黎婭,吳穹,馬曉雨,常秀君,韓蕙竹,何敏,解安達,范培云
(青海大學(xué),青海 西寧 810001;*青海省人民醫(yī)院,青海 西寧 810007)
糖尿病的患病率逐年增加,據(jù)估計,到2040年全球約有6.24億人患有糖尿病[1]。其中2型糖尿病占糖尿病總數(shù)的90%~95%[2]。2型糖尿病有著復(fù)雜的病理過程,患者通常會經(jīng)歷高胰島素血癥、胰島素抵抗和血脂異常的肥胖狀態(tài),這個時期常常表現(xiàn)為糖耐量異常,稱為糖尿病前期。隨著病程的發(fā)展,繼而出現(xiàn)胰島素缺乏,進展為高血糖狀態(tài)。為了更好的模擬這一發(fā)病過程,建立具有臨床相關(guān)的2型糖尿?。═2DM)動物模型,高脂飲食(HFD)聯(lián)合鏈脲佑菌素(STZ)這一方法廣泛應(yīng)用于糖尿病研究。
1963 年,STZ被首次用于誘導(dǎo)糖尿病動物模型。1976年,A.Like等[3]發(fā)現(xiàn)單次靜脈或腹腔注射小劑量的STZ可以成功誘導(dǎo)T2DM模型。2000年,Reed等[4]發(fā)現(xiàn)用40%脂肪供能比飼料喂的SD大鼠,表現(xiàn)出比對照組更高的血清胰島素水平,但血糖水平并無差異,其特點類似于人類2型糖尿病前期。隨后Reed等繼續(xù)給予STZ(50 mg/kg)尾靜脈注射,大鼠血糖水平明顯升高,HFD聯(lián)合STZ成功誘導(dǎo)了T2DM模型,這也是該模型首次被報道。Srinivasan等[5]在之后的研究中將STZ注射方式改為腹腔注射并采用較低劑量STZ(35 mg/kg)。Zhang等[6]在該模型基礎(chǔ)上,將STZ注射改為小劑量連續(xù)兩次注射,據(jù)報道,該方法能夠避免單次大劑量誘導(dǎo)β細(xì)胞快速死亡。至今,以上三種方法被廣泛用于建立2型糖尿病動物模型,但受不同方面因素的影響,造模方式也存在一些差異。
HFD能夠很好地模擬糖尿病前期肥胖、胰島素抵抗、糖耐量減低、血脂紊亂等特征。盡管HFD被廣泛用于T2DM大鼠模型制備,但高脂飼料的種類及喂養(yǎng)時間卻不盡相同。現(xiàn)今常用的高脂飼料有兩大類:第一類在普通飼料的基礎(chǔ)上添加一定比例的動物油、糖、蛋黃、膽固醇、膽酸鈉等,改變飼料中脂肪和碳水化合物的能量供應(yīng)比,如加入12%豬油、10%蛋黃粉、2%膽固醇、0.5%膽鹽[7]。在基礎(chǔ)飼料中添加上述物質(zhì),看似操作簡單,但飼料中所有的營養(yǎng)物質(zhì)含量都產(chǎn)生了相應(yīng)變化,基礎(chǔ)飼料中各營養(yǎng)成分被稀釋,實驗動物在攝取高脂飼料的同時,可能會造成營養(yǎng)物質(zhì)攝入不均衡,影響實驗結(jié)果。有研究者[8-9]為了避免蛋白質(zhì)減少會添加適量奶粉、雞蛋或酪蛋白,盡管酪蛋白氨基酸充足,仍然無法避免蛋氨酸攝入不足。第二類為純化的飼料,進一步細(xì)分了各組分營養(yǎng)物質(zhì)的配比,包括酪蛋白、淀粉、蔗糖、纖維素、動植物油脂、無機鹽和維生素等。具有營養(yǎng)物質(zhì)含量準(zhǔn)確、配方規(guī)范、開放性高、易于修改、不含對實驗結(jié)果有干擾的雜質(zhì)、易于設(shè)置平衡對照組等優(yōu)點[10],但純化飼料造價昂貴,生產(chǎn)企業(yè)較少,限制了其應(yīng)用。除了高脂飼料種類不同,脂肪供能比也有所不同,30%~60%[11-13]均有報道。脂肪供能比10%為低脂飲食,30%~50%為HFD,而大于50%被認(rèn)為是極高脂肪飲食。HFD的目的是讓大鼠達到超重或肥胖狀態(tài),這與2型糖尿病患者大多伴有肥胖癥狀類似。HFD可以在不改變胰島素受體親和力的情況下導(dǎo)致胰島素受體總體減少[14],從而誘發(fā)胰島素抵抗。但這并不意味著飼料脂肪比越高越好,高脂肪比飼料的成型與儲存存在極大難度。除了脂肪比,肥胖的程度往往還取決于高脂喂養(yǎng)的周期。短期的高脂飲食(2周)往往達不到肥胖,只會導(dǎo)致胰島素抵抗和(或)葡萄糖耐量減低,而相對較長的飲食(5周~3個月)會導(dǎo)致身體脂肪比例增高,這其中也包括內(nèi)臟脂肪。HFD-STZ喂養(yǎng)的大鼠常常出現(xiàn)血脂代謝異常。多數(shù)大鼠在注射STZ之后,持續(xù)高脂飲食,后期大鼠通常會存在血脂異常;若給予STZ處理后,將高脂飲食替換為普通飲食的糖尿病大鼠,是否也依然存在血脂異常,需要進一步研究。且往往人類2型糖尿病發(fā)病常在肥胖、血脂紊亂、高胰島素血癥的基礎(chǔ)上,出現(xiàn)血糖升高。因此,對STZ注射之前的血脂監(jiān)測,將更有利于證明2型糖尿病大鼠發(fā)病過程。有研究認(rèn)為高脂飲食的種類及喂養(yǎng)時間與STZ劑量密切相關(guān)[15],即喂養(yǎng)時間越長,所需STZ劑量越少。
STZ是從無色鏈霉菌中提取的一種抗生素,本質(zhì)上是一種氨基葡萄糖-亞硝基脲。由于它具有胰島β細(xì)胞毒性被用于1型和2型糖尿病動物模型制備。其亞硝基脲部分是損傷胰島β細(xì)胞的關(guān)鍵。研究發(fā)現(xiàn)STZ通過葡糖轉(zhuǎn)運蛋白-2(GLUT-2)轉(zhuǎn)運到細(xì)胞中,從而影響糖代謝水平,GLUT-2在腎臟、肝臟和小腸中也有表達,因此對這些器官也有一定程度的影響[16-17]。STZ通常被溶于生理鹽水或檸檬酸鈉緩沖液中(PH4.5),其水溶液極不穩(wěn)定,一般在15~20分鐘后降解,加之STZ具有光敏性,因此要求現(xiàn)配現(xiàn)用,避光,冰浴[18-19]。STZ常常采用腹腔(IP)或尾靜脈注射(IV),IP操作更簡便、快速,IV給藥操作難度更大,但誘導(dǎo)的糖尿病模型也更穩(wěn)定、重復(fù)性較好[20]。當(dāng)給予IP時,應(yīng)避免藥物進入皮下或腸道,否則可能會增加死亡率或降低糖尿病的原發(fā)病作用。,而在同等條件下,IV所需STZ劑量更小。一般認(rèn)為STZ劑量>65 mg/kg為高劑量,40~55 mg/kg為中等劑量,<35 mg/kg為低劑量[16]。 Gheibi等[21]以高脂喂養(yǎng)大鼠2周后單次腹腔注射STZ 30 mg/kg建立T2DM。Gomaa等[22]以高脂喂養(yǎng)大鼠4周單次腹腔注射STZ 25 mg/kg建立T2DM。Anupam等[23]以單次腹腔注射STZ 55 mg/kg建立Ⅰ型糖尿?。═1DM)。STZ的劑量對大鼠胰島β細(xì)胞的殘存量起到?jīng)Q定性的作用。臨床研究在診斷T1DM時,患者通常60%~80%的胰島β細(xì)胞功能喪失[24],在診斷T2DM的15年后,β細(xì)胞數(shù)量減少了54%,這些數(shù)據(jù)表明,早期T1DM與晚期T2DM胰島β細(xì)胞數(shù)量存在相似。T1DM與T2DM在疾病發(fā)展的不同階段存在類似的病理表現(xiàn),因此在用STZ誘導(dǎo)不同類型的糖尿病大鼠模型時,我們很難真正區(qū)分究竟是T1DM還是T2DM。T2DM的早期往往以胰島素抵抗為主,一些方法如:糖耐量、胰島素耐量及胰島素抵抗的穩(wěn)態(tài)模型(HOMA-IR)常常用來進一步驗證T2DM大鼠模型,需注意的是STZ引起的糖尿病可能會導(dǎo)致胰島敏感性的增加[25],從而減輕胰島素抵抗,這也許與大鼠機體代償調(diào)節(jié)有關(guān)。綜上所述,胰腺的病理狀態(tài)也許對評價糖尿病模型鼠的類型及分期更為關(guān)鍵,但很少有研究提到這一參數(shù)。此外,大鼠空腹和非空腹?fàn)顟B(tài)可影響STZ的藥效,有人建議STZ注射前禁食4 h[18],也有人建議隔夜禁食[26]。禁食可增加胰島細(xì)胞對STZ的敏感性。大鼠是夜間進食動物,夜間禁食,往往會導(dǎo)致禁食時間過長,禁食會激活多種生理反應(yīng),所以最好早上開始禁食[18],大鼠的適宜禁食時間為7∶00~15∶00時之間的6~8 h。
在絕大多數(shù)研究中,大鼠的鼠齡<6個月,為年輕的糖尿病模型,而T2DM人群主要為老年人,而以青幼年的大鼠作為實驗對象并不能很好地模擬臨床上T2DM的疾病進程。使用鼠齡較大的鼠建造T2DM模型也同樣存在巨大的挑戰(zhàn),鼠齡較大的鼠往往體重也更大,鼠齡相同的鼠,體重也不完全一致,不同的高脂飼料導(dǎo)致大鼠的體脂分布差異。Reed等[4]的研究表明,同樣的STZ劑量給予不同體重的大鼠,這些大鼠并沒有表現(xiàn)出相同的血糖水平。這可能與STZ不與脂質(zhì)相互作用有關(guān)[27]。鼠齡小的大鼠盡管體重適宜,但它們有較強的胰島β細(xì)胞代償功能,能夠通過增加β細(xì)胞的數(shù)量減輕甚至治愈糖尿病[28]。
研究結(jié)果顯示:(1)高脂飼料的脂肪含量并不是越高越好,不同來源的大鼠對相同脂肪比含量的飼料適口性也不同,大鼠的進食量將對大鼠的體重起到?jīng)Q定性作用。大鼠在給予STZ后體重一般存在下降趨勢,對于實驗周期較長的研究者來說,基礎(chǔ)體重過輕的大鼠在給予STZ后,往往不能夠喂養(yǎng)至實驗終點。(2)大鼠喂養(yǎng)的條件應(yīng)基本一致,每籠的數(shù)量相當(dāng),一般一籠不要超過3只,鼠太多會存在搶食,導(dǎo)致體重差異較大,難以掌握STZ的劑量。盡管如此,即使保持相同的喂養(yǎng)條件,大鼠之間依然存在體重差異,因此在正式給予STZ之前最好能夠挑選不同體重的大鼠進行預(yù)實驗,將大大降低造模的死亡率。(3)造模成功的大鼠,尿量明顯增加,保持墊料的干燥以及尾靜脈測血糖后涂抹四環(huán)素軟膏,將降低大鼠因感染引起的死亡率。(4)不同的糖尿病病程,選擇的降糖藥物也有所不同,在臨床上這往往取決于胰島β細(xì)胞的殘余功能儲備,因此檢查大鼠的胰島病理狀態(tài),有利于更深入的探究糖尿病的分期,有利于不同階段藥物的研究。