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α—苦瓜素經LRP1受體介導的JNK信號通路誘導肝細胞L02早期凋亡的機制研究

2018-10-19 05:13鄧念華沈富兵鄭崛村沈岱王玲
中國藥房 2018年23期
關鍵詞:磷酸化肝細胞通路

鄧念華 沈富兵 鄭崛村 沈岱 王玲

中圖分類號 R575;Q23 文獻標志碼 A 文章編號 1001-0408(2018)23-3203-05

DOI 10.6039/j.issn.1001-0408.2018.23.08

摘 要 目的:探討α-苦瓜素誘導肝細胞L02(簡稱“L02細胞”)早期凋亡的信號通路。方法:制備并純化α-苦瓜素。采用流式細胞術檢測0(陰性對照)、160、80 μg/mL α-苦瓜素作用L02細胞2~8 h后的細胞凋亡率。小干擾RNA(siRNA)沉默低密度脂蛋白受體相關蛋白1(LRP1)得到LRP1-siRNA細胞,然后采用液相芯片分析術檢測α-苦瓜素(160 μg/mL)分別作用L02細胞(正常組)和LRP1-siRNA細胞(沉默組)0、0.25、0.5、1、2 h后c-Jun氨基末端激酶(JNK)信號通路中促調蛋白磷酸化JNK(p-JNK)、磷酸化凋亡前體蛋白(p-Bad)、胱天蛋白酶9(Caspase-9)及抑調蛋白磷酸化蛋白53(p-p53)、磷酸化蛋白激酶B(p-Akt)、磷酸化B淋巴細胞瘤2(p-Bcl-2)、Caspase-8的表達情況,分析α-苦瓜素對L02細胞JNK信號通路的作用。結果:制備并純化得到α-苦瓜素(純度>97%);與陰性對照組比較,160 μg/mL α-苦瓜素作用8 h時,可顯著誘導細胞早期凋亡(P<0.05),80 μg/mL α-苦瓜素誘導的早期凋亡不明顯(P>0.05);與0 h比較,作用后0.25 h促調蛋白p-JNK、p-Bad和Caspase-9表達量顯著增加(P<0.05),而抑調蛋白p-p53、p-Akt、p-Bcl-2和Caspase-8表達量無變化;與正常組相比,沉默組各時間點的p-JNK、p-Bad和Caspase-9的表達均顯著減少(P<0.05)。結論:α-苦瓜素可能通過LRP1受體介導JNK信號通路誘導肝細胞凋亡,為揭示其肝毒性提供了參考。

關鍵詞 α-苦瓜素;凋亡;肝細胞L02;c-Jun氨基末端激酶信號通路;低密度脂蛋白受體相關蛋白1

ABSTRACT OBJECTIVE: To explore the signaling pathway of α-momordicin inducing early apoptosis of hepatocyte L02 (called “the L02 cell” for short). METHODS: α-momordicin was prepared and purified. Flow cytometry was used to detect the apoptotic rate of the L02 cell after treated with 0 (negative control), 160 and 80 μg/mL of α-momordicin for 2-8 h. LRP1-siRNA cells were obtained by small interfering RNA (siRNA) silencing low density lipoprotein receptor-related protein 1 (LRP1). The expression of proapoptotic protein p-JNK, p-Bad, Caspase-9, inhibitor of apoptosis protein p-p53, p-Akt,p-Bcl-2 and active Caspase-8 in the L02 cell (normal group) and LRP1-siRNA (silence group) after treated with α-momordicin for 0, 0.25, 0.5, 1, 2 h were determined by liquid biochip analysis in c-Jun N-terminal kinase (JNK) signaling pathway. Effects of α-momordicin on JNK signaling pathway were analyzed. RESULTS: α-momordicin could be prepared and purified (purity>97%). Compared with negative control group, 160 μg/mL α-momordicin could significantly induced early apoptosis of the cell after treated for 8 h (P<0.05); early apoptosis of the cell induced by 80 μg/mL α-momordicin was not obvious (P>0.05). Compared with 0 h, the expression of p-JNK, p-Bad and Caspase-9 were increased significantly and even reached the peak value 0.25 h after medication (P<0.05), while the expression of p-p53, p-Akt, p-Bcl-2 and Caspase-8 had no change. Compared with normal group, the expression of p-JNK, p-Bad and Caspase-9 of silence group were decreased significantly at different time points (P<0.05). CONCLUSIONS: α-momordicin can induce the apoptosis of hepatocytes via LRP1 receptor mediated JNK signaling pathway, and will provide the reference for its hepatotoxicity.

KEYWORDS α-momordicin; Apoptosis; Hepatocyte L02; c-Jun N-terminal kinase signaling pathway; Low density lipoprotein receptor-related protein 1

α-苦瓜素是從苦瓜種子中提取的Ⅰ型核糖體失活蛋白(Ribosome-inactivating proteins,RIPs),具有抗腫瘤、抗病毒等多種藥理學作用[1-2]。據(jù)相關研究報道,α-苦瓜素通過激活凋亡信號通路胱天蛋白酶3(Caspase-3),誘導乳腺癌MDA-MB-231、MCF-7細胞凋亡[3]。本課題組在前期試驗中發(fā)現(xiàn),α-苦瓜素雖能顯著抑制MCF-7細胞移植瘤的增殖,但也能引起動物肝功能的異常和肝細胞的壞死[4-5],使得其臨床應用受到阻礙。

目前有研究發(fā)現(xiàn),同為Ⅰ型RIPs的天花粉蛋白(TCS)能通過低密度脂蛋白受體相關蛋白1 (LRP 1)受體介導進入腫瘤細胞[6-7]。LRP1既是一種內吞型受體,同時也具有信號轉導的功能,能激活c-Jun氨基末端激酶(JNK)/促絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)等信號轉導途徑調節(jié)細胞增殖和凋亡[8]。由于LRP1在肝細胞上分布極為豐富[9],故筆者推測,α-苦瓜素可能通過該信號轉導通路誘導肝細胞凋亡。

本研究以正常人胚肝細胞L02(簡稱“L02細胞”)為試驗對象,以流式細胞術分析α-苦瓜素誘導的肝細胞凋亡,以液相芯片分析技術檢測α-苦瓜素作用后,JNK信號通路凋亡信號蛋白中促調蛋白JNK、凋亡前體蛋白(Bad)、Caspase-9和抑調蛋白蛋白53(p53)、蛋白激酶B(Akt)、B淋巴細胞瘤2(Bcl-2)、Caspase-8的表達水平變化,并以LRP1基因敲降法[10]驗證該信號通路的LRP1 受體介導作用,從而闡明α-苦瓜素誘導細胞凋亡的發(fā)生途徑,為揭示α-苦瓜素誘導的肝臟毒性發(fā)生機制提供參考。

1 材料

1.1 儀器

BX51倒置熒光顯微鏡(日本Olympus公司);Accuri 6流式細胞儀(美國BD公司); 76S/02324凝膠成像儀(美國Bio-Rad公司);Luminex 200液相芯片檢測分析系統(tǒng)(美國Millipore公司);AKTA蛋白質純化系統(tǒng)(美國GE公司);UltrafleⅩⅢ飛行時間質譜儀、MaXis電噴霧四級桿飛行時間質譜儀(美國Bruker 公司)。

1.2 藥品與試劑

苦瓜種子(四川省農科院種子公司,批號:20160912);Annexin Ⅴ-FITC凋亡試劑盒(美國BioVision公司,批號:K201-100);RPMI-1640培養(yǎng)基(美國Gibco公司,批號:C11875500BT);胎牛血清(美國HyClone公司,批號:NUCO53);兔抗人LRP1抗體(美國Abcam公司,批號:AB7975);辣根過氧化物酶(HRP)標記的羊抗兔免疫球蛋白G(IgG)(美國R&D公司,批號:HY90077);β-肌動蛋白(β-actin)抗體(美國Novus公司);人早凋信號蛋白檢測試劑盒(內含Akt、JNK、Bad、Bcl-2、p53磷酸化抗體和Caspase-8、Caspase-9抗體,美國Millipore公司,批號:48-669MAG);LRP1小干擾RNA(siRNA)試劑盒[內含A、B、C 3種序列siRNA和非特異性siRNA,3種序列siRNA分別為LRP1-siRNA-A(5′ -ACACCAAUAAGAAG- CAGAUCAAUGT-3′ )、LRP1-siRNA-B(5′ -AGAUUUGUCCACAGAGUAAGGCCCA-3′ )、LRP1-siRNA-C(5′ - GGCUGUGACUGACGAGGAACCGUTT-3′ )]、Trans1.0轉染試劑均購自美國Origene公司;細胞裂解液RIPA、蛋白酶抑制劑均購自美國Millipore公司。

1.3 細胞

人胚肝細胞L02購自中國科學院典型培養(yǎng)物保藏委員會細胞庫。

2 方法

2.1 α-苦瓜素的制備及純化鑒定

將苦瓜種子研磨成粉末并用50 mmol/L醋酸鹽緩沖溶液(pH=6.3)萃取,得到α-苦瓜素粗提樣品;在2 ℃條件下向粗提物中加入250 mmol/L HCl增溶,1 000 r/min離心后,取上清液用1 mol/L磷酸鹽緩沖液(PBS,pH=7.0)中和,再用硫酸銨沉淀蛋白,得硫酸銨沉淀蛋白樣品;再分別經SP-瓊脂糖凝膠色譜、離子交換層析、凝膠過濾色譜純化后,得到α-苦瓜素蛋白純品。分別對上述純化過程收獲的中間樣品(硫酸銨沉淀蛋白樣品、SP-瓊脂糖凝膠色譜洗脫樣品、離子交換層析樣品)以及純化后α-苦瓜素蛋白純品進行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE),并對純化后α-苦瓜素蛋白純品進行高效液相色譜(HPLC)純度測定和飛行時間質譜分子量分析以及電噴霧四極桿質譜N-末端氨基酸序列分析。

2.2 細胞培養(yǎng)

肝細胞L02采用含有10%胎牛血清、100 u/mL青霉素和100 μg/mL鏈霉素的RPMI-1640培養(yǎng)基,于37 ℃、5%CO2的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

2.3 α-苦瓜素誘導的細胞凋亡檢測

按1×105個/孔將L02細胞接種在6孔板中,待細胞貼壁達50%~60%融合度時,分別加入終質量濃度為0(陰性對照)、80、160 μg/mL的α-苦瓜素,并于給藥2、4、8 h后消化并重懸各孔細胞,加入5 μL Annexin Ⅴ和10 μL碘化丙啶(PI),用流式細胞儀檢測細胞凋亡率,以FlowJo 10軟件分析凋亡細胞的分布情況。

2.4 LRP1-siRNA轉染細胞

將L02細胞接種于6孔板中,設置LRP1-siRNA-A組、LRP1-siRNA-B組、LRP1-siRNA-C組、非特異性siRNA組和陰性對照組(PBS)。當細胞生長融合度達到30~40%時,分別向各組培養(yǎng)基中加入4 μL 5 mmol/L的LRP1-siRNA(A、B、C 3種)、非特異性siRNA和PBS,然后加入20 μL Trans1.0轉染試劑。轉染4 h后,將培養(yǎng)液更換為含有雙抗體(青霉素-鏈霉素)的10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)72 h。

2.5 Western blot法檢測LRP1-siRNA沉默作用

采用Western blot檢測siRNA基因的沉默效果。裂解“2.4”項各組細胞,提取蛋白,經SDS-PAGE分離、轉膜、封閉、分別加入一抗兔抗人LRP1抗體(1 ∶ 20 000),過夜冷藏,TBST緩沖液洗膜,分別加入二抗HRP-羊抗兔IgG(1 ∶ 1 000),37 ℃孵育1 h,TBST緩沖液洗膜,采用化學發(fā)光法檢測成像結果,β-actin作為內參對照,篩選出使LRP1蛋白缺失85%以上的陽性LRP1-siRNA用于后續(xù)試驗。

2.6 液相芯片法檢測α-苦瓜素對凋亡信號蛋白的影響

2.6.1 分組及給藥 (1)正常組。將對數(shù)生長期的L02細胞接種于6孔板中,融合度60%時加入終質量濃度為160 ?g/mL的α-苦瓜素,分別于作用0、0.25、0.5、1、2 h后以RIPA裂解細胞并收集細胞裂解液樣品,4 ℃下10 000 r/min離心,收集各上清液。(2)LRP1-siRNA沉默組。以“2.5”項篩選的陽性LRP1-siRNA轉染L02細胞,培養(yǎng)72 h后,同上述方法給藥處理,并收集各上清液。經BCA法測定如上所有上清樣品的蛋白含量,并調整蛋白質量濃度至0.4 mg/mL,-80 ℃保存。

2.6.2 凋亡信號蛋白的檢測 采用液相芯片分析系統(tǒng)檢測各組細胞在α-苦瓜素(160 ?g/mL)作用0~2 h后磷酸化JNK (p-JNK)、磷酸化Bad(p-Bad)、Caspase-9、磷酸化p53(p-p53)、磷酸化Akt(p-Akt)、磷酸化Bcl-2(p-Bcl- 2)、Caspase-8的表達水平,具體試驗操作嚴格參考人早凋信號蛋白檢測試劑盒說明書,以檢測的各組細胞目標蛋白的熒光強度(MFI值)反映其表達水平。將檢測到的各組細胞中p-JNK、p-Bad、Caspase-9、p-p53、p-Akt、p-Bcl-2、Caspase-8的MFI值作為縱坐標,α-苦瓜素作用時間為橫坐標,繪制熒光強度-時間曲線圖。

2.7 統(tǒng)計學方法

采用SPSS 19.0軟件進行統(tǒng)計分析。組間比較采用單因素方差分析。P<0.05表示差異具有統(tǒng)計學意義。

3 結果

3.1 α-苦瓜素蛋白的純化鑒定結果

純化得到α-苦瓜素蛋白純品,經HPLC色譜分析純度大于97%;飛行時間質譜分析得出α-苦瓜素蛋白樣品分子量為28 551.6 Da,電噴霧四極桿質譜分析得出該蛋白樣品N-末端5個氨基酸序列N-天冬氨酸-纈氨酸-絲氨酸-苯丙氨酸-精氨酸,經查詢,與NCBI公布的α-苦瓜素序列一致(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/),表明純化得到的蛋白樣品即為α-苦瓜素蛋白。α-苦瓜素純化過程及最終蛋白純品的SDS-PAGE電泳結果見圖1。

3.2 α-苦瓜素誘導L02細胞早期凋亡結果

流式細胞儀檢測結果顯示,α-苦瓜素質量濃度為160 μg/mL時,誘導L02細胞的細胞凋亡率分別為2.8%(2 h)、3.8%(4 h)和6.2%(8 h),α-苦瓜素質量濃度為80 μg/mL時,誘導L02細胞的細胞凋亡率分別為2.6%(2 h)、3.4%(4 h)和3.8%(8 h)。與陰性對照組比較,160 μg/mL(8 h)的細胞凋亡率顯著升高(P<0.05),80 μg/mL各時段的細胞凋亡率差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。α-苦瓜素誘導L02細胞凋亡的檢測結果如圖2。

3.3 Western blot檢測LRP1-siRNA的基因沉默結果

檢測結果顯示,L02細胞的LRP1受體經siRNA法基因沉默72 h后,LRP1-siRNA-C組蛋白條帶缺失在85%以上,表現(xiàn)出了良好的沉默效果。L02細胞LRP1- siRNA沉默效果的蛋白電泳圖見圖3。

3.4 α-苦瓜素對L02細胞凋亡信號蛋白表達的影響結果

各組細胞中p-JNK、p-Bad、Caspase-9、p-p53、p-Akt、p-Bcl-2、Caspase-8熒光強度-時間曲線圖見圖4。

由圖4可知,正常組于給藥0.25 h時各促調蛋白p-JNK,p-Bad和活化Caspase-9表達達到高峰,直至給藥2 h時依然處于較高水平,且與0 h比較有顯著差異(P<0.05);各抑調蛋白p-p53、p-Akt、p-Bcl-2、活化Caspase-8各時段表達無顯著變化。與正常組比較,LRP1-siRNA沉默組各時段促調蛋白表達明顯抑制(P<0.05),而抑凋蛋白的表達無顯著變化。表明LRP1受體的基因沉默可以顯著阻止α-苦瓜素對L02細胞的凋亡信號轉導作用。

4 討論

苦瓜入藥在《本草綱目》《滇南本草》中早有記載[11],從苦瓜種子中提取的α-苦瓜素具有抗腫瘤、抗病毒等作用,是一種藥用價值較高的天然藥物[1-2]。研究發(fā)現(xiàn),α-苦瓜素屬于RIPS,同天花粉蛋白一樣,被證實對乳腺癌、絨毛膜細胞癌、黑色素瘤等皆有較強的抗腫瘤活性,已成為腫瘤治療的候選藥物之一[12-13]。在本課題組前期抗腫瘤試驗中發(fā)現(xiàn),α-苦瓜素雖能顯著抑制人乳腺癌MCF-7移植瘤的增殖,但同時也能引起動物食欲減退、精神萎靡、肝功能異常等[3,14];因此闡明α-苦瓜素肝細胞損傷機制可為其藥物開發(fā)提供依據(jù)。

本研究發(fā)現(xiàn),流式細胞術檢測質量濃度為160 μg/mL的α-苦瓜素濃度作用于L02細胞8 h后可誘導L02細胞早期凋亡。α-苦瓜素作用L02細胞后,其促調蛋白p-JNK、p-Bad、Caspase-9蛋白水平顯著升高,并在給藥后0.25~2 h達到高峰,而抑調蛋白p-p53、p-Akt、p-Bcl- 2、Caspase-8蛋白處于靜止或被抑制狀態(tài),由此證明了α-苦瓜素具有誘導L02細胞凋亡的作用。JNK信號轉導過程即當外源性刺激物與細胞膜受體結合,激活細胞內蛋白激酶導致JNK和下游Bad蛋白的磷酸化,Bad一方面可抑制Caspase-8,另一方面可活化Caspase-9,從而導致了細胞凋亡[15]。這7種凋亡蛋白是JNK信號轉導的重要通路蛋白,本試驗結果也符合JNK信號途徑傳遞的細胞凋亡信息,初步揭示了α-苦瓜素誘導肝細胞凋亡的發(fā)生機制。

進一步的試驗發(fā)現(xiàn),當α-苦瓜素的特異性細胞受體LRP1被siRNA基因沉默后,JNK的信號途徑的相關蛋白被明顯抑制。LRP1是一種多配體共用受體,其細胞質區(qū)域具有由天冬酰胺殘基(N)、脯氨酸殘基(P)及任何氨基酸殘基(x)和酪氨酸殘基(Y)組成的兩個信號結構域(NPxY)[16-17],這些信號結構域可以作為信號轉導位點參與下游信號傳導,能通過MAPK信號通路來調節(jié)細胞增殖和凋亡[8],JNK途徑是MAPK通路的一種,主要發(fā)揮細胞凋亡的轉導。因此,本試驗結果也說明,α-苦瓜素的信號轉導作用是由LRP1受體的介導完成的。

本研究初步證明,通過JNK信號通路轉導的細胞凋亡是α-苦瓜素引起肝細胞毒性的早期發(fā)生機制。α-苦瓜素與LRP1結合后,被介導內吞入細胞中,抑制相關蛋白的表達,從而激發(fā)肝細胞凋亡,可為后續(xù)研究揭示α-苦瓜素的肝臟毒性發(fā)生機制提供參考。

參考文獻

[ 1 ] NG TB,WONG JH,WANG H. Recent progress in resear- ch on ribosome inactivating proteins[J]. Curr Protein Pept Sci,2010,11(1):37-53.

[ 2 ] PURI M,KAUR I,KANWAR RK,et al. Ribosome inactivating proteins (RIPs) from momordicacharantia for antiviral therapy[J]. Curr Mol Med,2009,9(9):1080-1094.

[ 3 ] CAO D,SUN Y,WANG L,et al. Alpha-momorcharin (alpha-MMC) exerts effective anti-human breast tumor activities but has a narrow therapeutic window in vivo[J]. Fitoterapia,2015,100:139-149.

[ 4 ] MENG Y,LIU B,LEI N,et al. Alpha-momorcharin possessing high immunogenicity,immunotoxicity and hepatotoxicity in SD rats[J]. Ethnopharmacol,2012,139(2):590-598.

[ 5 ] ZHENG JC,LEI N,HE QC,et al. PEGylation is effective in reducing immunogenicity,immunotoxicity,and hepatotoxicity of alpha-momorcharin in vivo[J]. Immunotoxicol,2012,34(5):866-873.

[ 6 ] CHAN WL,SHAW PC,TAM SC,et al. Trichosanthin interacts with and enters cells via LDL receptor family members[J]. Biochem Biophys Res Commun,2000,270(2):453-457.

[ 7 ] CHAN WY,HUANG H,TAM SC. Receptor-mediated endocytosis of trichosanthin in choriocarcinoma cells[J]. Toxicology,2003,186(3):191-203.

[ 8 ] WAGNER EF,NEBREDA AR. Signal integration by JNK and p38 MAPK pathways in cancer development[J]. Nat Rev Cancer,2009,9(8):537-549.

[ 9 ] DIECKMANN M,DIETRICH MF,HERZ J. Lipoprotein receptors:an evolutionarily ancient multifunctional receptor family[J]. Biol Chem,2010,391(11):1341-1363.

[10] YAMAMOTO K,TROEBERG L,SCILIABRA SD,et al. LRP1-mediated endocytosis regulates extracellular activity of ADAMTS-5 in articular cartilage[J]. Faseb Journal,2013,27(2):511-21.

[11] 李璟,溫博貴,王云.苦瓜蛋白的藥用價值[J].中草藥,2004,35(9):1068-1070.

[12] LEE S,HUANG PL,CHEN HC,et al. Anti-HIV and anti- tumor activities of recombinant MAP30 from bitter melon[J]. Gene,1995,161(2):151-156.

[13] BASCH E,GABARDI S,ULBRICHT C. Bitter melon (momordicacharantia):a review of efficacy and safety[J]. Am J Health Syst Pharm,2003,60(4):356-359.

[14] DENG NH,WANG L,HE QC,et al. PEGylation alleviates the non-specific toxicities of alpha-momorcharin and preserves its antitumor efficacy in vivo[J]. Drug Deliv,2016,23(1):95-100.

[15] DANASEKARAN DN,REDDY EP. JNK signaling in apoptosis[J]. Oncogene,2008,27(48):6245-6251.

[16] CHEN WJ,GOLDSTEIN JL. A sequence often found in cytoplasmic tails,is required for coated pit-mediated internalization of the low density lipoprotein receptor[J]. Biol Chem,1990,265(6):3116-3123.

[17] HERZ J,STRICKLAND DK. LRP:a multifunctional sc- avenger and signaling receptor[J]. Clin Invest,2001,108(6):779-784.

(收稿日期:2018-07-11 修回日期:2018-10-24)

(編輯:唐曉蓮)

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