黃思遠(yuǎn) 孫寧陽(yáng) 石晏丞
摘要:為評(píng)價(jià)DNA條形碼候選序列對(duì)藏藥波棱瓜屬植物的鑒定作用,探討波棱瓜屬植物鑒定新方法,本研究采用不同產(chǎn)地、不同海拔波棱瓜植物的ITS2、PsbA-trnH、rbcL、matK通用引物對(duì)110份樣品進(jìn)行DNA提取、PCR 擴(kuò)增和測(cè)序,比較4條DNA序列擴(kuò)增效率和測(cè)序成功率;分析種內(nèi)和種間變異;通過(guò)Barcoding gap 分析,構(gòu)建NJ系統(tǒng)進(jìn)化樹,評(píng)價(jià)各序列對(duì)西藏自治區(qū)、云南省、四川省不同海拔波棱瓜藥材的辨別能力。研究結(jié)果表明,ITS2序列在所研究的波棱瓜屬藥用植物中的擴(kuò)增效率和測(cè)序成功率均為100%,其種內(nèi)種間變異、Barcoding gap與其他DNA條形碼候選序列相比具有明顯的優(yōu)勢(shì),以ITS2序列作為DNA條形碼,可對(duì)波棱瓜進(jìn)行準(zhǔn)確、快速識(shí)別和鑒定,準(zhǔn)確地弄清楚不同地區(qū)不同海拔所生長(zhǎng)的波棱瓜之間的進(jìn)化關(guān)系,為該藥用植物的質(zhì)量控制、安全用藥及資源合理開發(fā)利用提供理論依據(jù)。
關(guān)鍵詞:波棱瓜屬;DNA條形碼;ITS2;matK;rbcL;PsbA-trnH
中圖分類號(hào):S567.21+9.01?? 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A? 文章編號(hào):1002-1302(2019)11-0066-05
波棱瓜作為傳統(tǒng)的藏藥材,其用藥部位為其干燥種子。它的藥理作用在藏藥學(xué)著作《月王藥診》中被著述,波棱瓜子味苦、性寒,可和纖毛婆婆納、藏茵陳、止瀉木按一定劑量進(jìn)行配伍煎湯,藏醫(yī)主要用其治療赤巴炎癥;此外波棱瓜子與玉石等配伍主要治療各種肝病[1]。波棱瓜子木脂素部位及其單體常用于治療黃疸、肝炎、消化不良及肝膽疾病。相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道,波棱瓜子的藥理作用主要有抗肝損傷[2]、抗肝炎[3]等。
DNA條形碼技術(shù)通過(guò)測(cè)定植物DNA序列進(jìn)行比較來(lái)反映其遺傳差異,通過(guò)建立生物DNA 條形碼系統(tǒng)能夠?qū)崿F(xiàn)快速、準(zhǔn)確、自動(dòng)化的物種鑒定[4-5]。目前,研究者們已經(jīng)測(cè)定了10 多條植物候選DNA條形碼序列[6],并在不同的類群中對(duì)各條形碼的鑒定能力進(jìn)行了考察。ITS2序列中含有豐富的變異位點(diǎn)和信息位點(diǎn),并且該序列在植物中廣泛存在,因此可以應(yīng)用于物種的鑒定,對(duì)植物有較高的鑒別能力[7-8]??梢酝ㄟ^(guò)ITS2序列來(lái)區(qū)分波棱瓜植物的產(chǎn)地,進(jìn)行快速準(zhǔn)確識(shí)別和鑒定,對(duì)研究波棱瓜的分布有指導(dǎo)作用,對(duì)其遺傳育種研究、種質(zhì)資源的生乳研究以及資源保護(hù)和全利用都具有重要的理論和實(shí)踐價(jià)值。
本研究應(yīng)用近年來(lái)提出的植物DNA 條形碼候選序列ITS2、 PsbA-trnH、rbcL、matK對(duì)波棱瓜屬植物進(jìn)行研究,考察不同DNA 條形碼候選序列在波棱瓜屬藥用植物鑒定中的能力,以期建立波棱瓜屬藥用植物數(shù)字鑒定方法。
1 材料與方法
1.1 材料
筆者所在課題組共收集110份波棱瓜屬樣本,具體樣本見表1。試驗(yàn)樣本經(jīng)西南民族大學(xué)藥學(xué)院顧健教授鑒定為波棱瓜屬[Herpetospermum pedunculosum (Ser.) C. B. Clarke]葉片和種子。其中葉片樣本100份,都為硅膠干燥的葉片,10份為成熟種子,采樣時(shí)間為2016年9月。測(cè)序公司為生工生物工程(上海)股份有限公司。
1.2 方法
1.2.1 樣品DNA提取、PCR擴(kuò)增及測(cè)序 取干燥藥材 30 mg,加入液氮充分碾磨,使用植物DNA提取試劑盒(Tiangen Biotech Co.,China)提取總DNA。matK、rbcL、PsbA-trnH、ITS2的擴(kuò)增引物見表2;候選DNA條形碼序列的PCR擴(kuò)增體系見表3。
1.2.2 數(shù)據(jù)處理 試驗(yàn)主要應(yīng)用的軟件有DANMAN、MEGA version 5.1和SPSS 16.0。運(yùn)用DANMAN軟件查看測(cè)序成功的序列,并將序列錄入到MEGA version 5.1軟件中,進(jìn)行序列之間遺傳距離的分析進(jìn)而構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹,分析保存序列的變異位點(diǎn)、序列的遺傳距離;運(yùn)用SPSS 16.0進(jìn)行Wilcoxon秩和檢驗(yàn)分析,比較各個(gè)序列的變異程度;通過(guò)Barcoding gap,查看序列的種內(nèi)、種間差異情況,觀察是否出現(xiàn)顯著gap,進(jìn)一步挑選合適的DNA條形碼片段;運(yùn)用MEGA version 5.1軟件中的鄰接法(NJ),分析不同序列物種識(shí)別和鑒定能力。根據(jù)系統(tǒng)進(jìn)化樹計(jì)算K2P距離,設(shè)100次重復(fù)檢驗(yàn)。
2 結(jié)果與分析
2.1 PCR擴(kuò)增結(jié)果
陰性對(duì)照(CK)采用加入和模板等量ddH2O后擴(kuò)增的PCR產(chǎn)物,從圖1可以看出,CK組無(wú)條帶,說(shuō)明樣品PCR擴(kuò)增成功,不存在真菌污染,4條序列樣本電泳條帶均明亮,滿足試驗(yàn)要求。
2.2 PCR擴(kuò)增率和測(cè)序成功率
對(duì)樣本的ITS2、matK、PsbA-trnH、rbcL等4條候選序列進(jìn)行PCR擴(kuò)增效率(出現(xiàn)明顯條帶)和測(cè)序成功率(測(cè)序獲
得高質(zhì)量序列)統(tǒng)計(jì),結(jié)果(圖2)顯示,ITS2、matK序列為100.0%,PsbA-trnH序列擴(kuò)增效率為91.0%,rbcL序列擴(kuò)增效率為85.0%;ITS2測(cè)序成功率為100.0%,matK測(cè)序成功率為88.9%,PsbA-trnH、rbcL測(cè)序成功率都為97.8%。
2.3 候選DNA條形碼序列特征
本研究對(duì)不同產(chǎn)地不同海拔波棱瓜樣品的4個(gè)DNA片段ITS2、matK、PsbA-trnH、rbcL進(jìn)行測(cè)序。測(cè)序所得的序列用DANMAN軟件進(jìn)行排列剪切,然后用MEGA 5.1軟件統(tǒng)計(jì)序列的變異位點(diǎn)、保守位點(diǎn)、序列長(zhǎng)度、GC含量等基本信息。從表4可以看出,在4個(gè)基因片段中,ITS2有54個(gè)變異位點(diǎn),并且變異程度最高,為22.7%;rbcL變異程度最小,為0.4%;變異程度表現(xiàn)為ITS2>PsbA-trnH>matK>rbcL。因此選擇基于ITS2基因?qū)Σɡ夤喜煌a(chǎn)地及海拔樣品進(jìn)行比對(duì)。序列matK的擴(kuò)增片段最長(zhǎng),而ITS2最短。
2.4 種內(nèi)種間的變異分析
從表5可以看出,4種序列種間變異平均值由大到小的順序?yàn)镮TS2>PsbA-trnH>rbcL>matK;種間最小變異的順序?yàn)镮TS2>PsbA-trnH>matK>rbcL;種內(nèi)變異平均值順序?yàn)镮TS2>PsbA-trnH>rbcL>matK。通過(guò)對(duì)波棱瓜屬各條形碼候選序列的種間變異、種內(nèi)變異、種間最小變異分析發(fā)現(xiàn),ITS2序列滿足種間變異應(yīng)當(dāng)大于種內(nèi)變異,并且種間最小變異應(yīng)當(dāng)小于種內(nèi)變異這一條件。
2.5 候選DNA條形碼Wilcoxon秩和檢驗(yàn)
候選DNA條形碼兩兩序列相關(guān)程度,一般通過(guò)Wilcoxon秩和來(lái)檢驗(yàn)。此方法可以更加準(zhǔn)確地反映出兩兩序列樣本的差異程度。從表6可以看出,ITS2序列與其他3條序列具有顯著差異。通過(guò)檢驗(yàn)發(fā)現(xiàn),ITS2序列種間的變異情況較其他序列快。
2.6 DNA條形碼Barcoding gap檢驗(yàn)
理想的條形碼種間遺傳變異應(yīng)明顯大于種內(nèi)遺傳變異,并在二者之間存在顯著差異,形成一個(gè)明顯的間隔區(qū),即Barcoding gap。從圖3可以看出,rbcL序列的種內(nèi)遺傳變異值和種間遺傳變異值主要集中在0~0.001區(qū)域,matK序列的種內(nèi)遺傳變異值和種間遺傳變異值集中在0.002~0.003區(qū)域,重疊部分多,無(wú)明顯gap;PsbA-trnH的種內(nèi)遺傳變異值小,均集中在0~0.001區(qū)域,種間遺傳變異值在0~0.001、0.002~0.003區(qū)域均有分布,種內(nèi)種間遺傳變異重疊部分少,gap不明顯。ITS2種內(nèi)遺傳變異值在0~0.004區(qū)域均有分布,種間遺傳變異值分布范圍廣。ITS2的種內(nèi)種間遺傳變異所行成的bar coding gap明顯,但重區(qū)域較小,有利于區(qū)分物種。
2.7 ITS2、PsbA-trnH、rbcL、matK序列NJ系統(tǒng)進(jìn)化樹鑒定結(jié)果
根據(jù)各序列對(duì)所有樣本構(gòu)建NJ系統(tǒng)進(jìn)行樹(圖4、圖5、圖6、圖7)。從NJ進(jìn)化樹可以看出,PsbA-trnH序列構(gòu)建的系統(tǒng)進(jìn)化樹中的樣本有明顯的種內(nèi)差異,沒(méi)有明顯的種間變異,不能鑒別出不同海拔樣品。matK序列和rbcL序列構(gòu)建的進(jìn)化樹可將不同產(chǎn)地不同海拔的樣本聚類成一大類,種間距離很小,無(wú)法區(qū)分,鑒別效果不理想。ITS2序列構(gòu)建的進(jìn)化樹可以很好地區(qū)別出云南波棱瓜,同時(shí)四川省和西藏自治區(qū)樣品聚類為一類,與參照序列聚類距離遠(yuǎn),有明顯的種間距離。
3 討論
波棱瓜為來(lái)源于葫蘆科波棱瓜屬的植物,以種子入藥,是臨床常用藏藥。波棱瓜屬植物主要分布于青藏高原地區(qū),在我國(guó)主要分布在西藏自治區(qū)、四川省、云南省,在國(guó)外印度、尼泊爾也有分布。波棱瓜普遍生長(zhǎng)在路邊、林緣及山坡低矮灌木叢中,海拔為 2 300~3 500 m[9-10]。波棱瓜藥用歷史悠久,但存在稱謂混亂導(dǎo)致用藥混亂的現(xiàn)象,因此對(duì)波棱瓜屬植物進(jìn)行準(zhǔn)確識(shí)別和鑒定,對(duì)該藥材的安全使用和波棱瓜資源的合理開發(fā)及保護(hù)都十分重要。
本研究通過(guò)對(duì)不同產(chǎn)地不同海拔采集的波棱瓜植物樣本進(jìn)行PCR擴(kuò)增、測(cè)序可知,ITS2序列長(zhǎng)度約為238 bp,擴(kuò)增成功率和測(cè)序成功率都為100%,有54個(gè)變異位點(diǎn),變異率為22.7%,DNA條形碼變異率較高,種間種內(nèi)差異明顯,種間最小變異小于平均溯祖度。Wilcoxon秩和檢驗(yàn)的結(jié)果是ITS2變異檢驗(yàn)值大于其他3個(gè)序列。從Barcoding gap圖中能夠看出,ITS2種間遺傳變異分布范圍廣,與種內(nèi)遺傳變異值的重疊區(qū)域較小,有利于區(qū)分物種。
PsbA-trnH間隔區(qū)在被子植物中具有高度變異性,其兩端具有75 bp的保守區(qū)序列,便于設(shè)計(jì)通用引物[6,11],在波棱瓜屬中的擴(kuò)增效率為91%,從Barcoding gap圖中可以看出,PsbA-trnH序列的種內(nèi)和種間遺傳變異值的集中區(qū)域雖然沒(méi)有重疊,但gap不明顯,所以PsbA-trnH序列不適合單獨(dú)作為波棱瓜屬植物的DNA條形碼。matK序列是植物葉綠體DNA 中進(jìn)化較快的一條編碼區(qū)序列,也是多位研究者推薦的條形碼序列之一[6,12-15]。本試驗(yàn)中,matK序列在波棱瓜屬植物中擴(kuò)增效率雖然高,但是測(cè)序成功率僅為88.9%,低于其他3條序列,且種內(nèi)種間重疊部分多,無(wú)明顯gap,因此matK不適合作為條形碼對(duì)波棱瓜屬植物進(jìn)行鑒定。rbcL序列的種間和種內(nèi)遺傳變異值分布區(qū)域接近且無(wú)明顯gap,因而判定rbcL也不適合作為波棱瓜屬植物的DNA條形碼序列。從NJ系統(tǒng)進(jìn)化樹圖中能夠看出,除ITS2序列構(gòu)建的系統(tǒng)進(jìn)化樹以外,其他3條均不適合獨(dú)自作為波棱瓜屬的條形碼來(lái)區(qū)分不同產(chǎn)地的波棱瓜。
參考文獻(xiàn):
[1]馬哈也那,馬世林,王振華,等. 月王藥診[M]. 蘭州:甘肅民族出版社,1993.
[2]顧 健,李佳川,樊利娜.藏藥波棱瓜子總木脂素對(duì)刀豆球蛋白(ConA)致免疫性肝損傷小鼠保護(hù)作用及其機(jī)制探討[J]. 西南民族大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2014,40(3):375-387,481.
[3]叢龍波,王 琪,李仙義,等. 藏藥波棱瓜子抗肝炎藥效物質(zhì)基礎(chǔ)研究[J]. 醫(yī)學(xué)研究雜志,2007,3(8):75-76.
[4]Bhargava M,Sharma A. DNA barcoding in plants:evolution and applications of in silico approaches and resources[J]. Molecular Phylogenetics and Evolution,2013,67(3):631-641.
[5]任瑤瑤,江南屏,劉睿穎,等. 應(yīng)用ITS2序列鑒定四川車前、平車前、大車前[J]. 江蘇中醫(yī)藥,2017,49(5):57-60.
[6]朱英杰,陳士林,姚 輝,等. 重樓屬藥用植物DNA條形碼鑒定研究[J]. 藥學(xué)學(xué)報(bào),2010,45(3):376-382.
[7]Yao H,Song J,Liu C,et al. Use of ITS2 region as the universal DNA barcode for plants and animals[J]. PLoS One,2010,5(10):e13102.
[8]豆榮昆,畢振飛,白瑞雪,等. 黃花紫堇、多刺綠絨蒿及其同屬近緣物種的ITS2條形碼鑒定與分析[J]. 中國(guó)中藥雜志,2015,40(8):1453-1458.
[9]盧 杰,蘭小中,羅 建.林芝地區(qū)珍稀瀕危藏藥植物資源調(diào)查與評(píng)價(jià)[J]. 資源科學(xué),2011,33(12):2362-2369.
[10]關(guān)法春,王 超,權(quán) 紅,等. 西藏野生波棱瓜資源的調(diào)查和分類[J]. 西南農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2011,24(2):832-834.
[11]Kress W J,Wurdack K J,Zimmer E A,et al. Use of DNA barcodes to identify flowering plants[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2005,102(23):8369-8374.
[12]魏星任,葉清蓮,馬新業(yè),等. 涼粉草DNA條形碼通用序列的篩選及其混偽品分子鑒定[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2017,45(13):32-35.
[13]劉政澤,劉 博. 基于ITS+matK序列探討部分藤黃屬植物的種間親緣關(guān)系[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2017,45(13):39-42.
[14]Chase M W,Cowan R S,Hollingsworth P M,et al. A proposal for a standardised protocol to barcode all land plants[J]. Taxon,2007,56(2):295-299.
[15]Lahaye R,Van Der Bank M,Bogarin D,et al. DNA barcoding the floras of biodiversity hotspots[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2008,105(8):2923-2928.