聞崇煒,趙燁清,石 莉,歐陽臻
(江蘇大學藥學院,江蘇 鎮(zhèn)江 212013)
聚乙二醇沉淀蛋清蛋白質的規(guī)律及在卵白蛋白分離中的應用
聞崇煒,趙燁清,石 莉,歐陽臻
(江蘇大學藥學院,江蘇 鎮(zhèn)江 212013)
研究3 種pH值條件下4 種聚乙二醇(polyethylene glycol,PEG)對卵白蛋白(ovalbumin,OVA)、卵轉鐵蛋白(ovotransferrin,OVT)與溶菌酶(lysozyme,LYZ)的沉淀效率,根據變化規(guī)律建立無需后續(xù)脫鹽的OVA分離新工藝。結果表明:PEG 4000、6000、8000及10000均可有效沉淀OVA、OVT及LYZ,沉淀率受PEG質量分數及pH值影響。其中pH 7.5、PEG 4000質量分數12%時,OVA、OVT及LYZ的沉淀率相差最大,當pH值從7.5調至5.5時,3 種蛋白質沉淀率的變化幅度相差也最大。由此建立如下分離工藝:首先向pH 7.5的蛋清液中加PEG 4000至質量分數為12%,離心收集上清液,即得純度88.1%的OVA,提取率為95.1%;再將所得上清液pH值調至5.5,離心收集上清液,所得OVA純度提高至99.7%,提取率為87.3%。該工藝簡便易行,有利于OVA的大規(guī)模制備及在食品及醫(yī)藥領域的應用。
聚乙二醇沉淀;相對分子質量;卵白蛋白;卵轉鐵蛋白;溶菌酶
雞蛋含有多種活性蛋白質,這些蛋白質在食品及醫(yī)藥領域具有廣泛用途[1]。例如,占蛋清總蛋白質含量54%的卵白蛋白(ovalbumin,OVA),既可提供各種人體必需氨基酸,還可與Fe3+反應形成復合物,用于制備新型補鐵劑[2],也可經胰凝乳蛋白酶等處理后獲得血管緊張素轉化酶抑制肽、抗氧化肽等生物活性肽[3-6];占12%的卵轉鐵蛋白(ovotransferrin,OVT),具有與人轉鐵蛋白和乳鐵蛋白相似的抗菌、抗病毒和抗真菌活性,有望開發(fā)為新型免疫功能因子或化療藥物的載體[7-8];占3.5%的溶菌酶(lysozyme,LYZ)可以破壞微生物細胞壁N-乙酰氨基葡萄糖胺和N-乙酰胞壁酸之間的β-1,4糖苷鍵,可作為肉及海鮮等食品的天然防腐劑或用于生產母乳化乳粉以提高嬰幼兒的免疫力[9-11]。
這些蛋白質目前主要采用鹽析法、離子交換法進行制備。傅冰等[12-13]對鹽析法與離子交換法制備高純度OVA與OVT的工藝進行了優(yōu)化研究;趙哲勛[14]與張文會[15]等對鹽析法與離子交換法制備LYZ的工藝進行了優(yōu)化研究。此外,郅文波等[16]研究了以高速逆流色譜法制備OVA的工藝。Croguennec等[17]研究了利用兩步層析法制備OVT的工藝。膜分離在蛋白質分離純化中有廣闊的應用[18]。Wan Yinhua[19]與Datta等[20]研究了用超濾法分離LYZ及OVA的工藝。為了提高雞蛋利用率,Roy[21]、Guérin-Dubiard[22]與麻小娟[23]等還研究了OVA、OVT及LYZ的綜合分離工藝。然而上述工藝通常需要貴重設備,所得產物還需要后續(xù)脫鹽處理。
聚乙二醇(polyethylene glycol,PEG)是一種非離子型直鏈大分子聚合物,具有很強的親水性,因而可以破壞水化層使蛋白質分子發(fā)生脫水,同時通過空間排斥作用擠壓及依靠鏈長纏繞蛋白質分子而使其發(fā)生沉淀。PEG沉淀法操作簡便、易于放大、條件溫和,所得蛋白質無需脫鹽,且不變性,現已備受關注[24]。鄭明奇[25]、余武英[26]與Fontes[27]等分別用PEG沉淀法制得了棉鈴蟲幼蟲中腸及脂肪體微粒體蛋白、豬胰蛋白酶與牛輪狀病毒。此外,該法還廣泛用于純化重組抗體[28-31]。Geng Fang等[32]也嘗試了以PEG法處理pH 6.0的雞蛋清,但還需結合離子交換法才能制得多種活性蛋白質,分離工藝尚不夠簡便。鑒于目前對PEG法沉淀OVA、OVT、LYZ的規(guī)律鮮見報道,本實驗因此進行了系統(tǒng)研究,并據此建立了簡便的OVA分離工藝。
新鮮雞蛋 江蘇大學愷源旅游超市;PEG 4000、6000、10000、丙烯酰胺、N,N’-亞甲基雙丙烯酰胺、三羥甲基氨基甲烷、十二烷基硫酸鈉(sodium dodecyl sulfate,SDS)、甘氨酸、過硫酸銨(均為分析純)國藥集團化學試劑有限公司;PEG 8000、OVA標準品(ovalbumin flake from egg white,BR級) 上海生工生物工程有限公司;N,N,N’,N’-四甲基乙二胺 美國Amresco公司;巰基乙醇 加拿大Bio Basic公司;蛋白分子質量標準品 日本Takara公司。
Micro Pico17微量臺式離心機 美國Thermo Scientific公司;Biofuge Stratos臺式高速冷凍離心機美國Kendro(原Heraeus)公司;FE20型實驗室pH計瑞士Mettler Toledo公司;TE601-L型電子天平 德國Sartorius公司;Mini-Protean3型電泳槽 美國Bio-Rad公司;DYY-6C型穩(wěn)流穩(wěn)壓電泳儀 南京馳順科技發(fā)展有限公司;RCT basic加熱型磁力攪拌器 德國IKA公司;LC 1200液相色譜儀 美國Agilent公司;Avatar-370型傅立葉變換紅外光譜儀 美國Nicolet公司;J-815型圓二色譜(circular dichroism,CD)儀 日本Jasco公司。
1.3.1 蛋清液與PEG貯存液制備
手工方式分離足量雞蛋清,兩倍體積ddH2O稀釋,低速攪拌均勻,隨后在攪拌中調節(jié)蛋清液至預設pH值(7.5、6.5及5.5),-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
精密稱取適量PEG,加入等質量ddH2O,攪拌至PEG充分溶解,即得質量分數50%的PEG貯存液,貯存液至少靜置1 d后再用于PEG沉淀。準備PEG 4000、6000、8000、10000共4 種貯存液。
1.3.2 PEG沉淀
取凍存蛋清液,化凍后以9 600×g離心20 min,稱取澄清的上清液,攪拌中滴加PEG貯存液至預設質量分數,取適量樣品以9 600×g離心20 min,分別收集上清液與沉淀,待后續(xù)檢測。
1.3.3 蛋白質電泳
將1.3.2節(jié)所得沉淀及上清液分別加適量ddH2O溶解,取少量溶解液加等體積2×上樣緩沖液,沸水浴處理15 min。SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳(polyacrylamide gel electropheresis,PAGE)按Laemmli法[33]所述操作,12%分離膠、5%濃縮膠,70 V恒壓進行電泳,待溴酚藍指示條帶到達分離膠底部后終止電泳,剝下凝膠,考馬斯亮藍R250染色。
1.3.4 蛋白質沉淀率及純度分析
根據樣品中蛋白質含量與SDS-PAGE后凝膠對應條帶灰度值呈線性相關的原理進行計算[34]。采集SDS-PAGE圖像,以Quantity One軟件定量各條帶灰度值,按公式(1)、(2)計算各樣品中各蛋白質的沉淀率(PR)及純度(PU)。
式中:PGPRO代表沉淀中待測蛋白質灰度值;EGPRO代表蛋清中待測蛋白質灰度值;NP與NE分別代表沉淀及蛋清稀釋倍數;SGPRO代表樣品中待測蛋白質灰度值;SGALL代表沉淀中所有蛋白質總灰度值。
1.3.5 PEG沉淀法制備OVA
稱取澄清的pH 7.5蛋清液,攪拌中加PEG 4000貯存液至終質量分數為12%,9 600×g離心20 min,收集得上清液Ⅰ;將上清液Ⅰ的pH值再調至5.5,9 600×g離心20 min,收集得上清液Ⅱ。上清液Ⅰ、Ⅱ適當留樣,備檢測OVA含量及純度。
1.3.6 高效液相色譜測定
采用LC 1200液相色譜儀,色譜柱為Eclipse Plus C18(100 mm×4.6 mm),流動相A:0.1%甲酸水溶液,流動相B:0.1%甲酸的乙腈溶液,OVA樣品及標準品用B液溶解,0.45 μm濾膜過濾后進樣。流速:1.0 mL/min(0~5 min 10% B液;7~17 min 30% B液;19~29 min 50% B液),柱溫為30 ℃,進樣量為20 μL,樣品質量濃度為10 mg/mL,檢測波長280 nm。同時再取OVA對照品及樣品各一份,溶解后分別加巰基乙醇至終體積分數為10%,混勻后室溫放置2 h,加適量乙腈及甲酸至高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)初始濃度,13 000 r/min離心15 min,取上清液按上述檢測條件進行HPLC分析。
1.3.7 傅里葉變換紅外光譜測定
采用Avatar-370型傅里葉變換紅外光譜儀,將凍干樣品(約2 mg)與KBr(200 mg)充分混勻、壓片,置于傅里葉變換紅外光譜儀的變溫附件中于4 000~400 cm-1范圍內掃描。
1.3.8 CD測定
采用J-815型CD儀檢測分析樣品二級結構。取OVA凍干品粉末,溶于ddH2O中,比色池光徑0.1 cm,遠紫外區(qū)(190~250 nm)掃描,譜帶寬度1.0 nm,掃描速率100 nm/min,連續(xù)掃描3 次取平均值。用平均摩爾橢圓率表示CD數據,單位為deg?cm2/dmol。通過K2D軟件計算各二級結構含量。
1.3.9 PEG質量濃度測定
依據PEG可與鋇離子和碘離子形成有色復合物的原理,按《中國藥典》所述以比色法測定樣品中PEG含量[35]?;玖鞒倘缦拢壕芰咳悠啡芤? mL(蛋白質質量濃度不高于1 g/100 mL),加入0.5 mol/L高氯酸溶液5.0 mL,混勻,室溫放置15 min,4 000 r/min離心10 min;取上清液4 mL,加入氯化鋇溶液1.0 mL和0.1 mol/L碘溶液0.5 mL,混勻,室溫反應15 min;535 nm波長處測定吸光度。以ddH2O代替樣品溶液,同法操作作為空白對照組;精密配制10~50 μg/mL PEG 4000標準品溶液,同法操作,以標準品質量濃度對吸光度作回歸直線。將樣品溶液吸光度代入,計算其中PEG的質量濃度。
用Microsoft Excel進行數據整理,采用GraphPad Prism 6進行作圖分析,選擇Two-way ANOVA采用t檢驗進行顯著性檢驗。
圖1 4 種PEG處理pH 7.5、6.5、5.5蛋清液時OVA沉淀率Fig. 1 Precipitation rates of OVA with four PEG fractions at different pH levels
按1.3.2節(jié)所述,取多份澄清的pH 7.5、6.5、5.5蛋清液,100 r/min低速攪拌中分別緩慢滴加PEG 4000貯存液至預設質量分數,離心收集各樣品的上清液與沉淀,進行SDS-PAGE并計算OVA的沉淀率。結果表明:無論何種pH值的蛋清液,PEG 4000均可有效沉淀其中的OVA;OVA沉淀率隨PEG 4000質量分數的遞增而逐步上升,當其質量分數為9%~24%時,OVA沉淀率最低為1.8%,最高達94.8%;同時,以相同質量分數的PEG 4000處理3 種蛋清液,結果表明pH 5.5樣品中OVA沉淀率最高,pH 6.5樣品中次之,pH 7.5樣品中最低(圖1A)。繼續(xù)用PEG 6000、8000、10000分別處理上述3 種蛋清液,結果也表明,無論何種pH值的蛋清液,這3 種PEG均可以有效沉淀其中的OVA;OVA沉淀率均隨PEG質量分數的遞增而逐步上升;同時相同質量分數的PEG,總體在pH 5.5蛋清液中OVA沉淀率最高,pH 7.5蛋清液中最低,這一結果可能與OVA的等電點為4.5有關(圖1B~D)。
此外,PEG 10000 OVA的沉淀率總體高于相同質量分數的PEG 8000、6000、4000(圖1),這是因為PEG相對分子質量越大,即鏈越長,越有利于發(fā)揮PEG分子的脫水、纏繞及空間排斥作用,從而越有利于沉淀OVA。分析OVA沉淀率的變化趨勢還可看出,PEG 4000質量分數為12%,蛋清液pH值為7.5時,OVA沉淀率較低,即上清液中可保留較多OVA;此時,蛋清液pH值調至5.5,沉淀率增幅(7.9%)也較低,上清液中因pH值變化損失的OVA也最少。
按2.1節(jié)所述,以PEG 4000、6000、8000、10000處理pH 7.5、6.5、5.5蛋清液,計算并分析OVT沉淀率。結果表明,4 種PEG均可以有效沉淀3 種蛋清液中的OVT,OVT沉淀率均隨PEG質量分數的遞增而快速上升,直至OVT被完全沉淀;當PEG質量分數相同時,pH值越低的蛋清液中OVT沉淀率越高;此外,當蛋清液pH值相同且所加PEG質量分數相同時,OVT沉淀率隨PEG相對分子質量增加而升高,直至被完全沉淀(圖2)。
圖2 4 種PEG處理pH 7.5、6.5、5.5蛋清液時OVT沉淀率Fig. 2 Precipitation rates of OVT with different PEG fractions at different pH levels
圖1、2對比分析可知,同一相對分子質量PEG以相同質量分數處理相同pH值的蛋清液,OVT沉淀率均高于OVA,即相同條件下,OVT比OVA更易發(fā)生沉淀,尤其PEG 4000處理時差異高度顯著。其中,質量分數12%的PEG 4000處理pH 7.5蛋清液時,OVA、OVT的沉淀率分別為1.8%、54.6%(P<0.001),同樣處理pH 5.5蛋清液,OVA、OVT的沉淀率分別為9.7%、98.1%(P<0.001)。對比分析圖1、2還可知,同一相對分子質量PEG以相同質量分數處理不同pH值的蛋清液,OVT沉淀率的變化幅度顯著高于OVA,因此PEG法處理蛋清液后再調節(jié)其pH值,OVT比OVA更容易發(fā)生沉淀。其中,PEG 4000處理pH 7.5蛋清液至質量分數為12%后再調節(jié)pH值至5.5后,OVA、OVT的沉淀率增幅分別為7.9%(P<0.001)、43.5%(P<0.001)。
圖3 4 種PEG處理pH 7.5、6.5、5.5蛋清液時LYZ沉淀率Fig. 3 Precipitation rates of LYZ with different PEG fractions at different pH levels
按2.1節(jié)所述,以PEG 4000、6000、8000、10000分別處理pH 7.5、6.5、5.5蛋清液,計算并分析LYZ沉淀率。結果表明,PEG沉淀LYZ具有與OVT相似的規(guī)律,即4 種PEG均可以有效沉淀3 種蛋清液中的LYZ,LYZ沉淀率均隨PEG質量分數的遞增而快速上升,直至LYZ被完全沉淀;當PEG質量分數相同時,pH值越低的蛋清液中LYZ沉淀率越高;此外,當蛋清液pH值相同且所加PEG質量分數相同時,LYZ沉淀率隨PEG相對分子質量增加而升高,直至被完全沉淀(圖3)。
對比分析圖1、3可知,同一相對分子質量PEG以相同質量分數處理相同pH值的蛋清液,LYZ沉淀率均高于OVA,即相同條件下,LYZ比OVA更易發(fā)生沉淀,尤其PEG 4000處理時差異高度顯著。其中,PEG 4000處理pH 7.5蛋清液至質量分數為12%時,OVA、LYZ的沉淀率分別為1.8%、68.3%(P<0.001),同樣處理pH 5.5蛋清液,OVA、LYZ的沉淀率分別為9.7%、90.2%(P<0.001)。對比分析圖1、3還可知,同一種PEG以相同質量分數處理不同pH值的蛋清液,LYZ沉淀率變化幅度顯著高于OVA,因此PEG法處理蛋清液后再調節(jié)其pH值,LYZ比OVA更容易發(fā)生沉淀。其中,PEG 4000處理pH 7.5蛋清液至質量分數為12%后再調節(jié)pH值至5.5后,OVA、LYZ的沉淀率增幅分別為7.9%(P<0.001)、21.9%(P<0.001)。2.4 PEG法制備OVA
綜上所述,4 種PEG在3 種pH值的蛋清液中均可有效沉淀OVA、OVT及LYZ。PEG質量分數越高,脫水及排斥作用越強,沉淀效率越高;高相對分子質量的PEG具有更長直鏈,纏繞作用更強,沉淀效率高于相同質量分數的低相對分子質量PEG;同時pH值可通過改變蛋白質分子表面電荷而影響其沉淀率。以蛋清蛋白質而言,OVT及LYZ比OVA更容易被PEG沉淀,鑒于以質量分數12%的PEG 4000處理pH 7.5蛋清液時,OVA、OVT及LYZ的沉淀率差異最大,當相應蛋清液pH值調至5.5時,OVA、OVT及LYZ沉淀率的變化幅度差異也最大,由此設計如下分離工藝。
圖4 OVA樣品的SDS-PAGE結果Fig. 4 SDS-PAGE pattern of OVA
圖6 還原OVA樣品的HPLC分析結果Fig. 6 HPLC prof i le of reduced OVA
圖7 OVA樣品的傅里葉變換紅外光譜分析結果Fig. 7 Fourier transform infrared spectra of OVA
圖8 OVA樣品的CD分析結果Fig. 8 CD spectrum of OVA
結果表明,以質量分數12%的PEG 4000處理pH 7.5蛋清液,可以沉淀絕大多數OVT及LYZ,大部分OVA被保留在上清液中,所得上清液Ⅰ樣品中OVA純度為88.1%,提取率為95.1%;再將上清液Ⅰ的pH值調至5.5,可以進一步除去OVT及LYZ,同時只沉淀損失少量OVA,所得上清液Ⅱ樣品中OVA純度為99.7%,提取率為87.3%。SDS-PAGE檢測表明所得上清液Ⅰ、Ⅱ樣品中OVA純度遠高于BR級OVA標準品(圖4)。HPLC檢測表明,OVA樣品中主峰O的保留時間為7.959 min,與標準品主峰保留時間基本一致。此外,標準品主峰中可見肩峰,樣品中未見相應肩峰,表明樣品純度高于目前BR級標準品(圖5)。以巰基乙醇還原OVA樣品及標準品后再進行HPLC檢測,可見原主峰O均消失,出現保留時間2.808 min附近的新主峰O’(圖6)。收集HPLC樣品進行SDS-PAGE檢測,表明樣品主峰O及新主峰O’均為OVA,另外兩個峰為殘留的少量OVT及LYZ等蛋白質。紅外吸收光譜圖中可見樣品吸收峰(3 411、2 245、1 635、1 551 cm-1等)及峰型均與OVA標準品相吻合(圖7)。CD檢測表明OVA樣品在222、208 nm波長處有兩個負峰,195 nm波長處有一個正峰(圖8),軟件分析表明α-螺旋比例為28.8%,β-折疊比例為19.1%。此外,比色法測定表明1 mg精制OVA樣品中PEG 4000的殘留量為20.36 μg,97.32%的PEG 4000都隨OVT及LYZ進入黏稠的沉淀中。因為PEG 4000具有良好的生物安全性,因此PEG的微量殘留不會影響所得OVA在食品工業(yè)中的應用。
我國早已成為世界上第一雞蛋生產大國,由于雞蛋深加工水平仍然不高,蛋清源活性蛋白質的開發(fā)應用仍有諸多不足。OVA具有很高的營養(yǎng)價值,又具有良好的起泡性、膠凝性、持水性等功能特性,是食品加工中重要的原輔料。目前雖然已有多項研究以改進鹽析法、等電點沉淀法、離子交換法、超濾法等常用的OVA制備工藝,但因為設備貴重、產物通常仍需脫鹽而影響了推廣。
本實驗系統(tǒng)研究了4 種PEG在不同質量分數及不同pH值時對OVA、OVT及LYZ沉淀率的影響,并根據PEG 4000處理pH 7.5與pH 5.5的蛋清液時,OVA、OVT及LYZ的沉淀率及沉淀率變化幅度的差異建立了新的OVA分離工藝:即首先以質量分數為12%的PEG 4000處理pH 7.5蛋清液獲得純度為88.1%的OVA,再調節(jié)樣品的pH值至5.5后獲得純度為99.7%的OVA。該工藝僅需適量PEG沉淀及適當調節(jié)樣品pH值,操作非常簡便、無需貴重設備、易于放大,同時產物無需脫鹽、具有很高的生物安全性,為OVA在食品工業(yè)的應用提供了便利。本研究所得PEG沉淀規(guī)律還為后續(xù)建立以該法為基礎的綜合分離利用蛋清源活性蛋白質的工藝提供了理論依據。
[1] 楊萬根, 王璋, 徐玉娟, 等. 蛋清利用研究進展[J]. 食品科學, 2009,30(23): 456-459. DOI:10.3321/j.issn:1002-6630.2009.23.103.
[2] 聶珍媛, 夏金蘭, 潘佳民. 卵白蛋白的分離及卵白蛋白鐵的制備與表征[J]. 天然產物研究與開發(fā), 2008, 20(5): 870-875. DOI:10.3969/j.issn.1001-6880.2008.05.028.
[3] 劉麗莉, 王煥, 李丹, 等. 雞蛋清卵白蛋白酶解工藝優(yōu)化及其結構性質[J]. 食品科學, 2016, 37(10): 54-61. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201610010.
[4] DáVALOS A, MIGUEL M, BARTOLOMéB, et al. Antioxidant activity of peptides derived from egg white proteins by enzymatic hydrolysis[J]. Journal of Food Protection, 2004, 67(9): 1939-1944.DOI:10.4315/0362-028X-67.9.1939.
[5] XU M S, SHANGGUAN X C, WANG W J, et al. Antioxidative activity of hen egg ovalbumin hydrolysates[J]. Asia Pacific Journal of Clinical Nutrition, 2007, 16(1): 178-182. DOI:10.6133/apjcn.2007.16.s1.34.
[6] 程緣, 趙英, 遲玉杰, 等. 脫鹽、超濾處理卵白蛋白源ACE抑制肽及其理化性質的研究[J]. 現代食品科技, 2015, 31(10): 203-209.DOI:10.13982/j.mfst.1673-9078.2015.10.034.
[7] 郭立華, 劉文營, 盧曉明. 卵轉鐵蛋白研究現狀[J]. 食品工業(yè), 2013,34(8): 188-191.
[8] 林日新, 徐明生, 杜華英, 等. 卵轉鐵蛋白對免疫低下小鼠Th1/Th2細胞平衡的影響[J]. 食品科學, 2011, 32(21): 243-246.
[9] 張鵬, 江明鋒, 王永. 動物源溶菌酶研究進展[J]. 中國生物工程雜志,2012, 32(8): 87-93. DOI:10.13523/j.cb.20120815.
[10] 馬美湖, 林親錄, 張鳳凱. 冷卻肉生產中保鮮技術的初步研究: 溶菌酶、Nisin、Gna液保鮮效果的比較試驗[J]. 食品科學, 2002, 23(8):235-241. DOI:10.3321/j.issn:1002-6630.2002.08.072.
[11] 肖懷秋, 林親錄, 李玉珍, 等. 溶菌酶及其在食品工業(yè)中的應用[J].中國食物與營養(yǎng), 2005(2): 32-34. DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.1995.05.018.
[12] 傅冰, 季秀玲, 俞匯穎, 等. 鹽析法快速分離雞蛋清卵白蛋白[J]. 江蘇農業(yè)科學, 2013, 41(6): 229-230. DOI:10.15889/j.issn.1002-1302.2013.06.037.[13] 傅冰, 季秀玲, 俞匯穎, 等. 雞蛋清中卵轉鐵蛋白的分離提取研究[J]. 河南農業(yè)科學, 2014, 43(3): 158-160. DOI:10.15933/j.cnki.1004-3268.2014.03.010.
[14] 趙哲勛. 從雞蛋殼中提取分離溶菌酶[J]. 食品科學, 1993, 14(1): 45-46.[15] 張文會, 王艷輝, 馬潤宇. 離子交換法提取雞蛋清溶菌酶[J]. 食品工業(yè)科技, 2003, 24(6): 57-59. DOI:10.13386/j.issn1002-0306.2003.06.023.
[16] 郅文波, 鄧秋云, 宋江楠, 等. 高速逆流雙水相色譜法純化卵白蛋白[J].生物工程學報, 2005, 21(1): 129-134. DOI:10.13345/j.cjb.2005.01.027.
[17] CROGUENNEC T, NAU F, PEZENNEC S, et al. Two-step chromatographic procedure for the preparation of hen egg white ovotransferrin[J]. European Food Research and Technology, 2001,212(3): 296-301. DOI:10.1007/s002170000242.
[18] 姚紅娟, 王曉琳, 丁寧. 膜分離在蛋白質分離純化中的應用[J]. 食品科學, 2003, 24(1): 167-171. DOI:10.3321/j.issn:1002-6630.2003.01.046.
[19] WAN Yinhua, LU Junren, CUI Zhanfeng. Separation of lysozyme from chicken egg white using ultrafiltration[J]. Separation and Purification Technology, 2006, 48(2): 133-142. DOI:10.1016/j.seppur.2005.07.003.
[20] DATTA D, BHATTACHARJEE S, NATH A, et al. Separation of ovalbumin from chicken egg white using two-stage ultrafiltration technique[J]. Separation and Purification Technology, 2009, 66(2):353-361. DOI:10.1016/j.seppur.2008.12.016.
[21] ROY I, RAO M V S, GUPTA M N. An integrated process for purification of lysozyme, ovalbumin, and ovomucoid from hen egg white[J]. Applied Biochemistry and Biotechnology, 2003, 111(1): 55-63. DOI:10.1385/ABAB:111:1:55.
[22] GUéRIN-DUBIARD C, PASCO M, HIETANEN A, et al. Hen egg white fractionation by ion-exchange chromatography[J]. Journal of Chromatography A, 2005, 1090(1/2): 58-67. DOI:10.1016/j.chroma.2005.06.083.
[23] 麻小娟, 習斌蓉, 陳紅兵, 等. 一步法分離雞蛋清中三種主要過敏原的研究[J]. 食品科學, 2009, 30(22): 40-43. DOI:10.3321/j.issn:1002-6630.2009.22.005.
[24] KUMAR V, SHARMA V K, KALONIA D S. Effect of polyols on polyethylene glycol (PEG)-induced precipitation of proteins:impact on solubility, stability and conformation[J]. International Journal of Pharmaceutics, 2009, 366(1/2): 38-43. DOI:10.1016/j.ijpharm.2008.08.037.
[25] 鄭明奇, 張文吉, 邱星輝, 等. 聚乙二醇8000對棉鈴蟲微粒體蛋白沉淀作用的研究[J]. 農藥學學報, 2005, 7(1): 81-84. DOI:10.3321/j.issn:1008-7303.2005.01.017.
[26] 余武英, 趙金梅, 肖青虎, 等. 聚乙二醇沉淀豬胰蛋白酶的研究[J].西華大學學報(自然科學版), 2011, 30(5): 96-99. DOI:10.3969/j.issn.1673-159X.2011.05.026.
[27] FONTES L V Q, CAMPOS G S, BECK P A, et al. Precipitation of bovine rotavirus by polyethylen glycol (PEG) and its application to produce polyclonal and monoclonal antibodies[J]. Journal of Virological Methods, 2005, 123(2): 147-153. DOI:10.1016/j.jviromet.2004.09.023.
[28] GIESE G, MYROLD A, GORRELL J, et al. Purif i cation of antibodies by precipitating impurities using Polyethylene Glycol to enable a two chromatography step process[J]. Journal of Chromatography B, 2013,938: 14-21. DOI:10.1016/j.jchromb.2013.08.029.
[29] SOMMER R, SATZER P, TSCHELIESSNIG A, et al. Combined polyethylene glycol and CaCl2precipitation for the capture and purif i cation of recombinant antibodies[J]. Process Biochemistry, 2014,49(11): 2001-2009. DOI:10.1016/j.procbio.2014.07.012.
[30] HU X T, LIU C M, JIN Z Y, et al. Fractionation of dextrin by gradient polyethylene glycol precipitation[J]. Journal of Chromatography A,2016, 1434: 81-90. DOI:10.1016/j.chroma.2016.01.021.
[31] HAMMERSCHMIDT N, HOBIGER S, JUNGBAUER A. Continuous polyethylene glycol precipitation of recombinant antibodies: sequential precipitation and resolubilization[J]. Process Biochemistry, 2016,51(2): 325-332. DOI:10.1016/j.procbio.2015.11.032.
[32] GENG Fang, HUANG Qun, WU Xiaofen, et al. Co-purification of chicken egg white proteins using polyethylene glycol precipitation and anion-exchange chromatography[J]. Separation and Purification Technology, 2012, 96: 75-80. DOI:10.1016/j.seppur.2012.05.021.
[33] LAEMMLI U K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4[J]. Nature, 1970, 227: 680-685.DOI:10.1038/227680a0.
[34] 聞崇煒, 毛春友, 胡萍萍, 等. Tricine 蛋白質電泳定量檢測溶菌酶方法的研究[J]. 江蘇農業(yè)科學, 2012, 40(5): 290-292. DOI:10.15889/j.issn.1002-1302.2012.05.001.
[35] 國家藥典委員會. 中華人民共和國藥典三部[M]. 北京: 化學工業(yè)出版社, 2005: 附錄32.
Protein Precipitation from Egg White with Polyethylene Glycol and Its Application for Ovalbumin Separation
WEN Chongwei, ZHAO Yeqing, SHI Li, OUYANG Zhen
(School of Pharmacy, Jiangsu University, Zhenjiang 212013, China)
This work was carried out to investigate the effect of polyethylene glycol (PEG) molecular weight, PEG dosage and pH value of egg white on the precipitation rate of ovalbumin (OVA), ovotransferrin (OVT) and lysozyme (LYZ), and further to establish a new procedure for the separation of OVA from egg white. It was found that OVA, OVT and LYZ could be precipitated by PEG 4000, 6000, 8000 or 10000. In addition, the precipitation rate of OVA, OVT and LYZ was signif i cantly inf l uenced by PEG dosage and pH. By addition of 12% PEG and at pH 7.5, the maximum difference between the precipitation rates of OVA, OVT and LYZ was observed. This result was also obtained when pH was adjusted to 5.5.Therefore, OVA could be produced by the following procedure. PEG 4000 was added into egg white (pH 7.5) until its concentration reached 12%, and then the supernatant was collected after centrifugation as OVA with a recovery of 95.1%and a purity of 88.1%. The purity was increased to 99.7%, while the recovery was decreased to 87.3% by adjusting the pH to 5.5 and collecting centrifugal supernatant. This purif i cation procedure was simple and easy to operate and could facilitate large-scale production and application of OVA in food and medicinal fi elds.
polyethylene glycol precipitation; relative molecular weight; ovalbumin; ovotransferrin; lysozyme
10.7506/spkx1002-6630-201801004
TS253.4;Q503
A
1002-6630(2018)01-0029-07
聞崇煒, 趙燁清, 石莉, 等. 聚乙二醇沉淀蛋清蛋白質的規(guī)律及在卵白蛋白分離中的應用[J]. 食品科學, 2018, 39(1):29-35.
10.7506/spkx1002-6630-201801004. http://www.spkx.net.cn
WEN Chongwei, ZHAO Yeqing, SHI Li, et al. Protein precipitation from egg white with polyethylene glycol and its application for ovalbumin separation[J]. Food Science, 2018, 39(1): 29-35. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-201801004. http://www.spkx.net.cn
2016-10-05
國家自然科學基金面上項目(81573529);江蘇省普通高校研究生實踐創(chuàng)新計劃項目(SJLX15_0512)
聞崇煒(1971—),男,副教授,博士,主要從事生物活性蛋白質分離及功能研究。E-mail:wenchw@ujs.edu.cn