滿淑麗,王 瑩,馬 江,王 媛,馬 龍
(天津科技大學(xué)生物工程學(xué)院,天津 300457)
2型糖尿病是由多種病因引起的胰島素分泌缺陷或/和胰島素作用障礙所導(dǎo)致的糖、蛋白質(zhì)、水、脂肪和電解質(zhì)等代謝紊亂綜合征,臨床上以高血糖為主要標(biāo)志.目前臨床上常用的口服降血糖藥主要包括胰島素分泌促進(jìn)藥物(磺酰脲類、瑞格列奈)、α-糖苷酶抑制劑、胰島素增敏藥(雙胍類)等.荔枝核為無(wú)患子科植物荔枝(Litchi chinensis Sonn.)的干燥成熟種子,具有行氣散結(jié)、祛寒止痛作用,能夠用于治療寒疝腹痛、睪丸腫痛,性甘、微苦、溫,歸肝、腎經(jīng)[1].《本草綱目》記載:“荔枝核治癲疝氣痛,婦人血?dú)獯掏础保欣笾?litchi semen,LSE)的復(fù)方合劑對(duì)降低糖尿病小鼠血糖、血脂的效果與臨床降糖藥二甲雙胍效果相似[2],二甲雙胍可以通過(guò)激活肌肉等組織中的腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)[3],抑制因脂肪酸誘導(dǎo)產(chǎn)生的胰島素抵抗(IR)[4].荔枝核提取物可以通過(guò)改善糖尿病大鼠的氧化應(yīng)激、炎癥損傷[5]、脂代謝等以減輕對(duì)大鼠器官的損傷程度[6].前期實(shí)驗(yàn)[6]發(fā)現(xiàn)其與糖代謝、脂代謝相關(guān),而 AMPK是調(diào)控糖代謝、脂代謝通路的直接蛋白.因此,猜測(cè)荔枝核提取物對(duì)脂代謝的調(diào)節(jié)主要是通過(guò)對(duì)組織器官中 AMPK的含量進(jìn)行調(diào)節(jié).本文構(gòu)建了胰島素抵抗細(xì)胞模型,深入探討荔枝核提取物對(duì) IR細(xì)胞 AMPK的轉(zhuǎn)錄和翻譯表達(dá)量的影響.
干燥的荔枝種子(核)于2014年12月購(gòu)自云南,經(jīng)天津科技大學(xué)生物工程學(xué)院王春霞老師鑒定為藥典正品.人肝癌細(xì)胞 HepG2由中國(guó)協(xié)和醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所提供.
甲醇、二甲基亞砜和乙腈,分析純,天津市康科德科技有限公司;蘆丁根皮苷,四川省維克奇生物科技有限公司;薯蕷皂苷,上海研拓生物科技有限公司;磷酸鉀、二甲基亞砜(DMSO),天津市化學(xué)試劑二廠.
9700型 PCR擴(kuò)增儀,美國(guó) Applied Biosystems公司;Agilent 7980A型氣相色譜儀、Agilent 5975C型質(zhì)譜檢測(cè)器,安捷倫公司;凝膠成像儀,美國(guó)Pharmacia Biotech公司;TGL-16C型臺(tái)式離心機(jī),上海安亭科學(xué)儀器廠;D-101型大孔樹(shù)脂,河北翔泰藍(lán)星精細(xì)化工有限公司.
稱取荔枝核 1kg洗凈,烘干破碎,依次用 95%、60%、30%乙醇和去離子水煮 2h,每種溶劑重復(fù)兩次,收集所有液體混合,濃縮.使用大孔樹(shù)脂柱[4,6]富集荔枝核不同極性層,依次用去離子水和體積分?jǐn)?shù)為30%、50%、70%的乙醇為洗脫液依次洗脫.對(duì)洗脫液分別旋轉(zhuǎn)蒸發(fā),烘干后獲得 3種提取層記為L(zhǎng)SE30、LSE50、LSE70,準(zhǔn)確稱量并記錄.
總多酚含量的測(cè)定:以 0.1g/mL沒(méi)食子酸的水溶液為標(biāo)準(zhǔn)品,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線.分別取 10mg LSE30、LSE50、LSE70,加蒸餾水定容至 10mL.取1mL置于10mL容量瓶中,加入6mL蒸餾水,溶解均勻后,再加入 0.5mL福林試劑,1min后加入 10%碳酸鈉溶液1.5mL,混勻定容.75℃水浴加熱10min,在 765nm 處測(cè)定吸光度,進(jìn)行 3組平行實(shí)驗(yàn).利用回歸方程計(jì)算供試液中多酚的含量[4].
總黃酮含量的測(cè)定:以 0.6g/mL蘆丁甲醇溶液為標(biāo)準(zhǔn)品,在 510nm 處測(cè)定吸光度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線.配制0.5mg/mL LSE甲醇溶液,取1.0mL置于試管中,依次加入 5%的亞硝酸鈉溶液 1mL、十水硝酸鋁溶液 0.5mL,每種試劑加完后靜置 5min,混勻后補(bǔ)加4%的氫氧化鈉溶液5mL,加蒸餾水至12.5mL,混勻,15min后測(cè)量其吸光度,進(jìn)行 3組平行實(shí)驗(yàn).利用回歸方程計(jì)算供試液中黃酮的含量[7].
總皂苷含量的測(cè)定:用甲醇配制 0.4g/mL薯蕷皂苷[7]為標(biāo)準(zhǔn)品,在 535nm 處(全波段掃描 535nm處有最大吸收峰)測(cè)定吸光度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線.取10mg LSE加蒸餾水溶解,定容至10mL,取50μL水浴揮干,加入 4%香草醛冰醋酸溶液 40μL、高氯酸160μL,混勻后塞緊試管塞.在 55℃烘箱中反應(yīng)15min,冰水浴 3min,加入 1mL冰醋酸搖勻,測(cè)定吸光度,進(jìn)行 3組平行實(shí)驗(yàn).利用回歸方程計(jì)算供試液中皂苷的含量.
總多糖含量的測(cè)定:在 620nm 處測(cè)定吸收峰,以 100μg/mL葡萄糖水溶液為標(biāo)準(zhǔn)品,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線.準(zhǔn)確稱量 10mg LSE,加水定容至 10mL.取1mL置于試管中,將試管置于冰水中,加入 4mL蒽酮-硫酸試液,冷卻后在沸水中煮沸 7min,重復(fù)之前冷卻操作,降至室溫,測(cè)定吸光度,進(jìn)行 3組平行實(shí)驗(yàn).計(jì)算總多糖含量[8].
原花青素含量的測(cè)定:以 1mg/mL甲醇原花青素B溶液為標(biāo)準(zhǔn)品溶液,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線.1mg/mL樣品溶液 20μL、4%香蘭素溶液 120μL、濃鹽酸 60μL混合,30℃暗處反應(yīng) 20min.在 500nm 波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度,進(jìn)行 3組平行實(shí)驗(yàn).利用回歸方程計(jì)算供試液中原花青素的含量[9].
胰島素最佳濃度的確定:取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的 HepG2細(xì)胞,胰蛋白酶消化[7],將含 2%胎牛血清的 DMEM培養(yǎng)基置于 96孔板,細(xì)胞密度約為 106L-1.設(shè)置空白組(不包含細(xì)胞)、模型組,培養(yǎng) 24h.待細(xì)胞單層貼壁后,更換新鮮培養(yǎng)基,模型組的胰島素終濃度分別為 10、1、10-1、10-2、10-3μmol/L,37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中孵育 36h.更換無(wú)血清培養(yǎng)基孵育 24h,檢測(cè)培養(yǎng)基上清液中剩余葡萄糖含量.
胰島素最佳作用時(shí)間的確定:設(shè)置空白組和模型組,模型組加入新鮮配制的胰島素最佳濃度的培養(yǎng)基,37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中孵育 24、36、48h,更換無(wú)血清培養(yǎng)基孵育24h,測(cè)定葡萄糖含量.
分別設(shè)空白組(無(wú)細(xì)胞)、對(duì)照組(正常細(xì)胞)、模型對(duì)照組(胰島素抵抗細(xì)胞,不加藥)和模型加藥組(胰島素抵抗細(xì)胞,加藥 2.5、5.0mg/mL).藥物作用1d后,分別檢測(cè)培養(yǎng)基中葡萄糖含量,計(jì)算各組細(xì)胞的耗糖量.
按照上述方法獲得具有胰島素抗性的HepG2細(xì)胞,使用血細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),接種于 96孔板內(nèi),分組,分別加入 LSE30、LSE50、LSE70;作用 24h后棄去藥液,加入 0.5mg/mL MTT,置于培養(yǎng)箱中 4h后棄去上清液;加入 100μL DMSO,待結(jié)晶完全溶解后,使用酶標(biāo)儀在波長(zhǎng) 570nm 下測(cè)定吸光度,并計(jì)算細(xì)胞存活率.
稱取糖尿病模型大鼠肝組織 50.0mg,在液氮作用下碾碎,迅速加入1mL Trizol充分研磨,向EP管中依次加入提取的 mRNA 1~5μg、Oligo(dT)12-18 2μL,2.5mmol/L dNTP 混合物(pH 中性)8μL,滅菌蒸餾水補(bǔ)足至 15μL;70℃加熱 5min,冰上冷卻2min;依次加入 5×First-Strand緩沖液 4μL和TIANScript M-MLV 1μL(200U),混勻.再向 200μL的離心管中加入 Template(<1μg)、Primer1(10μmol/L) 1μL、Primer2(10μmol/L)1μL、10×Tap Buffer 5μL、DNTP Mixture(2.5μmol/L) 4μL、DNA Polymerase(2.5U/μL)1μL ,滅菌蒸餾水補(bǔ)足至50μL,進(jìn)行 PCR 反應(yīng).GAPDH 上游引物為 5′-ATTCAACGGCACAGTCAAGG-3′,下游引物為 5′-CTCACCTCCTCCAAGTTATT-3′;AMPKα2 上游引物為 5′-GCAGAAGGGGCGGAGATGA-3′,下游引物為 5′-TCAGATGGGCTTATACAGC-3′.
100mmol/L 苯甲基磺酰氟(PMSF)用 RAPI裂解液稀釋 100倍.稱取 100mg肝組織冰上研磨,加入10倍體積的含有PMSF和RAPI的裂解液,將液體轉(zhuǎn)入 EP管在冰上裂解 30min,12000r/min離心15min.取上清液,加入 3倍體積的 4×SDS上樣緩沖液,100℃水浴 5min,冷卻至室溫.進(jìn)行 SDSPAGE電泳實(shí)驗(yàn),電流為 150mA,時(shí)間 40min.將轉(zhuǎn)好的 PVDF膜放入封閉液中,室溫封閉 1h.然后將一抗按說(shuō)明書(shū)稀釋,把膜放入一抗中室溫下孵育2h,TBST洗 5次,每次 5min.將二抗按說(shuō)明書(shū)稀釋,把 PVDF膜放入二抗中,室溫下孵育 1h,TBST洗3次,每次10min;用PBS洗1次,紅外Odessy掃描儀掃描.
采用 IBM SPSS statistics軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,*表示組間具有顯著差異(P<0.05).
按照 1.2節(jié)分別獲得 LSE30、LSE50和 LSE70的質(zhì)量分別為 10.30、99.08、74.58g.通過(guò)紫外-可見(jiàn)分光光度法分別測(cè)得 LSE30、LSE50、LSE70中的總多酚、總黃酮、總皂苷、總多糖和原花青素的含量見(jiàn)表 1.LSE50中總多酚、總黃酮、總皂苷和原花青素的提取產(chǎn)率最高,而總多糖的提取產(chǎn)率隨乙醇濃度的增加而下降.
表1 荔枝核提取物各成分總含量Tab. 1 Total content of each component in LSE
體外胰島素抵抗作用的間接反映就是細(xì)胞對(duì)葡萄糖的利用率降低.對(duì)比圖 1(a)各組葡萄糖濃度,胰島素濃度為1μmol/L時(shí),培養(yǎng)基中葡萄糖濃度最高,細(xì)胞對(duì)胰島素的抵抗作用最強(qiáng),因此選擇此胰島素濃度為細(xì)胞建模的最佳濃度.
圖1 HepG2細(xì)胞胰島素抵抗模型的建立Fig. 1 Insulin resistance model established with HepG2 cell
由圖 1(b)可知,作用 24h細(xì)胞對(duì)葡萄糖的利用率最高,隨著時(shí)間的推移,細(xì)胞對(duì)葡萄糖的利用率逐漸降低,因此選擇24h為細(xì)胞建模的最佳時(shí)間.綜上所述,濃度為 1μmol/L胰島素對(duì) HepG2細(xì)胞作用24h后的細(xì)胞即為胰島素抵抗模型細(xì)胞.
采用 MTT法測(cè)定荔枝核的提取物對(duì) HepG2細(xì)胞活力的影響,結(jié)果見(jiàn)表 2.隨著藥物濃度的升高,細(xì)胞的存活率逐漸降低;在相同濃度下,LSE50和LSE70的細(xì)胞存活率基本相同且低于 LSE30.為準(zhǔn)確量化 3種樣品對(duì)細(xì)胞殺傷能力的大小,應(yīng)用 SPSS 20.0軟件計(jì)算存活率達(dá)到 50%的時(shí)候的 IC50值.LSE30、LSE50和 LSE70的 IC50值分別為 24.60、11.70、12.02μg/mL.IC50值越小,則證明該樣品對(duì)HepeG2細(xì)胞殺傷能力越強(qiáng).LSE50和 LSE70對(duì)HepG2細(xì)胞的殺傷能力近似相等且遠(yuǎn)遠(yuǎn)強(qiáng)于LSE30.這可能與其黃酮、多酚類物質(zhì)的含量較高有關(guān)系.
表2 各實(shí)驗(yàn)組HepG2細(xì)胞存活率(n=4)Tab. 2 HepG2 cell survival in every experimental group(n=4)
荔枝核提取物對(duì)胰島素抵抗模型細(xì)胞的作用如圖 2所示,*表示與模型組相比有顯著差異(P<0.05).5.0、2.5 μg/mL的 LSE70和 LSE50都有降糖活性,組間不存在顯著差異,但與模型組相比存在顯著差異(P<0.05);隨著藥物濃度的升高,降糖效果會(huì)逐漸增強(qiáng),但藥效增強(qiáng)的同時(shí),會(huì)造成對(duì)細(xì)胞的損傷.以上實(shí)驗(yàn)證明,LSE50和 LSE70活性均很好,由表 1可知組成也相當(dāng),所以下面以 LSE70實(shí)驗(yàn)組為例,開(kāi)展下述實(shí)驗(yàn).
圖2 荔枝核提取物對(duì)胰島素抵抗細(xì)胞模型攝取葡萄糖的促進(jìn)作用Fig. 2 Effect of LSE on glucose uptake of HepG2 cells with insulin resistance
以生物能量代謝調(diào)節(jié)的關(guān)鍵分子AMPK為出發(fā)點(diǎn),從細(xì)胞能量代謝的角度分析降糖機(jī)制.由于AMPK 的α 亞基起催化作用,α 2亞單元在肝臟、骨骼肌和心肌中表達(dá)較高,本實(shí)驗(yàn)使用的細(xì)胞為肝細(xì)胞,所以在AMPK三聚體中選擇α 2亞單元進(jìn)行基因和蛋白水平的分析.用 Real-time PCR法和 Western blot法檢測(cè)相關(guān)基因和蛋白的表達(dá),結(jié)果如圖3和圖4所示.由圖3和圖4可知:LSE組可逆轉(zhuǎn)因高濃度胰島素誘導(dǎo)而導(dǎo)致的 AMPKα 2基因水平下降以及逆轉(zhuǎn)因高濃度胰島素誘導(dǎo)而導(dǎo)致的 p-AMPK蛋白水平的下降.
圖3 荔枝核提取物對(duì) HepG2細(xì)胞中 AMPK基因轉(zhuǎn)錄的影響Fig. 3 Effect of LSE on AMPK gene transcription in HepG2 cells
圖4 荔枝核提取物對(duì) HepG2細(xì)胞中 AMPK蛋白表達(dá)的影響Fig. 4 Effect of LSE on AMPK protein expression in HepG2 cells
糖尿病是威脅人類健康的主要疾病之一,病死率僅次于腫瘤和心血管疾病,且其在發(fā)達(dá)國(guó)家和發(fā)展中國(guó)家均以指數(shù)形式增加,年輕化趨勢(shì)明顯.荔枝核中富含有黃酮[8]、多酚、皂苷和多糖類化合物.荔枝核對(duì)血清中升高的丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶(ALT)、天冬氨酸轉(zhuǎn)氨酶(AST)活性具有抑制作用,并能提高肝組織血清超氧化物歧化酶(SOD)的活力[10],使肝細(xì)胞免受損傷,從而達(dá)到治療肝損傷目的[11].荔枝核提取物有調(diào)節(jié)血糖、改善糖尿病糖脂代謝紊亂和預(yù)防糖尿病并發(fā)癥發(fā)生的作用[6].2型糖尿病是由肝臟葡萄糖產(chǎn)生增加、利用葡萄糖異常及胰島素分泌不足引起的,以胰島素抵抗和胰腺 β細(xì)胞功能失常為特征的疾病.AMPK是一種保守的異源三聚體,其酶活力能夠被腺嘌呤核糖核苷酸(AMP)上調(diào).該蛋白質(zhì)激酶能夠通過(guò)感受細(xì)胞能量狀態(tài)來(lái)維持真核細(xì)胞的三磷酸腺苷(ATP)生成和消耗的平衡,即形成能量穩(wěn)態(tài).AMPK是機(jī)體保持葡萄糖平衡所必需的.由于分子機(jī)制十分復(fù)雜,藥物分子激活 AMP是一個(gè)巨大的挑戰(zhàn),但其激活能改善由 2型糖尿病引起的代謝失衡.同時(shí),AMPK 在調(diào)控細(xì)胞生長(zhǎng)和增殖、建立和穩(wěn)定細(xì)胞極性、調(diào)節(jié)動(dòng)物壽命、調(diào)控生理節(jié)律等方面也起著重要作用.目前有報(bào)道[6]稱荔枝核提取物可以顯著調(diào)節(jié)餐后血清中的脂類和膽固醇的含量,前期實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)其與糖、脂等代謝通路相關(guān),而AMPK是其調(diào)控通路的直接蛋白,本實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證了這一思路.Qi等[12]通過(guò)用不同體積分?jǐn)?shù)的乙醇對(duì)荔枝核中不同極性層的有效成分進(jìn)行提取比較后,對(duì)使用荔枝核提取物灌胃治療的糖尿病大鼠的肝臟組織的 AMPKα 2和 p-AMPK的表達(dá)量進(jìn)行了比較及分析.文獻(xiàn)[5]報(bào)道用乙酸乙酯萃取的方法并不能對(duì)荔枝核中的原花青素起到富集的作用,但是可以起到富集荔枝核提取物中多酚和類黃酮類成分的作用.LSE50和 LSE70的化學(xué)成分和生物活性都極其相似,工業(yè)生產(chǎn)中可以將LSE50和LSE70兩層合并提取.AMPK通路的激活能改善由 2型糖尿病引起的代謝失衡.本研究發(fā)現(xiàn),荔枝核提取物可以阻止因高濃度胰島素誘導(dǎo)而導(dǎo)致的 AMPKα 2水平降低,調(diào)節(jié)和改善能量代謝.因此可以推測(cè),荔枝核提取物對(duì)糖尿病模型大鼠的降糖作用可能與 AMPK的表達(dá)變化有關(guān),相關(guān)的機(jī)制還需要進(jìn)一步研究.