国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

基于人工模擬抗體的酶聯(lián)檢測技術(shù)在食品安全檢測中的應(yīng)用

2017-12-11 09:17何彥平邢仕歌王燕飛齊小花鄒明強(qiáng)
食品科學(xué) 2017年23期
關(guān)鍵詞:多肽靈敏度特異性

何彥平,金 涌,陳 達(dá),邢仕歌,王燕飛,薛 強(qiáng),齊小花,鄒明強(qiáng),*

(1.中國檢驗(yàn)檢疫科學(xué)研究院,北京 100123;2.天津大學(xué)精密儀器與光電子工程學(xué)院,天津 300072;3.中檢國研(北京)科技有限公司,北京 100123)

基于人工模擬抗體的酶聯(lián)檢測技術(shù)在食品安全檢測中的應(yīng)用

何彥平1,2,金 涌1,3,陳 達(dá)2,邢仕歌1,王燕飛1,3,薛 強(qiáng)1,3,齊小花1,3,鄒明強(qiáng)1,3,*

(1.中國檢驗(yàn)檢疫科學(xué)研究院,北京 100123;2.天津大學(xué)精密儀器與光電子工程學(xué)院,天津 300072;3.中檢國研(北京)科技有限公司,北京 100123)

廣義人工模擬抗體包括適配體、重組受體、分子印跡聚合物及多肽。人工模擬抗體與傳統(tǒng)抗體相比優(yōu)勢顯著,其具有易實(shí)現(xiàn)工業(yè)化生產(chǎn)、成本低、保存方便、可反復(fù)使用等特點(diǎn)。酶聯(lián)檢測技術(shù)是人工模擬抗體在食品安全檢測中應(yīng)用最為廣泛的技術(shù)。本文綜述了人工模擬抗體的特點(diǎn)以及基于人工模擬抗體的酶聯(lián)檢測技術(shù)在食品安全檢測中的應(yīng)用。

適配體;重組受體;分子印跡聚合物;多肽;人工模擬抗體;酶聯(lián)檢測技術(shù);食品安全檢測

人工模擬抗體是廣義上的抗體,其模擬抗體-抗原專一性相互作用,以分子識別為基礎(chǔ)與目標(biāo)物特異性結(jié)合,包括適配體[1-4]、重組受體[5-6]、分子印跡聚合物(molecularly imprinted polymer,MIP)[7-10]和多肽[11]。之前的研究中,人工模擬抗體被定義為一種具有分子識別能力的新型高分子材料(MIP)[12]。隨著新型檢測元件的發(fā)展,人工模擬抗體的范圍越來越廣,其包括單鏈DNA或RNA分子、重組蛋白、新型高分子材料和多肽,因具有分子識別能力而作為檢測元件應(yīng)用于多種檢測技術(shù)。近年來,人工模擬抗體的研究聚焦于替代傳統(tǒng)抗體應(yīng)用于疾病診斷[13-14]、食品安全檢測等領(lǐng)域,以降低檢測成本,提高檢測的穩(wěn)定性和靈敏度。在食品安全檢測中,適配體、重組受體、MIP和多肽可以替代傳統(tǒng)抗體作為檢測元件,并在酶聯(lián)檢測方法中有較多應(yīng)用。

酶聯(lián)檢測方法發(fā)展于20世紀(jì)70年代,具有高準(zhǔn)確性和特異性?;谌斯つM抗體,酶聯(lián)檢測方法以人工模擬抗體作為檢測元件,酶作為標(biāo)記物,因成本低、檢測元件來源廣泛等優(yōu)勢在食品安全檢測中應(yīng)用日益廣泛。本文將對人工模擬抗體以及基于人工模擬抗體酶聯(lián)檢測技術(shù)在食品安全檢測中的應(yīng)用展開論述。

1 基于人工模擬抗體的酶聯(lián)檢測技術(shù)在食品安全檢測中的應(yīng)用

1.1 基于適配體的酶聯(lián)檢測技術(shù)在食品安全檢測中的應(yīng)用

圖1 人工模擬抗體與目標(biāo)物示意圖Fig. 1 Schematic illustration of artif i cial antibodies and targets

寡核苷酸適配體,又稱適配體[1-2],是通過指數(shù)富集的配體系統(tǒng)進(jìn)化(systematic evolution of ligands by exponential enrichment,SELEX)技術(shù)篩選得到的能夠與相應(yīng)配體靶分子特異性緊密結(jié)合的單鏈DNA或RNA分子。單鏈寡核苷酸堿基之間的相互作用會形成許多空間構(gòu)象(如發(fā)卡、假結(jié)、口袋或G-四堿基體等),基于這些獨(dú)特的三維空間構(gòu)象匹配、序列中堿基的堆積作用、帶電基團(tuán)之間的靜電作用或氫鍵作用,適配體實(shí)現(xiàn)與靶分子的高親和力高特異性結(jié)合[1,15](圖1A)。與傳統(tǒng)抗體相比[16],適配體的優(yōu)點(diǎn)是靶分子范圍廣、篩選周期短等;但RNA適配體易被酶降解,多數(shù)適配體親和力略差于傳統(tǒng)抗體(表1)。

表1 人工模擬抗體與傳統(tǒng)抗體比較Table 1 Comparison of artif i cial and conventional antibodies

在食品安全檢測中,由于適配體易于篩選和制備,基于適配體的酶聯(lián)檢測技術(shù)有著廣泛的應(yīng)用(表2)。Barthelmebs等[17]建立了基于適配體酶聯(lián)檢測直接競爭模式,可以快速檢測紅酒中的赭曲霉毒素A。該方法是以HRP作為標(biāo)記酶,四甲基聯(lián)苯胺(tetramethylbenzidine,TMB)作為底物的比色法。赭曲霉毒素A適配體的平衡解離常數(shù)(KD)為130 nmol/L,與赭曲霉毒素B和苯基丙氨酸幾乎無交叉反應(yīng)。

Wang Sai等[18]建立了基于適配體酶聯(lián)檢測的間接競爭方法快速檢測蜂蜜里的四環(huán)素殘留。四環(huán)素適配體的KD是63.6 nmol/L,與四環(huán)素類似物幾乎無交叉反應(yīng);與其他方法相比,該方法有更高的靈敏度(檢測限是9.6×10-3ng/mL)、更寬的線性范圍(0.01~100 ng/mL)和更高的回收率(蜂蜜中平均回收率為93.23%)。Wang Yuankai等[19]篩選出玉米赤霉烯酮單抗的適配體,通過間接競爭酶聯(lián)方法提高玉米赤霉烯酮檢測限,拓寬了適配體在酶聯(lián)檢測技術(shù)中的應(yīng)用,將檢測物單抗的適配體運(yùn)用到檢測方法中,提高了檢測的特異性和靈敏度。

表2 基于人工模擬抗體酶聯(lián)檢測技術(shù)在食品安全中的應(yīng)用Table 2 Applications of enzyme-linked assays based on arti fi cial antibodies in food safety detection

Nie Ji等[20]首次建立了基于適配體的夾心法檢測可卡因。該方法將可卡因的適配體剪成2 個片段,一個片段固定到96 孔板上,另一個片段標(biāo)記生物素;當(dāng)2 個片段和目標(biāo)物同時出現(xiàn)時,就會形成一個適配體片段/目標(biāo)物的復(fù)合物,實(shí)現(xiàn)了夾心法檢測目標(biāo)物,提高可卡因檢測的特異性和靈敏度。

綜上所述,目前基于適配體酶聯(lián)檢測技術(shù)包括直接競爭法、間接競爭法和夾心法。夾心法創(chuàng)造性地將一個適配體剪成2 段應(yīng)用到分析技術(shù)中,可有效提高檢測的靈敏度和特異性,是基于適配體酶聯(lián)檢測技術(shù)的一個重要發(fā)展方向。

1.2 基于重組受體的酶聯(lián)檢測技術(shù)在食品安全檢測中的應(yīng)用

受體(receptor)[29-30]是一類存在于細(xì)胞膜或細(xì)胞內(nèi)的特殊蛋白質(zhì),其能與細(xì)胞外專一信號分子結(jié)合進(jìn)而激活細(xì)胞內(nèi)一系列生物化學(xué)反應(yīng),使細(xì)胞對外界刺激產(chǎn)生相應(yīng)效應(yīng)。重組受體[21-23]可通過基因工程的方法在細(xì)胞中大量表達(dá),利用受體可特異結(jié)合信號物質(zhì)(配體)的特性,可將純化的重組受體作為檢測元件應(yīng)用到分析技術(shù)中(圖1B)。重組受體可以對一類藥物進(jìn)行多殘留檢測,如Liang Xiao等[21]建立酶聯(lián)磺胺受體(dihydropteroate synthase,DHPS)檢測方法,可以檢測9 種磺胺類藥物和對氨基苯甲酸,而抗體大多只能特異性的檢測一種或少數(shù)幾種物質(zhì)(表1);但重組受體由于分子質(zhì)量較大,在表達(dá)純化過程中易由于不正確折疊而失去活性。

在食品安全檢測中,基于受體的酶聯(lián)檢測技術(shù)因能實(shí)現(xiàn)多殘留檢測從而應(yīng)用日益廣泛(表2)。Seifert等[5]以POD為標(biāo)記酶,建立基于人類雌激素α受體酶聯(lián)檢測方法,高通量低成本地篩查水樣品中的17 beta-雌二醇。當(dāng)配體是17 beta-雌二醇時,該受體的KD是2.33×10-10mol/L,與17 beta-雌二醇類似物有較強(qiáng)交叉反應(yīng),與其他物質(zhì)無交叉反應(yīng)。Cheng Guyue等[23]建立了一個基于敘利亞倉鼠beta2-腎上腺素受體酶聯(lián)檢測方法,該方法可以篩查動物飼料中的3 個beta-激動劑(RAC、克倫特羅和沙丁胺醇),對RAC的靈敏度是5.20 μg/L,對克倫特羅和沙丁胺醇的交叉反應(yīng)分別是87.7%和58.5%;與傳統(tǒng)方法比,該方法整個過程只需要45 min(更快速)且可同時檢測一組beta-激動劑(高通量)。Zhang Jing等[22]運(yùn)用可溶的青霉素結(jié)合蛋白3(soluble form of penicillin-binding protein 3,sPBP3)建立了酶聯(lián)檢測方法檢測牛乳中的青霉素類和頭孢菌素類抗生素。該受體與27 種beta-內(nèi)酰胺類藥物有很強(qiáng)交叉反應(yīng);建立的方法可以檢測11 種青霉素類和16 種頭孢菌素類抗生素,且檢測限都在歐盟設(shè)定的最大殘留限定(maximum residue levels,MRLs)之下。

基于受體酶聯(lián)檢測技術(shù)檢測目標(biāo)物數(shù)量最高可達(dá)27種,可以有效地提高檢測效率,降低檢測成本,最大限度滿足食品安全檢測中多殘留檢測的要求。由于重組受體的特異性弱,該技術(shù)無法區(qū)分有交叉反應(yīng)的目標(biāo)物,不適合食品安全中特定目標(biāo)物的檢測。

1.3 基于MIP酶聯(lián)檢測技術(shù)在食品安全檢測中的應(yīng)用

MIP[31]是一種具有分子識別能力的新型高分子材料。在模板分子存在的情況下,功能單體和交聯(lián)劑由引發(fā)劑引發(fā)而發(fā)生共聚合。由于模板分子和功能單體之間存在共價或非共價的作用,功能單體按照一定的順序排列在模板分子的周圍。洗去模板分子后,這樣在聚合物中就留下與模板分子大小、形狀、功能團(tuán)互補(bǔ)的孔穴,表現(xiàn)出分子配位識別效應(yīng)(圖1C)。MIP與傳統(tǒng)抗體相比[7,31-32],對制備技術(shù)要求不高,并且具有良好的耐酸、堿、高溫等性質(zhì),合成成本低,保存時間長等優(yōu)點(diǎn);但MIP的親和力和特異性要略差于傳統(tǒng)抗體(表1)。

在食品安全檢測中,因MIP成本低且制備簡便,基于MIP的酶聯(lián)檢測技術(shù)具有廣泛應(yīng)用(表2)。Surugiu等[24]使用TOP作為標(biāo)記物建立了基于MIP酶聯(lián)檢測方法用于檢2,4-D。該方法比酶聯(lián)免疫吸附測定法成本低且穩(wěn)定性更好。Fang Guozhen等[25]制備分子印跡膜作為人工模擬抗體,建立直接競爭的基于分子印跡膜酶聯(lián)檢測方法檢測尿液和豬肉樣品中的RAC。該方法靈敏度高(半抑制濃度(half maximal inhibitory concentration,IC50)為15.77 μg/L)、檢測限低(IC15為0.01 μg/L),與高效液相色譜的結(jié)果相關(guān)系數(shù)大于0.99。Liu Huilin等[26]建立了一個直接競爭的基于分子印跡膜酶聯(lián)檢測方法檢測水和土壤中的TBM,該檢測方法靈敏度高(IC50為19.73 μg/L)且檢測限低(IC15為0.30 μg/L)。與TBM抗體相比,TBM分子印跡膜成本更低、穩(wěn)定性更好且制備周期更短。

基于MIP酶聯(lián)檢測技術(shù)能達(dá)到較低的檢測限和較高的回收率;其最大的優(yōu)勢是可以直接在96 孔板中合成,合成過程簡單、周期短、成本低。由于MIP的目標(biāo)物是小分子,該技術(shù)對食品安全中的大分子有毒有害物質(zhì)無法檢測。

1.4 基于多肽的酶聯(lián)檢測技術(shù)在食品安全檢測中的應(yīng)用

人工模擬抗體多肽[11]由2~50 個氨基酸組成,具有分子識別能力,可以與目標(biāo)物特異性結(jié)合。近年來,人工模擬抗體多肽由于結(jié)構(gòu)簡單、易實(shí)現(xiàn)非競爭法檢測小分子物質(zhì),在檢測領(lǐng)域有了長足的發(fā)展,其主要包括來源于噬菌體展示的多肽[33-34](圖1D)、設(shè)計(jì)合成的多肽[35]、小型化受體的多肽[36]和配體來源的多肽[37]。人工模擬抗體多肽易于化學(xué)合成、成本低廉;但其親和力略差于傳統(tǒng)抗體。

在食品安全檢測中,因多肽篩選與鑒定效率高并可以建立非競爭的檢測模式,基于多肽酶聯(lián)檢測技術(shù)包括噬菌體抗免疫復(fù)合物分析法(phage anti-immunocomplex assay,PHAIA)受到越來越多的重視。Dong Jiexian等[27]建立基于多肽的非競爭的噬菌體抗免疫復(fù)合物分析法檢測魚樣品中的孔雀石綠和無色孔雀石綠。該方法的靈敏度是抗體競爭法的16 倍。Vanrell等[28]通過化學(xué)法合成了來源于噬菌體展示的多肽,并使用該多肽建立了非競爭酶聯(lián)檢測方法用于檢測草達(dá)滅和廣滅靈,與抗體競爭法相比靈敏度分別提高了18 倍和3.3 倍。

基于多肽酶聯(lián)分析方法可以建立非競爭方法檢測食品中有毒有害的物質(zhì),提高了方法的靈敏度和陽性檢出率。作為新型檢測元件,多肽在食品安全檢測中的應(yīng)用將是一個重要方向。

2 結(jié) 語

人工模擬抗體非來源于傳統(tǒng)抗體,模仿傳統(tǒng)抗體作為分子識別元件應(yīng)用于分析檢測。由于食品安全檢測中目標(biāo)物(大多是半抗原小分子物質(zhì))的傳統(tǒng)抗體較難獲得,人工模擬抗體將替代傳統(tǒng)抗體在分析檢測中發(fā)揮更大的作用。在未來的食品安全檢測中,人工模擬抗體將會在以下兩方面得到更進(jìn)一步的發(fā)展。

首先,更多的新型檢測材料將作為人工模擬抗體應(yīng)用于檢測中。人工模擬抗體的來源廣泛,可以是DNA或RNA(適配體)、重組蛋白(重組受體)、多肽、小分子聚合材料(MIP)或是其他來源的物質(zhì)。只要該物質(zhì)具有檢測元件所必須的特異性和敏感性,并具有比傳統(tǒng)抗體更優(yōu)越的性能,能夠作為其補(bǔ)充和延伸,替代傳統(tǒng)抗體作為分析技術(shù)中的檢測元件,它就可以被定義為人工模擬抗體。目前學(xué)者研究較多的人工模擬抗體包括適配體、重組受體、MIP和多肽。新型檢測材料作為人工模擬抗體需要很長的探索階段和更多的實(shí)驗(yàn)考證。隨著技術(shù)的發(fā)展,相信會有更多的人工模擬抗體替代傳統(tǒng)抗體在食品安全分析技術(shù)中廣泛使用。

其次,人工模擬抗體將會應(yīng)用到各種新興的分析技術(shù)中。免疫學(xué)檢測技術(shù)有放射免疫法、酶聯(lián)免疫分析法、化學(xué)發(fā)光免疫分析法等。其中,酶聯(lián)分析方法因靈敏度高、操作簡便、成本低而發(fā)展得最為成熟?;谌斯つM抗體的酶聯(lián)檢測技術(shù)是人工模擬抗體替代傳統(tǒng)抗體在食品安全檢測中應(yīng)用最廣泛的技術(shù),主要應(yīng)用于真菌毒素殘留、農(nóng)獸藥殘留等。人工模擬抗體在其他食品安全免疫學(xué)檢測技術(shù)中的應(yīng)用也有報道,如膠體金層析法[38-39]、電化學(xué)傳感器技術(shù)[40]等。隨著食品安全檢測技術(shù)的發(fā)展,人工模擬抗體將會和一些新興的分析技術(shù)相結(jié)合,如時間分辨熒光免疫分析法、均相免疫分析技術(shù)、微流控技術(shù)等,以提高檢測靈敏度及降低檢測成本。

[1] ELLINGTON A D, SZOSTAK J W. In vitro selection of RNA molecules that bind specif i c ligands[J]. Nature, 1990, 346: 818-822.DOI:10.1038/346818a0.

[2] TUERK C, GOLD L. Systematic evolution of ligands by exponential enrichment: RNA ligands to bacteriophage T4 DNA polymerase[J].Science, 1990, 249: 505-510. DOI:10.1126/science.2200121.

[3] ZHOU W H, DING J S, LIU J W. A highly specif i c sodium aptamer probed by 2-aminopurine for robust Na+sensing[J]. Nucleic Acids Research, 2016, 44(21): 10377-10385. DOI:10.1093/nar/gkw845.

[4] ZHOU W H, DING J S, LIU J W. A Selective Na+aptamer dissected by sensitized Tb3+luminescence[J]. Chembiochem, 2016, 17:1563-1570. DOI:10.1002/cbic.201600174.

[5] SEIFERT M, HAINDL S, HOCK B. Development of an enzyme linked receptor assay (ELRA) for estrogens and xenoestrogens[J].Analytica Chimica Acta, 1999, 386(3): 191-199.DOI:10.1016/S0003-2670(99)00044-6.

[6] LIU L H, ZHOU X H, LU Y. Facile screening of potential xenoestrogens by an estrogen receptor-based reusable optical biosensor[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2017, 97: 16-20.DOI:10.1016/j.bios.2017.05.026.

[7] LAVIGNAC N, ALLENDER C J, BRAIN K R. Current status of molecularly imprinted polymers as alternatives to antibodies in sorbent assays[J]. Analytica Chimica Acta, 2004, 510(2): 139-145.DOI:10.1016/j.aca.2003.12.066.

[8] BUENO L, EL-SHARIF H F, SALLES M O, et al. MIP-based electrochemical protein prof i ling[J]. Sensors and Actuators B, 2014,204: 88-95. DOI:10.1016/j.snb.2014.07.100.

[9] SHRIVASTAV A M, MISHRA S K, GUPTA B D. Fiber optic SPR sensor for the detection of melamine using molecular imprinting[J]. Sensors and Actuators B, 2015, 212: 404-410. DOI:10.1016/j.snb.2015.02.028.

[10] GAM-DEROUICH S, BOURDILLON C, CHAOUCHE S L, et al.Imprinted photonic hydrogels for the size- and shell-selective recognition of nanoparticles[J]. Angewandte Chemie, 2017, 56: 9710-9714. DOI:10.1002/anie.201702540.

[11] PAVAN S, BERTI F. Short peptides as biosensor transducers[J].Analytical and Bioanalytical Chemistry, 2012, 402(10): 3055-3070.DOI:10.1007/s00216-011-5589-8.

[12] 陳慶富. 人工模擬抗體在食品快速檢測中的應(yīng)用及目前存在的問題[J]. 食品研究與開發(fā), 2006, 27(2): 117-120. DOI:10.3969/j.issn.1005-6521.2006.02.040.

[13] WENDLER J, HOFFMANN A, GROSS G, et al. Development of an enzyme-linked immunoreceptor assay (ELIRA) for quantif i cation of the biological activity of recombinant human bone morphogenetic protein-2[J]. Journal of Biotechnology, 2005, 119(4): 425-435.DOI:10.1016/j.jbiotec.2005.04.021.

[14] LI H, HUANG Y, YU Y, et al. Peptide-based method for detection of metastatic transformation in primary tumors of breast cancer[J].Analytical Chemistry, 2015, 87(18): 9251-9256. DOI:10.1021/acs.analchem.5b01750.

[15] 邵寧生, 李少華, 黃燕蘋. SELEX技術(shù)及Aptamer研究的新進(jìn)展[J].生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展, 2006, 33(4): 329-335.

[16] TOH S Y, CITARTAN M, GOPINATH S C, et al. Aptamers as a replacement for antibodies in enzyme-linked immunosorbent assay[J].Biosensors and Bioelectronics, 2015, 64: 392-403. DOI:10.1016/j.bios.2014.09.026.

[17] BARTHELMEBS L, JONCA J, HAYAT A, et al. Enzyme-linked aptamer assays (ELAAs), based on a competition format for a rapid and sensitive detection of ochratoxin A in wine[J]. Food Control,2011, 22(5): 737-743. DOI:10.1016/j.foodcont.2010.11.005.

[18] WANG Sai, YONG Wei, LIU Jiahui, et al. Development of an indirect competitive assay-based aptasensor for highly sensitive detection of tetracycline residue in honey[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2014,57: 192-198. DOI:10.1016/j.bios.2014.02.032.

[19] WANG Yuankai, ZOU Qi, SUN Jianhe, et al. Screening of singlestranded DNA (ssDNA) aptamers against a zearalenone monoclonal antibody and development of a ssDNA-based enzyme-linked oligonucleotide assay for determination of zearalenone in corn[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2015, 63(1): 136-141.DOI:10.1021/jf503733g.

[20] NIE Ji, DENG Yan, DENG Qinpei, et al. A self-assemble aptamer fragment/target complex based high-throughput colorimetric aptasensor using enzyme linked aptamer assay[J]. Talanta, 2013, 106:309-314. DOI:10.1016/j.talanta.2012.11.018.

[21] LIANG Xiao, WANG Zhanhui, WANG Chunmei, et al. A proofof-concept receptor-based assay for sulfonamides[J]. Analytical Biochemistry, 2013, 438(2): 110-116.DOI:10.1016/j.ab.2013.03.028.

[22] ZHANG Jing, WANG Zhanhui, WEN Kai, et al. Penicillin-binding protein 3 of Streptococcus pneumoniae and its application in screening of beta-lactams in milk[J]. Analytical Biochemistry, 2013, 442(2):158-165. DOI:10.1016/j.ab.2013.07.042.

[23] CHENG Guyue, LI Fei, PENG Dapeng, et al. Development of an enzyme-linked-receptor assay based on Syrian hamster beta2-adrenergic receptor for detection of beta-agonists[J]. Analytical Biochemistry, 2014, 459: 18-23. DOI:10.1016/j.ab.2014.05.005.

[24] SURUGIU I, YE L, YILMAZ E, et al. An enzyme-linked molecularly imprinted sorbent assay[J]. Analyst, 2000, 125(1): 13-16. DOI:10.1039/A908871G.

[25] FANG Guozhen, LU Jinping, PAN Mingfei, et al. Substitution of antibody with molecularly imprinted film in enzyme-linked immunosorbent assay for determination of trace ractopamine in urine and pork samples[J]. Food Analytical Methods, 2011, 4(4): 590-597.DOI:10.1007/s12161-011-9206-4.

[26] LIU Huilin, REN Lei, FANG Guozhen, et al. An enzymelinked immunosorbent assay for the determination of tribenuronmethyl in water and soil using a molecularly imprinted film as an artificial antibody[J]. Analytical Methods, 2013, 5(20): 5677-5683.DOI:10.1039/c3ay40880a.

[27] DONG Jiexian, XU Chao, WANG Hong, et al. Enhanced sensitive immunoassay: noncompetitive phage anti-immune complex assay for the determination of malachite green and leucomalachite green[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2014, 62(34): 8752-8758.DOI:10.1021/jf5019824.

[28] VANRELL L, GONZALEZ-TECHERA A, HAMMOCK B D, et al.Nanopeptamers for the development of small-analyte lateral fl ow tests with a positive readout[J]. Analytical Chemistry, 2013, 85(2): 1177-1182. DOI:10.1021/ac3031114.

[29] 高茜, 朱洲海, 曾婉俐, 等. G蛋白偶聯(lián)受體家族味覺受體的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)及應(yīng)用研究進(jìn)展[J]. 食品科學(xué), 2016, 37(3): 286-291.DOI:10.7506/spkx1002-10.7506.

[30] 錢云霞, 錢凱先. 雌激素相關(guān)受體ERR的功能及其調(diào)控[J]. 生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展, 2005, 32(6): 495-500.

[31] YE L, MOSBACH K. Molecularly imprinted microspheres as antibody binding mimics[J]. Reactive and Functional Polymers, 2001, 48(1/2/3):149-157. DOI:10.1016/S1381-5148(01)00050-5.

[32] PILETSKY S A, PILETSKA E V, BOSSI A, et al. Substitution of antibodies and receptors with molecularly imprinted polymers in enzyme-linked and fl uorescent assays[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2001, 16(9/10/11/12): 701-707. DOI:10.1016/S0956-5663(01)00234-2.

[33] 屈瑋, 袁靜靜, 朱威東, 等. 噬菌體展示技術(shù)篩選可特異結(jié)合阪崎腸桿菌的多肽[J]. 食品科學(xué), 2013, 34(21): 217-220. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201321044.

[34] 胡雨欣, 何早, 陳力力, 等. 噬菌體展示技術(shù)在食源性致病菌檢測中的應(yīng)用[J]. 食品科學(xué), 2015, 36(11): 236-239. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201511044.

[35] CHOW E, GOODING J J. Peptide modified electrodes as electrochemical metal ion sensors[J]. Electroanalysis, 2006, 18(15):1437-1448. DOI:10.1002/elan.200603558.

[36] ALBRECHT C, FECHNER P, HONCHARENKO D, et al. A new assay design for clinical diagnostics based on alternative recognition elements[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2010, 25(10): 2302-2308.DOI:10.1016/j.bios.2010.03.022.

[37] ADJEMIAN J, ANNE A, CAUET G, et al. Cleavage-sensing redox peptide monolayers for the rapid measurement of the proteolytic activity of trypsin and alpha-thrombin enzymes[J]. Langmuir, 2010,26(12): 10347-10356. DOI:10.1021/la100397g.

[38] SHIM W B, KIM M J, MUN H, et al. An aptamer-based dipstick assay for the rapid and simple detection of af l atoxin B1[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2014, 62: 288-294. DOI:10.1016/j.bios.2014.06.059.

[39] CHEN A L, YANG S M. Replacing antibodies with aptamers in lateral fl ow immunoassay[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2015, 71: 230-242. DOI:10.1016/j.bios.2015.04.041.

[40] YANG X H, KONG W J, YANG M H, et al. Application of aptamer identif i cation technology in rapid analysis of mycotoxins[J]. Chinese Journal of Analytical Chemistry, 2013, 41(2): 297-306. DOI:10.1016/s1872-2040(13)60630-1.

Application of Arti fi cial Antibody in Enzyme-Linked Assay for Food Safety Detection

HE Yanping1,2, JIN Yong1,3, CHEN Da2, XING Shige1, WANG Yanfei1,3, XUE Qiang1,3, QI Xiaohua1,3, ZOU Mingqiang1,3,*
(1. Chinese Academy of Inspection and Quarantine, Beijing 100123, China; 2. School of Precision Instrument and Optoelectronics Engineering, Tianjin University, Tianjin 300072, China; 3. Zhong Jian Guo Yan (Beijing) Technology Co. Ltd., Beijing 100123, China)

Generalized artif i cial antibodies include aptamers, recombinant receptors, molecularly imprinted polymers and polypeptides. Artificial antibodies are significantly advantageous over conventional antibodies in terms of their ease of industrial production, low cost, ease of storage and reutilizability. In food safety detection, the most widely used technique is enzyme-linked assay based on artif i cial antibody. This paper reviews the benef i ts and drawbacks of applying aptamers,receptor, molecularly imprinted polymers and polypeptides in enzyme-linked assay, as well as the prospect of artificial antibody in enzyme-linked assay for food safety detection.

aptamer; recombinant receptor; molecularly imprinted polymer; polypeptide; artif i cial antibody; enzyme-linked assay; food safety detection

10.7506/spkx1002-6630-201723049

TS201.6

A

1002-6630(2017)23-0313-05

何彥平, 金涌, 陳達(dá), 等. 基于人工模擬抗體的酶聯(lián)檢測技術(shù)在食品安全檢測中的應(yīng)用[J]. 食品科學(xué), 2017, 38(23): 313-317.

10.7506/spkx1002-6630-201723049. http://www.spkx.net.cn

HE Yanping, JIN Yong, CHEN Da, et al. Application of artificial antibody in enzyme-linked assay for food safety detection[J]. Food Science, 2017, 38(23): 313-317. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-201723049. http://www.spkx.net.cn

2016-09-05

國家重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃重點(diǎn)專項(xiàng)(2016YFF0203802);“十二五”國家科技支撐計(jì)劃項(xiàng)目(2015BAK44B01);國家自然科學(xué)基金青年科學(xué)基金項(xiàng)目(21305101);國家重大科學(xué)儀器設(shè)備開發(fā)專項(xiàng)(2012YQ0901970501)

何彥平(1985—),男,博士研究生,研究方向?yàn)槭称钒踩珯z測。E-mail:heyanping85521@163.com

*通信作者:鄒明強(qiáng)(1964—),男,研究員,博士,研究方向?yàn)槭称钒踩珯z測。E-mail:mingqiangz@sina.com

猜你喜歡
多肽靈敏度特異性
導(dǎo)磁環(huán)對LVDT線性度和靈敏度的影響
高多肽含量苦瓜新品種“多肽3號”的選育
地下水非穩(wěn)定流的靈敏度分析
精確制導(dǎo) 特異性溶栓
抗HPV18 E6多肽單克隆抗體的制備及鑒定
BOPIM-dma作為BSA Site Ⅰ特異性探針的研究及其應(yīng)用
重復(fù)周圍磁刺激治療慢性非特異性下腰痛的臨床效果
穿甲爆破彈引信對薄弱目標(biāo)的靈敏度分析
兒童非特異性ST-T改變
胎盤多肽超劑量應(yīng)用致嚴(yán)重不良事件1例
措勤县| 宁津县| 伊宁县| 奉贤区| 安徽省| 黄浦区| 新乡市| 沈阳市| 雷州市| 铁力市| 乐东| 永州市| 承德市| 桑植县| 澎湖县| 平舆县| 松桃| 城口县| 东光县| 沈阳市| 保康县| 礼泉县| 河曲县| 方山县| 祁门县| 桂东县| 江永县| 新田县| 五指山市| 三台县| 永靖县| 澄迈县| 德格县| 高要市| 重庆市| 德化县| 微博| 水城县| 广平县| 桑日县| 永和县|