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苦參堿調控結腸癌奧沙利鉑耐藥性及機制研究

2018-11-07 11:21王偉鄭兵任銳朱濤
中國現代醫(yī)學雜志 2018年30期
關鍵詞:苦參堿結腸癌耐藥性

王偉,鄭兵,任銳,朱濤

(四川省宜賓市第一人民醫(yī)院,普外科, 四川 宜賓 644000)

結腸癌是臨床上常見的消化道疾病之一,臨床上主要采用手術與化療聯合治療,但患者的長期生存率較低,且有時不能完全治愈,甚至化療藥物的耐藥性問題也隨著出現,這是臨床上結腸癌治療失敗的主要原因之一[1-2],故研究結腸癌化療耐藥性尤為重要。研究顯示[3-6],腫瘤對化療藥物多藥耐藥是影響結腸癌化療療效的主要因素,耐藥基因MDR1編碼調控P-糖蛋白(glycoprotein, P-gp),結腸癌細胞高表達P-gp是影響治療效果的主要障礙之一。眾多研究表明[7-9],JNK/SAPK信號通路與腫瘤細胞的化療耐藥性密切相關,本研究將探討苦參堿(matrine, Ma)對人結腸癌耐奧沙利鉑細胞株(SW480/Oxa)耐藥性的影響及是否與JNK/SAPK信號通路有關。

1 材料與方法

1.1 材料

結腸癌SW480細胞購自購自中科院上海細胞庫,環(huán)王巴明、二甲基亞砜(dimethylsulfoxide, DMSO)、四甲基偶氮唑藍(methyl thiazolyl tetrazolium, MTT)均購自Sigma公司,RPMI 1640培養(yǎng)基、胎牛血清、胰蛋白酶均購自Gibco公司,Annexin-V-FITC/PI凋亡試劑盒購自南京生物建成研究所,P-gp、c-Jun氨基端激酶(c-Jun N-terminal kinase,JNK)、磷酸化c-Jun氨基端激酶(phosphorylated c-Jun N-terminal kinase, p-JNK)、c-Jun、 磷 酸 化 c-Jun(phosphorylated c-Jun, p-c-Jun)抗體購自Abcam公司,過氧化物酶增殖物激活受體γ(peroxisome proliferator activated receptor gamma, PPARγ)和JNK阻斷劑 SP600125均購自美國R&D Systems公司,Trizol試劑盒、逆轉錄試劑盒、PCR擴增試劑盒均購自日本TaKaRa公司,TGL-16G-A型高速冷凍離心機(上海安亭科學儀器廠),7300型實時熒光定量PCR(qRT-PCR)儀(美國Applied Biosystems公司),基礎電泳儀(美國Bio-Rad公司),酶標儀(Thermo公司),EL204-電子天平(上海特勒-托多利多儀器有限公司),凝膠成像儀(美國Bio-Rad公司),電泳儀(北京六一儀器廠)。

1.2 方法

1.2.1 細胞培養(yǎng) 結腸癌SW480細胞,采用RPMI 1640培養(yǎng)液[添加10%FBS,1%雙抗(鏈霉素100 u/ml,青霉素 100 u/ml)],置于 5% 二氧化碳 CO2,37℃的培養(yǎng)箱條件下進行培養(yǎng)。

1.2.2 獲得性Oxa耐藥結腸癌SW480細胞的建立 按照文獻[10],首先,采用0.1 μmol/L的奧沙利鉑(oxaliplatin, Oxa)處理SW480細胞,Oxa處理后大部分細胞死亡,少量細胞存活,待存活細胞繼續(xù)生長到融合度達90%時,進行傳代3代,之后提高濃度至0.5 μmol/L的Oxa處理SW480細胞,以此方法再提高到1.0 μmol/L的Oxa處理SW480細胞,最終獲得臨床血藥濃度2.0 μmol/L,傳代5代,穩(wěn)定的耐藥細胞SW480/Oxa細胞。

1.2.3 MTT法檢測Ma給藥濃度 為選擇合適的Ma濃度進行后續(xù)實驗,首先采用MTT法檢測Ma對SW480/Oxa耐藥細胞的IC50值。取對數生長期的細胞,以2×104個/孔接種于96孔培養(yǎng)板中,37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h貼壁后,分組進行實驗。加入終濃度分別為 0、1、5、10、20 及 30 μmol/L 的 Ma(含DMSO的終濃度為0.1%);溶劑對照組調整DMSO的終濃度為0.1%;空白對照組不做任何處理。繼續(xù)培養(yǎng)24 h。每孔加20 μl MTT,37℃孵育4 h,棄上清,再加入100 μl DMSO溶液,在酶標儀上測定570 nm波長各孔吸光度A值(A570)。細胞抑制率(IR):IR(%)=(1-處理組平均A值/對照組平均A值)×100%。

1.2.4 MTT法檢測細胞增殖 取對數生長期的SW480/Oxa細胞,以2×104個/孔接種于96孔培養(yǎng)板中,37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h貼壁后,分組與給藥:①NC組:空白對照組(細胞不做任何處理);②Oxa組:Oxa(2 μmol/L);③Ma+Oxa組:Ma(10 μmol/L)+Oxa(2 μmol/L)。繼續(xù)培養(yǎng)24 h。每孔加 20 μl MTT,37℃孵育4 h,棄上清,再加入100μl DMSO溶液,在酶標儀上測定570 nm波長各孔吸光度A值(A570)。每組設置3個復孔。細胞抑制率(IR):IR(%)=(1-處理組平均A值/對照組平均A值)×100%。

1.2.5 流式細胞儀檢測細胞凋亡情況 取對數生長期的細胞,以5×103個/ml接種于6孔板,每組設置3個復孔。用含10%胎牛血清的RPMl l640培養(yǎng)基培養(yǎng)在37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h至貼壁,實驗分組與給藥同1.2.4項下,根據Annexin-V-FITC/PI凋亡試劑盒說明書操作,流氏細胞儀檢測細胞凋亡情況。

1.2.6 qRT-PCR檢 測P-gp、MDR1 mRNA表 達水平 參照文獻[11],檢測P-gp、MDR1 mRNA。取對數生長期的細胞,以5×103個/ml濃度接種于6孔板,每組設置3個復孔。用含10%胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)基培養(yǎng)在37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h至貼壁,實驗分組與給藥:①NC組:空白對照組(細胞不做任何處理);② Oxa組:Oxa(2 μmol/L);③ Ma+Oxa 組 :Ma(10 μmol/L)+Oxa(2 μmol/L);④ PPARγ+Oxa組:PPARγ(0.1 μg/L)+Oxa(2 μmol/L);⑤ SP600125+Oxa 組:SP600125(100 μg/L)+Oxa(2 μmol/L);⑥ PPARγ+Ma+Oxa組:PPARγ(0.1 μg/L)+Ma(10 μmol/L)+Oxa(2 μmol/L);⑦ SP600125+Ma+Oxa組:SP600125(100μg/L)+Ma(10 μmol/L)+Oxa(2 μmol/L)。根據 Trizol試劑盒提取組織總RNA,采用核酸測定儀測定RNA純度和濃度,取1 μg進行逆轉錄,生成cDNA。采用SYBR green染料法進行定量檢測,P-gp擴增引物序列為:P-gp,正向 5'-TACTCACGCCTCGAAACCT-3',反向 5'-GTCTGCTTTCCTCCCTGATG-3';MDR1,正向5'-CCC ATCATTGCAATAGCAGG-3',反向5'-GTTCAAACTTC TGCTCCTGA。以GAPDH基因為內參,其引物序列如下:GAPDH,正向5'-CCTAGTTCGTCATGGGTG TGAACCA-3',反向5'-GCCAGTAGAGGCAGGGATGA TGTTC-3',擴增條件及計算方法參考文獻[12]。

1.2.7 Western blot檢測P-gp、p-JNK蛋白的表達水平 參照文獻[13]。取對數生長期的細胞,以5×103個/ml濃度接種于6孔板,每組設置3個復孔。用含10%胎牛血清的RPMl 1640培養(yǎng)基培養(yǎng)在37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h至貼壁,實驗分組與給藥同1.2.6項下。常規(guī)方法提取組織總蛋白,二喹啉甲酸(bicinchoninic acid, BCA)方法測定蛋白質含量后,進行凝膠電泳,每孔上樣20 μg,電轉至聚偏氟乙烯薄膜(polyvinylidene fluoride, PVDF)上后,3%的脫脂奶封閉2 h,分別孵育P-gp、p-JNK(目的蛋白)和β-actin(內參蛋白)一抗,4℃孵育過夜,TBST洗膜,孵育二抗后顯影。采用Quantityone軟件對條帶亮度進行分析。

1.3 統計學方法

數據分析采用SPSS 17.0統計軟件,計量資料以均數±標準差(±s)表示,比較采用方差分析,兩兩比較用LSD-t檢驗,P<0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 Ma的給藥濃度

Ma對SW480/Oxa細胞的IC50濃度為30 μmol/L??紤]到Ma與Oxa對癌細胞可能存在協同殺傷癌作用,并且為盡量減輕高濃度藥物引發(fā)的毒副作用,選擇IC50前一濃度作為Ma濃度進行后續(xù)實驗,即選擇20 μmol/L作為后續(xù)實驗Ma的給藥濃度。見圖1。

圖1 MTT法檢測Ma給藥濃度

2.2 細胞增殖活性情況

NC組、Oxa組和Ma+Oxa組細胞增殖活性分別為(99.67±2.12)、(72.12±1.12)和(61.34±1.15),差異有統計學意義(F=12.218,P=0.000)。進一步分析顯示,Oxa組細胞增殖活性低于NC組,差異有統計學意義(P<0.05)。而Ma+Oxa組細胞增殖活性低于Oxa組,差異有統計學意義(P<0.05)。

2.3 細胞凋亡情況

Oxa組與NC組細胞總凋亡率比較,采用t檢驗,差異有統計學意義(t=4.012,P=0.049),Oxa組細胞總凋亡率高于NC組。Ma+Oxa組與Oxa組細胞總凋亡率比較,采用t檢驗,差異有統計學意義(t=4.342,P=0.043),Ma+Oxa組細胞總凋亡率高于Oxa組。見圖2。

2.4 Ma對SW480/Oxa細胞P-gp、MDR1 mRNA表達的影響

研究發(fā)現,在Ma+Oxa組、PPARγ+Oxa組及PPARγ+Ma+Oxa組 3組 間 的 P-gp mRNA(F=14.315,P=0.000)以及 MDR1 mRNA(F=16.267,P=0.000)的相對表達水平差異有統計學意義。見表1。在Ma+Oxa組、SP600125+Oxa組以及SP600125+Ma+Oxa組3組間的P-gp mRNA(F=13.213,P=0.000)以及 MDR1 mRNA(F=15.221,P=0.000)的相對表達水平差異有統計學意義。

圖2 流式細胞儀檢測細胞凋亡情況

表1 Ma對SW480/Oxa細胞P-gp、MDR1 mRNA表達的影響 (n =3,±s)

表1 Ma對SW480/Oxa細胞P-gp、MDR1 mRNA表達的影響 (n =3,±s)

注:1)與 Ma+Oxa組比較,P <0.05;2)與 PPARy+Ma+Oxa組比較,P <0.05;3)與 SP600125+Ma+Oxa組比較,P <0.05

組別 P-gp F值 P值 MDR1 F值 P值Ma+Oxa組 146.32±4.6 149.31±4.3 PPARγ+Oxa組 203.19±6.11)2) 14.315 0.000 210.45±5.81)2) 16.267 13.213 PPARγ+Ma+Oxa組 176.21±5.31) 172.54±4.91)Ma+Oxa組 146.32±4.6 149.31±4.3 SP600125+Oxa 組 134.21±3.41)3) 13.213 0.000 140.15±3.81)3) 15.221 13.213 SP600125+Ma+Oxa組 123.16±2.31) 131.15±3.11)

2.5 P-gp、p-JNK蛋白的表達水平

研究發(fā)現,在Ma+Oxa組、PPARγ+Oxa組以及PPARγ+Ma+Oxa組3組間的P-gp蛋白(F=12.315,P=0.000)以及p-JNK蛋白(F=15.267,P=0.000)的相對表達水平差異有統計學意義。見圖3和表2。在Ma+Oxa組、SP600125+Oxa組以及SP600125+Ma+Oxa組3組間的P-gp蛋白(F=13.213,P=0.000)以及p-JNK蛋白(F=15.221,P=0.000)的相對表達水平差異有統計學意義。見圖3和表2。

表2 Western blot檢測P-gp,p-JNK蛋白的相對表達水平 (n =3,±s)

表2 Western blot檢測P-gp,p-JNK蛋白的相對表達水平 (n =3,±s)

注:1)與Ma+Oxa組比較,P <0.05;2)與PPARγ+Ma+Oxa組比較,P <0.05;3)與SP600125+Ma+Oxa組比較,P <0.05

組別 P-gp F值 P值 p-JNK F值 P值Ma+Oxa組 0.489±0.052 0.221±0.031 PPARγ+Oxa組 0.867±0.0771)2) 12.315 0.000 0.434±0.0421)2) 15.267 0.000 PPARγ+Ma+Oxa組 0.576±0.0561) 0.284±0.0331)Ma+Oxa組 0.489±0.052 0.221±0.031 SP600125+Oxa組 0.369±0.0271)2) 13.213 0.000 0.246±0.0191)2) 15.221 0.000 SP600125+Ma+Oxa組 0.298±0.0241) 0.135±0.0131)

圖3 Western blot檢測P-gp,p-JNK蛋白的相對表達

3 討論

中藥苦參為豆科多年生落葉灌木植物苦參的干燥根??鄥⑿钥?、寒,具清熱燥濕、殺蟲、利尿等功效,用于熱痢、便血、黃疸尿閉、赤白帶下、濕疹等。苦參堿是苦參中的抗癌有效成分,對肝癌、胃癌、肺癌、乳腺癌和直腸癌等細胞均具有生長抑制作用。奧沙利鉑能夠通過作用于DNA形成鏈內和鏈間交聯來抑制DNA的合成,產生抗腫瘤活性以及細胞毒作用[14]。由于因個體基因遺傳差異,結腸癌患者對于奧沙利鉑化療敏感性存在較大的差異,其中產生奧沙利鉑的耐藥性是導致患者化療失敗的主要原因。腫瘤細胞多藥耐藥(multi drug resistance, MDR)機制復雜,如MDR基因過多表達、DNA拓撲異構酶Ⅱ活性降低或含量減少、谷胱甘肽解毒酶系統活性增高、MDR相關蛋白基因表達增高等。其中P-gp和LRP介導的MDR研究較多,是機制最為明確的MDR產生途徑。P-gp和LRP在細胞的表達水平與細胞耐藥程度呈正相關。最近已經有多項研究表明苦參堿能夠抑制結腸癌細胞的生長。FOFARIA[15]研究發(fā)現,2.0 mg/ml苦參堿能夠抑制結腸癌細胞HT-29的生長并且能夠抑制 COX-2的表達;NIU等[16]也觀察苦參堿能夠抑制結腸癌細胞SW116的增殖,并且抑制細胞端粒酶的活性;CHANG等[17]進一步深入研究發(fā)現苦參堿通過上調Bax的表達以及下調Bcl-2的表達來誘導HT-29細胞的調亡,從而起到抑制結腸癌細胞HT-29增殖的作用。眾多研究表明[18-20],JNK/SAPK信號通路與腫瘤細胞的化療耐藥性密切相關,本研究為了盡量減輕高濃度藥物引發(fā)的毒副作用,筆者選擇IC50前一濃度作為Ma濃度進行后續(xù)實驗,即選擇10 μmol/L作為后續(xù)實驗Ma的給藥濃度。結果發(fā)現,Ma可抑制其增值,促進其凋亡,Ma可降低P-gp,MDR1 mRNA表達,還可降低P-gp、p-JNK蛋白的表達,提示Ma具有調控人結腸癌耐藥細胞株耐藥性的作用,可能與抑制JNK/SAPK信號通路,降低P-pg表達有關。本研究結果提示,Ma對調控結腸癌化療耐藥性有一定效果,研究結果為應用苦參堿干預結腸癌機制提供實驗依據,Ma有望成為改善結腸癌化療耐藥性的新藥物,但還需大量的基礎實驗和臨床實驗深入研究。

綜上所述,Ma具有調控人結腸癌耐藥細胞株耐藥性的作用,可能與抑制JNK/SAPK信號通路,降低P-pg表達有關。

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