陳康勇 彭芳 薛竣仁 鐘為銘 高志鵬
摘要 [目的]研究單增李斯特氏菌生物膜的形成特性。[方法]采用24孔板法培養(yǎng)生物膜,分別采用結(jié)晶紫染色法和光學(xué)顯微鏡進(jìn)行生物膜的定量和定性研究,觀察在不同培養(yǎng)時(shí)間(8、16、24、32、40、48 h)單增李斯特氏菌生物膜的形成狀況。[結(jié)果]隨著培養(yǎng)時(shí)間的增加,單增李斯特氏菌生物膜生物量逐漸增加,生物膜經(jīng)歷了黏附、微菌落形成、大菌落形成到成熟的全部過(guò)程。[結(jié)論]試驗(yàn)結(jié)果為單增李斯特氏菌生物膜相關(guān)研究提供了理論依據(jù)。
關(guān)鍵詞 單核細(xì)胞增生李斯特氏菌;生物膜;形成特性
Biofilm Formation Characteristics of Listeria monocytogenes
CHEN Kang-yong1,PENG Fang1,XUE Jun-ren1,GAO Zhi-peng1,2* et al (1.College of Animal Science and Technology,Hunan Agricultural University,Changsha,Hunan 410128; 2.Collaborative Innovation Center for Efficient and Health Production of Fisheries in Hunan Province,Changde,Hunan 415000)
Abstract [Objective]The aim was to investigate the biofilm formation characteristics of Listeria monocytogenes. [Method]To investigate the characteristics of Listeria monocytogenes biofilm at different incubation times (8,16,24,32,40,48 h),24-well plate method was used to cultivate biofilm,and quantitative and qualitative data were obtained by crystal violet staining assay and light microscopy.[Result]With the increase of culture time,the biomass of Listeria monocytogenes biofilm increased gradually,and the biofilm went through the process of adhesion,microcolony formation,macrocolony formation to mature.[Conclusion]The results provide a theoretical basis for the related research of Listeria monocytogenes biofilm.
Key words Listeria monocytogenes;Biofilm;Formation characteristics
生物膜(BF)是細(xì)菌為了適應(yīng)生存環(huán)境,黏附于非生物或者活性組織的表面,包被于自身分泌的胞外基質(zhì)中,形成的一種三維聚合網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),細(xì)菌生物膜是一種和浮游生長(zhǎng)對(duì)應(yīng)的生長(zhǎng)方式[1-3]。生物膜參與65%以上的感染,尤其是與醫(yī)療器械相關(guān)的、機(jī)體表面的(如皮膚、軟組織等)和慢性感染,原因主要是生物膜對(duì)宿主防御和抗菌藥物具有很強(qiáng)的抵御能力[4-6]。生物膜是細(xì)菌耐藥性產(chǎn)生的重要原因,可使細(xì)菌的耐藥性提高10~1 000倍[7-8]。生物膜感染已成為全球關(guān)注的問(wèn)題。
單核細(xì)胞增生李斯特氏菌(Listeria monocytogenes)是一種能在冷藏的溫度下進(jìn)行繁殖的致病菌,由于該細(xì)胞的苯酚-水浸出物能夠誘導(dǎo)單核細(xì)胞生成,所以被命名為“單核增生細(xì)菌”[9]。人或者牲畜感染之后主要表現(xiàn)出敗血癥、胃腸炎、腦膜炎、孕婦流產(chǎn)等癥狀[10]。嬰幼兒、老年人以及免耐受病人的臨床死亡率約為30%[11]。該菌種在自然界廣泛存在,對(duì)于不利的生長(zhǎng)環(huán)境條件具有很強(qiáng)的耐受能力,在4 ℃冰箱中可生長(zhǎng)繁殖,所以各類冷凍食品均成為被感染對(duì)象,如肉制品、奶制品、冰激凌等[12]。在對(duì)含有單增李斯特氏菌的乳制品進(jìn)行超高壓處理研究中發(fā)現(xiàn),在500 MPa、10 min、20 ℃下處理乳制品,雖然能夠降低其單增李斯特氏菌活菌量,但仍有細(xì)菌存活并繁殖[13]。同時(shí),單增李斯特氏菌對(duì)水產(chǎn)品也具有較高的污染程度[14-15]。單增李斯特氏菌所產(chǎn)生的生物膜可保護(hù)其不受抗菌藥物作用,并且能降低機(jī)體免疫細(xì)胞的吞噬作用。試驗(yàn)表明,在任何溫度條件下,單增李斯特氏菌可在固體表面形成生物膜,并且能夠在很長(zhǎng)時(shí)間黏附于固體表面,其生物膜的形成引起了食品、用品衛(wèi)生安全的隱患[16]。
單增李斯特氏菌生物膜所導(dǎo)致的相關(guān)性疾病患病率逐年上升,至今很少有藥物能有效控制該類感染,深入研究單增李斯特氏菌生物膜形成特性,對(duì)于尋找有效的防治藥物和方法具有重要意義。筆者研究了單增李斯特氏菌生物膜的形成過(guò)程,以期為單增李斯特氏菌研究提供參考。
1 材料與方法
1.1 材料
1.1.1 供試菌。單核細(xì)胞增生李斯特氏菌(編號(hào):ATCC19115),購(gòu)自廣東省微生物研究所。
1.1.2 主要試劑。LB肉湯(廣東環(huán)凱微生物科技有限公司)、技術(shù)瓊脂粉(廣東環(huán)凱微生物科技有限公司)、0.1%結(jié)晶紫溶液(Sigma公司)、95%乙醇溶液、磷酸鹽緩沖液(PBS)和4%多聚甲醛(Sigma公司)。
1.1.3 主要儀器。
熒光多功能酶標(biāo)儀、光學(xué)顯微鏡、24孔和96孔細(xì)胞培養(yǎng)板、高壓滅菌鍋和高速彩色平臺(tái)掃描儀。
1.2 方法
1.2.1 單增李斯特氏菌生物膜培養(yǎng)。
采用24孔板法,具體操作:取單個(gè)單增李斯特氏菌菌落接種到5 mL LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃靜置培養(yǎng)24 h。取10 μL 菌液轉(zhuǎn)接至預(yù)先加入無(wú)菌蓋玻片(12 mm)和2 mL 新鮮LB培養(yǎng)液的24孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,然后37 ℃靜置培養(yǎng)。
1.2.2 不同培養(yǎng)時(shí)間對(duì)單增李斯特氏菌生物膜形成特性的影響。
按培養(yǎng)時(shí)間分別設(shè)置8、16、24、32、40、48 h 6個(gè)試驗(yàn)組,每組分別做6個(gè)平行,按照“1.2.1”進(jìn)行生物膜培養(yǎng),在上述時(shí)間點(diǎn)進(jìn)行結(jié)晶紫染色試驗(yàn)和顯微鏡觀察。
1.2.3 單增李斯特氏菌生物膜結(jié)晶紫染色試驗(yàn)。
利用生物膜內(nèi)物質(zhì)可與特殊染料結(jié)合的原理,通過(guò)染色的方法對(duì)生物膜進(jìn)行定性或定量分析。單增李斯特氏菌生物膜形成后,將24孔板從培養(yǎng)箱中取出,吸出培養(yǎng)液,用無(wú)菌PBS浸洗蓋玻片3次,然后用4%多聚甲醛固定20 min,棄固定液,并用無(wú)菌PBS浸洗3次,洗去浮游菌,使黏附在蓋玻片的生物膜自然風(fēng)干,室溫下用0.1%結(jié)晶紫染色20 min,吸除染色液后,用無(wú)菌PBS浸洗3次,自然風(fēng)干,然后用高速彩色平臺(tái)掃描儀掃描拍照。
1.2.4 單增李斯特氏菌生物膜生物量的測(cè)定。
單增李斯特氏菌生物膜形成后,吸出培養(yǎng)液,用無(wú)菌PBS浸洗蓋玻片3次,每孔加入200 μL 95%乙醇,置于搖床30 min使結(jié)晶紫完全溶解,溶解液轉(zhuǎn)移至96孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,并用酶標(biāo)儀測(cè)定540 nm波長(zhǎng)處的吸光度,即OD540,每個(gè)試驗(yàn)重復(fù)3次。
1.2.5 顯微鏡觀察單增李斯特氏菌生物膜。
方法同“1.2.3”,結(jié)晶紫染色后,用無(wú)菌PBS浸洗蓋玻片3次,然后置于100倍油鏡下觀察生物膜的形成狀況,并拍照記錄。
2 結(jié)果與分析
2.1 不同培養(yǎng)時(shí)間下單增李斯特氏菌生物膜結(jié)晶紫染色結(jié)果
研究發(fā)現(xiàn)單增李斯特氏菌生物膜的形成分為4個(gè)階段,即黏附階段、微菌落形成階段、大菌落形成階段和成熟階段。①黏附階段(0~16 h):細(xì)菌逐漸聚集并黏附于介質(zhì)(蓋玻片)表面,生物膜形成速度較慢;②微菌落形成階段(17~24 h):生物膜結(jié)晶紫染色較淺,微菌落開始形成,并呈斑塊狀分布;③大菌落形成階段(25~32 h):細(xì)菌聚集明顯,生物膜斑塊變大,32 h時(shí)布滿蓋玻片,結(jié)晶紫染色加深;④成熟階段(33~48 h):結(jié)晶紫染色比前32 h明顯加深,生物膜斑塊更加密集,厚度增大,40 h時(shí)生物膜基本形成,33~48 h形成的生物膜的OD540快速增長(zhǎng)。隨著培養(yǎng)時(shí)間的增加,單增李斯特氏菌的生物膜呈現(xiàn)出從黏附聚集到成熟的過(guò)程,于48 h達(dá)到最成熟的狀態(tài)(圖1、2)。
2.2 不同培養(yǎng)時(shí)間下單增李斯特氏菌生物膜顯微觀察結(jié)果
①黏附階段:在物鏡為100倍的顯微鏡下可觀察到生物膜的厚度小,菌落間的通道多,說(shuō)明生物膜形成并不成熟。②微菌落形成階段:微菌落開始形成,生物膜斑塊數(shù)量增多,生物膜的厚度開始增加,菌落間通道變少。③大菌落形成階段:結(jié)晶紫染色變深,開始形成較為致密的生物膜,但生物膜斑塊比較分散,菌落間通道繼續(xù)變少。④成熟階段:生物膜斑塊大量增加并且形成了牢固、穩(wěn)定的網(wǎng)狀三維結(jié)構(gòu),生物膜厚度明顯增加,染色顯著加深,培養(yǎng)至48 h時(shí)生物膜極厚,菌落之間幾乎沒有通道,生物膜完全成熟(圖3)。可見,生物膜形成期間,菌落間的通道不斷減少,生物膜斑塊逐漸增加并且密集,生物膜的厚度逐漸增加,并趨于成熟。
3 討論
細(xì)菌生物膜的形成是一個(gè)動(dòng)態(tài)過(guò)程,隨著細(xì)菌的生長(zhǎng),生物膜對(duì)營(yíng)養(yǎng)因子的通透性變差,同時(shí)細(xì)菌也開始老化甚至失去了成膜能力。進(jìn)入成熟期后,隨著生存環(huán)境中營(yíng)養(yǎng)等限制因子的消耗以及代謝產(chǎn)物的積累,細(xì)菌的生長(zhǎng)開始受到限制,生物膜的形成達(dá)到一個(gè)相對(duì)穩(wěn)定的狀態(tài),此時(shí)生物膜的厚度基本穩(wěn)定。進(jìn)入衰老期后,伴隨著營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的不斷消耗,生物膜中細(xì)菌的大部分蛋白質(zhì)和RNA的合成速率降低,致使胞外多糖的合成量減少,生物膜的結(jié)構(gòu)出現(xiàn)崩解甚至細(xì)菌也開始從生物膜表面脫落,再次成為游離菌,使生物膜的厚度減少。
單增李斯特氏菌生物膜的形成是一個(gè)復(fù)雜的過(guò)程,涉及到多種蛋白、核酸分子和多糖等因素,同時(shí)也受到各種調(diào)控網(wǎng)絡(luò)的共同作用。深入研究單增李斯特氏菌生物膜的形成和調(diào)控的分子機(jī)制對(duì)尋找特異性干預(yù)靶點(diǎn)具有重要意義。該試驗(yàn)?zāi)壳爸皇茄芯颗囵B(yǎng)時(shí)間對(duì)單增李斯特氏菌生物膜形成的影響,主要是通過(guò)觀察細(xì)菌生物膜的形成情況來(lái)說(shuō)明培養(yǎng)時(shí)間對(duì)生物膜的影響,后續(xù)試驗(yàn)還可研究環(huán)境因素對(duì)單增李斯特氏菌生物膜基質(zhì)組成的影響,通過(guò)觀察環(huán)境因素對(duì)生物膜中蛋白質(zhì)、胞外多糖、胞外DNA組成的影響,進(jìn)一步探究單增李斯特氏菌生物膜的形成機(jī)制。
4 結(jié)論
采用24孔板法和結(jié)晶紫染色法研究單增李斯特氏菌生物膜的形成過(guò)程,發(fā)現(xiàn)在靜置培養(yǎng)條件下的單增李斯特氏菌生物膜的形成經(jīng)歷了4個(gè)階段,0~16 h為細(xì)菌黏附階段,17~24 h為微菌落形成階段,25~32 h為大菌落形成階段,33~48 h為成熟階段。細(xì)菌黏附階段,菌落間的通道多,形成生物膜速度慢。微菌落形成階段,隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng),生物膜結(jié)晶紫染色顏色變深,細(xì)菌開始形成微菌落,但形成速度較慢,并開始形成生物膜斑塊。大菌落形成階段,細(xì)菌形成的大量微菌落聚集成大菌落,生物膜斑塊增大,開始形成較為致密的生物膜,結(jié)晶紫染色快速變深。成熟階段,生物膜斑塊快速增大并且密集,形成了具有牢固、穩(wěn)定的網(wǎng)狀三維結(jié)構(gòu)的生物膜,菌落間的通道不斷減少。培養(yǎng)48 h期間,單增李斯特氏菌生物膜的生物量隨培養(yǎng)時(shí)間的增加而增大,表明細(xì)菌生物膜的生長(zhǎng)經(jīng)歷了從黏附聚集到成熟的過(guò)程,在48 h生物膜生長(zhǎng)達(dá)到完全成熟的狀態(tài)。
參考文獻(xiàn)
[1] HALL-STOODLEY L,STOODLEY P.Biofilm formation and dispersal and the transmission of human pathogens[J].Trends in microbiology,2005,13(1):7-10.
[2] 袁海蘭,蘇建,胡鯤,等.環(huán)境因子對(duì)水霉菌生物膜形成的影響[J].微生物學(xué)通報(bào),2014,41(9):1829-1836.
[3] 徐文生,張艷艷,黃漫青,等.環(huán)境因素對(duì)長(zhǎng)雙歧桿菌CICC6069生物膜生成的影響[J].中國(guó)食品學(xué)報(bào),2012,12(4):36-42.
[4] COSTERTON J W,STEWART P S,GREENBERG E P.Bacterial biofilms:A common cause of persistent infections[J].Science,1999,284(5418):1318-1322.
[5] O′TOOLE G,KAPLAN H B,KOLTER R.Biofilm formation as microbial development[J].Annual review of microbiology,2000,54(1):49-79.
[6] KOLTER R.Biofilms in lab and nature:A molecular geneticist′s voyage to microbial ecology[J].International microbiology,2010,13(1):1-7.
[7] 祝司霞.細(xì)菌生物膜的結(jié)構(gòu)及形成機(jī)制的研究進(jìn)展[J].沈陽(yáng)醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2015,17(2):115-117.
[8] EHRLICH G D,AHMED A,EARL J,et al.The distributed genome hypothesis as a rubric for understanding evolution in situ during chronic bacterial biofilm infectious processes[J].FEMS immunology and medical microbiology,2010,59(3):269-279.
[9] 馬里奧特.食品衛(wèi)生原理 [M].4版.北京:中國(guó)輕工業(yè)出版社,2001.
[10] 呂素玲,譚冬梅,李秀桂.廣西食源性單核細(xì)胞增生李斯特菌耐藥趨勢(shì)分析[J].實(shí)用預(yù)防醫(yī)學(xué),2013,20(6):734-735.
[11] MARIJA Z,KONRAD J D,WOLFGANG K.Practical relevance of methodologies for detecting and tracing of Listeria monocytogenes in ready-to-eat foods and manufacture environments:A review[J].LWT-Food science and technology,2011,44(2):351-362.
[12] LEMON K P,F(xiàn)REITAG N,KOLTER R.The virulence regulator PrfA promotes biofilm formation by Listeria monocytogenes[J].Journal of bacteriology,2010,192(15):3969-3976.
[13] STEPANOVIC′ S,VUKOVIC′ D,DAKIC′ I,et al.A modified microtiter-plate test for quantification of staphylococcal biofilm formation[J].Journal of microbiological methods,2000,40(2):175-179.
[14] 張海英,羅茂凰,高旗利,等.食品中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的污染概況及防制[J].食品研究與開發(fā),2003,24(6):154-156.
[15] 鄭俏慧.凍水產(chǎn)品中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的檢驗(yàn)研究[J].食品工程,2010 (1):58-60.
[16] 劉彤,陳晶瑜,韓北忠,等.單核增生李斯特氏菌生物被膜的形成及控制[J].食品研究與開發(fā),2010,31(2):163-166.