Jelli Venkatesh Molly Jahn Byoung-Cheorl Kang *
(1. 植物科學(xué)與植物基因組育種研究所, 蔬菜育種研究中心, 首爾大學(xué) 首爾, 151–921韓國(guó); 2. 威斯康星大學(xué), 麥迪遜市 威斯康星州,WI53706美國(guó))
植物應(yīng)對(duì)病原物產(chǎn)生了多種防御反應(yīng)??共⌒酝ǔJ怯芍参锟共』颍≧)編碼的蛋白和病原物無(wú)毒基因(Avr)編碼的相應(yīng)效應(yīng)蛋白的基因?qū)蚍绞交プ鳟a(chǎn)生的。這種互作激活了寄主中抑制病原物入侵的防御相關(guān)級(jí)聯(lián)反應(yīng)[1-2]。一些植物的R基因已經(jīng)被克隆,對(duì)寄主抗性機(jī)制的研究也取得了很大進(jìn)展[3-8]。
植物的R基因根據(jù)保守結(jié)構(gòu)域分為8類[7,9]。醋栗番茄(Solanum pimpinellifoliumL.)的Pto基因是R基因的最好例子[10]。Pto編碼的絲氨酸/蘇氨酸激酶(STK)與抗丁香假單胞菌(P. syringae)的效應(yīng)蛋白AvrPto和AvrPtoB直接互作,從而引發(fā)寄主植物的抗性[12,14-15]。AvrPto和AvrPtoB在其原本不存在的細(xì)菌菌株中表達(dá)時(shí)顯示毒性會(huì)增加[16-18]。AvrPtoB的致病機(jī)理是通過(guò)抑制細(xì)胞程序性壞死來(lái)擾亂寄主的防御反應(yīng)[18]。有趣的是,AvrPto也能夠抑制本氏煙(Nicotiana benthamiana)和番茄中非寄主病原體導(dǎo)致的細(xì)胞程序性壞死[19]。在抗Pst系統(tǒng)中已經(jīng)確定了三類下游效應(yīng)器。Pti1是增強(qiáng)體內(nèi)超敏反應(yīng)的蛋白激酶;Pti4、Pti5和Pti6是防御相關(guān)的類乙烯應(yīng)答轉(zhuǎn)錄因子(EREBP)[16,20-21],Prf是一個(gè)結(jié)合核苷酸的富亮氨酸重復(fù)(NB-LRR)的蛋白質(zhì)。通過(guò)Prf的識(shí)別,AvrPto效應(yīng)子使Pto激酶磷酸化,從而產(chǎn)生抗性[22-25]。
盡管對(duì)植物特別是番茄中的Pto通路基因有了廣泛的研究,但除了茄屬植物,其他植物都沒(méi)有鑒定到識(shí)別AvrPto的Pto功能同系物。在一些植物物種中尋找類Pto序列一直都在嘗試[26-27]。在這些研究中,有人認(rèn)為識(shí)別AvrPto的分子可能類似于番茄中的Pto激酶。然而,突變分析顯示AvrPto蛋白在番茄和煙草中被差異性識(shí)別[17],這表明煙草中的AvrPto識(shí)別蛋白可能與番茄Pto序列無(wú)關(guān)[17]。已有報(bào)道在大豆中鑒定出了AvrPto[28],這表明AvrPto的識(shí)別和下游信號(hào)級(jí)聯(lián)可能在物種間保守[28]。植物中對(duì)AvrPto的識(shí)別也引起了關(guān)于AvrPto識(shí)別蛋白在Pst非寄主物種中的作用問(wèn)題。
最近,已經(jīng)在一些茄屬植物[27]以及菜豆[26]、葡萄[29]、黃瓜[30]、香蕉[31]、草莓[32]和柑橘[33]等植物中鑒定出類Pto基因。但是,兩種不同的番茄(S.lycopersicum)基因型中不存在Pto同源物[34-35]。而由特異性AvrPto和Pto介導(dǎo)的抗性可能是從醋栗番茄(Solanum pimpinellifoliumL.)中進(jìn)入到一些栽培番茄品種中[10,36]。盡管對(duì)Pto基因在分子遺傳學(xué)方面研究有所進(jìn)展,但對(duì)Pto基因的分子進(jìn)化研究仍然知之甚少。了解Pto基因的進(jìn)化關(guān)系對(duì)于解開(kāi)其功能差異以及了解其在非寄主抗病性中的作用非常重要。
辣椒是一種重要的香料作物,一直被認(rèn)為是Pst的非寄主。有證據(jù)表明辣椒可能具有識(shí)別AvrPto蛋白并誘導(dǎo)抗性的能力[19]。然而,Pto激酶并未被確定為識(shí)別組分。本研究中,我們使用PVX系統(tǒng)檢測(cè)辣椒能否識(shí)別AvrPto。此外,我們對(duì)辣椒中類Pto基因家族(PLPKs)進(jìn)行了全基因組分析,共確定了25個(gè)PLPK基因,同時(shí)基于序列相似性和系統(tǒng)發(fā)育關(guān)系將其分為8個(gè)亞族(PLPKⅠ-PLPKⅧ)。為了解植物類Pto基因的進(jìn)化多樣性,使用其他茄科植物如番茄、馬鈴薯、本氏煙(Nicotiana benthamiana)、擬南芥和水稻的Pto家族基因進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育比較和分子進(jìn)化分析。根據(jù)計(jì)算機(jī)工具研究辣椒PLPK的結(jié)構(gòu)特征。最后,我們使用RNA-seq數(shù)據(jù)對(duì)各種辣椒基因型的PLPK基因表達(dá)譜進(jìn)行分析。
本研究使用Robert Stall提供的C.annuum‘NuMex Rnaky’(RNaky),Early CalWonder 30(ECW),‘Criollo de Morelos 334’(CM334),‘Perennial’,C. chinense‘PI159234’(234)和‘Habanero’等不同基因型的辣椒品種。試驗(yàn)品種包括生產(chǎn)中重要的易感病品種(ECW和RNaky),以及抗病品種(Perennial,CM334,Habanero和PI159234)。使用本氏煙(Nicotiana benthamiana)進(jìn)行PVX載體擴(kuò)增。
將G.Martin和X.Tang提供的AvrPto和AvrPtoI96T突變體克隆到由D.Baulcombe提供的pPVX201載體中,來(lái)構(gòu)建PVX衍生載體的瞬時(shí)表達(dá)系統(tǒng)[37]。選 擇 5'-ATATCGATGGGAAATATATGTGTC-3'和5'-GAGGTCGACATTATGACGCC-3'作 為 引 物,利用PCR從質(zhì)粒pPtE6[28]和pPtE6:I96T[17]中擴(kuò)增每個(gè)AvrPto基因的528 bp編碼區(qū)。引物中的ClaI和Sall位點(diǎn)用下劃線標(biāo)注。擴(kuò)增片段克隆到pGEMT載體中,并通過(guò)測(cè)序檢測(cè)。用限制酶ClaI和Sall消化基因并亞克隆到相應(yīng)載體位點(diǎn)。所得到的pPVX201衍生物稱為pPVX201::AvrPto和pPVX201::AvrPtoI96T。攜帶GFP cDNA的pPVX201衍生物pPVX204當(dāng)作對(duì)照[37]。利用15%膨潤(rùn)土懸浮液和43 mM磷酸鈉緩沖液(pH 7.0),將≥50 μg的質(zhì)粒摩擦接種到4~6周大小的本氏煙草(Nicotiana benthamiana)中[37],產(chǎn)生接種物。使用pPVX201、pPVX204或pPVX載體,系統(tǒng)侵染本氏煙草(Nicotiana benthamiana),在接種后14 d其出現(xiàn)了系統(tǒng)花葉病癥狀,而pPVX::AvrPto導(dǎo)致植株白化和出現(xiàn)死斑,然后出現(xiàn)系統(tǒng)壞死癥狀[38]。沒(méi)有發(fā)生壞死癥狀的本氏煙(Nicotiana benthamiana)的煙葉在接種后10~14 d用50 mM磷酸鈉緩沖液(pH 7.0)進(jìn)行勻漿,然后摩擦接種到6~8周大小的辣椒植株中。模擬接種的辣椒作為常規(guī)對(duì)照。通過(guò)雜交分析和抗PVX抗體的酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定(ELISA)試劑盒(Agdia, Elkhart, IN)確定感染[39]。接種14 d后從植物的未接種上部葉提取總RNA,將其印跡到尼龍膜N+上,并與放射性標(biāo)記的PVX衍生序列和AvrPto序列雜交。
利用已發(fā)表的辣椒遺傳連鎖圖譜[40]來(lái)確定Pto通路基因的位置。Pto、Fen和Prf克隆的cDNA由S.D.Tansksley(康奈爾大學(xué),伊薩卡,紐約)提供。Pti1、Pti4、Pti5和Pti6的克隆基因由G.Martin(康奈爾大學(xué),伊薩卡,紐約)提供。為研究PI159234和NuMex Rnaky品種的限制性片斷長(zhǎng)度多態(tài)性(RFLPs),用EcoRⅠ、EcoRⅤ、DraⅠ、BclⅠ、BstNⅠ、HindⅢ和XbaⅠ限制酶消化親代DNA,并與Pto通路基因雜交。根據(jù)Livingstone等[40]描述的75個(gè)植物F2代的定位來(lái)收集RFLP標(biāo)記物的分離。通過(guò)MAPMAKER軟件對(duì)照原始框架標(biāo)記數(shù)據(jù)集,來(lái)確定PCR克隆片段的圖譜位置。
以番茄(S.pimpinellipolium)中具有Pto基因同源序列的LpimPth2(AAF76305),LpimPth3(AAF76304),LpimPth4(AAF76303),Fen_kinase(AAF76307) 和Pto_kinase(AAF76306) 作 為引用數(shù)據(jù),使用BLAST程序在CM334 20140109(v1.5)PROTEINS數(shù) 據(jù) 庫(kù)(http://cab.pepper.snu.ac.kr/)中鑒定出辣椒(C.annuum)基因組的Pto基因家族成員。從茄科基因組學(xué)資源數(shù)據(jù)庫(kù)(http://solanaceae.plantbiology.msu.edu/)中獲得預(yù)測(cè)的馬鈴薯Pto蛋白同源序列。在擬南芥信息資源數(shù)據(jù)庫(kù)(TAIR)和水稻基因組注釋計(jì)劃(http://rice.plantbiology.msu.edu/index.shtml)中以番茄Pto同源序列作為引用數(shù)據(jù),利用BLAST程序獲得擬南芥和水稻的類Pto蛋白激酶序列。利用番茄Pto序列作為引用數(shù)據(jù)在茄科基因組學(xué)數(shù)據(jù)庫(kù)(https://solgenomics.net/)中進(jìn)行BLASTP比對(duì)得到番茄和煙草的類Pto蛋白序列。我們也使用番茄Prf1(AAF76308)、Pti1(U28007)、Pti4(U89255)、Pti5(U89256)和Pti6(U89257)序列作為引用數(shù)據(jù),通過(guò)BLAST程序鑒定出番茄Prf同系物和辣椒Pti同系物。
通過(guò)辣椒基因組數(shù)據(jù)庫(kù)(http://cab.pepper.snu.ac.kr/)獲得辣椒PLPK基因和其他Pto通路基因的染色體定位。使用MapChart程序?qū)LPK定位到辣椒染色體上[41]。從辣椒基因組數(shù)據(jù)庫(kù)(http://cab.pepper.snu.ac.kr/)獲得辣椒基因組的DNA和CDS序列。在GSDS網(wǎng)站(http://gsds.cbi.pku.edu.cn/) 中通過(guò)比較基因組DNA和其對(duì)應(yīng)的CDS序列,做出PLPK基因和其他Pto通路基因外顯子-內(nèi)含子結(jié)構(gòu)圖。
進(jìn)化樹(shù)中包括辣椒、番茄、馬鈴薯、煙草、擬南芥和水稻等植物的蛋白序列以確定進(jìn)化關(guān)系。為確定辣椒和其他物種PLPKs的系統(tǒng)發(fā)育關(guān)系,利用所有可得到的植物物種PLPK序列,例如水稻、擬南芥、番茄、煙草和辣椒預(yù)測(cè)的PLPK序列,使用 Clustal Omega(http://www.ebi.ac.uk/Tools/msa/clustalo/)程序(參數(shù)默認(rèn))進(jìn)行多重序列比對(duì)。各種類型的擬南芥蛋白激酶[42]也包括在系統(tǒng)發(fā)育分析中,用來(lái)區(qū)分Pto和PLPK成員。使用軟件JalView 2.8[43]編輯由高差異區(qū)域或缺失造成不確定比對(duì)的序列,并將其排除在進(jìn)一步分析之外。使用MEGA 6.0軟件(鄰接法)對(duì)全長(zhǎng)PLPK序列進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育分析[44],Bootstrap參數(shù)為1 000。類似地,對(duì)辣椒的PLPK蛋白進(jìn)行了單獨(dú)的系統(tǒng)進(jìn)化分析。在進(jìn)化樹(shù)根是辣椒類受體激酶(PLK)蛋白。由其他植物的PLPK成員的進(jìn)化關(guān)系對(duì)辣椒的PLPK蛋白成員進(jìn)行分類。通過(guò)EuLoc網(wǎng)站對(duì)辣椒PLPK進(jìn)行亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè)[45]。利用SMART網(wǎng)站(http://smart.embl-heidelberg.de/)來(lái)分析PLPK蛋白的結(jié)構(gòu)和功能域。
利用Datamonekey在線服務(wù)器(http://www.datamonkey.org/)來(lái)估計(jì)核酸密碼子的非同義(dN)和同義(dS)替換速率,以及dN與dS的比值(ω),以此確定Pto和PLPK蛋白殘基的絲氨酸/蘇氨酸激酶(STK)結(jié)構(gòu)域選擇壓力的性質(zhì)。為避免假陽(yáng)性,我們進(jìn)行了重組檢測(cè)的遺傳算法(GARD)[46]。在Datamonekey網(wǎng)站上[47]我們使用幾種基于密碼子的最大似然法計(jì)算特定位點(diǎn)的選擇壓力:固定效應(yīng)似然法(FEL),內(nèi)部固定效應(yīng)似然法(IFEL)和單一似然祖先計(jì)算(SLAC)。使用REV核酸替換模型來(lái)研究核酸位點(diǎn)。為確定多樣化選擇的單獨(dú)密碼子,我們進(jìn)行了進(jìn)化的混合效應(yīng)模型(MEME)分析。ω值< 1表示負(fù)(純化)選擇,ω值> 1表示正(多樣化)選擇,ω=1表示位點(diǎn)不受選擇壓力的影響。
利用前人研究的RNA-seq數(shù)據(jù)對(duì)各種辣椒基因型中PLPK基因的表達(dá)模式進(jìn)行分析[48]。使用軟件CLC Genomics Workbench v8.0(CLC Bio,Aarhus, Denmark)(參數(shù)默認(rèn))將測(cè)序片段比對(duì)到辣椒轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫(kù)中(http://cab.pepper.snu.ac.kr)。所得數(shù)據(jù)用每千個(gè)堿基轉(zhuǎn)錄每百萬(wàn)映射讀取的讀長(zhǎng)(RPKM)標(biāo)準(zhǔn)化。RPKM值進(jìn)行l(wèi)og2轉(zhuǎn)換,并使用R中g(shù)gplot包的heatmap.2函數(shù)生成熱圖。
圖1 接種PVX載體的辣椒幼苗用于表達(dá)GFP,AvrPto和AvrPtoI96T
為了確定辣椒中是否發(fā)生了AvrPto的特異性識(shí)別,我們使用PVX衍生載體[49]表達(dá)AvrPto和AvrPtoI96T,體外和體內(nèi)實(shí)驗(yàn)中96位點(diǎn)的取代突變阻止AvrPto和Pto的相互作用,使其對(duì)毒力沒(méi)有影響[17]。在預(yù)實(shí)驗(yàn)中,我們對(duì)包括Perennial、234、Habanero、Rnaky、ECW和CM334等6種不同的辣椒基因型進(jìn)行PVX的易感性篩選(附圖1)。單獨(dú)接種載體時(shí),234、Habanero、ECW和Rnaky基因型的整個(gè)植株出現(xiàn)感病癥狀(附圖1)。隨后生長(zhǎng)的234和ECW基因型植株被單獨(dú)接種PVX載體或者GFP、AvrPto和AvrPtoI96T來(lái)表達(dá)構(gòu)建體(圖1)。病原和PVX同源序列在接種部位 (數(shù)據(jù)未顯示)和上部未接種組織(圖1)都存在,并且接種GFP構(gòu)建體的植株中,其未接種的葉片在紫外線下產(chǎn)生熒光(數(shù)據(jù)未顯示),這些都證明單獨(dú)接種載體(附圖1) 和接種包含GFP的PVX構(gòu)建體 (圖1A中Ⅰ,Ⅱ)都導(dǎo)致了系統(tǒng)癥狀的感染。相比之下,當(dāng)植物接種pPVX::AvrPto時(shí),癥狀被限制在接種葉片下端的葉上,并表現(xiàn)出局部壞死癥狀(圖1A中Ⅲ,Ⅳ)。另外,僅在接種組織中檢測(cè)到PVX抗原、PVX-和AvrPto-同源序列(數(shù)據(jù)未顯示),而在未接種組織沒(méi)有檢測(cè)到(圖1B)。在感病的辣椒植株中,PVX從感染部位散布到整個(gè)植株。同樣,PVX::AvrPto也被認(rèn)為是全身性移動(dòng)。然而,PVX::AvrPto的散布在辣椒中受到限制,只能在感染的下部葉片中檢測(cè)到。這可能是由于AvrPto是通過(guò)Pto同系物定位在接種葉上,從而抑制PVX::AvrPto的全身移動(dòng)。因此,在未接種的上部葉片中PVX和AvrPto都沒(méi)有檢測(cè)到(圖1B,道4)。
根據(jù)局部病變特征性壞死的出現(xiàn),所有對(duì)PVX敏感的辣椒基因型似乎都識(shí)別AvrPto,因此不適用需要不同寄主反應(yīng)的常規(guī)遺傳方法。與Pto不互作的突變激發(fā)子AvrPtoI96T的獲得,讓我們有了一種替代方法。如果辣椒Pto同源序列在體內(nèi)編碼可以識(shí)別AvrPto的功能基因產(chǎn)物,且該識(shí)別對(duì)定位PVX感染是重要的,那么表達(dá)AvrPtoI96T的PVX載體應(yīng)該是系統(tǒng)性擴(kuò)散的。當(dāng)辣椒幼苗接種pPVX::AvrPtoI96T后,在不親和互作中觀測(cè)到在接種的葉片上出現(xiàn)褪綠斑點(diǎn),局部性壞死發(fā)展為相同尺寸的壞死性暈圈。這些癥狀隨后遍布整個(gè)植株(圖1A中Ⅴ, Ⅵ)。由于PVX抗原的存在(數(shù)據(jù)未顯示)和上部未接種葉片的總RNA與PVX-和AvrPto-同源探針的雜交證實(shí)系統(tǒng)感染(圖1B)。
總之,只有兩種辣椒品種表達(dá)AvrPto的PVX載體限于接種組織。其他所有PVX載體全身移動(dòng),這與辣椒中Pto同系物可以在體內(nèi)識(shí)別AvrPto假設(shè)一致。
為鑒定AvrPto可能的互作因子,我們對(duì)栽培種CM334進(jìn)行全基因組分析,尋找辣椒中的番茄Pto同系物。我們用許多植物的Pto同源物和擬南芥的PLK構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)[42],將Pto同系物與含STK結(jié)構(gòu)域的其他類型的蛋白區(qū)分開(kāi)。只有在系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)中包括STK結(jié)構(gòu)域亞域Ⅰ和Ⅺ之間的區(qū)域,包括PLPK在內(nèi)的Pto同系物清晰地形成了擬南芥PLK和其他蛋白激酶的獨(dú)立簇(附圖S2)。根據(jù)序列相似性和系統(tǒng)發(fā)育分析,我們?cè)诶苯坊蚪M中鑒定出25個(gè)Pto類蛋白激酶基因(表1)。
為了確定Pto和PLPK同源物之間的進(jìn)化關(guān)系,并對(duì)辣椒PLPK進(jìn)行分類,我們用預(yù)測(cè)的辣椒PLPK序列和許多植物(比如番茄、煙草、馬鈴薯、擬南芥和水稻)的全長(zhǎng)Pto和PLPK同源物構(gòu)建進(jìn)化樹(shù)(圖2)。系統(tǒng)進(jìn)化分析顯示在Pto同系物之間,Pto和PLPK存在兩個(gè)不同的簇(圖2)。茄科植物的Pto進(jìn)化枝不同,并且在這個(gè)進(jìn)化枝中番茄Pto同源物聚在一起。然而,在辣椒中沒(méi)有發(fā)現(xiàn)Pto進(jìn)化枝成員,這表明Pto的起源發(fā)生在茄科亞系的早期進(jìn)化階段。辣椒PLPK進(jìn)一步分成八個(gè)亞族(PLPKⅠ至PLPKⅧ)。在PLPKⅠ和PLPKⅣ亞族中,許多雙子葉植物的PLPK聚集在一起,而PLPKⅡ、PLPK Ⅲ、PLPKⅤ、PLPKⅥ 和PLPKⅦ亞族中,雙子葉植物和單子葉植物PLPK成員都存在。然而,在PLPKⅡ和PLPKⅢ亞族中,單子葉和雙子葉植物形成了不同的進(jìn)化枝。除了在茄科中比較特別的PLPKⅧ亞族,其他所有的PLPK亞族中都觀測(cè)到了至少一個(gè)擬南芥的PLPK成員??傊到y(tǒng)進(jìn)化分析表明辣椒PLPK基因簇模式與其他雙子葉植物相似。此外,在進(jìn)化樹(shù)中的雙子葉植物成員中間發(fā)現(xiàn)來(lái)自水稻的PLPK成員,這意味著PLPK蛋白家族是在單子葉和雙子葉植物的共同祖先中進(jìn)行進(jìn)化。
我們單獨(dú)構(gòu)建了辣椒PLPK蛋白系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù),來(lái)確定辣椒PLPK蛋白之間的系統(tǒng)進(jìn)化關(guān)系。從這個(gè)進(jìn)化分析來(lái)看,辣椒PLPK蛋白可以分為 PLPKⅠ和 PLPK Ⅷ 8個(gè)亞族(圖3)。亞族PLPKⅠ和PLPKⅥ包括2個(gè)成員,PLPKⅢ和PLPKⅤ包括3個(gè)成員,PLPKⅡ、PLPKⅣ、PLPKⅦ和PLPKⅧ分別包括1、3、6、5個(gè)成員。
為了確定辣椒和番茄Pto同源物的進(jìn)化關(guān)系,我們生成了一個(gè)系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)(圖F3),這表明辣椒中不存在類Pto成員。除了PLPKⅥ族在番茄中沒(méi)有存在外,其他所有的PLPK同源物在辣椒和番茄中都顯示出相同的聚類模式。辣椒和番茄的PLPKⅠ、 PLPKⅡ和PLPKⅣ族成員數(shù)量是一樣的,分別是1、2和3個(gè)。番茄和辣椒的PLPKⅦ族中分別鑒定到5和6個(gè)成員。在PLPKⅧ族中,在辣椒中發(fā)現(xiàn)了5個(gè)成員,而在番茄中只有1個(gè)成員。這些觀測(cè)結(jié)果表明,茄科植物中存在Pto和PLPK亞系擴(kuò)大和分化。
表1 辣椒中類Pto基因和其他與Pto途徑相關(guān)基因
我們根據(jù)基因在染色體上的順序?qū)⒗苯稰LPK基因命名為PLPK1到PLPK25。表1中列出了辣椒基因名稱和其ID的詳細(xì)信息。25個(gè)PLPK基因中有7個(gè)未被定位到染色體上。其余的18個(gè)PLPK基因定位到6條染色體上。Chr1、Chr4、Chr5、Chr8和Chr12上的染色體數(shù)差別很大,Chr2上最多有7個(gè),Chr3和Chr6各有3個(gè)PLPK基因。Chr9和Chr10分別觀測(cè)到了2個(gè)PLPK基因,然而Chr7只有1個(gè)基因(附圖S4A)。基于連鎖圖譜分析,在未分配到任何染色體的7個(gè)PLPK基因中,至少有一個(gè)PLPK基因能分配到Chr12,并且2個(gè)PLPK基因(HPto-a和HPto-d)與Prf同系物Prf1.2(HPrf-c)和Prf1.3(HPrf-b)可以定位到Chr11(附圖S4B)。HPto-a和HPrf-b(Prf1.3)被定位在番茄Pto進(jìn)化枝的對(duì)應(yīng)位置,這表明HPto-a是番茄Pto的直系同源物。然而,與嵌入Pto簇的番茄Prf相比,HPrf-b與HPto-a距離約2 cM。
圖2 番茄Pto旁系同源基因與PLPK基因的系統(tǒng)進(jìn)化分析
在 4個(gè) Prf同 源 物 中,Prf1.1位 于 Chr4,Prf1.2和Prf1.3位于Chr11,Prf1.4不與任何染色體相關(guān)。在4個(gè)Pti1同源基因中,Pti1.1、Pti1.2(HPti1-a)和Pti1.3分別位于Chr3、Chr5和Chr12,基于連鎖圖,Pti1.4(Hpti1-b)可能位于Chr5(附圖S4B)。在辣椒中檢測(cè)到的2個(gè)Pti1同系物HPti1-a和Hpti1-b與番茄Chr5具有共線性,且Pti4、Pti5和Pti6.1分別位于Chr5、Chr2和Chr6。Pti6.2不位于任何染色體。
外顯子-內(nèi)含子結(jié)構(gòu)分析表明,辣椒大多數(shù)PLPK基因的內(nèi)含子較少,少數(shù)例外;PLPK3、PLPK5、PLPK6、PLPK7和PLPK18顯示有 1個(gè)內(nèi)含子,PLPK4顯示有2個(gè)內(nèi)含子(圖3B)。相反,辣椒Prf基因顯示有3到6個(gè)不同長(zhǎng)度和位置的內(nèi)含子(附圖S5)。同樣,Pti基因也被發(fā)現(xiàn)是高度分散的,并且顯示具有0到7個(gè)內(nèi)含子的復(fù)雜結(jié)構(gòu) (附圖 S5)。
使用Clustal Omega程序?qū)?5個(gè)辣椒PLPK蛋白的預(yù)測(cè)氨基酸序列和番茄Pto的相應(yīng)區(qū)域進(jìn)行多序列比對(duì)。辣椒PLPK序列預(yù)測(cè)長(zhǎng)度從683到898個(gè)氨基酸不等。辣椒的PLPK蛋白的預(yù)測(cè)氨基酸序列分析顯示,其與番茄Pto有54%~71%的序列同源性。在辣椒PLPK進(jìn)化組中,氨基酸序列的同源性變化范圍從35%~96%。所有辣椒PLPK蛋白都顯示出約275個(gè)氨基酸的高度保守的STK結(jié)構(gòu)域(圖4)。8個(gè)亞族都含有在大多數(shù)植物的STK結(jié)構(gòu)域亞域Ⅰ至Ⅺ中發(fā)現(xiàn)的保守氨基酸殘基。氨基酸序列比對(duì)表明高度保守的Pto同源物PLPK的幾個(gè)顯著特征,如STK結(jié)構(gòu)域,位于亞域Ⅶ和Ⅷ之間的激活域,以及負(fù)責(zé)與AvrPto效應(yīng)器特異性結(jié)合的內(nèi)部P+1環(huán)結(jié)合位點(diǎn)[50]。STK結(jié)構(gòu)域也包含幾個(gè)分散的可變氨基酸位點(diǎn)。另外,Pto激活域的4個(gè)自磷酸化位點(diǎn)(Ser或Thr)中的3個(gè)保留在所有辣椒的相應(yīng)區(qū)域中[51]。據(jù)報(bào)道,高度保守的Val55和His94的突變破壞了酵母中的Pto-AvrPto的相互作用,并抑制Pto介導(dǎo)的抗性[52]。
圖3 辣椒PLPK蛋白系統(tǒng)進(jìn)化分析
我們用SMART程序來(lái)確認(rèn)PLPK的結(jié)構(gòu)域,發(fā)現(xiàn)大部分PLPK蛋白包含4個(gè)功能域:信號(hào)肽區(qū)、麥角蛋白樣區(qū)、跨膜區(qū)和STK結(jié)構(gòu)域(圖3C)。相比之下,番茄Pto只包含STK結(jié)構(gòu)域。PLPKⅤ成員PLPK18在其C端具有額外的激酶結(jié)構(gòu)域。PLPKⅧ成員PLPK7在其N端有2個(gè)抗病性的stress-antifung結(jié)構(gòu)域。另外,幾種辣椒PLPK蛋白區(qū)域顯示出低復(fù)雜度區(qū)域(low complexity regions)。蛋白質(zhì)亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè)工具EuLoc[45]表明,所有辣椒的PLPK蛋白質(zhì)都預(yù)測(cè)定位到質(zhì)膜上。所有的Pti1蛋白也都預(yù)測(cè)定位在質(zhì)膜上,而Pti4、Pti5和Pti6都預(yù)測(cè)定位于細(xì)胞核,Prfs被預(yù)測(cè)定位于細(xì)胞質(zhì)。
為鑒定辣椒的PLPK激活域中保守的Pto自磷酸化位點(diǎn)和其他關(guān)鍵殘基,我們用辣椒和番茄的Pto序列進(jìn)行了多重序列比對(duì)分析(圖4)。 5個(gè)Pto自磷酸化位點(diǎn)中的3個(gè),包括Thr195、Ser198和Thr199[51]在辣椒PLPKs中高度保守,有少數(shù)例外。Thr195被PLPK24和PLPK25中的Gly取代,Ser198被 PLPK10和 PLPK13中 的 Val、PLPK24和PLPK25序列中的Thr取代。 Ser198是AvrPto-Pto介導(dǎo)的超敏反應(yīng)所必需的,并且在辣椒PLPKs中高度保守。Pto自磷酸化位點(diǎn)Thr190在大多數(shù)辣椒PLPK中被Pro取代。在一些PLPK中,例如PLPK3、PLPK4、PLPK5 和 PLPK7,Ser被 Thr取代,產(chǎn)生了另一個(gè)磷酸化位點(diǎn)。在PLPK22中,Thr190被Leu取代。另外兩個(gè)Pto磷酸化殘基Thr204和Tyr207對(duì)于Pto功能至關(guān)重要,但不是對(duì)體外自體磷酸化[14,53]。這兩個(gè)Pto磷酸化殘基高度保守;然而,在所有辣椒PLPK中Thr204被Ser取代。
我們對(duì)選擇壓力的變化進(jìn)行了分析,檢驗(yàn)類Pto和PLPK基因在基因倍增之后是否經(jīng)歷了適應(yīng)性進(jìn)化。通過(guò)使用Datamonkey網(wǎng)站中的各種模型多序列比對(duì),我們基于密碼子來(lái)檢測(cè)選擇壓力[47]。我們還使用GARD分析比對(duì)以排除重組斷裂點(diǎn),分析顯示沒(méi)有任何重組事件的證據(jù)。
為鑒定單個(gè)密碼子過(guò)去的選擇,我們使用基于密碼子的似然方法(FEL、IFEL和SLAC)計(jì)算每個(gè)密碼子位點(diǎn)上的非同義(dN)和同義(dS)替換率以及dN/dS(ω)值。有趣的是,這些方法并沒(méi)有顯示在任何位點(diǎn)正向選擇的證據(jù)(表2和附圖S6)。大部分位點(diǎn)都顯示為負(fù)(凈化)選擇,而位點(diǎn)13和22 (取決于使用哪種模式)是以中性速率進(jìn)化。有趣的是,進(jìn)化混合效應(yīng)模型(MEME)確定了16個(gè)氨基酸位點(diǎn)(附圖S6)是處于偶發(fā)性正選擇(0.1顯著水平)。其中,位于STK結(jié)構(gòu)域的N末端有兩個(gè)氨基酸位點(diǎn),Ⅱ、Ⅲ、Ⅵ-b和Ⅶ亞結(jié)構(gòu)域各有一個(gè)氨基酸位點(diǎn),Ⅷ、Ⅸ和Ⅹ亞基有兩個(gè)位點(diǎn),在Ⅺ亞基有3個(gè)位點(diǎn)。這些結(jié)果表明,除純化作用之外,正向選擇在植物Pto同源物的進(jìn)化過(guò)程中發(fā)揮了重要作用,并在適應(yīng)性抗病性的進(jìn)化中也發(fā)揮了重要作用。
Pto通路基因的表達(dá)譜是用來(lái)自5種不同辣椒種質(zhì)的RNA-seq數(shù)據(jù)生成的[48]。為分析不同材料間辣椒PLPK基因的表達(dá)圖譜,我們根據(jù)log2轉(zhuǎn)化的RPKM值生成熱圖和層次聚類(圖5)。根據(jù)表達(dá)模式,我們將辣椒PLPK基因分為3組:C1、C2和C3(圖5)。在C1組中,相對(duì)高表達(dá)的PLPK1,PLPK12-PLPK13和PLPK16-PLPK20聚集在一起。有趣的是,除了Ⅷ亞族以外,在C1中觀測(cè)到每個(gè)辣椒至少一個(gè)PLPK亞族的基因。所有的亞族Ⅷ成員(PLPK3-PLPK7)和分別屬于亞族Ⅴ和Ⅶ的PLPK22、PLPK23都聚類到C2組,并且都是溫和水平表達(dá)。辣椒PLPK基因PLPK2、PLPK8 -PLPK11和PLPK14 - PLPK15都聚類到C3組,并以低水平表達(dá)。有趣的是,除了PLPKⅡ和PLPKⅧ亞族,每個(gè)亞族中至少有一個(gè)基因在C3組中。包括Pti和Prf的許多Pto通路基因也表現(xiàn)出中等到低的表達(dá)水平。一般來(lái)說(shuō),植物R基因在感染或未感染的植物中表現(xiàn)出低水平的組成型表達(dá),這與其在病原體中識(shí)別一般規(guī)律一致[54-55]。總之,5種辣 椒 種 質(zhì)(C.annuum'PI201234','YCM334',C.chinense'Aji Dulce','PI152225'和C.chacoense'PI260429')基因型中Pto通路基因的表達(dá)譜非常相似(圖5),這表明辣椒物種中Pto信號(hào)基因調(diào)控機(jī)制是高度保守的。
在番茄中,Pto位點(diǎn)由5個(gè)存在于5號(hào)染色體上的Pto同源物組成,這些Pto同源物可能是通過(guò)連續(xù)的基因復(fù)制和缺失進(jìn)化的[10,34]。Pto位點(diǎn)及其在AvrPto識(shí)別特異性中的基因?qū)蚰J皆谇芽莆锓N是保守的[19,54]。然而,Pto的識(shí)別在許多茄科物種(包括辣椒和馬鈴薯)中是否是具有特異性還是未知的。盡管許多植物物種中的AvrPto已經(jīng)被鑒定了,但其識(shí)別是否由類Pto激酶介導(dǎo)尚不清楚。另外,除了番茄和煙草之外,在其他植物物種中沒(méi)有鑒定出識(shí)別AvrPto的功能性類Pto蛋白。辣椒PVX載體系統(tǒng)的結(jié)果為AvrPto的體內(nèi)識(shí)別提供了證據(jù)。當(dāng)然,我們不能排除辣椒中識(shí)別AvrPto的是類Pto基因或者其他PLKs基因的可能性,除非使用反向遺傳方法來(lái)驗(yàn)證該結(jié)果。Pto通過(guò)與NBLRR和Prf相互作用介導(dǎo)番茄中AvrPto/AvrPtoB的識(shí)別[56]。然而,AvrPto/AvrPtoB的靶點(diǎn)是各種RLK[57-60]的激酶結(jié)構(gòu)域,而不是Pto的STK結(jié)構(gòu)域。Pto被Rrf當(dāng)作分子誘餌來(lái)與病原效應(yīng)蛋白相互作用[61-62]。AvrPto/AvrPtoB效應(yīng)物與幾種植物分子互作,如擬南芥GTPase RabE[63-64]和幾種PLK激酶結(jié)構(gòu)域,如 CERK1,BAK1,EFR1 和 FLS2[57-60,65]。
圖4 STK結(jié)構(gòu)域的多重序列比對(duì)
為了鑒定辣椒中可能與AvrPto相互作用的番茄Pto同系物,我們進(jìn)行了全基因組分析,共鑒定了25個(gè)全長(zhǎng)的類Pto(PLPK)基因。大多數(shù)R基因是多基因家庭的成員,并且在植物基因組中以簇的形式出現(xiàn)?;蛑貜?fù)和多樣化被認(rèn)為是R基因簇進(jìn)化擴(kuò)張的原因[5]。一些植物物種的Pto同系物的進(jìn)化分析鑒定出了Pto同源物的幾個(gè)亞族[27,30,32]。在趣的是,辣椒中沒(méi)有發(fā)現(xiàn)Pto進(jìn)化枝成員。我們利用3個(gè)不同的辣椒基因組數(shù)據(jù)庫(kù)“CM334”、“Chiltepin”和“Zunla-1”(http://cab.pepper.snu.ac.kr/) 和NCBI中的辣椒表達(dá)序列標(biāo)簽(ESTs)證實(shí)了辣椒基因組中沒(méi)有番茄Pto同系物(Pto 進(jìn)化枝)。Wan等人[66]在使用針對(duì)Pto基因保守區(qū)域設(shè)計(jì)的引物時(shí),未在辣椒中擴(kuò)增出真正的Pto同系物。此外,在番茄中進(jìn)行R基因定位實(shí)驗(yàn)沒(méi)有檢測(cè)出番茄類Pto的同源物[67]。除Pto進(jìn)化枝外,辣椒和其他植物的茄科PLPK蛋白在進(jìn)化樹(shù)枝干中均勻分布,這表明PLPK蛋白是先于單子葉和雙子葉分化由共同的祖先基因產(chǎn)生。辣椒中番茄Pto同源物的缺失進(jìn)一步表明茄科的分支特異性擴(kuò)大了Pto進(jìn)化枝。這一觀察結(jié)果也表明,Pto基因在病原識(shí)別和抗病中的作用可能是茄科早期進(jìn)化過(guò)程中產(chǎn)生的[27,35],或者是從辣椒中喪失的。
表2 多物種類Pto基因STK結(jié)構(gòu)域正選擇分析
圖5 5個(gè)不同辣椒品種的PLPK基因表達(dá)譜
可能導(dǎo)致辣椒和一些番茄基因型中Pto進(jìn)化枝缺失的潛在機(jī)制尚不清楚[34-35]。一些栽培番茄(S.lycopersicum)品種表現(xiàn)出對(duì)AvrPto特異的,從番茄(S.pimpinellifolium)引入的Pto介導(dǎo)的Pst抗性[10,36]。有2個(gè)可能的原因來(lái)解釋Pto特異識(shí)別在一些番茄品種中保留,并在一些親緣關(guān)系很近的物種中喪失的現(xiàn)象。第一,在野生番茄(S.lycopersicum)的馴化過(guò)程中,可能發(fā)生了強(qiáng)烈的遺傳瓶頸效應(yīng),并導(dǎo)致缺乏Pto基因的番茄品系的選擇[35]。第二,在缺乏具有AvrPto和Pst的基因的情況下,與Pto位點(diǎn)相關(guān)的適合度代價(jià)可能導(dǎo)致對(duì)含有Pto基因的番茄品系的選擇[35]。雖然Pto基因位點(diǎn)的有毒效應(yīng)可能難以通過(guò)實(shí)驗(yàn)確定[35],但是沒(méi)有證據(jù)顯示在含有Pto位點(diǎn)和不含有Pto位點(diǎn)的番茄的近等基因與Pst抗性有相關(guān)的適合度代價(jià)[35,68]。
盡管對(duì)番茄進(jìn)行了廣泛的研究,但其他茄科植物中Pto同系物的功能特異性還不太清楚。Pto同源物與番茄Pto有78%~91%的核苷酸相似性,并且其具有功能性蛋白激酶活性,但都不能與AvrPto和AvrPtoB效應(yīng)子互作[12,69]。Pto基因家族的基因復(fù)制以及隨后的多樣化可能導(dǎo)致了可變的特異識(shí)別性[70]。Pto和Pto同系物僅在幾個(gè)氨基酸殘基上變化,這可能引起蛋白質(zhì)構(gòu)象變化,導(dǎo)致與其他蛋白質(zhì)物理性相互作用能力的改變[36]。Fen基因是5個(gè)Pto旁系同源物之一,與Pto基因有87%的相似度,并參與共同的導(dǎo)致超敏反應(yīng)的信號(hào)事件。但是,它是由一個(gè)不同的信號(hào)激活的[70-71]。相反,LhirPto顯示出與Pto基因97%的相似度,只有17個(gè)氨基酸的不同使其與Pto區(qū)分開(kāi)來(lái),但是LhirPto不能取代Pto的抗病性[35]。這些觀察結(jié)果進(jìn)一步表明在Pto-AvrPto的識(shí)別特異性上有選擇壓力[72]。
多樣化選擇和適應(yīng)性選擇被假定在R基因的進(jìn)化中起關(guān)鍵作用。適應(yīng)性選擇被認(rèn)為是推動(dòng)寄主-病原體識(shí)別功能基因區(qū)進(jìn)化的重要力量[5,73]。有趣的是,純化選擇似乎是對(duì)含有STK結(jié)構(gòu)域以保持其祖先狀態(tài)的基因的主要選擇性壓力[32]。然而前人的研究認(rèn)為是偶發(fā)性正選擇,這表明在進(jìn)化過(guò)程中選擇壓力可能發(fā)生了變化。有報(bào)道稱,適應(yīng)性進(jìn)化常常涉及在某個(gè)基因的少數(shù)幾個(gè)位點(diǎn)上偶發(fā)的突變,并可能只影響系統(tǒng)進(jìn)化的一部分基因[74]。與此一致的是,MEME分析顯示一些密碼子屬于偶發(fā)性正選擇。Pto的激活結(jié)構(gòu)域(氨基酸182和211之間的區(qū)域),在AvrPto識(shí)別中起重要作用[27]。有趣的是,我們結(jié)果顯示Ser198和Ile208這兩個(gè)位置都經(jīng)歷了片段正選擇,這意味著它們?cè)谶m應(yīng)性進(jìn)化中發(fā)揮了重要作用。最近的文獻(xiàn)顯示,已被用作Pto/AvrPto反應(yīng)的陰性對(duì)照的本氏煙草(N.benthamiana)也可以用基因?qū)虻姆绞阶R(shí)別AvrPto,并且這種識(shí)別依賴于Prf[19]。AvrPto的識(shí)別使植物產(chǎn)生抗性也在遠(yuǎn)距離的分類群中觀察到,例如在大豆中[28]。這些觀察結(jié)果進(jìn)一步表明,除了進(jìn)化和平衡選擇外[72],適應(yīng)性選擇也可能影響Pto位點(diǎn)的進(jìn)化。
總之,在不同辣椒基因型中觀察到來(lái)自于Pst的AvrPto效應(yīng)子的識(shí)別相關(guān)的非寄主應(yīng)答。AvrPto的識(shí)別可能是由Pto同源物或其他RLK蛋白介導(dǎo)的。我們通過(guò)全基因組分析鑒定了25個(gè)辣椒PLPK基因,發(fā)現(xiàn)它們分為8個(gè)系統(tǒng)進(jìn)化亞族。Pto進(jìn)化枝代表茄科植物最近起源的基因家族,但PLPK基因代表了古代共同起源的分歧基因。在辣椒基因組中沒(méi)有番茄Pto旁系同源物,這表明Pto基因家族經(jīng)歷了對(duì)Pst抗性的不同適應(yīng)性進(jìn)化過(guò)程。辣椒PLPK基因的特點(diǎn)是存在高度保守的STK結(jié)構(gòu)域。PLPK基因中與碳水化合物結(jié)合的麥芽糖結(jié)合蛋白類似結(jié)構(gòu)域的存在暗示糖代謝與疾病抗性信號(hào)傳導(dǎo)通路可能具有某種聯(lián)系[75]。在全部5種的辣椒基因型中觀察到Pto通路基因的類似表達(dá)譜,這些觀察結(jié)果表明具有高度保守功能域的PLPK基因與辣椒基因型中的Pto信號(hào)傳導(dǎo)通路有共同的高度保守的基因調(diào)控機(jī)制。對(duì)于Pto和PLPK,以及它們與AvrPto或其他效應(yīng)物的相互作用的進(jìn)一步研究將對(duì)植物-病原體共同進(jìn)化過(guò)程提供更多思路,對(duì)于辣椒PLPK基因的全基因組分析為進(jìn)一步功能研究提供了重要的基因資源,也為揭示辣椒非寄主抗病性提供了分子基礎(chǔ)。
[1] Chisholm S T, Coaker G, Day B, Staskawicz B J. Hostmicrobe interactions: shaping the evolution of the plant immune response[J]. Cell, 2006, 124(4):803–814
[2] Cui H, Tsuda K, Parker J E. Effector-triggered immunity:from pathogen perception to robust defense[J]. Annu Rev Plant Biol., 2015, 66:487– 511
[3] Martin G B. Functional analysis of plant disease resistance genes and their downstream effectors[J]. Curr Opin Plant Biol., 1999, 2(4):273–279
[4] Pan Q, Wendel J, Fluhr R. Divergent evolution of plant NBS-LRR resistance gene homologues in dicot and cereal genomes[J]. J. Mol. Evol., 2000, 50(3):203–213
[5] Richter T E, Ronald P C. The evolution of disease resistance genes[J]. Plant Mol Biol, 2000, 42:195–204
[6] White F F, Yang B, Johnson L B. Prospects for understanding avirulence gene function[J]. Curr Opin Plant Biol., 2000, 3(4):291–298
[7] Gururani M A, Venkatesh J, Upadhyaya C P, Nookaraju A, Pandey S K, Park S W. Plant disease resistance genes:current status and future directions[J]. Physiological and Molecular Plant Pathology, 2012, 78:51–65
[8] Belkhadir Y, Subramaniam R, Dangl J L. Plant disease resistance protein signaling: NBS–LRR proteins and their partners[J]. Curr Opin Plant Biol., 2004, 7(4):391–399
[9] Hammond-Kosack K E, Parker J E. Deciphering plant–pathogen communication: fresh perspectives for molecular resistance breeding[J]. Curr Opin Biotechnol, 2003,14(2):177–193
[10] Martin G B, Brommonschenkel S, Chunwongse J, Frary A, Ganal M, Spivey R, Spivey R, Wu T, Earle E D,Tanksley S D. Map-based cloning of a protein kinase gene conferring disease resistance in tomato[J]. Science, 1993,262: 1432–1436
[11] Collmer A, Badel J L, Charkowski A O, Deng W L, Fouts D E, Ramos A R, et al.Pseudomonas syringaeHrp type Ⅲsecretion system and effector proteins[J]. Proc. Natl. Acad.Sci. USA, 2000, 97(16):8770–8777
[12] Kim Y J, Lin N C, Martin G B. Two distinctPseudomonaseffector proteins interact with the Pto kinase and activate plant immunity[J]. Cell, 2002, 109(5):589–598
[13] Lin N C, Martin G B. Pto-and Prf-mediated recognition of AvrPto and AvrPtoB restricts the ability of diversePseudomonas syringaepathovars to infect tomato[J]. Mol Plant Microbe Interact, 2007, 20(7):806–815
[14] Pedley K F, Martin G B. Molecular basis of Pto-mediated resistance to bacterial speck disease in tomato[J]. Annu Rev Phytopathol, 2003, 41(1):215–243
[15] Mathieu J, Schwizer S, Martin G B. Pto kinase binds two domains of AvrPtoB and its proximity to the effector E3 ligase determines if it evades degradation and activates plant immunity[J]. PLoS Pathog, 2014, 10(7):e1004227
[16] Chang J H, Tobias C M, Staskawicz B J, Michelmore R W. Functional studies of the bacterial avirulence protein AvrPto by mutational analysis[J]. Mol Plant Microbe Interact, 2001, 14(4):451–459
[17] Shan L, Thara V K, Martin G B, Zhou J M, Tang X. ThePseudomonasAvrPto protein is differentially recognized by tomato and tobacco and is localized to the plant plasma membrane[J]. Plant Cell, 2000, 12 (12):2323–2337
[18] Abramovitch R B, Kim Y J, Chen S, Dickman M B, Martin G B.Pseudomonastype III effector AvrPtoB induces plant disease susceptibility by inhibition of host programmed cell death[J]. EMBO J., 2003, 22(1):60–69
[19] Kang L, Tang X, Mysore K S. Pseudomonas typeⅢ effector AvrPto suppresses the programmed cell death induced by two nonhost pathogens inNicotiana benthamianaand tomato[J]. Mol Plant Microbe Interact,2004, 17(12):1328–1336
[20] Gu Y Q, Wildermuth M C, Chakravarthy S, Loh Y T, Yang C, He X, Han Y, Martin G B. Tomato transcription factorsPti4, Pti5, andPti6activate defense responses when expressed inArabidopsis[J]. Plant Cell, 2002, 14:817–831
[21] He P, Warren R F, Zhao T, Shan L, Zhu L, Tang X, Zhou J M. Overexpression ofPti5in tomato potentiates pathogeninduced defense gene expression and enhances disease resistance toPseudomonas syringaepv. tomato[J]. Mol Plant Microbe Interact, 2001, 14(12):1453–1460
[22] van der Hoorn R A, Kamoun S. From guard to decoy: a new model for perception of plant pathogen effectors[J].Plant Cell, 2008; 20(8):2009–2017
[23] Cui H, Xiang T, Zhou J M. Plant immunity: a lesson from pathogenic bacterial effector proteins[J]. Cell Microbiol,2009, 11(10):1453–1461
[24] Balmuth A, Rathjen J P. Genetic and molecular requirements for function of the Pto/Prf effector recognition complex in tomato andNicotiana benthamiana[J]. Plant J.,2007, 51(6):978–990
[25] Oh C S, Martin G B. Effector-triggered immunity mediated by the Pto kinase[J]. Trends Plant Sci., 2011, 16(3):132–140
[26] Vallad G, Rivkin M, Vallejos C, McClean P. Cloning and homology modelling of a Pto-like protein kinase family of common bean (Phaseolus vulgarisL.) [J]. Theor Appl Genet., 2001, 103(6–7):1046–1058
[27] Vleeshouwers V G, Martens A, van Dooijeweert W, Colon L T, Govers F, Kamoun S. Ancient diversification of the Pto kinase family preceded speciation inSolanum[J]. Mol Plant Microbe Interact, 2001, 14(8):996–1005
[28] Ronald P C, Salmeron J M, Carland F M, Staskawicz B J. The cloned avirulence gene avrPto induces disease resistance in tomato cultivars containing thePtoresistance gene[J]. J. Bacteriol, 1992, 174(5):1604–1611
[29] Di Gaspero G, Cipriani G. Nucleotide binding site/leucinerich repeats, Pto-like and receptor-like kinases related to disease resistance in grapevine[J]. Mol Genet Genomics,2003, 269 (5):612–623
[30] Wan H, Qian C, Malik A A, Zhao Z, Chen J. Isolation,phylogeny and evolutionary analysis ofPto-typedisease resistance gene analogues from aCucumis hystrixintrogression line of cucumber (C. sativus) [J]. Functional Plant Biology. 2010; 37(6):513–523.
[31] Peraza-Echeverria S, James-Kay A, Canto-Canché B,Castillo-Castro E. Structural and phylogenetic analysis of Pto-type disease resistance gene candidates in banana[J].Mol Genet Genomics, 2007, 278(4):443–453
[32] Zamora M M, Castagnaro A P, Ricci J D. Genetic diversity of Pto-like serine/threonine kinase disease resistance genes in cultivated and wild strawberries[J]. J. Mol. Evol., 2008,67(2):211– 221
[33] Deng Z, Gmitter F Jr. Cloning and characterization of receptor kinase class disease resistance gene candidates inCitrus[J]. Theor Appl Genet, 2003, 108(1):53–61
[34] Michelmore R W, Meyers B C. Clusters of resistance genes in plants evolve by divergent selection and a birth-anddeath process[J]. Genome Res., 1998, 8(11):1113–1130
[35] Riely B K, Martin G B. Ancient origin of pathogen recognition specificity conferred by the tomato disease resistance genePto[J]. PNAS, 2001, 98(4):2059–2064
[36] Jia Y, Loh Y T, Zhou J, Martin G B. Alleles ofPtoandFenoccur in bacterial speck-susceptible and fenthioninsensitive tomato cultivars and encode active protein kinases[J]. Plant Cell, 1997, 9(1):61–73
[37] Baulcombe D C, Chapman S, Cruz S. Jellyfish green fluorescent protein as a reporter for virus infections[J].Plant J., 1995, 7(6):1045–1053
[38] Tobias C M, Oldroyd G E, Chang J H, Staskawicz B J.Plants expressing thePtodisease resistance gene confer resistance to recombinant PVX containing the avirulence geneAvrPto[J]. Plant J., 1999, 17(1):41–50
[39] Grube R C, Zhang Y, Murphy J F, Loaiza-Figueroa F,Lackney V K, Provvidenti R, Jahn M K. New source of resistance toCucumber mosaic virusinCapsicum frutescens[J]. Plant Dis., 2000, 84(8):885–891
[40] Livingstone K D, Lackney V K, Blauth J R, Van Wijk R, Jahn M K. Genome mapping inCapsicum and the evolution of genome structure in theSolanaceae[J].Genetics, 1999, 152(3):1183–1202
[41] Voorrips R E. MapChart: software for the graphical presentation of linkage maps and QTLs[J]. J. Hered., 2002,93(1):77–78
[42] Hardie D G. Plant protein serine/threonine kinases:classification and functions[J]. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol, 1999, 50(1):97–131
[43] Waterhouse A M, Procter J B, Martin D M, Clamp M,Barton G J. Jalview Version 2-a multiple sequence alignment editor and analysis workbench[J].Bioinformatics, 2009, 25(9):1189–1191
[44] Tamura K, Peterson D, Peterson N, Stecher G, Nei M,Kumar S. MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance,and maximum parsimony methods[J]. Mol Biol Evol.,2011, 28(10):2731–2739
[45] Chang T H, Wu L C, Lee T Y, Chen S P, Huang H D,Horng J T. EuLoc: a web-server for accurately predict protein subcellular localization in eukaryotes by incorporating various features of sequence segments into the general form of Chou’s PseAAC[J]. J. Comput Aided Mol Des., 2013, 27(1):91–103
[46] Pond S L K, Posada D, Gravenor M B, Woelk C H, Frost S D. Automated phylogenetic detection of recombination using a genetic algorithm[J]. Mol Biol Evol., 2006,23(10):1891–1901
[47] Delport W, Poon A F, Frost S D, Pond S L K.Datamonkey 2010: a suite of phylogenetic analysis tools for evolutionary biology[J]. Bioinformatics, 2010,26(19):2455–2457
[48] Kang J H, Yang H B, Jeong H S, Choe P, Kwon J K, Kang B C. Single nucleotide polymorphism marker discovery from transcriptome sequencing for marker-assisted backcrossing inCapsicum[J]. Korean J Hortic Sci Technol,2014, 32(4):535–543
[49] Gilardi P, Garcia-Luque I, Serra M T. Pepper mild mottle virus coat protein alone can elicit theCapsicumspp. L3gene-mediated resistance[J]. Mol Plant-Microbe Interact,1998, 11(12):1253–1257
[50] Frederick R D, Thilmony R L, Sessa G, Martin G B.Recognition specificity for the bacterial avirulence protein AvrPto is determined by Thr-204 in the activation loop of the tomato Pto kinase[J]. Mol. Cell, 1998; 2(2):241–245
[51] Sessa G, D'Ascenzo M, Martin G B. Thr38 and Ser198 are Pto autophosphorylation sites required for the AvrPto–Pto‐mediated hypersensitive response[J]. EMBO J., 2000,19(10):2257–2269
[52] Scofield S R, Tobias C M, Rathjen J P, Chang J H. Molecular basis of gene-for-gene specificity in bacterial speck disease of tomato[J]. Science, 1996,274(5295):2063–2065
[53] Rathjen J P, Chang J H, Staskawicz B J, Michelmore R W. Constitutively active Pto induces a Prf‐dependent hypersensitive response in the absence of avrPto[J].EMBO J., 1999, 18(12):3232–3240
[54] Hulbert S H, Webb C A, Smith S M, Sun Q. Resistance gene complexes: evolution and utilization[J]. Annual review of phytopathology. 2001; 39(1):285–312
[55] Yuan M, Chu Z, Li X, Xu C, Wang S. Pathogen-induced expressional loss of function is the key factor in race-specific bacterial resistance conferred by a recessiveRgene xa13 in rice[J]. Plant Cell Physiol, 2009, 50(5):947–955
[56] Gutierrez J R, Balmuth A L, Ntoukakis V, Mucyn T S,Gimenez‐Ibanez S, Jones A M, Rathjen J P. Prf immune complexes of tomato are oligomeric and contain multiple Pto-like kinases that diversify effector recognition[J]. Plant J., 2010, 61(3):507–518
[57] Gimenez-Ibanez S, Hann D R, Ntoukakis V, Petutschnig E, Lipka V, Rathjen J P. AvrPtoB targets the LysM receptor kinase CERK1 to promote bacterial virulence on plants[J].Curr Biol., 2009, 19 (5):423–429
[58] G?hre V, Robatzek S. Breaking the barriers: microbial effector molecules subvert plant immunity[J]. Annu Rev Phytopathol, 2008, 46:189–215
[59] Shan L, He P, Li J, Heese A, Peck S C, Nürnberger T, Martin G B, Sheen J. Bacterial effectors target the common signaling partner BAK1 to disrupt multiple MAMP receptor-signaling complexes and impede plant immunity[J]. Cell Host Microbe, 2008, 4(1):17–27
[60] Xiang T, Zong N, Zou Y, Wu Y, Zhang J, Xing W, Li Y,Tang X, Zhu L, Chai J, Zhou J M.Pseudomonas syringaeeffector AvrPto blocks innate immunity by targeting receptor kinases[J]. Curr Biol, 2008; 18(1):74–80
[61] Collier S M, Moffett P. NB-LRRs work a “bait and switch”on pathogens[J]. Trends Plant Sci., 2009, 14(10):521–529
[62] Saur I M-L, Conlan B F, Rathjen J P. The N-terminal domain of the tomato immune protein Prf contains multiple homotypic and Pto kinase interaction sites[J]. J Biol Chem., 2015, 290 (18):11258–11267
[63] Bogdanove A J, Martin G B. AvrPto-dependent Ptointeracting proteins and AvrPto-interacting proteins in tomato[J]. Proc Natl. Acad. Sci. USA, 2000, 97(16):8836–8840
[64] Speth E B, Imboden L, Hauck P, He S Y. Subcellular localization and functional analysis of theArabidopsisGTPase RabE[J]. Plant Physiol, 2009, 149(4):1824–1837
[65] Yeam I, Nguyen H P, Martin G B. Phosphorylation of thePseudomonas syringaeeffector AvrPto is required for FLS2/BAK1‐independent virulence activity and recognition by tobacco[J]. Plant J., 2010, 61(1):16–24
[66] Wan H, Yuan W, Ruan M, Ye Q, Wang R, Li Z, Zhou G,Yao Z, Yang Y. Identification, phylogeny, and expression analysis ofPto-like genes in pepper[J]. Plant Mol Biol
Rep., 2013; 31(4):901–916
[67] Pflieger S, Lefebvre V, Caranta C, Blattes A, Goffinet B,Palloix A. Disease resistance gene analogs as candidates for QTLs involved in pepper-pathogen interactions[J].Genome, 1999, 42(6):1100–1110
[68] Tanksley S, Bernacchi D, Fulton T, Beck-Bunn T, Emmatty D, Eshed Y, et al. Comparing the effects of linkage drag in a set of processing tomato lines nearly isogenic for theMigene for resistance to root knot nematodes[J]. Rep Tomato Genet Coop, 1997, 47:35–36
[69] Chang J H, Tai Y S, Bernal A J, Lavelle D T, Staskawicz B J,Michelmore R W. Functional analyses of the Pto resistance gene family in tomato and the identification of a minor resistance determinant in a susceptible haplotype[J]. Mol Plant Microbe Interact, 2002, 15(3):281–291
[70] Martin G B, Frary A, Wu T, Brommonschenkel S,Chunwongse J, Earle E D, Tanksley S D. A member of the tomato Pto gene family confers sensitivity to fenthion resulting in rapid cell death[J]. Plant Cell, 1994, 6(11):1543–1552
[71] Loh Y T, Martin G B. ThePtobacterial resistance gene and theFeninsecticide sensitivity gene encode functional protein kinases with serine/threonine specificity[J]. Plant Physiol, 1995, 108(4):1735–1739
[72] Rose L E, Michelmore R W, Langley C H. Natural variation in thePtodisease resistance gene within species of wild tomato (Lycopersicon). Ⅱ. Population genetics of Pto[J]. Genetics, 2007, 175(3):1307–1319
[73] Chen Q, Han Z, Jiang H, Tian D, Yang S. Strong positive selection drives rapid diversification of R-genes in Arabidopsis relatives[J]. J. Mol Evol., 2010, 70(2):137–148
[74] Pond S L K, Murrell B, Fourment M, Frost S D, Delport W, Scheffler K. A random effects branch-site model for detecting episodic diversifying selection[J]. Mol Biol Evol.2011, 28(11):3033–3043
[75] Hok S, Danchin E G, Allasia V, Panabieres F, Attard A,Keller H. AnArabidopsis(malectin-like) leucine-rich repeat receptor-like kinase contributes to downy mildew disease[J]. Plant, Cell & Environment, 2011, 34(11):1944–1957
(文獻(xiàn)來(lái)源:PLoS ONE 11(8): e0161545)華中農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝林學(xué)學(xué)院 胡震竺 劉越 孔秋生 譯