王子洋,范利鋒,王永千,李進(jìn)海,周 橋,黃 嵐,王忠義
在植物中發(fā)現(xiàn)生物電現(xiàn)象已經(jīng)有 100多年的歷史,國內(nèi)外學(xué)者在植物電信號(hào)檢測(cè)和分析研究上做了很多工作[1-4]。植物電的研究對(duì)象從以捕蠅草、含羞草以及跳舞草等具有明顯葉片活動(dòng)的高敏感度植物為主[5-6],已經(jīng)延伸到模式植物擬南芥,小麥、玉米等作物[7-10],以及蘆薈、燕子掌等觀賞性植物[11];其信號(hào)類型從機(jī)械刺激出捕蠅草的動(dòng)作電位,到以燒傷、光照、鹽刺激誘導(dǎo)的變異電位,以及局部電位為主[12-15];其檢測(cè)技術(shù)從用非極化金屬電極刺入植物中引出接觸部位整體的電位變化,到使用玻璃微電極引出細(xì)胞膜內(nèi)電位變化,以及用多電極陣列、熒光染料標(biāo)記探索群體電信號(hào)胞間傳遞[16-17]。二十世紀(jì)初,科學(xué)家們主要使用電流計(jì)(galvanometer)來探索植物興奮的電活動(dòng)[5-6,18]。通過對(duì)電生理領(lǐng)域的不斷探索和電子技術(shù)的發(fā)展,大部分研究人員們開始使用放大器(electronic amplifier and potentiometer)來對(duì)電位進(jìn)行檢測(cè)[1-6]。由于植物產(chǎn)生的電信號(hào)頻率極低,一般不對(duì)檢測(cè)系統(tǒng)添加高通濾波器(即交流耦合方式)進(jìn)行信號(hào)采集和處理[2,5]。在2000年以后,國內(nèi)與國外個(gè)別研究組使用了交流耦合方式對(duì)植物進(jìn)行靜息信號(hào)的采集與分析[11,19-21]。
在植物電生理領(lǐng)域中,目前最小的研究單位是具有運(yùn)輸離子功能的膜蛋白,如鉀離子通道,質(zhì)子泵等。植物電信號(hào)的本質(zhì)是離子跨膜運(yùn)動(dòng)所導(dǎo)致細(xì)胞極化程度變化。已有的研究表明,許多生理過程都伴隨著細(xì)胞膜極化程度的改變,如:植物的光合作用,呼吸作用,化學(xué)遞質(zhì)分泌等[22-23]。高等植物的電活動(dòng)絕大多數(shù)都是通過環(huán)境變化進(jìn)行誘導(dǎo)產(chǎn)生,包括溫度、光照等環(huán)境因素變化均可以誘導(dǎo)出植物電信號(hào)。植物的電活動(dòng)現(xiàn)象更加傾向于是對(duì)環(huán)境變化的反饋。植物細(xì)胞不同于動(dòng)物心肌等細(xì)胞,植物電生理領(lǐng)域的研究中,并未確鑿發(fā)現(xiàn)可以產(chǎn)生自發(fā)的、短時(shí)間間隔且具有明顯節(jié)律性的電信號(hào),這甚至在植物電生理領(lǐng)域已經(jīng)產(chǎn)生過爭(zhēng)論[24]。對(duì)植物的節(jié)律研究主要圍繞晝夜節(jié)律和光照節(jié)律對(duì)植物本身的影響[25-26],也有快速自發(fā)的節(jié)律性微弱信號(hào)在植物中被發(fā)現(xiàn),但相關(guān)研究甚少[27]。
國內(nèi)外學(xué)者對(duì)植物電信號(hào)的頻率分布集中在 10 Hz以內(nèi)已有共識(shí)[5,8,21],然而在信號(hào)幅度上,國內(nèi)部分研究者對(duì)植物電信號(hào)幅度量級(jí)是微伏級(jí)還是毫伏級(jí)存在疑惑[21]。因此,本文通過小麥和含羞草作為試驗(yàn)樣品,以光誘導(dǎo)局部電位和燒傷誘導(dǎo)變異電位為例,探討并描述了直流耦合模式記錄數(shù)據(jù)與交流耦合模式記錄數(shù)據(jù)幅度區(qū)別,同時(shí)依據(jù)信號(hào)功率密度時(shí)頻分布來闡述信號(hào)的頻率分布,討論了記錄模式中影響較大的噪聲源,分析了 2種耦合記錄模式對(duì)抗噪聲方面各自的特點(diǎn),最后對(duì)信號(hào)可信度進(jìn)行了討論。
試驗(yàn)樣品采用德抗 961品種的小麥(中國農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院提供)和易記錄電信號(hào)的敏感性植物含羞草。用10%次氯酸鈉溶液對(duì)小麥種子浸種消毒15 min,用去離子水沖洗3~6遍。以去離子水在暗處浸種12~24 h后,選擇萌發(fā)一致的種子置于培養(yǎng)皿中的發(fā)芽紙上,加去離子水以濕潤發(fā)芽紙,每天更換溶液和發(fā)芽紙。室溫下培養(yǎng),光暗周期為14(光)/10(暗)h,溫度周期為28/26 ℃,相對(duì)濕度60%,萌發(fā)4~5 d后進(jìn)行試驗(yàn);含羞草為室內(nèi)自然光下培養(yǎng),土培(草炭土:珍珠巖:蛭石=3:1:1體積比)溫度周期26/20 ℃,3~4月齡,主枝長(zhǎng)度可達(dá)30 cm。
使用自制Ag-AgCl電極作為記錄電極和參比電極,方法詳見參考文獻(xiàn)[28],使用萬向微操縱器(STW-3C,成都儀器廠,中國)控制記錄電極,以產(chǎn)生微小位移。整體試驗(yàn)在自制防震臺(tái)上,如圖1c所示。記錄電極以及參比電極位置如圖1a,1b所示。在記錄電極與活體樣品(小麥葉片,含羞草葉柄)的接觸部分,使用0.5%瓊脂,5 mmol/L氯化鉀膠質(zhì)進(jìn)行電極與樣品接觸點(diǎn)耦合處理,圖1a中兩處虛線部分均為耦合膠質(zhì),以減小接觸噪聲。圖1b中參比電極浸入在0.2%瓊脂,5 mmol/L氯化鉀的移液管中,插進(jìn)土中作為電位參考點(diǎn)[28]。使用高阻抗放大器(SWF-1B,成都儀器廠,中國)進(jìn)行信號(hào)前置放大,再將其輸出端接到生理信號(hào)采集系統(tǒng)(RM6240BD,成都儀器廠,中國)進(jìn)行信號(hào)采集,采樣頻率200 Hz,交流耦合模式下時(shí)間常數(shù)可以設(shè)置為5、1、0.1、0.01和0.001 s。通過上位機(jī)軟件進(jìn)行信號(hào)分析,繪圖等[29-30],整體試驗(yàn)示意圖如圖1c所示。在記錄過程中,針對(duì)同一個(gè)記錄電極,連接直流耦合擋位和交流耦合擋位,同步進(jìn)行信號(hào)記錄,交流耦合檔的時(shí)間常數(shù)為1 s,即下限截止頻率為0.16 Hz。交流耦合的原理是在記錄直流信號(hào)的基礎(chǔ)上,增加了高通濾波器。在試驗(yàn)中,電極漂移的影響會(huì)隨記錄時(shí)間的增長(zhǎng)而變大,為了避免電極漂移對(duì)信號(hào)產(chǎn)生影響,小麥光照電位采集時(shí)間控制在5 h以內(nèi),含羞草試驗(yàn)中,電位記錄控制在10 min以內(nèi)。信噪比計(jì)算方法使用公式(1)進(jìn)行計(jì)算,其中Vs為信號(hào)峰峰值,Vn為基線噪聲峰峰值[9]。
在光照誘導(dǎo)局部電位試驗(yàn)中,光源(MHAA-100W,MORITEX,日本)放置在法拉第屏蔽網(wǎng)外。通過鵝頸式光纖(A08400,MORITEX)將光打到小麥樣品正上方,該方法可以有效地隔離光源中鹵鎢燈熱輻射對(duì)小麥電信號(hào)的影響。試驗(yàn)環(huán)境溫度保持在27~28 ℃之間,葉表溫度維持在 26~27 ℃之間。試驗(yàn)過程中使用強(qiáng)度約為144 μmol/m2s的光照進(jìn)行持續(xù)刺激,在刺激之前需要保持10~30 min的暗處理。燒傷誘導(dǎo)含羞草變異電位試驗(yàn)中,使用火焰外焰接觸含羞草最外側(cè)葉尖部進(jìn)行熱刺激來誘導(dǎo)變異電位,并同步錄制視頻(小蟻運(yùn)動(dòng)相機(jī),小蟻科技,中國),通過查看試驗(yàn)的視頻記錄,可知熱刺激時(shí)間約為0.3 s。
在光誘導(dǎo)小麥電信號(hào)試驗(yàn)中,使用帶有鈣離子通道阻滯劑[17,31]的膠質(zhì)(0.5%瓊脂,5 mmol/L氯化鉀,10 mmol/L氯化鑭)與葉片相接觸,如圖1a所示,在試驗(yàn)過程中,使用帶有阻滯劑的膠質(zhì)放置在記錄電極連接處(見圖 1a中虛線內(nèi)),進(jìn)行阻滯4 h后再記錄電信號(hào)。
對(duì)直流耦合記錄模式采集的植物電信號(hào)做 STFT(short-time Fourier transform)變換,用來實(shí)現(xiàn)信號(hào)功率密度時(shí)頻分布圖。這樣,不但可以清晰地探明植物電信號(hào)的主要功率頻率分布,而且可以根據(jù)輸入信號(hào)的種類不同,來查詢不同時(shí)間段的頻率分布,可以和交流耦合記錄模式進(jìn)行相互比較。該方法如公式(2)所示。
圖1 小麥和含羞草電信號(hào)誘導(dǎo)試驗(yàn)方法及原理Fig.1 Schematic diagram of electrical signal recording in wheat and Mimosa
式中 x(τ)代表輸入信號(hào),h(τ-t) 代表窗函數(shù),τ表示窗函數(shù)寬度。目前該方法已在心電領(lǐng)域?qū)π囊粜盘?hào)進(jìn)行處理等[32-33]。我們使用MATLAB 2016a中的spectrogram(xt,window (win_width),overlap,nfft,fs)函數(shù)進(jìn)行功率密度時(shí)頻分布圖繪制。在保證高時(shí)間分辨率和頻率分辨率的前提下選用漢明窗(hamming)作為窗函數(shù)。其中win_width= 1 000,overlap=0.5*win_width,nfft=1 024,fs=100,即以窗寬為1 000樣點(diǎn)(10 s),交疊數(shù)為500(5 s)的漢明窗,頻率分辨率為0.097 Hz(fs/nfft),做短時(shí)傅立葉變換。
分別對(duì)光誘導(dǎo)的小麥局部電位和燒傷誘導(dǎo)的含羞草變異電位進(jìn)行了 3次重復(fù)記錄。小麥局部電位試驗(yàn)中,直流耦合檔和交流耦合檔記錄到的信號(hào)均具有較高重復(fù)性;含羞草變異電位波形雖然重復(fù)性不高,但是其功率分布頻率具有穩(wěn)定性。
圖2a,2b為小麥光誘導(dǎo)局部電位。光照刺激后,直流耦合記錄信號(hào)峰-峰值約為69 mV,而交流耦合記錄信號(hào)中峰-峰值只有約2.7 mV,直流耦合記錄信號(hào)變化幅度遠(yuǎn)大于交流耦合記錄信號(hào)。其他波形參數(shù)包括持續(xù)時(shí)間、斜率等均具有明顯差異。在小麥直流耦合記錄的信號(hào)功率密度時(shí)頻分布圖中,可以觀察到全時(shí)間段信號(hào)的主要功率分布在0.2 Hz以內(nèi),而在光照刺激后最初的前100 s中,存在0.2 Hz至1 Hz之間的少量的功率分布。這個(gè)結(jié)果與交流耦合記錄到的數(shù)據(jù)具有較強(qiáng)的一致性。以0.16 Hz作為截止頻率的交流耦合記錄方式濾掉了絕大部分的有效信息。
如圖2c,2d所示,含羞草燒傷變異電位功率分布主要集中在0.15 Hz以下,與小麥光誘導(dǎo)局部電位信號(hào)特征相似,電信號(hào)功率分布均集中在低頻范圍內(nèi)。交流耦合記錄的信號(hào)峰-峰值約33 mV,直流耦合記錄的信號(hào)的去極化幅度約為70 mV。在25至30 s之間20 dB以上的功率強(qiáng)度已達(dá)到0.6 Hz。雖然功率的頻率分布要明顯高于光誘導(dǎo)下的局部電位數(shù)據(jù),但是0.1 Hz以內(nèi)依然占有超過50%的功率分布。在變異電位的記錄中,使用0.16 Hz為截止頻率的交流耦合記錄模式也會(huì)濾掉絕大部分的有效信息。
從小麥的光誘導(dǎo)局部電位信號(hào)和含羞草燒傷誘導(dǎo)的電位信號(hào)中可以發(fā)現(xiàn),無論是用直流耦合模式和交流耦合模式都可以對(duì)信號(hào)進(jìn)行采集,但信號(hào)的波形和強(qiáng)度有所差異。事實(shí)上交流耦合所記錄到的數(shù)據(jù)是在直流數(shù)據(jù)的基礎(chǔ)上經(jīng)過了高通濾波,交流記錄數(shù)據(jù)與直流耦合記錄數(shù)據(jù)在數(shù)值上是微分關(guān)系。從結(jié)果中可以發(fā)現(xiàn),使用直流耦合記錄模式可以更加全面的反應(yīng)植物緩慢的電活動(dòng)。交流耦合記錄模式雖然放大了快變的電信號(hào),但是遺漏了植物電活動(dòng)中的緩慢變化。在信號(hào)幅度上,直流耦合記錄的信號(hào)幅度基本維持在幾十毫伏的量級(jí)。交流耦合記錄到的信號(hào)幅度則要小于直流耦合記錄的結(jié)果,尤其是慢變化的光誘導(dǎo)的局部電位。
圖2 小麥和含羞草電信號(hào)直流耦合與交流耦合同步記錄Fig.2 DC(direct current) coupled and AC(alternating current) coupled electrical signal recording synchronously in wheat and Mimosa
為了進(jìn)一步研究不同耦合方式對(duì)信號(hào)采集的影響,對(duì)小麥光照產(chǎn)生的電信號(hào)同時(shí)進(jìn)行 4路通道的采集,如圖 3所示,分別為直流耦合模式,0.03、0.16和 1.6 Hz下限截止頻率的交流耦合模式。結(jié)果顯示下限截止頻率越高,所記錄到的信號(hào)幅度越低。在圖3a的直流耦合數(shù)據(jù)中,4 min以后的緩慢變化的信號(hào)在交流耦合模式中均未有明顯變化。在記錄剛進(jìn)行光照刺激時(shí)的快變信號(hào)時(shí),交流耦合模式的信號(hào)變化更加劇烈。
我們需要通過藥理學(xué)方法或其他方式進(jìn)行驗(yàn)證所記錄到的植物電信號(hào)是植物本身的電活動(dòng)而非電極噪聲或是環(huán)境干擾。針對(duì)燒傷誘導(dǎo)含羞草的變異電位,我們使用信號(hào)傳導(dǎo)的方式來進(jìn)行驗(yàn)證。記錄電極1與記錄電極2的固定位置如圖1b所示。圖4a、4b是含羞草變異電位2根記錄電極的直流耦合與交流耦合記錄結(jié)果,從結(jié)果可知,直流耦合與交流耦合數(shù)據(jù)均有明顯的延遲現(xiàn)象,可以看出信號(hào)從記錄電極1傳遞至記錄電極2。而箭頭所指為熱刺激時(shí)間點(diǎn),在箭頭處可以看到 2根電極同時(shí)受到了干擾產(chǎn)生噪聲。
小麥光誘導(dǎo)局部電位沒有傳導(dǎo)現(xiàn)象,我們通過使用鈣離子通道阻滯劑氯化鑭對(duì)小麥進(jìn)行處理,在使用氯化鑭處理前記錄一組光誘導(dǎo)局部電位數(shù)據(jù),然后對(duì)小麥葉片進(jìn)行處理4 h,在4 h后再記錄一組小麥光照誘導(dǎo)局部電位。箭頭指向光照開始時(shí)間點(diǎn)。在圖4c中,使用直流耦合模式記錄到的數(shù)據(jù)可以看出光照的第一個(gè)去極化波幅度有了明顯降低,圖4d的交流耦合數(shù)據(jù)中,受到氯化鑭處理的小麥所產(chǎn)生的波形幅度則產(chǎn)生明顯降低。
圖3 直流耦合與不同下限截止頻率交流耦合小麥電信號(hào)記錄Fig.3 Measurement of DC coupled and AC coupled with different lower-cut-off frequency electrical signal in wheat
圖4 植物電信號(hào)的傳導(dǎo)與阻滯Fig.4 Plant electrical signal transmission and block
植物電信號(hào)屬于微弱信號(hào),其等效信號(hào)源輸出電阻較大,可達(dá) G?量級(jí),因此在采集記錄電位信號(hào)時(shí)的噪聲抑制一直是個(gè)重要問題。如果僅考慮由樣本與電極構(gòu)成的通路引入的噪聲,常見的噪聲源有 50 Hz的工頻噪聲、操作員人體的靜電電荷積累所產(chǎn)生的干擾和其他環(huán)境影響。所以,在記錄植物電信號(hào)時(shí),需要在法拉第屏蔽網(wǎng)中進(jìn)行。并且,以單點(diǎn)接地的形式將屏蔽網(wǎng)內(nèi)的夾持器等接地,試驗(yàn)操作時(shí)需要帶上防靜電手環(huán),控制環(huán)境溫濕度處于相對(duì)平衡值。
在使用直流耦合記錄時(shí),所遇到的主要問題是氯化銀半電池的電位漂移。由于氯化銀電極周圍接觸溶液離子濃度的影響,可能產(chǎn)生幾十毫伏以上的電位漂移。這在長(zhǎng)時(shí)間使用溶液進(jìn)行電極與樣品的耦合時(shí)容易出現(xiàn)。交流耦合記錄模式則可以減弱電極電位漂移所產(chǎn)生的影響,然而對(duì)記錄植物電信號(hào)而言,交流耦合記錄模式則更容易受到如人體接觸或者樣品輕微移動(dòng)等其他噪聲源的干擾[5-6]。
在以氯化銀電極作為傳感器的宏觀電信號(hào)記錄當(dāng)中,直流耦合記錄模式的特點(diǎn)是較寬的電壓幅度采集范圍。由于靜息電位和電極接觸電位的疊加使得基線的電位非零,并且伴隨溫度影響,最高有近700 mV的電位變化。因此,植物電信號(hào)采集系統(tǒng)的直流記錄范圍至少應(yīng)達(dá)-1 V至+1 V,才可以確保記錄基線在記錄范圍以內(nèi)。再者,直流記錄信號(hào)本身的變化范圍大,如圖2a、2c所示,信號(hào)幅度本身也達(dá)到60 mV以上,所以直流記錄需要有較大的電壓幅度記錄范圍。然而,較寬電壓幅度記錄范圍會(huì)導(dǎo)致電壓分辨率降低。
當(dāng)采用交流耦合記錄模式時(shí),信號(hào)的直流成分(靜息電位和電極接觸電位)將被阻隔掉,只記錄電信號(hào)的變化率。記錄到的信號(hào)幅度較小,采集系統(tǒng)可采用較大的放大倍數(shù),電壓采集分辨相對(duì)較高。從圖2a中可以看出直流耦合模式記錄到的信號(hào)已經(jīng)變化了 69 mV,而交流耦合模式記錄的信號(hào)變化范圍僅僅2.7 mV。由于信號(hào)采集范圍的縮小,則可以將小信號(hào)進(jìn)一步放大,從而提高了信號(hào)電壓采集分辨率。然而,當(dāng)有效信號(hào)達(dá)到“微伏”量級(jí)時(shí),采集儀器系統(tǒng)噪聲,電極接觸噪聲(1/f noise),電極熱噪聲則需要考慮和排除[34-35]。
盡管目前的一些研究在分析植物電信號(hào)時(shí)也會(huì)采用EEG(Electroencephalography)信號(hào)所用的分析方法[2,13,36-37],但值得注意的是,植物細(xì)胞膜電位變化和植物電信號(hào)產(chǎn)生的離子機(jī)制,完全不同于動(dòng)物細(xì)胞膜電位和電活動(dòng)[5,22-23]。一般認(rèn)為,腦皮質(zhì)大量神經(jīng)元的突觸后電位同步總和,構(gòu)成頭皮記錄得到的腦電圖(EEG)[38-39]。所記錄腦電波的振幅主要決定于腦內(nèi)發(fā)生的電活動(dòng)的強(qiáng)度和參考電極的選擇,幅度0.5 至100 μV[38-39]。由于植物細(xì)胞膜電位變化的離子機(jī)制和傳導(dǎo)機(jī)制與動(dòng)物不同,所以,以交流耦合模式從植物體上記錄的微伏級(jí)電信號(hào),到底是不是植物的自發(fā)電信號(hào),必須在得到離子通道、胞內(nèi)記錄、微電極陣列及藥理學(xué)試驗(yàn)數(shù)據(jù)的支持的情況下,才能確定其結(jié)論。
交流耦合記錄模式與直流耦合記錄模式記錄到的植物電信號(hào)波形形狀、幅度、頻率會(huì)有明顯差異,這可能使國內(nèi)外部分學(xué)者對(duì)植物電信號(hào)幅度量級(jí)產(chǎn)生了疑惑。近十幾年,國內(nèi)外多個(gè)植物電信號(hào)研究組對(duì)交流耦合模式所記錄到的植物靜息信號(hào)[20-21],或是微伏級(jí)所謂的“低幅度信號(hào)”[19,40]進(jìn)行研究,探索植物自身電信號(hào)與環(huán)境的關(guān)系。然而,正如上文所說,通過交流耦合方式來研究微伏級(jí)的信號(hào)時(shí),首先應(yīng)考慮如何排除掉儀器噪聲,傳感器熱噪聲,接觸噪聲與其他環(huán)境噪聲干擾。根據(jù)植物電生理領(lǐng)域自1873年以來已有的國內(nèi)外研究成果,極少發(fā)現(xiàn)隨機(jī)性的植物電信號(hào)[5-6,41]。絕大部分通過直流耦合方式記錄到的信號(hào)均可以劃分至動(dòng)作電位,變異電位,系統(tǒng)電位以及局部電位這 4類范圍,而呈現(xiàn)隨機(jī)性的、通過交流耦合方式記錄到的微伏級(jí)植物電信號(hào)不同于上述 4類植物電信號(hào)。本文中通過交流耦合模式所記錄到的微伏級(jí)植物電信號(hào)均呈非隨機(jī)性,通過對(duì)比圖 3中交流與直流耦合模式記錄到的數(shù)據(jù)可知,植物的部分電活動(dòng)在交流耦合模式下是難以記錄到的。
然而,國內(nèi)外所有發(fā)表的呈現(xiàn)隨機(jī)性的微伏級(jí)信號(hào)遲遲沒有對(duì)信號(hào)本身的離子機(jī)制進(jìn)行討論,并且對(duì)該類微伏級(jí)信號(hào)進(jìn)行分析的研究組呈逐年增加趨勢(shì)。因此,討論所記錄信號(hào)的真實(shí)性顯得尤為重要。為了區(qū)別植物電活動(dòng)所產(chǎn)生的信號(hào)和環(huán)境噪聲,通常采用以下方式來進(jìn)行信號(hào)驗(yàn)證:1)確認(rèn)采集儀器和傳感器本身的噪聲范圍,如圖2a中交流耦合數(shù)據(jù)信噪比約為36.8 dB,排除采集儀器和傳感器本身的熱噪聲與接觸噪聲。氯化銀電極的自噪聲范圍是納伏至微伏級(jí)[42-44],并不影響測(cè)量結(jié)果。2)在記錄動(dòng)作電位和變異電位中,可以使用多電極記錄方式,通過信號(hào)傳導(dǎo)來確定其真實(shí)性。因?yàn)榄h(huán)境噪聲干擾會(huì)同時(shí)對(duì)多電極產(chǎn)生影響,無法記錄到傳導(dǎo)現(xiàn)象。如在圖1b含羞草變異電位記錄中使用了2根記錄電極,相距4 cm來進(jìn)行信號(hào)傳導(dǎo)驗(yàn)證,數(shù)據(jù)如圖4a、4b所示,2根記錄電極所記錄信號(hào)具有延時(shí)。3)局部電位不能傳導(dǎo),需要使用離子通道阻滯劑驗(yàn)證信號(hào)真實(shí)性,這是一種較為適用的方法[45],文中小麥光誘導(dǎo)的局部電位驗(yàn)證如圖4c、4d所示,在進(jìn)行4 h的鈣通道阻滯劑(氯化鑭)阻滯后部分信號(hào)幅度具有明顯降低,這與文獻(xiàn)[31]中光誘導(dǎo)植物電信號(hào)的離子機(jī)制相對(duì)應(yīng),該方法也可以用于變異電位和動(dòng)作電位的阻滯,以確認(rèn)信號(hào)的真實(shí)性。
本文記錄了含羞草和小麥 2種植物在不同記錄模式下的電信號(hào),探索了不同耦合記錄模式所記錄植物體表波形數(shù)據(jù)特征。1)通過分析兩類樣品的波形幅度可知,在使用非極化金屬電極進(jìn)行植物表面電位記錄時(shí),直流耦合記錄或者交流耦合記錄方式均可以獲得植物電信號(hào)數(shù)據(jù),雖然所反映的是同一植物電活動(dòng),但 2種耦合方式所記錄到的植物電信號(hào)在波形、幅度上會(huì)有明顯差別。2)在記錄高等植物電信號(hào)時(shí),使用交流耦合方式記錄可以觀察快變信號(hào),并需要通過直流耦合信號(hào)記錄與分析確認(rèn)功率的頻率分布,以確定記錄所需的合理的下限截止頻率。3)驗(yàn)證所記錄植物電信號(hào)真實(shí)性是深入研究和探索植物電活動(dòng)的前提,應(yīng)使用生物以及藥理學(xué)方法來證明所記錄的信號(hào)是由植物本身產(chǎn)生,而非采集回路噪聲和環(huán)境干擾。
[1] Volkov Alexander G, Nyasani Eunice K, Tuckett Clayton, et al. Electrotonic potentials in Aloe vera l.: Effects of intercellular and external electrodes arrangement[J]. Bioelectrochemistry,2017, 113: 60-68.
[2] 劉鍇,習(xí)崗,賀瑞瑞,等. 滲透脅迫下玉米葉片電位波動(dòng)邊際譜的變化與意義[J]. 農(nóng)業(yè)工程學(xué)報(bào),2017,33(1):199-205.Liu Kai, Xi Gang, He Ruirui, et al. Changes and significance of marginal spectrum on maize leaves potential fluctuations under osmotic stress[J]. Transactions of the Chinese Society of Agricultural Engineering (Transactions of the CSAE),2017, 33(1): 199-205. (in Chinese with English abstract)
[3] Bénédicte Wenden, Edwards Kieron D, Hall Anthony J W, et al. Light inputs shape the Arabidopsis circadian system[J].Plant Journal for Cell & Molecular Biology, 2011, 66(3):480-491.
[4] Pruneda-Paz Jose L, Kay Steve A. An expanding universe of circadian networks in higher plants[J]. Trends in Plant Science,2010,15(5): 259-265.
[5] Volkov Alexander G. Plant Electrophysiology: Theory and Methods[M]. Springer, 2006.
[6] Volkov Alexander G. Plant Electrophysiology- Signaling and Responses[M]. 2012.
[7] Mousavi S A, Chauvin A, Pascaud F, et al. Glutamate receptor-like genes mediate leaf-to-leaf wound signalling.[J].Nature, 2013, 500(7463): 422.
[8] Hedrich Rainer, Dreyer Ingo. Electrical wiring and longdistance plant communication[J]. Trends in Plant Science,2016, 21(5): 376.
[9] Masi E, Ciszak M, Stefano G, et al. Spatiotemporal dynamics of the electrical network activity in the root apex.[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2009,106(10): 4048.
[10] Novikova E M, Vodeneev V A, Sukhov V S. Mathematical model of action potential in higher plants with account for the involvement of vacuole in the electrical signal generation[J].Biochemistry Supplement, 2017, 11(2): 151-167.
[11] 王蘭州,李嶠. 燕子掌微弱電信號(hào)的計(jì)量研究[J]. 中國計(jì)量學(xué)院學(xué)報(bào),2009,20(3):195-200.Wang Lanzhou, Li Jiao. Testing and measurements of weak electrical signals in Crassula portulacea[J]. Journal of China Jiliang University, 2009, 20(3): 195-200. (in Chinese with English abstract)
[12] Surova L, Sherstneva O, Vodeneev V, et al. Variation potential propagation decreases heat-related damage of pea photosystem I by two different pathways[J]. Plant Signaling& Behavior, 2016, 11(3): 00-00.
[13] Lan Huang, Wang Zhong Yi, Zhao Long Lian, et al.Electrical signal measurement in plants using blind source separation with independent component analysis[J]. Computers& Electronics in Agriculture, 2010, 71(1): 54-59.
[14] Szechyńska-Hebda Magdalena, Lewandowska Maria, Karpiński Stanis?aw. Electrical signaling, photosynthesis and systemic acquired acclimation[J]. Frontiers in Physiology, 2017, 8: 684.
[15] Chatterjee Shre Kumar, Das Saptarshi, Maharatna Koushik,et al. Exploring strategies for classification of external stimuli using statistical features of the plant electrical response[J].Journal of the Royal Society Interface, 2015, 12(104): 20141225.
[16] Zhao Dong Jie, Chen Yang, Wang Zi Yang, et al. Highresolution non-contact measurement of the electrical activity of plants in situ using optical recording[J]. 2015, 5(13425):1-14.
[17] Zhao Dong Jie, Wang Zhong Yi, Huang Lan, et al. Spatiotemporal mapping of variation potentials in leaves of Helianthus annuus L. seedlings in situ using multi-electrode array[J].Scientific Reports, 2014, 4: 5435.
[18] Pickard B G. Action potentials in higher plants[J]. Botanical Review, 1973, 39(2): 172-201.
[19] Pereira D R, Papa J P, Saraiva G F R, et al. Automatic classification of plant electrophysiological responses to environmental stimuli using machine learning and interval arithmetic[J]. Computers & Electronics in Agriculture, 2017,dio.org/10.1016/j.compag.2017.12.024.
[20] 陸靜霞,於海明,陳士進(jìn),等. 基于植物電信號(hào)的環(huán)境因子預(yù)測(cè)模型[J]. 農(nóng)業(yè)機(jī)械學(xué)報(bào),2013,44(11):229-233.Lu Jingxia, Wu Haiming, Chen Shijin, et al. Environment factor prediction models based on plant electrical signals[J].Transactions of the Chinese Society of Agricultural Machinery,2013, 44(11): 229-233. (in Chinese with English abstract)
[21] 王蘭州,李海霞,林敏. 等植物微弱電波信號(hào)的時(shí)、頻域分析[J]. 中國計(jì)量學(xué)院學(xué)報(bào),2005,16(4):294-298.Wang Lanzhou, Li Haixia, Lin Min, et al. Analysis of plant electrical signal in the time domain and frequency domain[J].Journal of China Jiliang University, 2005, 16(4): 294-298.(in Chinese with English abstract)
[22] Fromm J, Lautner S. Electrical signals and their physiological significance in plants[J]. Plant Cell & Environment, 2007,30(3): 249.
[23] Yan Xiaofei, Wang Zhongyi, Huang Lan, et al. Research progress on electrical signals in higher plants[J]. Progress in Natural Science, 2009, 19(5):531-541.
[24] Gradman D. Intelligent Plant or Stupid Studies[N/OL]. Lab Times, 2010-03-30 [2010-2-17]. http://www.labtimes.org/labtimes/issues/lt2010/lt03/lt_2010_03_30_33.pdf
[25] Golden S S, Strayer C. Time for plants. Progress in plant chronobiology[J]. Plant Physiology, 2001, 125(1): 98-101.[26] Dodd A N, Salathia N, Hall A, et al. Plant circadian clocks increase photosynthesis, Growth, Survival, and Competitive Advantage[J]. Science, 2005, 309(5734): 630-633.
[27] Karlsson L. Nonrandom bioelectrical signals in plant tissue[J]. Plant Physiology, 1972, 49(6): 982-986.
[28] Mousavi S A, Mousavi S A, Nguyen C T, et al. Measuring surface potential changes on leaves[J]. Nature Protocols,2014, 9(8): 1997.
[29] Zhao Dongjie, Wang Zhongyi, Li Jun, et al. Recording extracellular signals in plants: A modeling and experimental study[J]. Mathematical & Computer Modelling, 2013, 58(3-4):556-563.
[30] Chen A, Chen Y, Tang Y, et al. Hippocampal AMPARs involve the central sensitization of rats with irritable bowel syndrome [J]. Brain & Behavior, 2017, 7(3): 1-8.
[31] Krol E, Trebacz K. Calcium-dependent voltage transients evoked by illumination in the liverwort conocephalum conicum[J]. Plant & Cell Physiology, 1999, 40(1): 17-24.
[32] Fulop S A, Fitz K. Algorithms for computing the timecorrected instantaneous frequency (reassigned) spectrogram,with applications[J]. Journal of the Acoustical Society of America, 2006, 119(1): 360-371.
[33] 朱冰蓮,楊磊. 心音信號(hào)的短時(shí)傅立葉變換分析[J]. 重慶大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2004,27(8):83-85.Zhu Binglian, Yang Lei. FEM analysis on the earth pressure behind the panel of post-panel retaining wall[J]. Journal of Chongqing University: Natural Science Edition, 2004, 27(8):83-85. (in Chinese with English abstract)
[34] Huigen E, Peper A, Grimbergen C A. Investigation into the origin of the noise of surface electrodes[J]. Medical &Biological Engineering & Computing, 2002, 40(3): 332-338.[35] Liu X, Demosthenous A, Donaldson N. Platinum electrode noise in the ENG spectrum[J]. Medical & Biological Engineering & Computing, 2008, 46(10): 997-1003.
[36] Cabral Euvaldo F, Pecora Paula Cristina, Arce Aldo Ivan C,et al. Original papers: The oscillatory bioelectrical signal from plants explained by a simulated electrical model and tested using Lempel-Ziv complexity[J]. Computers &Electronics in Agriculture, 2011, 76(1): 1-5.
[37] Das Saptarshi, Ajiwibawa Barry Juans, Chatterjee Shre Kumar, et al. Drift removal in plant electrical signals via IIR filtering using wavelet energy[J]. Computers & Electronics in Agriculture, 2015, 118(C): 15-23.
[38] Geethanjali P. Fundamentals of Brain Signals and Its Medical Application Using Data Analysis Techniques[M]. Springer International Publishing, 2015.
[39] Schaul N. The fundamental neural mechanisms of electroencephalography[J]. Electroencephalography & Clinical Neurophysiology, 1998,106(2): 101-107.
[40] Cabral E F, Pecora P C, Arce A I C, et al. The oscillatory bioelectrical signal from plants explained by a simulated electrical model and tested using Lempel–Ziv complexity[J].Computers & Electronics in Agriculture, 2011, 76(1): 1-5.
[41] Sukhova E, Akinchits E, Sukhov V. Mathematical models of electrical activity in plants[J]. J Membr Biol, 2017(3): 1-17.
[42] 衛(wèi)云鴿,曹全喜,黃云霞,等. 海洋電場(chǎng)傳感器低噪聲Ag/AgCl電極的制備及性能[J]. 人工晶體學(xué)報(bào),2009(s1):394-398.Wei Yunge, Cao Quanxi, Huang Yunxia, et al. Preparation and properties of Ag/AgCl electrode with low noise of marine electric field sensor[J]. Journal of Synthetic Crystals,2009(s1): 394-398. (in Chinese with English abstract)
[43] 胡鵬,譚浩,龔沈光. Ag/AgCl電極自噪聲的測(cè)定[J]. 海軍工程大學(xué)學(xué)報(bào),2011,23(2):68-71.Hu Peng, Tan Hao, Gong Shenguang. Measurement of Ag/AgCl electrode′s self-noise[J]. Journal of Naval University of Engineering, 2011, 23(2): 68-71. (in Chinese with English abstract)
[44] 黃芳麗,曹全喜,衛(wèi)云鴿,等. Ag/AgCl電極的制備及電化學(xué)性能[J]. 電子科技,2010,23(6):29-31.Huang Fangli, Cao Quanxi, Wei Yunge, et al. The preparation and electrochemical performance of Ag/AgCl electrodes[J].Electronic Science and Technology, 2010, 23(6): 29-31. (in Chinese with English abstract)
[45] Krol E, Dziubinska H, Stolarz M, et al. Effects of ion channel inhibitors on cold and electrically-induced action potentials in Dionaea muscipula[J]. Biologia Plantarum, 2006, 50(3):411-416.