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超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測定小鼠腫瘤組織中阿霉素藥物濃度

2020-04-01 02:16
分析儀器 2020年1期
關(guān)鍵詞:阿霉素紅霉素內(nèi)標

(1.國家納米科學(xué)中心,北京100190;2.島津企業(yè)管理(中國)有限公司,北京 100020)

阿霉素屬于蒽環(huán)類細胞毒性抗生素,抗癌譜廣且治療指數(shù)高,目前廣泛用于白血病及乳腺癌、結(jié)腸癌、肝癌等實體腫瘤的治療,是臨床常用的惡性腫瘤化療藥物之一,結(jié)構(gòu)見圖1。但是,由于阿霉素在體內(nèi)的代謝效果不佳,因而會產(chǎn)生一系列不良反應(yīng),在生物體內(nèi)會產(chǎn)生嚴重的心臟毒性和骨髓抑制作用[1-3],需要體內(nèi)藥物濃度測定及病理分析等數(shù)據(jù)進行客觀評價。近年來,人們在研究阿霉素血漿藥物濃度的同時,其生物體內(nèi)藥物濃度定量分析檢測也受到重視,兩者更好的結(jié)合能闡明阿霉素在體內(nèi)代謝過程,有效地評價生物利用度[4-6]。

阿霉素在生物體內(nèi)測定方法國內(nèi)報道主要有HPLC-UV、熒光光度法、高效毛細管電泳法和高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(LC-MS/MS)等方法[7-10],而高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法報道較少。但這些方法均存在選擇性差、靈敏度低、分析時間長等缺點,技術(shù)要求復(fù)雜,不利于大量樣品的測定。本實驗采用正離子模式多反應(yīng)監(jiān)測(MRM)方式,建立了一種新的操作簡便、快速、靈敏、特異的高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(HPLC-MS/MS)法測定阿霉素在達腫瘤部位的藥物濃度的方法,并對其進行專屬性、線性范圍、檢測限、準確度、精密度、回收率和穩(wěn)定性的考察,旨為進一步開發(fā)利用阿霉素在生物體內(nèi)的分布奠定基礎(chǔ)。

圖1 阿霉素(C27H29NO11)的化學(xué)結(jié)構(gòu)式

1 實驗部分

1.1 儀器與裝置

LC-MS/MS 8050液質(zhì)聯(lián)用儀(日本島津公司);電噴霧離子化電離源(ESI)、LabSolutions軟件(Ver.5.91);BS224S型電子天平(北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司);HH-1型旋渦混勻器(北京賽歐華創(chuàng)科技有限公司);高速冷凍離心機(德國Eppendorf公司); DY89-II型玻璃勻漿機(寧波新芝生物科技股份有限公司);Milli-Q ADVANTAGEA10純水儀(美國Merck Millipore 公司)。

1.2 試劑材料與實驗動物

MCF-7乳腺癌細胞系(中國協(xié)和醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所);DMEM高糖培養(yǎng)基,胎牛血清(Life Technology公司);阿霉素標準品(廣州市左克生物科技發(fā)展有限公司);柔紅霉素(北京沃凱生物科技有限公司);甲醇(美國Fisher公司產(chǎn)品);甲酸(美國Sigma公司);固相萃取柱(日本島津公司);其他試劑均為分析純,水為超純水。

25只雌性BALB/c-nu小鼠,體重(20±2)g,動物合格證號:SCXK(京)2016-0006由北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司提供。

1.3 實驗條件

1.3.1色譜條件

Shim-Pack GISS-HP C18色譜柱(100mm×2.1mm×3μm);流動相:A相為含0.1%甲酸的超純水,B相為甲醇;采用梯度洗脫程序:0~0.5min,10%~80%B;0.5~2.5min,80%~100%B;2.5~3min,100%B;3.1~7min,100%~80%B;柱溫40℃;流速0.2mL/min;進樣體積1μL。

1.3.2質(zhì)譜條件

電噴霧離子源(ESI源);掃描方式為多反應(yīng)監(jiān)測(MRM),正離子電離模式;離子噴霧電壓:4.5kV;霧化氣(氮氣)流速:3.0 L/min;加熱氣(空氣)流速10L/min; 干燥氣(氮氣)流速:10L/min;脫溶劑管溫度250℃;加熱模塊溫度:400℃;離子源溫度:300℃;用于定量的離子分別為阿霉素m/z544.2→397.2,柔紅霉素(內(nèi)標)m/z528→321。質(zhì)量掃描范圍m/z100~1000。樣品測試前,使用調(diào)諧液校正質(zhì)量軸。

1.4 實驗方法

1.4.1標準溶液和內(nèi)標溶液的配制

精密稱取1.00mg阿霉素標準品,置于1mL容量瓶中,用超純水溶解稀釋并定容,配制成濃度為1.00 g/L的母液;然后用50%甲醇水再逐級稀釋成濃度分別為100、200、400、1000、5000、10000μg/L的工作液,置于4℃冰箱。

精密稱取1.00mg柔紅霉素標準品,置于1mL容量瓶中,用超純水溶解稀釋并定容,配制成濃度為1.00g/L的母液;取上述儲備液用50%甲醇水稀釋成濃度為15μg/L的內(nèi)標溶液,置于4℃冰箱。

1.4.2細胞實驗:

DMEM高糖培養(yǎng)基,添加10%胎牛血清,細胞接種于100 mm2培養(yǎng)皿中,置于5% CO2培養(yǎng)箱,37℃培養(yǎng),當細胞生長至融合度80%左右時傳代備用。

1.4.3動物實驗

選擇處于對數(shù)生長期的細胞,細胞達80~90%左右密度為宜,用胰酶消化細胞后用PBS清洗兩次,再用PBS吹打細胞沉淀至合適的濃度,細胞計數(shù)器進行計數(shù)。皮下瘤接種細胞量為1~5×106個細胞/只,接種體積為100μL,因此細胞懸液的濃度為1~5×107個細胞/mL,細胞與Matrigel基質(zhì)膠1∶1混勻后,用胰島素注射器注入小鼠皮下。BALB/c-nu小鼠在標準環(huán)境下(濕度(50±10)%,溫度25±2℃,12h晝夜循環(huán))進食進水,實驗前禁食12h。BALB/c-nu小鼠荷瘤后,待腫瘤體積長到約150mm3,按照0.2mg/kg劑量尾靜脈注射,開始給藥。

1.4.4樣品前處理

稱取2.5g勻漿后的樣品,加入80%乙腈10mL,旋渦震蕩,置于預(yù)置好的4℃高速冷凍離心機內(nèi)4000r/min高速離心5min,取上清液待凈化。加入1mL甲醇,渦旋5min,超聲溶解15min。提前用甲醇水(1∶1)對固相萃取柱進行活化平衡,將待凈化液上樣至固相萃取柱進行過柱,依次用水、50%甲醇溶液各1mL淋洗,抽干。用甲醇洗脫,收集洗脫液用氮氣吹干,1mL初始流動相定容,經(jīng)0.45μm濾膜過濾,上機待測。

1.4.5樣品采集與制備

將小鼠尾靜脈注射0.2mg/kg阿霉素,在2h后處死,取腫瘤組織,以蒸餾水洗凈,稱其質(zhì)量;按質(zhì)量-體積比1∶5向各組織中加入生理鹽水,冰上勻漿后,按照“1.4.4”項對樣品進行前處理后轉(zhuǎn)移至1.5mL Eppendorf管內(nèi),向每個樣品中加入10μL 15μg/L柔紅霉素內(nèi)標溶液,用流動相定容至1mL;經(jīng)0.45μm濾膜過濾,置于4℃冰箱中,上機待測。

2 實驗結(jié)果與討論

2.1 標準曲線的繪制

取100μL空白小鼠的組織(腫瘤)勻漿清液于1.5mL Eppendorf管中。向每個樣品中加入不同質(zhì)量的阿霉素配制成濃度分別為100、200、400、1000、5000、10000μg/L的系列標準溶液;加入10μL 15μg/L柔紅霉素作為內(nèi)標,用移液槍混勻,再加入300μL甲醇,渦旋5min,以13000r/min離心10min,取上清液;經(jīng)0.45μm濾膜過濾,進樣檢測。測得的阿霉素峰面積與內(nèi)標柔紅霉素峰面積的比值Y對藥物濃度X進行線性回歸,繪制標準曲線。

2.2 專屬性考察

在電噴霧正離子模式下,總離子流圖見圖2。通過比較供試空白組織色譜圖、向空白組織中加入待測物和內(nèi)標物后得到的總離子流圖(TIC)、提取離子流圖(EIC)和給藥后不同時間測得的色譜圖,待測藥物阿霉素和內(nèi)標柔紅霉素的保留時間分別為1.49min和1.62min。結(jié)果表明,空白組織中所含內(nèi)源性物質(zhì)不干擾被測物及內(nèi)標物的測定,被測物峰形良好。

圖2 腫瘤組織MRM質(zhì)譜圖A.空白組織;B.空白組織加入阿霉素及內(nèi)標柔紅霉素;C.小鼠尾靜脈注射阿霉素2h后腫瘤組織樣品;1.阿霉素;2.內(nèi)標柔紅霉素

2.3 線性范圍及檢測限

按照“2.1”項下操作,進樣1μL,記錄色譜圖;以待測藥物濃度X(μg/L)為橫坐標,待測藥物與內(nèi)標的峰面積比Y為縱坐標,用加權(quán)(w=1/X2)最小二乘法進行回歸計算,求得的直線回歸方程為:Y=0.00454786X-0.270637(r=0.9999580)。結(jié)果表明,阿霉素在腫瘤組織內(nèi)藥物濃度在100~10000μg/L內(nèi),質(zhì)譜響應(yīng)的線性關(guān)系良好,以3倍信噪比(S/N=3)計算檢出限(LOD),得阿霉素的LOD為0.56μg/L。

2.4 日內(nèi)與日間精密度與方法回收率

取空白小鼠腫瘤組織提取液100μL,按 “1.4.1”項下分別配制阿霉素勻漿液高、中、低3個濃度(100、400、10000μg/L)的質(zhì)量控制(QC)樣品,每個濃度進行5個樣本分析,連續(xù)測定3d,為保持實驗條件一致,標準曲線的測定與上述樣品測定同時進行。以當日的標準曲線計算QC樣品的濃度,將QC樣品的結(jié)果進行計算并分析,精密度和回收率結(jié)果見表1。結(jié)果表明:阿霉素在腫瘤組織提取液中的日內(nèi)和日間精密度RSD均小于15%,方法回收率良好[11],均可滿足2015版藥典四部通則中對于生物樣品定量分析方法驗證指導(dǎo)原則中相關(guān)規(guī)定。

表1 測定方法的精密度、準確度和回收率

2.5 穩(wěn)定性考察

按“1.4.1”項下分別配制阿霉素腫瘤組織提取液高、中、低3個濃度的QC樣品,每個濃度進行3個樣本分析。分別將樣品在室溫(約20℃)下放置6h、4℃下冷藏8h、-20℃凍融循環(huán)3次,按“1.4.4”、“1.4.5”項下操作處理后進樣測定,考察小鼠的腫瘤組織提取液中阿霉素在室溫、冷藏、反復(fù)凍融條件下的穩(wěn)定性。以每一濃度3個樣本分析,3種情況下穩(wěn)定性樣品與新配制樣品的峰面積比值均在80%~120%之間,說明阿霉素在本研究考察的儲存條件下較穩(wěn)定[11]。

表2 阿霉素在腫瘤組織基質(zhì)中的穩(wěn)定性(X±SD,n=3)

注:表中數(shù)據(jù)=(穩(wěn)定性樣品峰面積/理論樣品峰面積)×100%

3 結(jié)論

本研究建立了LC-MS/MS在小鼠腫瘤組織測定阿霉素藥物濃度的方法,該方法簡便快速、專屬性強、靈敏度高、分析效率好,可彌補阿霉素類物質(zhì)在紫外吸收差、檢測限值高的缺陷。另外樣品前處理是藥物分析的關(guān)鍵部分,由于生物樣品的介質(zhì)組成比較復(fù)雜,如前處理不好,嚴重影響檢測結(jié)果,而本方法中采用先甲醇直接沉淀蛋白的方法對生物樣品進行預(yù)處理,同時結(jié)合固相萃取柱的方式,重現(xiàn)性好,回收率高,操作簡便,選擇沉淀蛋白的溶劑與所選用的流動相一致,不會有其他成分干擾,成本較低,為檢測創(chuàng)造了良好的條件。液相色譜儀結(jié)合色譜柱的使用,提高了色譜的分離效率,加快了分析速度。質(zhì)譜檢測采用電噴霧正離子電離模式,在尾靜脈注射阿霉素小鼠的腫瘤部位能檢出阿霉素,阿霉素定量范圍在100~10000μg/L之間。該方法適用于生物樣品中阿霉素類成分的高通量分析。

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