrowning of white adipocytes[J].BiosciRep,2013,33:pii:e00065.

[30]Zhang,L,Zhang H,Zhu W.et al.Adaptive thermogenesis of the liver in tree shrew(Tupaiabelangeri)during cold acclimation[J].Anim Biol,2011,61,385-401.

[31]Koppen A,Kalkhoven E. Brown vs white adipocytes:The PPARgammacoregulatorstory[J].FEBS Lett,2010,584:3250-3259.

[32]Ohno H,Shinoda K,Spiegelman BM,et al.PPARgamma agonists induce a white- to-brown fat conversion through stabilization of PRDM16 protein[J].Cell Metab,2012,15:395-404.

[33]Moreno-Navarrete JM,Ortega F,Serrano M,et al.Irisin is expressed and produced by human muscle and adipose tissue in association with obesity and insulin resistance[J].ClinEndocrinolMetab,2013,98(4):E769-778.

[34]Pino E,Wang H,McDonald ME,et al.Roles for per- oxisome proliferator-activated receptor γ(PPARγ)and PPARγcoactivators 1α and 1β in regulating response of white and brown adipocytes to hypoxia[J].BiolChem,2012,287:18351-18358.

[35]Bostr?mP,Wu J,Jedrychowski MP,et al.A PGC1-α-de- pendent myokine that drives brown-fat-like development of white fat and thermogenesis[J].Nature,2012,481:463-468.

[36]Chung SY,Kao CH,Villarroya F,et al.Bhlhe40 represses PGC-1α activity on metabolic gene promoters in myogenic cells[J].Mol Cell Biol,2015,35:2518-2529.

[37]Yin W,Signore AP,Iwai M,et al.Rapidly increased neu- ronal mitochondrial biogenesis after hypoxic-ischemic brain injury[J].Stroke,2008,39:3057-3063.

[38]Lu H,Gao Z,Zhao Z,et al.Transient hypoxia repro-grams differentiating adipocytes for enhanced insulin sensitivity and triglyceride accumulation[J].Obes(Lond),2015,PMID:26219415.

[39]Sanchez-Delgado G,Martinez-Tellez B,Olza J,et al.Role of exercise in the activation of brown adipose tissue[J].Ann NutrMetab,2015,67:21-32.

[40]Elsen M,Raschke S,Eckel J.Browning of white fat:Does irisin play a role in humans[J].Endocrinol,2014,222:R25-R38.

[41]Jonathan C Jun,Ronald Devera,DileepUnnikrishnan.Adipose HIF-1α causes obesity by suppressing brown adipose tissue thermogenesis[J].MolMed,2017,95:287-297.

[42]Bostrom P,Wu J,Jedrychowski MP,et al.A PGC1-alpha-dependent myokine that drives brown-fat-like development of white fat and thermogenesis[J].Nature,2012,481:463-468.

[43]Stanford KI,Middelbeek RJ,Townsend KL,et al.Brown adipose tissue regulates glucose homeostasis and insulin sensitivity[J].Clin Invest,2013,123:215-223.

[44]Erickson,H.P.Irisin and FNDC5 in retrospect:an exercise hormone or a trans-membrane receptor[J].Adipocyte,2013,2:289-293.

[45]Chang L,Milton H,Eitzman DT,et al.Paradoxical roles of perivascular adipose tissue in atherosclerosis and hypertension[J].Circ,2013,77:11-18.

[46]Fitzgibbons TP,Czech MP.Epicardial and perivascular adipose tissues and their influence on cardiovascular disease:Basic mechanisms and clinical associations[J].Am Heart Assoc,2014,3:e000582.

[47]Baskaran P,Krishnan V,Ren J,et al.Capsaicin induces browning of white adipose tissue and counters obesity by activating TRPV1 channel-dependent mechanisms[J].Br J Pharmacol,2016,173:2369-2389.

[48]Zhang LL,Yan Liu D,Ma LQ,et al.Activation of transient receptor potential vanilloid type-1 channel prevents adipogenesis and obesity[J].Circ Res,2007,100:1063-1070.

[49]Tian J,Dang HN,Yong J,et al.Oral treatment with gamma-aminobutyric acid improves glucose tolerance and insulin sensitivity by inhibiting inflammation in high fat diet-fed mice[J].PLoS ONE,2011,6:e25338.

[50]Xie ZX,Xia SF,Qiao Y,et al.Effect of GABA on oxidative stress in the skeletal muscles and plasma free amino acids in mice fed high-fat diet[J].AnimPhysiolAnimNutr(Berl),2015,99:492-500.

[51]Braun M,Wendt A,Buschard K,et al.GABAB receptor activation inhibits exocytosis in rat pancreatic beta-cells by G-protein- dependent activation of calcineurin[J].Physiol,2004,559:397-409.

[52]Nakamura Y,Hinoi E,Takarada T,et al.Positive regulation by GABA(B)R1 subunit of leptin expressionthrough gene transactivation in adipocytes[J].PLoS ONE,2011,6:e20167.

[53]Roberts LD,Bostrom P,O’Sullivan JF,et al.Beta-Aminoisobutyric acid induces browning of white fat and hepatic beta-oxidation and is inversely correlated with cardiometabolic risk factors[J].Cell Metab,2014,19:96-108.

[54]Shi CX,Zhao MX,Shu XD,et al.Beta-aminoisobutyric acid attenuates hepatic endoplasmic reticulum stress and glucose/lipid metabolic disturbance in mice with type 2 diabetes[J].Sci Rep,2016,6:21924.

[55]Jung TW,Hwang HJ,Hong HC,et al.BAIBA attenuates insulinresistance and inflammation induced by palmitate or a high fat diet via an AMPK-PPARdelta-dependent pathway in mice[J].Diabetologia,2015,58:2096-2105.

[56]Liu Y,Huo X,Pang XF,et al.Musclin inhibits insulin activation ofAkt/protein kinase B in rat skeletal muscle[J].Int Med Res,2008,36:496-504.

[57]Norheim F,Langleite TM,Hjorth M,et al.The effects of acute and chronic exercise on PGC-1alpha,irisin and browning of subcutaneous adipose tissue in humans[J].FEBS,2014,281:739-749.

[58]Liu Y,Huo X,Pang XF,et al.Musclin inhibits insulin activation ofAkt/protein kinase B in rat skeletal muscle[J].Int Med Res,2008,36:496-504.

[59]Zelcer N,Tontonoz P.Liver X receptors as integrators of metabolic and inflammatory signaling[J].Clin Invest,2006,116(3):607-614.

[60]Nishizawa H,Matsuda M,Yamada Y,et al.Musclin,a novel skeletal muscle-derived secretory factor[J].BiolChem,2004,279:19391-19395.

[61]Bostrom P,Wu J,Jedrychowski MP,et al.A PGC1-alpha-dependent myokine that drives brown-fat-like devel- opment of white fat and thermogenesi[J].Nature,2012,481(7382):463-468.

[62]Lee,P,Brychta,R J,Linderman J,et al.Mild cold exposure modulates fibroblast growth factor 21(FGF21)diurnal rhythm in humans:relationship between FGF21 levels,lipolysis,and cold-induced thermogenesis[J].Clin.Endocrinol.Metab,2013,98,E98-E102.

[63]Rodriguez A,Ezquerro S,Mendez-Gimenez L,et al.Revisiting the adipocyte:A model for integration of cytokine signaling in the regulation of energy metabolism[J].Am J PhysiolEndocrinolMetab,2015,309:E691-E714.

[64]Kurdiova T,Balaz M,Vician M,et al.Effects of obesity,diabetes and exercise on Fndc5 gene expression and irisin release in human skeletal muscle and adipose tissue:In vivo and in vitro studies[J].Physiol,2014,592:1091-1107.

[65]Bargut TC,Silva-E-Silva AC,Souza-Mello V,et al.Mice fed fish oil diet and up-regulation of brown adipose tissue thermogenic markers[J].Eur J Nutr,2015,23.PMID:2561-2928.

[66]SolmonsonA,MillsEM.Uncouplingproteinsandthemolecular mechanism of thyroid thermogenesis[J].Endocrinology,2016,157:455-462.

[67]Christoffolete MA,Linardi CC,de Jesus L,et al.Mice with targeted disruption of the Dio2 gene have cold-induced overexpres- sion of the uncoupling protein 1 gene but fail to increase brown adipose tissue lipogenesis and adaptive thermogenesis[J].Diabetes,2004,53:577-584.

[68]Virtanen KA,van MarkenLichtenbelt WD,Nuutila P.Brown adipose tissue functions in humans[J].BiochimBiophysActa,2013,1831:1004-1008.

[69]Lopez M,Varela L,Vazquez MJ,et al.Hypothalamic AMPK and fatty acid metabolism mediate thyroid regulation of energy balance[J].Nat Med,2010,16:1001-1008.

[70]Zheng Z,Liu X,Zhao Q,et al.Regulation of UCP1 in the browning of epididymal adipose tissue by beta3-adrenergic agonist:A role for MicroRNAs[J].Endocrinol,2014,2014:530-636.

[71]Fischer A.P,Seeger D,Bonauer T,et al.Genetic deletion and pharmacological inhibition of MiR-92a reduce obesity[J].Circulation,2014,130:A16501.

[72]Liu W,Bi P,Shan T,et al.MiR-133aregulates adipocyte browning in vivo[J].PLoS Genet,2013,9:e1003626.

[73]Fu T,Seok S,Choi S,et al.MicroRNA 34a inhibits beige and brown fat formation in obesity in part by suppressing adipocyte fibroblast growth factor 21 signaling and SIRT1 function[J].Mol Cell Biol,2014,34:4130-4142.

[74]Chen Y,Siegel F,Kipschull S,et al.MiR-155 regulates differentiation of brown and beige adipocytes via a bistablecircuit[J].Nat Commun,2013,4:1769.

[75]Karbiener M,Scheideler M.MicroRNA functions in brite/brown fat—Novel perspectives towards anti-obesity strategies[J].ComputStructBiotechnol,2014,11:101-105.

[76]Arias N,Aguirre L,F(xiàn)ernandez-Quintela A,et al.MicroRNAs involved in the browning process of adipocytes[J].PhysiolBiochem,2016,72(3):509-521.

[77]Harms M,Seale P.Brown and beige fat:Development,function and therapeutic potential[J].Nat Med,2013,19:1252-1263.

[78]Spiegelman BM.Banting Lecture:regulation of adipogenesis:toward new therapeutics for metabolic disease[J].Diabetes,2013,62(6):1774-1782.

[79]Betz MJ,Enerback S.Human brown adipose tissue:What we have learned so far[J].Diabetes,2015,64:2352-2360.

[80]Hanssen MJ,Hoeks J,Brans B,et al.Short-term cold acclimation improves insulin sensitivity in patients with type 2 diabetes mellitus[J].Nat Med,2015,21:863-865.

[81]Gao M,Zhang C,Ma Y,et al.Cold exposure improves the anti-diabetic effect of T0901317 in streptozotocin-induced diabetic mice[J].AAPS,2015,17:700-710.

[82]Cannon B,Nedergaard J.Brown adipose tissue:Function and physiological significance[J].Physiol Rev,2004,84:277-359.

※:國家自然科學(xué)基金項目(31571231);◎:通信作者,博導(dǎo),教授,geriligao@hotmail.com 李佳(1987~),女,漢族,湖北籍,2015級內(nèi)科學(xué)博士研究生

R363.1

A

10.13452/j.cnki.jqmc.2017.02.011

2017-01-02

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