国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

一株產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶海洋細(xì)菌的篩選、鑒定及發(fā)酵優(yōu)化

2017-11-23 07:51:31來蔣麗劉姝胡晟源顧張慧王淑軍房耀維
生物技術(shù)通報 2017年11期
關(guān)鍵詞:裝液幾丁質(zhì)產(chǎn)酶

來蔣麗 劉姝, 胡晟源 顧張慧 王淑軍 房耀維,

(1. 淮海工學(xué)院海洋生命與水產(chǎn)學(xué)院,連云港 222005;2. 江蘇省海洋資源開發(fā)研究院,連云港 222005)

一株產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶海洋細(xì)菌的篩選、鑒定及發(fā)酵優(yōu)化

來蔣麗1劉姝1,2胡晟源1顧張慧1王淑軍2房耀維1,2

(1. 淮海工學(xué)院海洋生命與水產(chǎn)學(xué)院,連云港 222005;2. 江蘇省海洋資源開發(fā)研究院,連云港 222005)

利用對硝基-N-乙酰苯胺篩選培養(yǎng)基從海州灣海域海泥中篩選獲得產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶細(xì)菌MCDA02。經(jīng)過形態(tài)學(xué)、生理生化和16S rDNA序列分析初步鑒定該菌株為解角質(zhì)素微桿菌。通過單因素優(yōu)化和正交試驗優(yōu)化,得出最優(yōu)發(fā)酵條件。在單因素優(yōu)化基礎(chǔ)上,利用正交試驗優(yōu)化獲得菌株MCDA02最優(yōu)發(fā)酵條件為發(fā)酵溫度25℃,培養(yǎng)基起始pH7.0,裝液量50 mL/250 mL,幾丁質(zhì)3%,發(fā)酵時間48 h。在此發(fā)酵條件下,菌株MCDA02發(fā)酵水平達(dá)到158.47 U/mL,是優(yōu)化前的3.2倍。試驗結(jié)果為菌株MCDA02幾丁質(zhì)脫乙酰酶的進(jìn)一步研究奠定基礎(chǔ)。

幾丁質(zhì)脫乙酰酶;海洋細(xì)菌;鑒定;產(chǎn)酶條件

幾丁質(zhì)普遍存在于昆蟲的外骨骼,甲殼類動物的殼,大多數(shù)真菌和部分藻類的細(xì)胞壁,是僅次于纖維素居世界第二的天然有機(jī)生物大分子[1]。僅在水生生態(tài)系統(tǒng),幾丁質(zhì)每年的產(chǎn)量就超過1011t[2]。幾丁質(zhì)難溶于水和有機(jī)溶劑,在工業(yè)上難以應(yīng)用[3,4]。幾丁質(zhì)脫乙酰度達(dá)到55%以上得到殼聚糖。殼聚糖分子中有大量游離氨基,具有良好的生物相容性和生物可降解性,并具有抗癌、降低膽固醇、降血壓等生物活性,廣泛應(yīng)用于食品、醫(yī)藥、輕工、環(huán)保和農(nóng)業(yè)等領(lǐng)域[5,6]。

幾丁質(zhì)脫乙?;蓺ぞ厶怯谢瘜W(xué)和生物兩種方法?;瘜W(xué)法需耗費大量的40%NaOH,產(chǎn)品質(zhì)量不均一,且導(dǎo)致環(huán)境惡化[7]。生物法是利用幾丁質(zhì)脫乙酰酶(Chitin deacetylase,E.C. 3.5.1.41)催化幾丁質(zhì)脫乙?;Ρ然瘜W(xué)方法,生物法條件溫和,脫乙酰程度一致,且綠色環(huán)保。此外,將幾丁質(zhì)脫乙酰酶與幾丁質(zhì)酶聯(lián)用,可以生產(chǎn)出化學(xué)法不能生產(chǎn)的具有特定乙酰化位置,以及分子質(zhì)量分布范圍窄的殼聚糖產(chǎn)品[8-10]。

目前,產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶的真菌菌株報道較多,有被孢霉屬[11]、根霉屬[12]、帚霉屬[13]等。產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶的細(xì)菌有產(chǎn)堿桿菌屬[14]和紅球菌屬[15]。相對于真菌,細(xì)菌產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶速率更快[5,16]。目前報道的幾丁質(zhì)脫乙酰酶存在產(chǎn)酶活力低、脫乙酰效果差,催化溫度較高等問題[17]。海洋中存在大量幾丁質(zhì),蘊含著大量分泌幾丁質(zhì)脫乙酰酶的微生物。因此,本研究從海洋樣品中篩選產(chǎn)低溫幾丁質(zhì)脫乙酰酶細(xì)菌,對菌株進(jìn)行鑒定和發(fā)酵條件研究。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 樣品采集 海泥樣品采集于中國黃海海州灣燕尾港海域,采集后置于冰盒,并盡快帶回實驗室進(jìn)行試驗研究。

1.1.2 培養(yǎng)基 (1)2216E培養(yǎng)基:蛋白胨5 g/L,酵母粉1 g/L,F(xiàn)ePO40.1 g/L,瓊脂20 g/L,陳海水配制,pH7.0;(2)篩選培養(yǎng)基:膠體幾丁質(zhì) 2 g/L,K2HPO40.7 g/L,KH2PO40.3 g/L,MgSO40.5 g/L,對硝基-N-乙酰苯胺0.2 g/L,陳海水配制,pH7.0;(3)種子培養(yǎng)基:酵母粉1 g/L,蛋白胨5 g/L,NaCl 10 g/L,陳海水配制,pH7.0;(4)發(fā)酵培養(yǎng)基:玉米漿5 g/L,可溶性淀粉 3 g/L,(NH4)2SO43 g/L,KH2PO41.5 g/L,MgSO40.5 g/L,粉末幾丁質(zhì)10 g/L,陳海水配制,pH 8.0。

1.1.3 藥品與儀器 幾丁質(zhì)由江蘇澳新生物工程有限公司提供,其它生化試劑均為分析純購于上海博微生物科技有限公司,引物由南京思普金生物公司合成。高速冷凍離心機(jī)購于美國SIGMA公司,分光光度計購于杭州明基科學(xué)儀器有限公司,Nikon 90i全電動顯微鏡購于上海普赫光電科技有限公司。

1.2 方法

1.2.1 產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶菌株的篩選 稱取1 g海泥,加入9 mL滅菌陳海水,攪拌均勻后用滅菌陳海水進(jìn)行10倍濃度梯度稀釋。分別吸取10-4、10-5、10-6的稀釋液100 μL涂布3個平板。平板倒置于25℃培養(yǎng),觀察菌落生長及變色圈產(chǎn)生情況。挑選產(chǎn)生黃色變色圈的菌株在2216E培養(yǎng)基三區(qū)劃線純化至單菌落后,斜面保藏。菌株接種于種子培養(yǎng)液培養(yǎng),再以1%的接種量接種至發(fā)酵培養(yǎng)基,25℃,180 r/min培養(yǎng)60 h后,將發(fā)酵液8 000 r/min離心10 min,上清液作為粗酶液測定幾丁質(zhì)脫乙酰酶活性。

1.2.2 菌株MCDA02的鑒定 根據(jù)伯杰氏細(xì)菌鑒定手冊,對純化培養(yǎng)的菌株MCDA02進(jìn)行形態(tài)學(xué)觀察和生理生化鑒定[18]。

1.2.3 菌株的16S rDNA序列擴(kuò)增及分析 利用基因組提取試劑盒提取菌株的基因組,進(jìn)行16S rDNA的擴(kuò)增。PCR通用引物為:27F:5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3' 1492R:5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3',反應(yīng)體系為:PCR mix(21 μL),上下游引物(各 1 μL),DNA 模板(2 μL)。反應(yīng)程序 :94℃ 變性 5 min;94℃變性 30 s,54℃退火30 s,72℃延伸90 s,32個循環(huán);72℃終延伸10 min。

擴(kuò)增產(chǎn)物送至南京思普金生物公司進(jìn)行測序,所得的序列上傳GenBank。通過Blast程序與GenBank數(shù)據(jù)庫中的序列進(jìn)行同源性比對,并用MEGA7.0軟件中的Neighbor-Joining法構(gòu)建進(jìn)化樹。1.2.4 單因素試驗優(yōu)化發(fā)酵產(chǎn)酶條件 將種子液以1%接種量接種至起始pH為8.0的發(fā)酵培養(yǎng)基。以25℃、裝液量30%、180 r/min發(fā)酵60 h為基本條件,分別對發(fā)酵時間、發(fā)酵溫度、裝液量、起始pH、誘導(dǎo)劑濃度進(jìn)行單因素優(yōu)化。

1.2.5 正交法優(yōu)化發(fā)酵產(chǎn)酶條件 采用正交法得出菌株的最佳發(fā)酵條件。選擇發(fā)酵時間、溫度、起始pH、裝液量、誘導(dǎo)劑濃度為5個單因素,每個因素取4個水平,測定幾丁質(zhì)脫乙酰酶的酶活,進(jìn)行L16(45)正交試驗,每個試驗重復(fù)3次。1.2.6 幾丁質(zhì)脫乙酰酶酶活力的測定 試管中加入30℃預(yù)保溫的0.05 mol/L pH7.0磷酸緩沖液3 mL,200 mol/L的對硝基乙酰苯胺水溶液1 mL,酶液1 mL,于30℃水浴反應(yīng)15 min,沸水浴終止酶促反應(yīng),8 000 r/min離心10 min,測定上清液的吸光度。以添加1 mL同樣濃度沸水浴滅活15 min的酶液作為對照。酶活單位(U)定義:在上述反應(yīng)條件下每小時產(chǎn)生1 μg對硝基苯胺所需要的酶量定義為一個酶活力單位。

1.2.7 數(shù)據(jù)處理與分析 每組試驗設(shè)3組平行,重復(fù)試驗3次,試驗結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)方差(±s)(n=3)表示,采用SPSS Statistics19.0軟件對試驗結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計分析。

2 結(jié)果

2.1 產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶菌株的篩選和鑒定

2.1.1 產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶菌株的篩選 將稀釋的土樣涂布于含對硝基-N-乙酰苯胺的篩選培養(yǎng)基,挑選產(chǎn)生黃色變色圈的菌落,獲得能夠產(chǎn)生變色圈的菌株5株。菌株MCDA02產(chǎn)生的黃色變色圈見圖1。用接種環(huán)將產(chǎn)生變色圈的菌株接入種子培養(yǎng)液培養(yǎng)24 h后,以1% 接種量接種至發(fā)酵培養(yǎng)基,25℃,180 r/min培養(yǎng)60 h。發(fā)酵液8 000 r/min離心10 min,測定發(fā)酵上清中幾丁質(zhì)脫乙酰酶的酶活。結(jié)果見表1,菌株MCDA02酶活最高,達(dá)到48.13 U/mL。

圖1 菌株MCDA02在篩選平板上生成的變色圈

表1 菌株產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶酶活

2.1.2 菌株MCDA02的形態(tài)學(xué)特征 菌株MCDA02接種于2216E固體培養(yǎng)基,25℃培養(yǎng)48 h后,菌落形態(tài)為黃色,半透明,表面光滑濕潤,圓形,邊緣齊整,中心稍突起,易挑取(圖2-A)。對菌株MCDA02進(jìn)行革蘭氏染色觀察,該菌株為革蘭氏陽性短桿菌,無芽孢(圖2-B)。

圖2 菌株MCDA02的形態(tài)學(xué)特征

2.1.3 菌株MCDA02的生理生化特征 菌株MCDA02的生理生化特征見表2。該菌株淀粉水解、吲哚試驗、硫化氫產(chǎn)生、精氨酸脫羧酶試驗均呈陽性,檸檬酸鹽利用、接觸酶、明膠液化、VP試驗、甲基紅、硝酸鹽還原試驗均為陰性。

表2 MCDA02菌株的生理生化試驗結(jié)果

2.2 菌株MCDA02的16S rDNA鑒定

將菌株MCDA02的16S rDNA擴(kuò)增產(chǎn)物測序獲得的1 395 bp序列提交至GenBank(登錄號:KY385626),并與GenBank數(shù)據(jù)庫中序列進(jìn)行同源性比對,發(fā)現(xiàn)與菌株Microbacterium keratanolyticum OU01(登錄號:DQ118082.1)16S rDNA相似性達(dá)100%。構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹見圖3,菌株MCDA02與Microbacterium keratanolyticum OU01親緣關(guān)系最近。

圖3 基于MCDA02菌株16S r DNA序列構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹

2.3 單因素試驗優(yōu)化發(fā)酵產(chǎn)酶條件

2.3.1 發(fā)酵時間對菌株MCDA02產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶的影響 發(fā)酵時間對菌株MCDA02產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶的影響如圖4。發(fā)酵時間達(dá)到48 h時,其相對酶活達(dá)到最高。隨著發(fā)酵時間的進(jìn)一步增加,酶活呈下降趨勢。

圖4 發(fā)酵時間對菌株MCDA02產(chǎn)酶的影響

2.3.2 發(fā)酵溫度對菌株MCDA02產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶的影響 發(fā)酵溫度對菌株MCDA02產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶的影響如圖5,幾丁質(zhì)脫乙酰酶酶活從10℃開始隨發(fā)酵溫度的升高而增大,在25-35℃范圍內(nèi)酶活較高,最適發(fā)酵溫度為30℃,當(dāng)發(fā)酵溫度達(dá)到40℃以上時,酶活開始迅速下降。

圖5 發(fā)酵溫度對菌株MCDA02產(chǎn)酶的影響

2.3.3 培養(yǎng)基起始pH對菌株MCDA02產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶的影響 培養(yǎng)基起始pH對菌株MCDA02產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶的影響如圖6,發(fā)酵產(chǎn)酶的最適pH為8.0,培養(yǎng)基的起始pH為4.0或11.0時,該酶的相對酶活較低。但在pH為7.0-9.0時,酶活較高,可保持90%以上的酶活。

2.3.4 裝液量對菌株MCDA02產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶的影響 裝液量對菌株MCDA02產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶的影響如圖7,裝液量在10%-20%之間時,菌株MCDA02所產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶的相對酶活較高。裝液量高于20%時,酶活下降顯著。

2.3.5 誘導(dǎo)劑濃度對菌株MCDA02產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶的影響 誘導(dǎo)劑濃度對菌株MCDA02產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶的影響如圖8。粉末幾丁質(zhì)濃度為0.5%-3.0%時,其相對酶活呈上升趨勢。粉末幾丁質(zhì)濃度為3.0%-6.0%時,呈下降趨勢。誘導(dǎo)劑的最適濃度為3.0%。

圖6 起始pH對菌株MCDA02產(chǎn)酶的影響

圖7 裝液量對菌株MCDA02產(chǎn)酶的影響

圖8 幾丁質(zhì)濃度對菌株MCDA02產(chǎn)酶的影響

2.4 正交法優(yōu)化發(fā)酵產(chǎn)酶條件

L16(45)的正交試驗結(jié)果見表3。根據(jù)試驗結(jié)果,計算kn值和R值,得出的最優(yōu)發(fā)酵方案為:幾丁質(zhì)濃度為3%,培養(yǎng)基起始pH為7.0,裝液量為20%,在溫度為25℃的條件下發(fā)酵培養(yǎng)48 h。在此發(fā)酵條件下,菌株MCDA02發(fā)酵水平達(dá)到158.47 U/mL,是優(yōu)化前的3.2倍。影響發(fā)酵結(jié)果的5個因素中,發(fā)酵溫度、培養(yǎng)基起始pH、誘導(dǎo)劑濃度的R值較大,發(fā)酵時間、裝液量的R值較小。對比各個因素及交互對比的極差R的大小,5個因素對發(fā)酵結(jié)果的影響力依次為:發(fā)酵溫度>誘導(dǎo)劑濃度>培養(yǎng)基起始pH>發(fā)酵時間>裝液量。

3 討論

采用生物法,利用殼甲殼素制備殼聚糖較傳統(tǒng)化學(xué)方法優(yōu)勢明顯。篩選幾丁質(zhì)脫乙酰酶產(chǎn)生菌,發(fā)酵制備幾丁質(zhì)脫乙酰酶是生物法制備殼聚糖的前提條件[12]。目前幾丁質(zhì)脫乙酰酶產(chǎn)生菌以絲狀真菌居多,細(xì)菌較少。研究發(fā)現(xiàn)細(xì)菌幾丁質(zhì)脫乙酰酶產(chǎn)酶水平較高。目前報道的多數(shù)幾丁質(zhì)脫乙酰酶活性較低,催化最適溫度高[16]。海洋里還有大量的幾丁質(zhì),且環(huán)境奇特多樣,蘊含有大量的催化特性不同的幾丁質(zhì)脫乙酰酶產(chǎn)生菌,成為該酶產(chǎn)生菌的研究熱點。

微生物發(fā)酵條件對菌株產(chǎn)酶有顯著的影響,通過發(fā)酵優(yōu)化可以顯著提高酶的發(fā)酵水平。關(guān)于發(fā)酵優(yōu)化提高微生物產(chǎn)酶的報道與日俱增,取得了顯著的成果。目前尚未見解角質(zhì)素微桿菌產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶的報道。本研究通過發(fā)酵條件優(yōu)化后該菌株發(fā)酵水平達(dá)到158.47 U/mL,具有工業(yè)化應(yīng)用的潛力。

微生物發(fā)酵條件對菌株產(chǎn)酶有顯著的影響,通過發(fā)酵優(yōu)化可以顯著提高酶的發(fā)酵水平。應(yīng)聰萍等[19]針對已篩選出的一株能生產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶的海洋絲狀真菌并研究了其最佳發(fā)酵培養(yǎng)基。通過試驗得出該菌的最佳發(fā)酵培養(yǎng)基為:7 g/L葡萄糖,7 g/L酵母浸膏,0.75 g/L氯化鈣,1.25 g/L幾丁質(zhì)和1.4%NaCl,發(fā)酵108 h。目前對幾丁質(zhì)脫乙酰酶理化性質(zhì)的研究主要集中于溫度、pH 值、金屬離子及反應(yīng)底物對酶催化的影響,有的研究者也考慮了在培養(yǎng)基中添加生長激素、胰島素等因子提高酶活。

同時,不同性質(zhì)的底物也影響幾丁質(zhì)脫乙酰酶的催化活性。本研究將幾丁質(zhì)通過破碎、高溫等處理后將其作為催化反應(yīng)的底物。結(jié)果表明,經(jīng)過處理的幾丁質(zhì)作底物,酶的脫乙酰度顯著提高。多項研究表明乙二醇幾丁質(zhì)是幾丁質(zhì)脫乙酰酶作用較為理想的反應(yīng)底物[12]。

表3 L16(45)正交試驗結(jié)果分析

隨著研究者對幾丁質(zhì)脫乙酰酶研究的逐漸深入。其研究的范圍不僅是從自然界分離純化到幾丁質(zhì)脫乙酰酶,還可通過基因工程的手段對該酶的基因進(jìn)行研究。賈志娟[20]通過對北極深海沉積物的宏基因組測序,獲得了一種新的幾丁質(zhì)脫乙酰酶基因。閆曉萍等[21]利用RACE-PCR的方法獲得了編碼美國白蛾幾丁質(zhì)脫乙酰酶2基因全長cDNA序列,在大腸桿菌中成功表達(dá)61 kD目的蛋白。

今后還可通過定點突變、射線誘變等方法對幾丁質(zhì)脫乙酰酶進(jìn)行改造,進(jìn)一步優(yōu)化其酶學(xué)性質(zhì)、提高酶的耐受性等,為幾丁質(zhì)脫乙酰酶實現(xiàn)大規(guī)模工業(yè)應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。

4 結(jié)論

本研究分離得到一株產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶海洋細(xì)菌MCDA02,鑒定為解角質(zhì)素微桿菌。通過單因素和正交優(yōu)化發(fā)酵條件,得到最優(yōu)發(fā)酵條件為:誘導(dǎo)劑濃度為3%,培養(yǎng)基起始pH為7.0,裝液量為20%,在溫度為25℃的條件下發(fā)酵培養(yǎng)48 h。在此條件下,產(chǎn)酶量達(dá)到158.47 U/mL,是優(yōu)化前產(chǎn)酶量的3.2倍。

[1]Khor E, Lim LY. Implantable applications of chitin and chitosan[J]. Biomaterials, 2003, 24(13):2339-2349.

[2]Hou J, Han J, Cai L, et al. Characterization of genes for chitin catabolism in Haloferax mediterranei[J]. Appl Microbiol Biotechnol, 2014, 98(3):1185-1194.

[3]Win N, Stevens W. Shrimp chitin as substrate for fungal chitin deacetylase[J]. Appl Microbiol Biotechnol, 2001, 57(3):334-341.

[4]Bartnicki-Garcia S, Bracker CE, Reyes E, et al. Isolation of chitosomes from taxonomically diverse fungi and synthesis of chitin microfibrils in vitro[J]. Experimental Mycology, 1978, 2(2):173-192.

[5]張菁菁, 董文賓, 緱敬軒. 幾丁質(zhì)脫乙酰酶菌株的篩選鑒定及酶學(xué)性質(zhì)[J]. 食品工業(yè)科技, 2012, 33(6):244-246.

[6]Songsiriritthigul C, Lapboonrueng S, Pechsrichuang P, et al.Expression and characterization of Bacillus licheniformis chitinase(ChiA), suitable for bioconversion of chitin waste[J].Bioresource Technology, 2010, 101(11):4096-4103.

[7]Methacanon P, Prasitsilp M, Pothsree T, et al. Heterogeneous N-deacetylation of squid chitin in alkaline solution[J].Carbohydrate Polymers, 2003, 52(2):119-123.

[8]王皓, 吳麗, 朱小花. 甲殼素脫乙酰酶的研究概況及展望[J].中國生物工程雜志, 2015, 35(1):96-103.

[9]Wang SL, Peng JH, Liang TW, et al. Purification and characterization of a chitosanase from Serratia marcescens TKU011[J].Carbohydrate Research, 2008, 343(8):1316-1323.

[10]Kuroiwa T, Noguchi Y, Nakajima M, et al. Production of chitosan oligosaccharides using chitosanase immobilized on amylose-coated magnetic nanoparticles[J]. Process Biochemistry, 2008, 43(1):62-69.

[11]Zhao Y, Nguyen V, Jo G, et al. Purification and characterization of chitin deacetylase from Mortierella sp. DY-52[J]. Journal of Biotechnology, 2008, 136:S304.

[12]Chatterjee S, Chatterjee S, Chatterjee BP, et al. Enhancement of growth and chitosan production by Rhizopus oryzae in whey medium by plant growth hormones[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2008, 42(2):120-126.

[13]Cai J, Yang J, Du Y, et al. Purification and characterization of chitin deacetylase from Scopulariopsis brevicaulis[J]. Carbohydrate Polymers, 2006, 65(2):211-217.

[14]Li H, Xu H, Li S, et al. Strain improvement and metabolic flux modeling of wild-type and mutant Alcaligenes sp. NX-3 for synthesis of exopolysaccharide welan gum[J]. Biotechnology and Bioprocess Engineering, 2010, 15(5):777-784.

[15]Sun Y, Zhang J, Wu S, et al. Statistical optimization for production of chitin deacetylase from Rhodococcus erythropolis HG05[J].Carbohydrate Polymers, 2014, 102:649-652.

[16]Wang Y, Xia G, Wu C, et al. Porous chitosan doped with graphene oxide as highly effective adsorbent for methyl orange and amido black 10B[J]. Carbohydrate Polymers, 2015, 115:686-693.

[17]劉建軍, 趙祥穎, 劉麗萍. 幾丁質(zhì)脫乙酰酶(CDA)的研究進(jìn)展[J]. 山東食品發(fā)酵, 2007(4):40-46.

[18]Buchana RE, Gibbons NE. Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology[M]. 8th Edition. Beijing:Science Press, 1984:382-533.

[19]應(yīng)聰萍, 王瑤, 李永成. 一株產(chǎn)幾丁質(zhì)脫乙酰酶絲狀真菌的發(fā)酵條件優(yōu)化研究[J]. 食品工業(yè)科技, 2016(1):170-174.

[20]賈志娟. 北極深海沉積物宏基因組文庫構(gòu)建及一種新的幾丁質(zhì)脫乙酰酶基因鑒定[D]. 武漢:華中師范大學(xué), 2012.

[21]閆曉平, 趙丹, 郭巍, 等. 美國白蛾幾丁質(zhì)脫乙酰酶的克隆,表達(dá)及酶學(xué)性質(zhì)[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué), 2017, 50(5):849-858.

Screening and Identification of a Marine Bacterium Producing Chitin Deacetylase and Optimization of Its Fermentation Condition

LAI Jiang-li1LIU Shu1,2HU Sheng-yuan1GU Zhang-hui1WANG Shu-jun2FANG Yao-wei1,2
(1. College of Fisheries and Marine Life,Huaihai Institute of Technology,Lianyungang 222005;2. Jiangsu Marine Resources Development Research Institute,Lianyungang 222005)

A strain MCDA02 producing chitin deacetylase was screened with the media added nitro-N-acetyl aniline from the marine mud of Haizhou bay. Then,it was identified as Microbacterium keratanolyticum through morphological,biochemical characteristics,and 16S rDNA sequence analysis. With single-factor strategy and orthogonal experiments,the fermentation condition was optimized as followings:fermentation period of 48 h,initial pH of 7.0,culture temperature of 30℃,50 mL of liquid medium in a 250 mL flask,and 3% chitin. Under the optimized conditions,the highest chitin deacetylase activity of strain MCDA02 reached 158.47 U/mL,which was about 3.2 times of that before optimization. The results laid a foundation for further study of the chitin deacetylase from the strain MCDA02.

chitin deacetylase;marine bacteria;identification;fermentation condition

10.13560/j.cnki.biotech.bull.1985.2017-0413

2017-05-21

江蘇省自然科學(xué)基金面上項目(BK20151282),江蘇省高校“青藍(lán)工程”,江蘇省“六大人才高峰”第十二批高層次人才項目(swyy-195),中國博士后科學(xué)基金(160034),青島博士后基金,第48批“留學(xué)歸國人員”科研啟動基金,淮海工學(xué)院科研創(chuàng)新基金(Z2014016)

來蔣麗,女,碩士研究生,研究方向:海洋微生物生物技術(shù);E-mail:laijiangli199310@163.com

房耀維,男,副教授,研究方向:海洋微生物生物技術(shù);E-mail:foroei@163.com

(責(zé)任編輯 李楠)

猜你喜歡
裝液幾丁質(zhì)產(chǎn)酶
飼用枯草芽孢桿菌分離純化及培養(yǎng)條件優(yōu)化*
廣州化工(2023年17期)2024-01-25 05:15:24
產(chǎn)幾丁質(zhì)酶的無色桿菌ZWW8的發(fā)酵產(chǎn)酶及酶學(xué)性質(zhì)研究
微生物幾丁質(zhì)酶的研究進(jìn)展及應(yīng)用現(xiàn)狀
中國釀造(2017年8期)2017-09-03 06:20:01
Technology optimization of Medicago sativa leaf protein separation with foam fractionation
纖維素酶發(fā)酵產(chǎn)酶條件優(yōu)化探討
一株降解β-胡蘿卜素細(xì)菌的分離鑒定及產(chǎn)酶條件優(yōu)化
中國釀造(2016年12期)2016-03-01 03:08:19
南大西洋熱液區(qū)沉積物可培養(yǎng)細(xì)菌的多樣性分析和產(chǎn)酶活性鑒定
纖維堆囊菌產(chǎn)埃博霉素B的發(fā)酵條件優(yōu)化
虎奶菇產(chǎn)纖維素酶條件優(yōu)化的研究
中國食用菌(2013年2期)2013-11-21 03:37:52
幾丁質(zhì)酶及其在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中的應(yīng)用
浙江柑橘(2013年2期)2013-01-22 01:34:29
玉屏| 丰原市| 六安市| 秀山| 玛纳斯县| 平武县| 永顺县| 寿宁县| 临城县| 平果县| 平遥县| 攀枝花市| 突泉县| 南安市| 罗定市| 阳新县| 龙口市| 临海市| 栾川县| 新泰市| 顺昌县| 铁力市| 出国| 类乌齐县| 深水埗区| 布尔津县| 井研县| 鄱阳县| 清河县| 镇平县| 北票市| 滕州市| 息烽县| 伊宁县| 库伦旗| 庄河市| 宿松县| 通城县| 新泰市| 阿鲁科尔沁旗| 安仁县|