高慧,汪洋,邢燕,*,王勤,尚萌琳
(1.淄博市疾病預(yù)防控制中心,山東 淄博 255026;2.山東大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院,山東 濟(jì)南 250000)
中國(guó)是全球較早的茶葉出產(chǎn)和銷售的國(guó)家,也是全球最大的茶葉消費(fèi)國(guó),隨著經(jīng)濟(jì)全球化發(fā)展,茶葉的出口量也持續(xù)增加。蒽醌在自然界中廣泛存在,茶葉中蒽醌的殘留污染可能來源于農(nóng)藥殘留或產(chǎn)品包裝。因歐盟認(rèn)為蒽醌具有致癌性,2014年10月,歐盟新發(fā)布的(EU)No1146/2014 中規(guī)定了茶葉中蒽醌的最高限量為0.02 mg/kg[1]。我國(guó)尚無最高限量要求。2014年我國(guó)茶葉出口同比下降。中國(guó)輸歐茶葉因不符合限值要求被通報(bào)27 次,其中蒽醌8 次,居首位[2]。研究茶葉中蒽醌的污染來源和控制技術(shù),降低茶葉中蒽醌污染物含量,破除歐盟技術(shù)壁壘是一個(gè)急需解決的問題,因此,建立茶葉中蒽醌的定量檢測(cè)方法至關(guān)重要。
9,10-蒽醌,又名蒽醌(anthraquinone,CAS No.84-65-1),是一種黃色針狀結(jié)晶,易溶于熱苯、熱甲苯、乙醇、乙醚和氯仿,不溶于水,蒽醌常存在于高等植物和低等植物地衣類和真菌類的代謝產(chǎn)物中,主要用于染料生產(chǎn)的中間體,是媒染染料、酸性染料和還原染料的主要原料。還用做紙制品印花的導(dǎo)氧劑。GB/T 23204-2008《茶葉中519 種農(nóng)藥及相關(guān)化學(xué)殘留量的測(cè)定氣相色譜-質(zhì)譜法》[3]涉及蒽醌殘留量的測(cè)定,但為定性檢測(cè)方法,不適合于茶葉中微量蒽醌的測(cè)定。目前報(bào)道的蒽醌類定量測(cè)定的方法主要有分光光度法[4-7]、高效液相色譜法[8-10]、氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法[11]、氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[12-16]、高效毛細(xì)管電泳法[17]等。其中分光光度法和高效液相色譜法多為測(cè)定總蒽醌含量,不適合于茶葉中蒽醌的測(cè)定;氣相色譜-質(zhì)譜法和氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法多為凝膠聯(lián)合凈化或SPE 小柱凈化,能夠較好的純化分離出目標(biāo)物,但凈化過程比較繁瑣,耗時(shí)較長(zhǎng);高效毛細(xì)管電泳法普及率比較低。本研究通過對(duì)樣品前處理?xiàng)l件、色譜條件等的優(yōu)化,建立了一種準(zhǔn)確、快速測(cè)定茶葉中蒽醌的氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(gas chromatography-tandem mass spectrometry,GC-MS/MS)內(nèi)標(biāo)分析方法。
Agilent 7010 三重四極桿氣質(zhì)譜聯(lián)用儀[配電子轟擊離子源(EI)]:美國(guó) Agilent 公司;N-EVAP 112 氮吹濃縮儀:美國(guó) OA-SYS 公司;CP-225D 電子天平:德國(guó)Sartorius 公司;ST-16R 高速冷凍離心機(jī):美國(guó)Thermo公司;KS-500D 型超聲波清洗器:寧波科生儀器廠;Milli-Q 超純水系統(tǒng):美國(guó)Millipore 公司。N-丙基乙二胺(Bondesil-PSA,40 μm,100 gm)、Bondesil-C18(40 μm,100 mg):美國(guó) Agilent 公司。無水硫酸鈉(AR 級(jí)):國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;乙腈(HPLC 級(jí))、丙酮(HPLC級(jí))、環(huán)己烷(HPLC 級(jí))、乙酸乙酯(HPLC 級(jí)):德國(guó)Merck 公司;蒽醌(純度≥98.0%):上海安譜公司;蒽醌-D8 標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(純度>99.0%):美國(guó)TRC 公司。
稱取0.010 0 g 蒽醌,加丙酮超聲、溶解、稀釋定容至10 mL,濃度為1 000 μg/mL,即為蒽醌標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液。取蒽醌標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液10 μL,加環(huán)己烷-乙酸乙酯(1+1)至 10 mL,即為蒽醌應(yīng)用液,濃度為 1 μg/mL,于 0 ℃~4 ℃冰箱內(nèi)避光保存。稱取0.010 0 g 蒽醌-D8 標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),加丙酮超聲、溶解、稀釋定容至10 mL;再取100 μL,加環(huán)己烷-乙酸乙酯(1+1)至 1 mL,即為蒽醌-D8 內(nèi)標(biāo)應(yīng)用液,濃度為 100 μg/mL,于 0 ℃~4 ℃冰箱內(nèi)避光保存。
1.3.1 色譜條件
色譜柱:HP-5MS(30 m×250 μm,0.25 μm);載氣:高純氦氣,純度>99.999%,恒流模式,進(jìn)樣口溫度:280 ℃;流速1.0 mL/min;程序升溫:初溫100 ℃,保持1 min,以 10 ℃/min 升到 200 ℃,保持 2 min,繼續(xù)以 25 ℃/min升到 280 ℃,保持 10 min;進(jìn)樣量:1 μL;進(jìn)樣方式:不分流進(jìn)樣。
1.3.2 質(zhì)譜條件
電離方式:電子轟擊離子源(EI);離子源溫度:230 ℃;接口溫度:300 ℃;電子能量 70 eV;碰撞氣:高純氬氣,純度>99.999%,;溶劑延遲:3.75 min;掃描方式:多反應(yīng)監(jiān)測(cè)模式(multiple reaction monitoring,MRM)掃描模式;駐留時(shí)間:0.10 s。標(biāo)準(zhǔn)的保留時(shí)間、定性離子、定量離子對(duì)等具體質(zhì)譜參數(shù)見下表1。
表1 標(biāo)準(zhǔn)的質(zhì)譜參數(shù)表Table 1 The mass spectrometry parameters of standards
1.3.3 樣品前處理
將100 g 茶葉用粉碎機(jī)粉碎,混勻,分裝于兩個(gè)50 mL 潔凈棕色玻璃瓶中,一份用于遮光密閉保存留樣,另外一份用于檢測(cè)。
1.3.3.1 樣品提取
精確稱取2 g(精確至0.001 g)粉碎、混勻茶葉樣品于50 mL 離心管中,加水3 mL,加蒽醌-D8 內(nèi)標(biāo)應(yīng)用液 10 μL,渦旋 30 s 潤(rùn)濕樣品,加 10 mL 乙腈,超聲提取30 min,加無水硫酸鈉2 g,渦旋混勻1 min,以8 000 r/min 離心10 min。上清液待凈化。
1.3.3.2 樣品QuEChERS 凈化
取乙腈提取液約8 mL,加入0.8 g 無水硫酸鈉,0.8 g PSA 粉末和0.4 g C18 固相吸附劑,渦旋1 min,8 000 r/min 離心 5 min。取上清液 5.0 mL,40 ℃氮吹濃縮至近干,加1.0 mL 乙腈溶解殘?jiān)?,渦旋1 min,以8 000 r/min 離心 5 min,上清液過 0.22 μm 聚四氟乙烯過濾膜,待測(cè)定。
1.3.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制
分別準(zhǔn)確吸取1.2 中蒽醌標(biāo)準(zhǔn)應(yīng)用液(1 μg/mL)10、20、50、100、150、200 μL 于 1 mL 樣品瓶中,分別各加入蒽醌-D8 內(nèi)標(biāo)應(yīng)用液(100 μg/mL)5 μL,用乙腈定容至 1 mL,蒽醌-D8 的濃度為 0.50 μg/mL,蒽醌標(biāo)準(zhǔn)系列溶液濃度為 10、20、50、100、150、200 ng/mL。以蒽醌的濃度為橫坐標(biāo),定量離子對(duì)(208>180)的峰面積與內(nèi)標(biāo)峰面積的比值為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。標(biāo)準(zhǔn)總離子流圖見圖1。
圖1 標(biāo)準(zhǔn)總離子流圖Fig.1 The total ion chromatogram of standard
由于茶葉中基質(zhì)復(fù)雜,測(cè)定茶葉中蒽醌必須選擇能夠很好的把目標(biāo)物與干擾物分離的色譜柱,試驗(yàn)比較了 HP-5MS、DB-5MS、DB-1701P 3 種不同的色譜柱,DB-5MS、DB-1701P 和 HP-5MS 3 種色譜柱的樣品加標(biāo)色譜圖見圖2、圖3、圖4。
改變色譜分離條件,觀察分離情況,不同色譜柱對(duì)目標(biāo)物的分離情況見下表2。
表2 結(jié)果表明,HP-5MS 較其他兩種色譜柱分離效果更好。
進(jìn)樣口溫度過高,會(huì)致使蒽醌分解,溫度過低,蒽醌汽化不完全,靈敏度均會(huì)下降??疾榱?40 ℃到290 ℃之間的進(jìn)樣口溫度,不同進(jìn)樣口溫度對(duì)蒽醌峰面積的影響見圖5。
由圖5 發(fā)現(xiàn)溫度在280 ℃時(shí),蒽醌氣化完全,未見分解。
圖2 DB-5MS 樣品加標(biāo)色譜圖Fig.2 The total ion chromatogram of adding sample separating by DB-5MS chromatographic column
圖3 DB-1701 樣品加標(biāo)色譜圖Fig.3 The total ion chromatogram of adding sample separating by DB-1701 chromatographic column
圖4 HP-5MS 樣品加標(biāo)色譜圖Fig.4 The total ion chromatogram of adding sample separating by HP-5MS chromatographic column
表2 不同色譜柱的分離情況Table 2 The separation results of adding sample by different chromatographic columns
圖5 不同進(jìn)樣口溫度對(duì)蒽醌峰面積的影響Fig.5 The effect of different inlet temperatures on anthraquinone peak area
在優(yōu)化的色譜條件下進(jìn)行全掃描(Scan),得到蒽醌的質(zhì)譜圖,選擇質(zhì)核比較大,相對(duì)豐度高的離子作為產(chǎn)物離子。再用MRM 方式掃描,為保證掃描結(jié)果的準(zhǔn)確度,按待測(cè)組分保留時(shí)間分組,使待測(cè)物有充足的時(shí)間掃描。分別選擇了豐度較高的兩組離子m/z 208,180,m/z 208,152 為定量和定性離子對(duì),對(duì)產(chǎn)物離子進(jìn)行掃描。為提高檢測(cè)的靈敏度,根據(jù)離子信息,選取不同的碰撞能量觀察離子對(duì)的響應(yīng)情況,最終選取了10 eV 做為定量和定性離子對(duì)的碰撞能量。
氣相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法測(cè)定樣品時(shí),有時(shí)基質(zhì)對(duì)待測(cè)物的離子具有抑制或增強(qiáng)效應(yīng),因此選用內(nèi)標(biāo)法定量以提高靈敏度和準(zhǔn)確性。分別制備用空白基質(zhì)樣品溶液和乙腈稀釋的蒽醌和蒽醌-D8 標(biāo)準(zhǔn)工作溶液,對(duì)空白茶葉樣品進(jìn)行低、中、高3 個(gè)濃度的添加水平試驗(yàn),用內(nèi)標(biāo)法進(jìn)行定量,乙腈配制與空白基質(zhì)樣品溶液配制的工作曲線回收率沒有明顯差異,比較接近,故選用了乙腈配制標(biāo)準(zhǔn)工作液。不同溶劑蒽醌的加標(biāo)回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差見表3。
表3 不同溶劑蒽醌的加標(biāo)回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差Table 3 The recovery rate and relative standard deviation(RSD)of anthraquinone in different solvents
2.4.1 提取效應(yīng)
為了測(cè)試茶葉樣品加水后檢測(cè),對(duì)檢測(cè)結(jié)果有無影響。試驗(yàn)稱取了8 份蒽醌陽性茶葉樣品,其中4 份加水3 mL,渦旋30 s 潤(rùn)濕樣品,另4 份不加水,分別加入10 mL 乙腈,后續(xù)步驟按照1.3.3.1 和1.3.3.2 提取、凈化。試驗(yàn)數(shù)據(jù)顯示,茶葉樣品加水潤(rùn)濕后再加溶劑提取、凈化,回收率更高。結(jié)果見表4。
表4 樣品測(cè)試結(jié)果比較Table 4 The comparison of sample results
2.4.2 樣品凈化的選擇
分別選用了SPE 小柱和QuEChERS 兩種凈化方式進(jìn)行比較。首先選用了TPC(ProElut TPC-2 固相萃取柱,6 mL,迪馬公司)小柱填充物上加入1 g 無水硫酸鈉,用 10 mL 乙腈-甲苯(3+1,體積比)活化;乙腈提取液 5.0 mL 上樣,棄去流出液;用 8 mL 甲苯-乙腈(1+3,體積比)淋洗,棄去流出液;再用12 mL 甲苯-乙腈(1+3,體積比)洗脫,抽干,收集洗脫液。40 ℃氮吹濃縮至近干,加 1.0 mL 乙腈溶解殘?jiān)瑴u旋 1 min,8 000 r/min 離心5 min,上清液過0.22 μm 聚四氟乙烯過濾膜,待測(cè)定。QuEChERS 凈化方式一:取乙腈提取液約8 mL,加入0.8 g 無水硫酸鈉,0.8 g 石墨化炭黑粉末和0.4 g C18 固相吸附劑,渦旋 1 min,8 000 r/min 離心 5 min。取上清液5.0 mL,40 ℃氮吹濃縮至近干,加1.0 mL 乙腈溶解殘?jiān)瑴u旋1 min,以8 000 r/min 離心5 min,上清液過0.22 μm 聚四氟乙烯過濾膜,待測(cè)定。QuECh-ERS 凈化方式二同1.3.3.2。不同凈化方式對(duì)蒽醌回收率的影響見圖6。
圖6 不同凈化方式對(duì)蒽醌回收率的影響Fig.6 The effect of different purification ways on the recovery rate of Anthraquinone
圖6 檢測(cè)結(jié)果表明,選用QuEChERS 凈化方式二凈化效果較好和回收率最高,因此選用了1.3.3.2 QuEChERS 凈化方式。
在本試驗(yàn)條件下,按照1.3 的試驗(yàn)條件進(jìn)行測(cè)定,以蒽醌的濃度為橫坐標(biāo),定量離子對(duì)(208>180)的峰面積與內(nèi)標(biāo)峰面積的比值為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。結(jié)果顯示:蒽醌在10 ng/mL~200 ng/mL 范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。同時(shí)做空白樣品加標(biāo)試驗(yàn),以3 倍信噪比計(jì)算檢出限(limit of detection,LOD),以信噪比 10 倍計(jì)算定量限(limit of quantitative determination,LQD),結(jié)果見表5。
表5 蒽醌的線性方程、線性范圍、相關(guān)系數(shù)、LOD、LQDTable 5 The linear equation,linear range,correlation coefficient,LOD,LQD of anthraquinone
選取了未檢出蒽醌的綠茶、紅茶、烏龍茶、白茶4種樣品,分別稱取2 g(精確至0.001 g)樣品于50 mL離心管中,分別添加質(zhì)量濃度為20、50、200 ng/mL 的標(biāo)準(zhǔn)溶液,每個(gè)添加水平取6 份平行樣,充分混勻后,按照最佳前處理和色譜質(zhì)譜分析條件進(jìn)行測(cè)定,回收率在 87.1%~98.4%之間,RSD 為 1.23%~4.12%,結(jié)果見表6。茶葉樣品總離子流圖見圖7,茶葉樣品加標(biāo)總離子流圖見圖8。
表6 蒽醌的加標(biāo)回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差Table 6 The recovery and relative standard deviation(RSD)of anthraquinone
隨機(jī)采集市售茶葉50 份,包括綠茶15 份、紅茶15 份、烏龍茶10 份、白茶10 份。其中蒽醌檢出12 份,檢出率24.0%,其中紅茶檢出率最高為33.3%,白茶檢出率最低為13.3%;超標(biāo)8 份,超標(biāo)率為16.0%,其中、綠茶 2 份、紅茶 3 份、烏龍茶 2 份、白茶 1 份。通過測(cè)定結(jié)果可以看出,茶葉中的蒽醌確有檢出。該方法適用于茶葉中蒽醌的測(cè)定。
本研究通過對(duì)茶葉樣品的前處理?xiàng)l件和色譜質(zhì)譜條件的優(yōu)化,選擇了最佳檢測(cè)條件,實(shí)現(xiàn)了對(duì)茶葉中蒽醌的測(cè)定,達(dá)到了很好的分離效果。該方法具有操作簡(jiǎn)便、線性范圍寬、檢出限低、靈敏度高、雜質(zhì)干擾少及結(jié)果準(zhǔn)確可靠等優(yōu)點(diǎn)。因茶葉中干擾物復(fù)雜,本文選用了QuEChERS 凈化方式,選用了無水硫酸鈉、
圖7 茶葉樣品的總離子流圖Fig.7 The total ion chromatogram of tea sample
圖8 茶葉樣品加標(biāo)的總離子流圖Fig.8 The total ion chromatogram of adding tea sample
PSA 粉末和C18 固相吸附劑,既能實(shí)現(xiàn)茶葉中復(fù)雜干 擾物的去除又能實(shí)現(xiàn)待測(cè)物的完全保留和洗脫,實(shí)現(xiàn)了氣相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法對(duì)茶葉中蒽醌的定量檢測(cè),滿足了茶葉中蒽醌的分析測(cè)試要求。