蔡亞南 , 趙麗娟 , 王 丞 , 祝學(xué)珍 , 唐 磊 , 楊桂連 , 錢(qián)愛(ài)東 , 趙 權(quán)
(吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科學(xué)技術(shù)學(xué)院 , 吉林 長(zhǎng)春 130118)
一例人感染帶絳蟲(chóng)PCR鑒定
蔡亞南 , 趙麗娟 , 王 丞 , 祝學(xué)珍 , 唐 磊 , 楊桂連 , 錢(qián)愛(ài)東 , 趙 權(quán)
(吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科學(xué)技術(shù)學(xué)院 , 吉林 長(zhǎng)春 130118)
為了快速鑒別診斷一例人絳蟲(chóng)感染病例,采用聚合酶鏈?zhǔn)椒?PCR)擴(kuò)增線粒體cox1和Cytb基因片段,對(duì)PCR 擴(kuò)增的產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)和基因序列測(cè)序。分別與NCBI 數(shù)據(jù)庫(kù)中帶絳蟲(chóng)cox1 和Cytb基因序列進(jìn)行比對(duì),同時(shí)選用MEGA 構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)。結(jié)果:核酸序列與NCBI 數(shù)據(jù)庫(kù)中牛帶絳蟲(chóng)同源性均為99%,進(jìn)化分析表明與牛帶絳蟲(chóng)的親緣性最近。表明該病例屬于牛帶絳蟲(chóng)感染。
牛帶絳蟲(chóng) ;cox1 ;Cytb; 鑒定
牛帶絳蟲(chóng)(Taeniasaginata.Tsa)、亞洲帶絳蟲(chóng)(Taeniaasiatica.Tas)和豬帶絳蟲(chóng)(Taeniasolium.Ts)均可感染人,且從臨床癥狀和蟲(chóng)體形態(tài)上難以區(qū)分。為了鑒定該病人所患蟲(chóng)種,本文通過(guò)PCR方法擴(kuò)增cox1和Cytb基因片段,并對(duì)擴(kuò)增序列進(jìn)行分析及構(gòu)建進(jìn)化樹(shù),從而確定該絳蟲(chóng)種屬,進(jìn)而確定該例患者的病源。
1.1 病料來(lái)源 2016年8月廣西某地一位患者,常常表現(xiàn)腹痛、腹部不適現(xiàn)象,并且伴有體重下降,肛門(mén)瘙癢癥狀,糞便中偶見(jiàn)乳黃色的的絳蟲(chóng)節(jié)片,患病前常吃生肉片和燒烤,疑似患有囊蟲(chóng)病,來(lái)吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)囊蟲(chóng)病醫(yī)院就診。給病人口服中藥合劑(新鮮南瓜子和檳榔提取物),30 min后口服30%水合硫酸鎂(MgSO4·7H2O)。經(jīng)過(guò)3~6 h排出大約1m長(zhǎng)近乎完整的絳蟲(chóng)。置于0.9%生理鹽水中保存,檢測(cè)。
1.2 絳蟲(chóng)基因組提取 取0.5g絳蟲(chóng)孕卵節(jié)片,經(jīng)液氮充分研磨,采用TaKaRa基因組DNA廣譜型小量純化試劑盒,按照說(shuō)明書(shū),提取絳蟲(chóng)基因組。
1.3 引物設(shè)計(jì)及克隆 根據(jù)GenBank上cox1和Cytb基因序列,設(shè)計(jì)特異性引物,見(jiàn)表1。由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。
表1 cox1和Cytb引物
PCR反應(yīng)體系 2X PremixTaq(TaKaRa, Japan)25 μL,去離子水20 μL, Primer-F(10 μmol/L)1.5 μl,Primer-R(10 μmol/L)1.5 μL,模板(gDNA)2 μL,總體積50 μL。PCR 反應(yīng)條件:預(yù)變性95 ℃,5 min;變性94 ℃,40 s;退火55 ℃,40 s;延伸72 ℃,1 min;再延伸72 ℃,10 min。循環(huán)數(shù):35 cycles。取2 μL PCR產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),若條帶正確,將剩余PCR產(chǎn)物回收。PCR產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳分離,純化(TaKaRa MiniBESTAgarose Gel DNA Extraction Kit Ver.4.0),取4 μL純化產(chǎn)物連接到1 μL的PMD-18T(pMDTM18-T Vector Cloning Kit)載體中。轉(zhuǎn)化到DH5α(Tiangen)感受態(tài)中,在含有Amp+抗性的LB固體培養(yǎng)基上,37 ℃培養(yǎng)12~16 h。挑取單克隆菌落在含有抗性的液體LB培養(yǎng)基內(nèi),37 ℃,180 r/min振蕩培養(yǎng)12~16 h,取5 ml菌液提取質(zhì)粒。以質(zhì)粒作為模板按以上PCR條件驗(yàn)證,由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司完成測(cè)序。
1.4 測(cè)序結(jié)果比對(duì) 對(duì)該絳蟲(chóng)所測(cè)核苷酸序列通過(guò)NCBI(National Center for Biotechnology Information) Blast(Basic Local Alignment Search Tool)工具比對(duì)其同源性。
1.5 構(gòu)建進(jìn)化樹(shù) GenBank上分別下載牛帶絳蟲(chóng)、豬帶絳蟲(chóng)、亞洲帶絳蟲(chóng)的cox1和Cytb序列。cox1共15條核苷酸序列,Cytb共10條核苷酸序列。將測(cè)序成功的基因片段分別與GenBank上絳蟲(chóng)線粒體cox1和Cytb核苷酸序列對(duì)比,并使用MEGA(Version6)軟件,采用鄰接法(Neighbor-joining NJ)、選用Kimura 2-parameter模式,Bootstrap值設(shè)定為 1 000 bp 構(gòu)建絳蟲(chóng)系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)。
2.1 蟲(chóng)體有絳蟲(chóng)孕節(jié)。
2.2 瓊脂糖凝膠電泳 PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠檢測(cè),如圖1可見(jiàn),cox1在接近2 000 bp的位置、Cytb在靠近1 000 bp的位置有明顯單一的條帶。
圖1 cox1和Cytb序列PCR結(jié)果
M:DL-2 000 DNA Marker; 1:cox1; 2:cox1陰性對(duì)照; 3:Cytb; 4:Cytb陰性對(duì)照
2.3 核酸序列比對(duì)結(jié)果cox1 核苷酸序列長(zhǎng)度為1 620 bp,通過(guò)NCBI Blast 顯示分別與牛帶絳蟲(chóng)(GenBank: AB107244)同源性為99%,突變堿基3個(gè),見(jiàn)表2;亞洲帶絳蟲(chóng)(GenBank: AB107235.1)同源性為96%,突變基因66個(gè);豬帶絳蟲(chóng)(GenBank: JX535570.1)同源性為92%。Cytb核苷酸序列長(zhǎng)度為1 068 bp,NCBI Blast 顯示分別與牛帶絳蟲(chóng)(GenBank: AB274525.1)同源性為99%,不同堿基8個(gè),見(jiàn)表2;亞洲帶絳蟲(chóng)(GenBank:AB066580.1)同源性為97%,不同和缺失堿基共35個(gè);豬帶絳蟲(chóng)(GenBank: FN995661.1)同源性為87%。
2.4 核苷酸序列比對(duì)并構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù) 采用MEGA 構(gòu)建的絳蟲(chóng)cox1 和Cytb進(jìn)化樹(shù)見(jiàn)圖3和圖4,待測(cè)絳蟲(chóng)(Tapeworm)與牛帶絳蟲(chóng)形成一個(gè)單系,親緣關(guān)系最近。
表2 基因cox1和Cytb突變堿基
圖2 cox1基因核苷酸序列進(jìn)化樹(shù)
圖3 Cytb基因序列進(jìn)化樹(shù)
絳蟲(chóng)病是世界衛(wèi)生組織(WHO)公認(rèn)的熱帶病,常用的診斷方法有:蟲(chóng)體形態(tài)學(xué)檢查、血清抗體ELISA檢測(cè)、分子生物學(xué)鑒定。傳統(tǒng)的蟲(chóng)種鑒定主要依據(jù)蟲(chóng)體的形態(tài),比如頭節(jié)上有無(wú)頂圖和鉤,鏈體長(zhǎng)度,卵巢形態(tài)和睪丸長(zhǎng)度等。但牛帶絳蟲(chóng)和亞洲帶絳蟲(chóng)形態(tài)極其相似,并且部分地區(qū)還有絳蟲(chóng)與蟯蟲(chóng)混合感染的現(xiàn)象,所表現(xiàn)的癥狀與急性闌尾炎相似[1]。常用的分子生物學(xué)技術(shù)有多重PCR、RFLP-PCR、隨機(jī)引物DNA擴(kuò)增等[3]。寄生蟲(chóng)分子學(xué)特征的研究是學(xué)習(xí)和控制寄生蟲(chóng)的流行病學(xué)和傳染的關(guān)鍵因素。近幾年對(duì)寄生蟲(chóng)基因的研究頗多,例如全基因組測(cè)序[2]、線粒體遺傳變異[3]等。
線粒體基因組作為分子標(biāo)記被廣泛應(yīng)用于物種鑒定[4-6],為流行病學(xué)的研究提供來(lái)源。Cytb與cox1在不同種屬之間具有較高的保守性和特異性,可準(zhǔn)確、高效地評(píng)估種間或種內(nèi)的遺傳變異及其親緣關(guān)系[7]。cox1和Cytb完整序列的分析顯示,全世界存在兩個(gè)絳蟲(chóng)系譜:亞洲組和非洲或拉丁美洲組,即使絳蟲(chóng)因不同地理位置的改變而發(fā)生的遺傳變異也可準(zhǔn)確鑒定絳蟲(chóng)病[4],結(jié)合系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)可描述物種間的進(jìn)化關(guān)系,并推斷出物種之間的遺傳距離[5]。陳錚宏等[6]、張晨昊等[7]和羅浪等[8]以cox1和mtDNA-Cytb作為基因標(biāo)記,采集大理、怒江和臺(tái)灣等部分地區(qū)帶絳蟲(chóng)標(biāo)本,并成功鑒定了其種屬。本文早在20世紀(jì)末,就有學(xué)者[9; 10]針對(duì)采集臺(tái)灣地區(qū)的絳蟲(chóng)進(jìn)行了基因分析,提出并驗(yàn)證了亞洲帶絳蟲(chóng)可能是牛帶絳蟲(chóng)的一個(gè)亞種,王正蓉[11]并對(duì)此提議進(jìn)行了驗(yàn)證,認(rèn)為將亞洲帶絳蟲(chóng)劃分為牛帶絳蟲(chóng)亞種較為合適。
本文選用線粒體cox1和Cytb基因序列作為分子遺傳標(biāo)記, PCR擴(kuò)增陽(yáng)性結(jié)果經(jīng)測(cè)序發(fā)現(xiàn)序列長(zhǎng)度與GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)上記錄的cox1和Cytb序列長(zhǎng)度一致,分別是為1 620 bp和1 068 bp。Blast比對(duì)顯示:與牛帶絳蟲(chóng)同源性最高99%。進(jìn)化樹(shù)分析可知,序列分別與牛帶絳蟲(chóng)cox1和Cytb基因同屬于一個(gè)分支,并且Cytb序列與蒙古Cytb序列并為一支,同為亞洲地區(qū)。經(jīng)以上分子生物學(xué)信息分析,證明該蟲(chóng)種與牛帶絳蟲(chóng)為一個(gè)種,屬于亞洲組。
本文絳蟲(chóng)線粒體基因組系統(tǒng)拓?fù)浣Y(jié)構(gòu)顯示,被檢絳蟲(chóng)與亞洲帶絳蟲(chóng)構(gòu)成姊妹支,與牛帶絳蟲(chóng)隸屬于一個(gè)分支,與牛帶絳蟲(chóng)親緣關(guān)系最近。與以往試驗(yàn)數(shù)據(jù)相一致,進(jìn)一步證實(shí)該絳蟲(chóng)屬牛帶絳蟲(chóng)。在我國(guó)一些貧困地區(qū)由于衛(wèi)生條件差、設(shè)施缺乏,仍然存在人畜廁所不分的現(xiàn)象,且部分少數(shù)民族地區(qū)依然保留著吃生肉片和燒烤的習(xí)俗,給囊尾蚴病的傳播創(chuàng)造了有利條件[12]。及時(shí)控制和預(yù)防絳蟲(chóng)病的傳播有利于各地區(qū)畜牧業(yè)的發(fā)展和經(jīng)濟(jì)的提高,建議加強(qiáng)公共衛(wèi)生知識(shí)的學(xué)習(xí)、改正不良飲食習(xí)慣、切斷中間宿主的傳播,來(lái)控制和預(yù)防絳蟲(chóng)的傳播。
[1] Hassanjani S K, Fakhar M, Nematian J,etal. Co-infection with Enterobius vermicularis and Taenia saginata mimicking acute appendicitis[J]. Journal of Infection & Public Health, 2016, 9(4): 519-522.
[2] Wang S, Wang S, Luo Y,etal. Comparative genomics reveals adaptive evolution of Asian tapeworm in switching to a new intermediate host[J]. Nature Communications, 2016, 7: 12 845.
[3] Rostami S, Salavati R, Beech R N,etal. Genetic variability of Taenia saginata inferred from mitochondrial DNA sequences[J]. Parasitology Research, 2015, 114(4): 1 365-1 376.
[4] Solano D, Navarro J C, Leónreyes A,etal. Molecular analyses reveal two geographic and genetic lineages for tapeworms, Taenia solium and Taenia saginata, from Ecuador using mitochondrial DNA[J]. Experimental Parasitology, 2016, 171: 49-56.
[5] Erickson D L, Driskell A C. Construction and analysis of phylogenetic trees using DNA barcode data[J]. Methods Mol Biol, 2012, 858: 395-408.
[6] 陳崢宏,包懷恩,牟榮,等. 云南、貴州兩省38條人體帶絳蟲(chóng)的分子鑒別[J]. 中國(guó)病原生物學(xué)雜志,2010,5(04):263-265.
[7] 張晨昊, 楊毅梅. 云南西部三地帶絳蟲(chóng)生物多態(tài)性分子遺傳學(xué)標(biāo)記的研究[J]. 中國(guó)病原生物學(xué)雜志, 2009,4 (4): 283-286.
[8] 羅浪,楊毅梅. 云南大理白族帶絳蟲(chóng)mtDNA-Cytb序列測(cè)定及分析[J]. 中國(guó)人獸共患病學(xué)報(bào),2010,26(05):425-428.
[9] Zarlenga D S, Mcmanus D. Characterization and detection of a newly described Asian taeniid using cloned ribosomal DNA fragments and sequence amplification by the polymerase chain reaction[J]. 1991, 72(2): 174-183.
[10] Zarlenga D S, George M. Taenia crassiceps: cloning and mapping of mitochondrial DNA and its application to the phenetic analysis of a new species of Taenia from Southeast Asia[J].1996, 81(4): 604-607.
[11] 王正蓉,包懷恩. 用mtCO技術(shù)測(cè)定云南及貴州四地區(qū)的牛帶絳蟲(chóng)[J]. 中國(guó)寄生蟲(chóng)學(xué)與寄生蟲(chóng)病雜志,2003,21(01):22-25.
[12] Cho J, Jung B K, Lim H,etal. Four cases of Taenia saginata infection with an analysis of COX1 gene[J]. Korean Journal of Parasitology, 2014, 52(1): 79-83.
B
0529-6005(2017)09-0097-03
2017-04-06
中國(guó)博士后科學(xué)基金面上項(xiàng)目(2014M561308);吉林省科技廳項(xiàng)目(20160520180JH,20170307016NY);吉林省教育廳項(xiàng)目(2016193)
蔡亞南(1980-),男,講師,博士,主要研究方向?yàn)橹胁菟幙辜纳x(chóng)病研究, E-mail:caiyanan@jlau.edu.cn
趙麗娟(1992-),女,碩士生,主要研究方向?yàn)閯?dòng)物寄生蟲(chóng)病學(xué), E-mail:1005676023@qq.com
注:趙麗娟和蔡亞南對(duì)本文具有同等貢獻(xiàn)
趙權(quán), E-mail:zhaoquan0825@163.com