謝偉 唐眉 趙國(guó)芝 王鋼
非洲豬瘟疫苗研究新進(jìn)展
謝偉①唐眉①趙國(guó)芝①王鋼②*
(①四川省樂(lè)山市動(dòng)物疫病預(yù)防控制中心 614000 ②樂(lè)山師范學(xué)院 四川 樂(lè)山)
非洲豬瘟是由非洲豬瘟病毒引起豬的一種急性、熱性、出血性和高度接觸性傳染病,死亡率高達(dá)100%。給許多國(guó)家養(yǎng)豬業(yè)造成了嚴(yán)重打擊。該病由于基因組龐大且免疫逃逸機(jī)制復(fù)雜,至今尚無(wú)有效的預(yù)防疫苗和治療藥物。本文針對(duì)非洲豬瘟疫苗的相關(guān)研究進(jìn)展進(jìn)行了綜述,以期為該病疫苗的研發(fā)提供參考。
非洲豬瘟(African swine fever, ASF)是引起豬的一種急性、熱性和高度接觸性傳染病,臨床癥狀以高熱、內(nèi)臟嚴(yán)重出血和高死亡率為特征。世界動(dòng)物衛(wèi)生組織(OIE)將其列為法定報(bào)告動(dòng)物疫病,我國(guó)將其列為一類(lèi)動(dòng)物疫病。1921年,該病首次在肯尼亞報(bào)道[1],并陸續(xù)在非洲大部分國(guó)家發(fā)生。20世紀(jì)60年代傳入歐洲,70年代傳入南美洲;2007年傳入格魯吉亞和俄羅斯聯(lián)邦和東歐地區(qū),且呈現(xiàn)蔓延趨勢(shì)[2];2017年3月在距離中國(guó)邊境僅1000公里的俄羅斯伊爾庫(kù)茨克暴發(fā)[3]。2018年8月該病在我國(guó)遼寧沈陽(yáng)首次確診,不到一年時(shí)間全國(guó)多個(gè)省份均有發(fā)生,給我國(guó)生豬產(chǎn)業(yè)造成嚴(yán)重影響。
ASF病原為非洲豬瘟病毒(African swine fever virus, ASFV),屬于非洲豬瘟病毒科非洲豬瘟病毒屬,是目前唯一已知的蟲(chóng)媒DNA病毒,具有雙層囊膜的二十面體結(jié)構(gòu)[4]。ASFV基因組全長(zhǎng)介于170-190kb之間,含有151-167個(gè)開(kāi)放閱讀框(ORFs),可編碼150-200個(gè)蛋白質(zhì),其中結(jié)構(gòu)蛋白50多種。根據(jù)該病毒主要衣殼蛋白P72的編碼基因,可將其分為22個(gè)基因型,由于其表現(xiàn)出明顯的遺傳多樣性,加之抗感染機(jī)制非常復(fù)雜,截至目前對(duì)于A(yíng)SF尚無(wú)有效的藥物和其他治療手段。因此,加快ASF疫苗的研發(fā)和制定有效的防控措施顯得迫在眉睫。目前,我國(guó)正在加大ASF疫苗研究力度。
通過(guò)物理或化學(xué)手段將病原滅活,使其喪失感染能力,但保留免疫原性的方法制備的疫苗稱(chēng)為滅活疫苗。自ASF發(fā)現(xiàn)之后,研究人員就開(kāi)始研制滅活疫苗。然而至今為止,采用多種方法制備的ASF滅活疫苗,雖然部分滅活疫苗可產(chǎn)生較高效價(jià)的抗體,但在臨床上均不能提供有效的免疫保護(hù)[5, 6],即使是使用PolygenTM或Emulsigen等最先進(jìn)佐劑也不能產(chǎn)生有效的保護(hù)[7],這可能是由于A(yíng)SFV免疫機(jī)制非常復(fù)雜,細(xì)胞內(nèi)病毒顆粒和細(xì)胞外病毒顆粒表面蛋白差異較大,滅活疫苗不能刺激機(jī)體產(chǎn)生高水平中和抗體[8]。結(jié)果提示,按照現(xiàn)有的滅活疫苗研究技術(shù),很難研發(fā)出有效的ASFV滅活疫苗。
弱毒疫苗是指用人工致弱或自然篩選等方法制備的弱毒株經(jīng)培養(yǎng)后制備而成,它一種病原致病力減弱但仍具有活力的完整病原疫苗。根據(jù)弱毒疫苗毒株來(lái)源不同,可將ASFV弱毒疫苗分為天然致弱疫苗和人工致弱疫苗,其中人工致弱疫苗又分為傳代致弱疫苗和重組致弱疫苗。
2.1 天然弱毒疫苗 目前,ASFV天然弱毒疫苗毒株有NH/P68、OURT88/3和Lv17/WB/Rie1三種,其中NH/P68和OURT88/3屬于基因I型,Lv 17/WB/Rie1屬于基因II型[9]。Leitao等[10]研究表明,免疫ASFV NH/P68的家豬對(duì)高毒性ASFV/l60毒株的攻擊具有抵抗力,但是可導(dǎo)致25%~47%的免疫豬出現(xiàn)慢性感染。免疫ASFV OURT88/3后的家豬,可對(duì)OURT88/1、Benin97/1和genotype X毒株產(chǎn)生免疫保護(hù),但會(huì)出現(xiàn)發(fā)熱、關(guān)節(jié)腫脹等諸多臨床癥狀[11, 12]。Gallardo等[9]將從野豬分離的Lv17/WB/Rie1株感染豬后只有非特異性臨床癥狀或者沒(méi)有臨床癥狀,且可產(chǎn)生保護(hù)作用。Barasona等[13]研究表明,Lv17/Wb/Rie1菌株進(jìn)行口服免疫,可產(chǎn)生針對(duì)毒性ASF病毒分離物攻毒的92%的保護(hù)性,且具有較好的安全性,標(biāo)志著在野豬中控制非洲豬瘟取得了巨大進(jìn)展。 ASFV天然弱毒疫苗雖然可以對(duì)同源和部分異源毒株產(chǎn)生保護(hù),但免疫副反應(yīng)和散毒等生物安全風(fēng)險(xiǎn)是限制其應(yīng)用的關(guān)鍵因素。
2.2 傳代致弱疫苗 ASFV可在Vero、COS-1等細(xì)胞內(nèi)傳代培養(yǎng),使其致病力不斷下降。有學(xué)者證實(shí)通過(guò)傳代致弱的ASFV弱毒疫苗可以抵御強(qiáng)毒株的攻擊[14],但在隨后的田間試驗(yàn)卻造成了嚴(yán)重后果,許多免疫豬出現(xiàn)了肺炎、流產(chǎn)、死亡等副反應(yīng),且存活的生豬大部分?jǐn)y帶病毒[8, 15]。Krug等[16]將ASFV-G在Vero細(xì)胞中傳至110代時(shí),其毒力完成喪失,將其免疫豬后并不能抵御ASFV-G的攻擊。Lacasta等[17]將E75強(qiáng)毒在CV1細(xì)胞上傳代致弱的毒株免疫豬后發(fā)現(xiàn),傳代致弱毒株疫苗能抵御同源毒株E751的攻擊,但不能抵御異源毒株BA71的攻擊。研究表明,ASFV傳代致弱疫苗安全性和異源保護(hù)力較差,這也是需研究突破的重點(diǎn)。
2.3 重組致弱疫苗 隨著分子生物學(xué)的發(fā)展和ASFV基因功能的不斷探索,對(duì)ASFV的某些毒力基因(如TK、UK、NL、CD2v等)、多基因家族(如MGF360/505)、免疫逃逸相關(guān)基因(如A238L、DP148R、MGF等)等基因敲除后可降低病毒毒力或增加宿主的免疫應(yīng)答[18]。Abrams等[19]將DP71L和DP96R基因敲除構(gòu)建的OUR T88/3?DP2重組疫苗免疫豬后,對(duì)強(qiáng)毒株OUR T88/1攻擊有66%的保護(hù),對(duì)親本毒株OUR T88/3攻擊則100%保護(hù),且免疫動(dòng)物沒(méi)有出現(xiàn)嚴(yán)重副反應(yīng)。Reis等[20]將構(gòu)建的MGF530和MGF360缺陷毒株Benin?MGF免疫豬后發(fā)現(xiàn),能夠100%抵御Benin 97/1的攻擊,而sanchez-Cordon等[21]研究結(jié)果最高保護(hù)率為83%,提示免疫劑量、免疫方式等影響免疫保護(hù)效果。Monteagudo等[22]研究表明,CD2v基因缺失構(gòu)建的BA71? CD2毒株具有交叉保護(hù)作用,能夠?qū)A71提供100%保護(hù),而且也可抵御基因II型Georgia2007/1株的攻。最近,西班牙學(xué)者以野毒株NH/P68為骨架,構(gòu)建了A238L、A224L、EP153R和A276R等4種蛋白缺失株;攻毒試驗(yàn)表明,缺失株和NH/P68疫苗均能夠抵御同源病毒L60的攻擊,但對(duì)于A(yíng)EM07異源病毒攻擊,NH/P68疫苗能夠完全抵御而缺失株僅有半數(shù)免疫了A224L能夠抵御[23]??傊?,研究表明ASF重組致弱疫苗可提供完全的同源保護(hù)、完全或部分的交叉保護(hù),在未來(lái)疫苗開(kāi)發(fā)中前景較大,但目前仍存在殘余毒力、病毒血癥等問(wèn)題。
核酸疫苗又稱(chēng)DNA疫苗,是將含有編碼主要抗原的基因克隆入真核表達(dá)載體并導(dǎo)入動(dòng)物體內(nèi),通過(guò)宿主細(xì)胞表達(dá)抗原蛋白,誘導(dǎo)宿主細(xì)胞產(chǎn)生對(duì)該抗原蛋白的免疫應(yīng)答。2011年,Argilaguent等[24]將ASFV的P30和P54基因與豬白細(xì)胞抗原II抗體單鏈可變區(qū)融合構(gòu)建的質(zhì)粒,雖然可使部分生豬獲得一定的免疫保護(hù)效果,但不能抵御強(qiáng)毒株的攻擊。2012年,Argilaguent等[25]研究發(fā)現(xiàn),ASFV血凝素蛋白基因與P30、P54基因融合構(gòu)建的質(zhì)粒,能成倍地提高實(shí)驗(yàn)豬免疫后的體液反應(yīng)和細(xì)胞反應(yīng),但不能抵御ASFV-E75的攻擊;但將泛素基因與上述DNA疫苗融合后,可增強(qiáng)誘導(dǎo)CTL應(yīng)答,并能夠使部分實(shí)驗(yàn)豬獲得免疫保護(hù),提示細(xì)胞免疫在A(yíng)SF預(yù)防中至關(guān)重要。Lacasta等[26]構(gòu)建的一個(gè)包含4000多個(gè)質(zhì)粒表達(dá)文庫(kù)對(duì)豬免疫后,可對(duì)E75菌株產(chǎn)生60%的保護(hù)率,且存活生豬無(wú)排毒現(xiàn)象,這能有效解決目前ASF疫苗生物安全問(wèn)題。目前,雖然關(guān)于A(yíng)SF核酸疫苗研究的還比較少,但隨著ASFV保護(hù)性抗原和表達(dá)載體的不斷研究,ASF核酸疫苗在將來(lái)一定有重大突破。
ASF亞單位疫苗是指將ASFV保護(hù)性抗原基因在原核或真核細(xì)胞中表達(dá),并將產(chǎn)生的蛋白質(zhì)或多肽通過(guò)適合的抗原傳遞系統(tǒng)免疫動(dòng)物而誘導(dǎo)產(chǎn)生中和抗體。P30、P54和P72是ASFV感染過(guò)程中引起體液免疫應(yīng)答的3個(gè)重要抗原蛋白,其中P54和P72產(chǎn)生抗體可阻止病毒吸附,P30產(chǎn)生抗體可阻止病毒內(nèi)吞[27]。重組表達(dá)的P30或P54蛋白以誘導(dǎo)中和抗體的產(chǎn)生,但不能提供有效的免疫保護(hù)[28],同時(shí)免疫P30和P54兩種蛋白時(shí)可提供部分保護(hù)[28, 29],然而同時(shí)免疫P30、P54和P72三種蛋白時(shí)卻不能提供免疫保護(hù)[30]。最新研究結(jié)果表明,將載體表達(dá)ASFV抗原首免和減毒活疫苗加強(qiáng)免疫結(jié)合起來(lái),可以擴(kuò)大對(duì)ASFV對(duì)表位的識(shí)別Murgia等[31],這為ASFV不同類(lèi)型疫苗聯(lián)用提供了理論依據(jù)。
通過(guò)腺病毒、痘病毒等載體表達(dá)ASFV保護(hù)性抗原基因,免疫豬只后可產(chǎn)生更好的特異性抗體和CTL反應(yīng)。Lokhandwala等[32, 33]以腺病毒為載體表達(dá)的ASFV抗原基因,采用“雞尾酒”式免疫后獲得了較好的抗原特異性CTL應(yīng)答。Madrid等[34]以痘病毒為載體表達(dá)的ASFV抗原基因,采用加強(qiáng)免疫策后可誘導(dǎo)ASFV特異性抗體和T細(xì)胞應(yīng)答。Murgia等[31]以α病毒為載體,構(gòu)建的ASFV p30(rp-30)、p54(rp-54)或pha-72(rp-sha-p72)抗原載體,其中rp-30在Vero細(xì)胞中表達(dá)最高并且具有較好的免疫原性。目前,ASF病毒活載體疫苗研究仍屬于起步階段,其安全性、有效性仍需要通過(guò)實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步研究證實(shí)。
隨著經(jīng)濟(jì)全球化的發(fā)展,人員和貿(mào)易來(lái)往頻繁加劇,2018年以來(lái)中國(guó)、越南等國(guó)家相繼發(fā)生ASF疫情,疫情趨勢(shì)呈現(xiàn)全球流行,給我國(guó)養(yǎng)豬業(yè)帶來(lái)重大威脅[35]。2019年1月,中國(guó)啟動(dòng)非洲豬瘟病毒基因缺失活疫苗研發(fā)項(xiàng)目。目前雖然研制的ASFV疫苗還存在保護(hù)力不強(qiáng)、病毒血癥、殘余毒力等方方面面的問(wèn)題,但相信不久將來(lái),隨著世界各國(guó)對(duì)非洲豬瘟疫苗研發(fā)的日益重視,有效的、安全的ASFV疫苗會(huì)被研發(fā)出來(lái)。
[1] Montgomery R E. On a form of swine fever occurring in British East Africa (Kenya Colony)[J]. Journal of comparative pathology and therapeutics, 1921, 34(159-191.
[2] Galindo I, Alonso C. African swine fever virus: a review[J]. Viruses, 2017, 9(5): 103.
[3] Kolbasov D, Titov I, Tsybanov S. African Swine Fever Virus, Siberia, Russia, 2017[J]. Emerging infectious diseases, 2018, 24(4): 796.
[4] Dixon L K, Chapman D A, Netherton C L. African swine fever virus replication and genomics[J]. Virus research, 2013, 173(1): 3-14.
[5] Forman A, Wardley R, Wilkinson P. The immunological response of pigs and guinea pigs to antigens of African swine fever virus[J]. Archives of virology, 1982, 74(2-3): 91-100.
[6] Revilla Y, Richt JA. African swine fever virus biology and vaccine approaches [J]. Adv Virus Res, 2018,100:41-74
[7] Blome S, Gabrielc, Beer M. Modern adjuvants do not enhance the efficacy of an inactivated African swine fever virus vaccine preparation[J]. Vaccine, 2014, 32(31): 3879-3882.
[8] Arias M, Dela Torre A, Dixon L. Approaches and perspectives for development of African swine fever virus vaccines[J]. Vaccines, 2017, 5(4): 35.
[9] Gallardo C, Soler A, Rodze I. Attenuated and non‐haemadsorbing(non‐HAD) genotype II African swine fever virus(ASFV)isolated in Europe, Latvia 2017[J]. Transboundary and emerging diseases, 2019.
[10] Leit O A, Cartaxeiro C, Coelho R. The non-haemadsorbing African swine fever virus isolate Asfv/ne/P68 provides a model for defining the protective anti-virus immune response[J]. Journal of General Virology, 2001, 82(3): 513-523.
[11] Mulumba‐mfumu L, Goatley L, Saegerman C. Immunization of African Indigenous Pigs with Attenuated Genotype I African Swine Fever Virus OURT 88/3 Induces Protection Against Challenge with Virulent Strains of Genotype I[J]. Transboundary and emerging diseases, 2016, 63(5): e323-e327.
[12] King K, Chapman D, Argilaguet J M. Protection of European domestic pigs from virulent African isolates of African swine fever virus by experimental immunisation[J]. Vaccine, 2011, 29(28): 4593-4600.
[13] Barasona J A, Gallardo C, Cadenas-Fern Ndez E. First oral vaccination of Eurasian wild boar against African swine fever virus genotype II[J]. Frontiers in Veterinary Science, 2019, 6(137.
[14] Manso-ribeiro J, Nunes-Petisca J, Lopez-Frazao F. Vaccination against ASF[J]. Bull Off Int Epizoot, 1963, 60(921-937.
[15] 何洋, 康樺華, 馮銹華. 非洲豬瘟疫苗研究進(jìn)展[J]. 傳染病信息, 2019(1): 76-80.
[16] Krug P W, Holinka L G, O'Donnell V. The progressive adaptation of a georgian isolate of African swine fever virus to vero cells leads to a gradual attenuation of virulence in swine corresponding to major modifications of the viral genome[J]. Journal of virology, 2015, 89(4): 2324-2332.
[17] Lacasta A, Monteagudo P L, Jim Nez-Mar N á. Live attenuated African swine fever viruses as ideal tools to dissect the mechanisms involved in viral pathogenesis and immune protection[J]. Veterinary research, 2015, 46(1): 135.
[18] 王西西, 陳青, 吳映彤. 非洲豬瘟疫苗研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)動(dòng)物傳染病學(xué)報(bào), 2018, 26(2): 89-94.
[19] Abrams C C, Goatley L, Fiahbourne E. Deletion of virulence associated genes from attenuated African swine fever virus isolate OUR T88/3 decreases its ability to protect against challenge with virulent virus[J]. Virology, 2013, 443(1): 99-105.
[20] Reis A L, Abrams C C, Goatley L C. Deletion of African swine fever virus interferon inhibitors from the genome of a virulent isolate reduces virulence in domestic pigs and induces a protective response[J]. Vaccine, 2016, 34(39): 4698-4705.
[21] S NCHEZ-CORD N P J, JABBAR T, BERREZAIE M. Evaluation of protection induced by immunisation of domestic pigs with deletion mutant African swine fever virus BeninΔMGF by different doses and routes[J]. Vaccine, 2018, 36(5): 707-715.
[22] Monteagudo P L, Lacasta A, L Pez E. BA71ΔCD2: A new recombinant live attenuated African swine fever virus with cross-protective capabilities[J]. Journal of virology, 2017, 91(21): e01058-01017.
[23] Gallardo C, S Nchez E G, P Rez-N EZ D. African swine fever virus (ASFV) protection mediated by NH/P68 and NH/P68 recombinant live-attenuated viruses[J]. Vaccine, 2018, 36(19): 2694-2704.
[24] Argilaguet J, Perez-Martin E, Gallardo C. Enhancing DNA immunization by targeting ASFV antigens to SLA-II bearing cells[J]. Vaccine, 2011, 29(33): 5379-5385.
[25] Argilaguet J M, P Rez-Mart N E, Nofrar AS M. DNA vaccination partially protects against African swine fever virus lethal challenge in the absence of antibodies[J]. PLoS One, 2012, 7(9): e40942.
[26] Lacasta A, Ballester M, Monteagudo P L. Expression library immunization can confer protection against lethal challenge with African swine fever virus[J]. Journal of virology, 2014, 88(22): 13322-13332.
[27] 戈勝?gòu)?qiáng), 吳曉東, 張志誠(chéng). 非洲豬瘟疫苗研究進(jìn)展[J]. 畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào), 2015, 47(1): 10-15.
[28] G Mez-Puertas P, Rodr Guex F, Oviedo J M. The African swine fever virus proteins p54 and p30 are involved in two distinct steps of virus attachment and both contribute to the antibody-mediated protective immune response[J]. Virology, 1998, 243(2): 461-471.
[29] Barderas M, Rodriguez F, Gomez-Puertas P. Antigenic and immunogenic properties of a chimera of two immunodominant African swine fever virus proteins[J]. Archives of virology, 2001, 146(9): 1681-1691.
[30] Neilan J G, Zsak L, LU Z. Neutralizing antibodies to African swine fever virus proteins p30, p54, and p72 are not sufficient for antibody-mediated protection[J]. Virology, 2004, 319(2): 337-342.
[31] Murgia M V, Mogler M, Certoma A. Evaluation of an African swine fever(ASF)vaccine strategy incorporating priming with an alphavirus-expressed antigen followed by boosting with attenuated ASF virus[J]. Archives of virology, 2019, 164(2): 359-370.
[32] Lokhandwala S, Waghela S D, Bray J. Induction of robust immune responses in swine by using a cocktail of adenovirus-vectored African swine fever virus antigens[J]. Clin. Vaccine Immunol., 2016, 23(11): 888-900.
[33] Lokhandwala S, Waghela S D, Bray J. Adenovirus-vectored novel African Swine Fever Virus antigens elicit robust immune responses in swine[J]. PLoS One, 2017, 12(5): e0177007.
[34] Lopera-Madrid J, Osoril J E, HE Y. Safety and immunogenicity of mammalian cell derived and Modified Vaccinia Ankara vectored African swine fever subunit antigens in swine[J]. Veterinary immunology and immuno-athology, 2017, 185(20-33.
[35] 羅玉子, 孫元, 王濤. 非洲豬瘟—我國(guó)養(yǎng)豬業(yè)的重大威脅[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué), 2018, 51(21): 4177-4187.
(2019–05–17)
S851.33
A
1007-1733(2019)08-0077-04