王豐豐，王萍，石磊，楊靜，楊琴

（內蒙古野生特有蔬菜種質資源與種質創(chuàng)新重點實驗室·內蒙古農業(yè)大學農學院呼和浩特010019）

南瓜SCoT-PCR反應體系的優(yōu)化與引物篩選

王豐豐，王萍，石磊，楊靜，楊琴

（內蒙古野生特有蔬菜種質資源與種質創(chuàng)新重點實驗室·內蒙古農業(yè)大學農學院呼和浩特010019）

為了構建適合南瓜SCoT-PCR反應的最佳體系，筆者對需要控制的5個變量使用L25(56)正交試驗設計。結果表明，最佳優(yōu)化體系為：2.5 mmol·L-1Mg2+、0.40 mmol·L-1dNTPs、0.5 U Taq酶、1.00 μmol·L-1引物、30 ng模板DNA，共20 μL。然后從51個SCoT引物中篩選出多態(tài)性明顯的引物20個,并優(yōu)化最適退火溫度。最后，對所得優(yōu)化體系進行可行性驗證。該體系有利于SCoT標記在南瓜材料上的應用，構建的優(yōu)化體系及篩選出的引物可為南瓜分子遺傳育種奠定基礎。

南瓜；SCoT-PCR；體系優(yōu)化；正交設計；引物篩選

南瓜，葫蘆科南瓜屬[1]，按經濟栽培種可分為5大類：美洲南瓜、印度南瓜、中國南瓜、黑籽南瓜和灰籽南瓜。美洲南瓜的嫩瓜味道可口、耐貯藏，在果實成熟早期收獲炒食或作餡均可[2]，是不可或缺的淡季蔬菜；印度南瓜和中國南瓜的老熟果實淀粉含量較高，營養(yǎng)價值豐富，可作為飼料或雜糧食用，取其果實可熬制南瓜粥，味道甘甜，而南瓜籽可作瓜子食用；黑籽南瓜以作砧木為主；灰籽南瓜的作用還有待研究。所以，對于南瓜新品種的選育是十分必要的。在南瓜材料上，RAPD、SSR、ISSR等分子標記方法都已經被成功應用[3-5]，而新的分子標記方法——目標起始密碼子多態(tài)性（Start codon target? ed polymorphism，SCoT）分子標記尚未見相關報道。

SCoT標記是Collard和Mackill[6]在水稻上提出的一種基于單引物擴增反應（single primer amplifica?tion reaction，SPAR）的新型分子標記。該標記根據(jù)植物基因中的ATG翻譯起始位點側翼保守序列來設計單引物，擴增產生偏向候選功能基因區(qū)顯性多態(tài)性標記，具有成本低、操作簡單、引物通用性更強、遺傳信息完整[7]等優(yōu)點，在柑橘、葡萄、鐵皮石斛、籽用西瓜等植物上得到迅速應用[8-11]。本試驗擬構建南瓜SCoT-PCR優(yōu)化體系并篩選合適的引物，為SCoT分子標記在南瓜分子遺傳方面的研究奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

體系優(yōu)化所用材料為南瓜‘特豐一號’，引物篩選所用材料為4個南瓜地方品種，品種編號為2、7、14、21，驗證材料為來自不同地區(qū)的20個南瓜地方品種，品種編號為2～21（詳見表1）。DNA模板提取自南瓜幼嫩真葉。SCoT引物序列來自于Collard等[6]的報道，由上海生工生物工程有限公司合成?；蚪MDNA提取試劑盒購于天根生化科技有限公司，dNTPs、Taq DNA聚合酶、10× Buffer、DL2000 Marker等均從全式金生物工程有限公司采購。

表1 供試材料

1.2 基因組DNA的提取與檢測

南瓜種子溫湯浸種后放到裝有雙層濾紙的培養(yǎng)皿中保持濕潤，長至2～3片真葉時，摘下幼嫩真葉清洗，迅速放到研缽中，加入液氮研磨至粉末并裝至2 mL PCR管中，置于-20℃冰箱保存?zhèn)溆?。提取DNA樣品，1%瓊脂糖凝膠電泳[12]，電壓120 V，時間1 h，使用紫外分光光度法檢測，置于-20℃條件下保存?zhèn)溆谩?/p>

1.3 SCoT-PCR反應體系正交設計

SCoT引物使用的是SC25，正交試驗設計采用L25(56)正交表（表2），設計出25組正交組合，對影響PCR反應體系的5大主要因素Mg2+濃度、dNTPs濃度、引物濃度、Taq酶和DNA模板用量進行優(yōu)化，每個影響因素有5個水平（表3）。SCoT-PCR反應體系共20 μL，包括5個因素的不同水平，每個體系添加2.0 μL的10×Buffer，加ddH2O至終體積。正交設計表共25個處理，每個處理3次重復。

表2 SCoT-PCR反應體系L25(56)正交設計及直觀分析

表3 L25(56)正交試驗的因素及水平

1.4 SCoT-PCR擴增及檢測

PCR擴增程序為：94℃預變性4 min，94℃變性30 s，47.7℃復性退火30 s，72℃延伸1 min，循環(huán)35次；72℃延伸5 min。得到擴增產物于4℃下保存。取4 μL的擴增產物與2 μL的6×Load?ing buffer混勻，在經Gelview核酸染料染色后的1%（ω，下同）瓊脂糖凝膠上進行電泳，電極緩沖液為0.5×TBE，電壓120 V，時間1 h，最后在紫外凝膠成像系統(tǒng)上拍照保存。

1.5 數(shù)據(jù)統(tǒng)計與處理

對凝膠圖片采用姜小鳳等[13]和何正文等[14]的方法進行綜合打分。設定打分范圍1～25，依次從條帶清晰度、數(shù)目多少及多態(tài)性高低來比較分析，條帶好的記為25，差的記為1，按此比較排序。根據(jù)3個重復打分結果進行直觀分析，然后假設不存在交互作用的情況下，計算出試驗每個因素下各水平的平均值，該值能夠反映因素各水平對反應體系影響程度的大小。Ti為每個因素在同一水平下的試驗值之和，Ki為每個因素在同一水平下的數(shù)據(jù)平均值，R為同一因素不同水平間平均值的極差。這些數(shù)值的大小同樣反映了該因素對試驗結果影響的大小[15]。直觀分析后，利用SPSS 18.0軟件對所得結果進行方差分析，估計試驗誤差。最后，綜合比較2種分析方法，得出最優(yōu)反應體系。

1.6 多態(tài)性SCoT引物篩選和退火溫度的確定

采用1.5中得出的最優(yōu)反應體系，以各因素確定濃度為基礎進行適合引物的篩選及引物最佳退火溫度的試驗（表4）。

表4 ScoT引物篩選及最適退火溫度

1.7 反應體系的穩(wěn)定性和可行性檢測

選取多個引物對20份南瓜材料進行PCR擴增，在經Gelview核酸染料染色后的1%瓊脂糖凝膠上電泳，然后在紫外成像系統(tǒng)上拍照檢測，以驗證反應體系的穩(wěn)定性和可行性。

2 結果與分析

2.1 正交試驗結果分析

2.1.1 直觀分析對凝膠照片進行直觀分析（圖1），處理19和25條帶是最清晰、多態(tài)性最明顯的。據(jù)此對3個重復進行3次獨立打分統(tǒng)計，得到的平均分依次為：1.00，2.33，15.67，18.33，21.00，8.33，20.67，22.33，3.67，3.00，15.00，6.00，20.67，10.00，19.33，5.67，12.00，12.67，24.67，7.00，11.00，18.00，10.33，12.33，24.33。平均分的大小可看作每一水平對試驗影響程度的數(shù)值表達，將此數(shù)值通過計算轉變?yōu)槊總€因素對應的影響效果。依次算出Ti、Ki以及對應的R值（表5）。根據(jù)直觀分析的結果，各因素極差R大小依次為引物濃度＞dNTPs濃度＞Taq酶量＞Mg2+濃度＞模板DNA質量，表明各因素對反應體系的影響程度大小與此順序相同，其中引物濃度對PCR反應體系影響最大，為主要因素；模板DNA質量影響最小。通過對比直觀分析中各因素各水平的平均值可以選出最適水平，這些最適水平結合起來就是最佳組合。

2.1.2 方差分析為了彌補直觀分析不能估計試驗誤差大小的缺點，筆者利用SPSS 18.0軟件對統(tǒng)計結果進行方差分析（表6）：從方差分析表中可以看出，各因素對PCR反應體系的影響與直觀分析結果一致，其中引物濃度對試驗結果影響顯著，其他各個因素影響主次也與直觀分析一致。總體表明試驗誤差對試驗結果影響較小，因此結果較可靠，可供參考。

圖1 SCoT-PCR正交試驗擴增產物電泳

表5 正交設計直觀分析結果

表6 SPSS18.0方差分析結果

2.1.3 綜合分析在2種分析方法綜合考慮下，5種因素的最佳水平分別為Mg2+濃度3.0 mmol·L-1、dNTPs濃度0.30 mmol·L-1、Taq酶量1.5 U、引物濃度1.00 μmol·L-1、模板DNA質量40 ng。將SCoT-PCR正交組合對比分析發(fā)現(xiàn)，25個組合中并沒有出現(xiàn)包含這5種因素最佳水平的組合，但其中分值較高的組合在各方面都與最佳水平較接近，整體符合要求。在綜合考量體系中各因素的影響、經濟費用及試驗質量的前提下，最終確定最優(yōu)組合為19號組合：2.50 mmol·L-1Mg2+、0.40 mmol·L-1dNTPs、 0.50 U Taq酶、1.00 μmol·L-1引物、30 ng模板DNA，反應總體積20 μL。

2.2 引物篩選

根據(jù)綜合分析確定的南瓜SCoT-PCR最佳反應體系，以4份地方品種南瓜DNA為模板，對51個引物各自電泳出的4條條帶進行多態(tài)性分析，篩選出條帶清晰、多態(tài)性明顯的引物共20個，分別為SC3、SC5、SC7、SC9、SC11、SC12、SC13、SC14、SC15、SC16、SC18、SC19、SC20、SC21、SC25、SC29、SC35、SC38、SC54和SC62。部分引物擴增效果見圖2，其中引物SC8多態(tài)性不明顯，不符合引物篩選的要求。

圖2 引物SC6、SC8、SC9和SC25多態(tài)性的篩選

2.3 引物最佳退火溫度選擇

退火溫度是除了控制變量的5個因素外對試驗結果影響最大的一個因素。對篩選出的20個引物逐一進行退火溫度的篩選，采用45～58℃溫度范圍設置12個溫度梯度，分別為45.0、46.1、47.2、48.4、49.6、50.9、52.0、53.1、54.2、55.5、56.8、58.0℃。對于每個引物凝膠電泳出的12條條帶進行分析，可得到該引物的最適退火溫度。部分引物的退火溫度篩選見圖3。篩選出的20個引物的最適退火溫度如表4所示。

圖3 引物SC3（左）、SC16（右）退火溫度的優(yōu)化

體系優(yōu)化時所采用的SC25退火溫度篩選結果見圖4，該引物退火溫度變化不規(guī)律，但符合整體趨勢。12個退火溫度中，在45.0、47.2、50.9℃時，擴增條帶少，背景也弱；在46.1、49.6℃時，擴增條帶清晰但擴增條帶數(shù)較48.4℃少；當退火溫度上升到55.5、56.8和58.0℃時，擴增條帶較少且不清晰。因此，以條帶清晰、背景強、條帶無雜質作為劃分依據(jù)，確定本試驗中引物SC25的最佳退火溫度為48.4℃，此退火溫度可以應用在整個體系優(yōu)化的過程中（其他引物退火溫度的篩選過程與此引物相同）。

圖4 引物SC25退火溫度的優(yōu)化

2.4 SCoT-PCR反應體系穩(wěn)定性和可行性檢測

雖然已建立起了南瓜SCoT-PCR最佳反應體系，但需要在多基因型條件下進行驗證。對反應體系可靠性進行驗證采用的是20份南瓜材料（表1），反應體系采用19號組合，唯一變量是20個不同的模板DNA，最后對凝膠照片進行分析，結果發(fā)現(xiàn)該體系擴增出清晰的、多態(tài)性明顯的條帶，證實了該體系的穩(wěn)定性和可行性。在驗證過程中，用多個引物配合20份南瓜品種材料才能最大程度減少試驗誤差，得到最穩(wěn)定的反應體系。圖5是引物SC25對20份南瓜材料進行PCR擴增驗證的凝膠電泳圖，說明該優(yōu)化反應體系是可靠的，可以進一步應用于南瓜的分子遺傳學研究。

圖5 引物SC25對2～21號樣品擴增結果

3 討論

分子標記的諸多優(yōu)越性使得學者們熱衷于分子方面的研究，而目標起始密碼子多態(tài)性標記也成為了一種頗受歡迎的分子標記方法。所有基于PCR反應技術的分子標記方法都一樣，反應體系要受到很多因素的影響，比如Mg2+、dNTPs、Taq酶、引物和模板DNA等的濃度，還有退火溫度，都會影響PCR反應的結果[16]。因此，在對試驗材料采用SCoT分子標記方法進行分析時，應首先對其反應體系進行各因素水平的優(yōu)化，先確定各因素的最優(yōu)水平，選出最佳的反應體系，再進行后續(xù)試驗。

退火溫度也是影響試驗結果的一個關鍵因素，溫度過高條帶清晰但少，溫度過低有雜帶但條帶多[17]。在PCR反應體系優(yōu)化過程中有很多可采用的設計方法，而正交試驗設計方法是各種分子標記反應體系優(yōu)化中應用最為廣泛的。該方法不僅綜合考慮到了PCR反應體系中各因素間的交互作用，還能避免單因素試驗過程中所產生的誤差[18]，最終可以快速獲得滿意的試驗結果。當然，該種打分方法也存在一些缺陷，因為在對擴增條帶進行打分的過程中，不同的人對條帶的清晰度、多態(tài)性等的判斷標準有差異，受個人主觀性影響較大，故評分結果則會產生較大差異[19]。因此，在對條帶評分的時候，要多重復、全方面的進行，最大程度地減少主觀誤差。在對瓊脂糖凝膠紫外成像拍照時，注意調整背景亮度、對比度等各種參數(shù)，盡量得到最佳的凝膠圖片，方便對試驗結果的觀察分析。

近些年，DNA分子標記技術的應用越來越普遍，各類標記如RAPD、ISSR、SRAP等[3-5]都在南瓜遺傳多樣性研究中有了初步的應用。肖祖梅[20]將RAPD和ISSR標記相結合，對28份觀賞南瓜材料的遺傳多樣性進行了研究。盧麗芳等[21]利用SRAP分子標記技術對所收集的85份南瓜資源進行親緣關系分析，從100對引物中挑出17對引物對其進行條帶擴增。向成鋼等[22]利用SSR標記對20份分屬10個品種群的中國南瓜、印度南瓜和美洲南瓜材料及1份印度南瓜和中國南瓜的種間雜交種進行了多態(tài)性及親緣關系分析。與這些標記相比，SCoT分子標記操作更加簡單，有利于各種物種SCoT標記技術體系的建立；比ISSR標記更有效地產生和性狀連鎖的標記，易于分子標記輔助育種；比RAPD標記使用的引物長度更長，重復性好；引物設計趨于簡單，在原有引物序列基礎上做少許改動來設計更多的新引物，設計好的SCoT標記引物可以在物種間通用。該標記可作為RAPD、ISSR標記技術的有效補充；今后，SCoT標記作為一種新型的目的基因標記，為我們提供了除SRAP、TRAP等標記方法外一種能跟蹤性狀的新的分子標記技術。

4 結論

筆者采用正交設計方法成功構建了適用于南瓜的SCoT-PCR最佳反應體系：2.5 mmol·L-1Mg2+、0.40 mmol·L-1dNTPs、0.5 U Taq酶、1.00 μmol·L-1引物、30 ng模板DNA，總體積20 μL。采用20個不同品種的南瓜材料對優(yōu)化的反應體系進行驗證，結果表明所有引物均能擴增出特異性豐富的條帶，證明了優(yōu)化的SCoT-PCR反應體系在多基因型條件下的可用性。SCoT分子標記可進一步為南瓜的遺傳研究提供標記資源。

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本刊聲明

本刊刊登的稿件，視為作者同意本刊對該文稿、圖片擁有復制、匯編、發(fā)行及在網(wǎng)絡、光盤等數(shù)字傳媒上進行傳播宣傳的使用權。所付稿酬已包含上述使用費。如有異議，請在來稿時說明。

《中國瓜菜》編輯部

Orthogonal optimization of SCoT-PCR system and primer screening in pumpkin

WANG Fengfeng，WANG Ping，SHI Lei，YANG Jing，YANG Qin

(Key Laboratory of Wild Vegetable Germplasm Resources and Innovation,College of Agronomy,Inner Mongolia Agricultural University, Huhhot 010019，Inner Mongolia，China)

A L25(56)of orthogonal design was used to optimize SCoT-PCR(Scodon Targeted Polymorphism Amplification System)of pumpkin in 5 factors such as Taq DNA polymerase,Mg2+,DNA template,dNTPs and primer concentrations. The result showed that the optimized system was as follows:a total volume of 20 μL including 2.50 mmol·L-1Mg2+, 0.40 mmol·L-1dNTPs,0.50 U Taq polymerase，1.00 μmol·L-1primer and 30 ng DNA template.20 primers were selected from the 51 primer combinations test with clear band patterns and abundant polymorphisms.The most suitable annealing temperature of primers were selected.The SCoT-PCR reaction system for SCoT markers of pumpkin could be applied in pumpkin molecular genetics research.

Pumpkin；SCoT-PCR；System optimization；Orthogonal design；Primers screening

2016-09-10；

2016-11-10

內蒙古科技計劃項目(20090707，2010704，20110711，20120212)；內蒙古高寒地區(qū)高產安全蔬菜生產的研究與創(chuàng)新項目（NDPYTD2013-3）

王豐豐，男，在讀碩士研究生，從事蔬菜種質資源與種質創(chuàng)新研究。E-mail:980853124@qq.com

王萍，女，副教授，碩士生導師，主要從事種質資源與種質創(chuàng)新研究。E-mail:wangping@imau.edu.cn