王菲,張玲,楊佳怡,葉子弘,俞曉平*

1(中國計(jì)量大學(xué)，浙江省生物計(jì)量及檢驗(yàn)檢疫技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，浙江 杭州，310018)2(中國計(jì)量科學(xué)研究院，北京, 100013)

沙門氏菌(Salmonella)是一類革蘭氏陰性、具有鞭毛的兼性需氧菌[1]，是細(xì)菌性食源性疾病的主要致病菌之一，易引起食物中毒以及腸胃炎等疾病[2-3]。所以針對(duì)食品原料、產(chǎn)品等進(jìn)行沙門氏菌檢測(cè)是我國食品監(jiān)管部門及食品相關(guān)企業(yè)的必檢項(xiàng)目[4-5]。傳統(tǒng)的沙門氏菌分離、檢測(cè)和鑒定方法主要有常規(guī)培養(yǎng)法、免疫學(xué)方法等[6]，然而，這些方法操作較復(fù)雜、檢測(cè)周期較長，且需要消耗大量培養(yǎng)基和生化試劑，對(duì)檢測(cè)人員的技術(shù)水平也有較高的要求[7-8]。因此，隨著分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展，越來越多的實(shí)驗(yàn)室選擇實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)進(jìn)行沙門氏菌檢測(cè)[9-10]。實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)具有操作簡單、耗時(shí)短、效率高等優(yōu)點(diǎn)[11]，但該技術(shù)能否準(zhǔn)確檢測(cè)沙門氏菌還有待驗(yàn)證。

本研究選擇沙門氏菌DNA標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)候選物，使用實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)來驗(yàn)證標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的均勻性和穩(wěn)定性。為確保數(shù)據(jù)的準(zhǔn)確性，還設(shè)計(jì)不同PCR儀精度分析、不同酶體系比較以及添加小牛胸腺載體DNA作為保護(hù)劑分析等。本文對(duì)沙門氏菌的穩(wěn)定性研究可為各實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行比對(duì)實(shí)驗(yàn)以及快速檢測(cè)方法研究提供基礎(chǔ)參考。

1 材料與方法

1.1 試劑與儀器

沙門氏菌菌株,中國工業(yè)微生物菌種保藏中心，凍存于-80℃冰箱。Fast TaqMan Mixture,北京康為世紀(jì)生物科技有限公司；SuperRealPreMix(Probe)，天根生化科技(北京)有限公司；Premix Ex TaqTM(Probe qPCR),寶日醫(yī)生物技術(shù)(北京)有限公司(takara中國)；TaqMan Gene Expression Master Mix，美國應(yīng)用生物系統(tǒng)公司；小牛胸腺DNA(calf-thymus DNA，CT-DNA),上海澤葉生物科技有限公司；沙門氏菌DNA標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),中國計(jì)量科學(xué)研究院研制；引物和探針由英濰捷基(上海)貿(mào)易有限公司合成(表1)。

Q-POD純水儀，儀默克化工技術(shù)(上海)有限公司；XS205電子秤，梅特勒-托利多國際貿(mào)易(上海)有限公司；生物安全柜，美國賽博飛公司；超低溫保存箱，海爾生物醫(yī)療股份有限公司；3K15臺(tái)式高速冷凍離心，德國Sigma公司；AB quant Studio 12K Flex、Roche羅氏LightCycler?480Ⅱ?qū)崟r(shí)熒光定量PCR儀，上海普迪生物技術(shù)有限公司。

表1 PCR所用引物和探針Table 1 Primers and probes for PCR

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 沙門氏菌DNA模板制備

沙門氏菌DNA作為定量標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)候選物，使用滅菌去離子水對(duì)沙門氏菌DNA進(jìn)行10倍系列稀釋備用[12]，最終得到的濃度分別為2.27×105copy/μL，2.27×104copy/μL，2.27×103copy/μL，227 copy/μL，22.7 copy/μL，2.27 copy/μL。

使用TE緩沖液(10 mmol/L Tris+0.1 mmol/L EDTA，pH 7.4)對(duì)小牛胸腺DNA溶液進(jìn)行稀釋，得到終濃度為20 μg/mL。并使用稀釋過后的小牛胸腺DNA溶液對(duì)沙門氏菌DNA進(jìn)行10倍系列稀釋，稀釋得到的最終濃度分別為2.27×105copy/μL，2.27×104copy/μL，2.27×103copy/μL，227 copy/μL，22.7 copy/μL，2.27 copy/μL。

1.2.2 PCR檢測(cè)體系的建立

PCR反應(yīng)采用25 μL體系，2×PCR Mix 12.5 μL，引物F(10 μmol/L)1 μL，引物R(10 μmol/L)1 μL，探針P(10 μmol/L)1μL，DNA模板5 μL，ddH2O 4.5 μL。PCR反應(yīng)程序?yàn)?5 ℃預(yù)熱3 min；94 ℃ 5 s、60 ℃ 40 s，共40個(gè)循環(huán)，4 ℃保存反應(yīng)產(chǎn)物。

1.2.3 實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)方法的特異性驗(yàn)證

PCR引物探針的設(shè)計(jì)參考了腸道沙門氏菌腸毒素傷寒桿菌亞種，NCBI的Genebank序列號(hào)為NC_003198.1。特異性實(shí)驗(yàn)采用的菌株如表2所示，所有菌株皆為本實(shí)驗(yàn)室提供。將所有的菌株進(jìn)行平板劃線培養(yǎng)，挑選單菌落加入50 μL的滅菌去離子水中，煮沸裂解后分別離心收集上清液作為模板，進(jìn)行PCR擴(kuò)增。滅菌去離子水作為空白對(duì)照，本研究使用的沙門氏菌DNA標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)作為陽性對(duì)照，驗(yàn)證沙門氏菌檢測(cè)時(shí)本研究建立的PCR檢測(cè)方法的特異性。

表2 沙門氏菌DNA的特異性檢測(cè)Table 2 Specific detection of Salmonella DNA

注：-代表無

1.2.4 不同PCR儀對(duì)沙門氏菌DNA熒光定量PCR的影響

使用AB quant Studio 12K Flex和Light Cycler 480Ⅱ Roche實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀分別對(duì)沙門氏菌DNA進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR，以滅菌去離子水10倍系列稀釋的沙門氏菌DNA為模板，經(jīng)實(shí)時(shí)熒光定量PCR后的Ct值，從斜率，線性相關(guān)數(shù)，標(biāo)準(zhǔn)偏差以及擴(kuò)增效率方面來分析不同PCR儀對(duì)沙門氏菌DNA擴(kuò)增的影響[13]。其中擴(kuò)增效率的計(jì)算如公式(1)所示：

(1)

式中：E表示擴(kuò)增效率，slope表示斜率。

1.2.5 TaqDNA聚合酶對(duì)沙門氏菌DNA熒光定量PCR的影響

分別采用市面上常用的TaqDNA聚合酶Fast TaqMan Mixture、SuperRealPreMix(Probe)、Premix Ex TaqTM(Probe qPCR)、TaqMan Gene Expression Master Mix對(duì)沙門氏菌DNA進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR，以滅菌去離子水10倍系列稀釋的沙門氏菌DNA為模板，經(jīng)實(shí)時(shí)熒光定量PCR后的Ct值，從斜率、截距、線性相關(guān)數(shù)以及擴(kuò)增效率方面來分析不同的TaqDNA聚合酶對(duì)沙門氏菌DNA擴(kuò)增的影響。

1.2.6 添加保護(hù)劑對(duì)沙門氏菌DNA熒光定量PCR的影響

以10倍系列稀釋的沙門氏菌DNA為模板進(jìn)行定量PCR(每組實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次)，同時(shí)以去離子水作為空白對(duì)照，根據(jù)DNA濃度的對(duì)數(shù)和Ct值建立沙門氏菌的熒光定量PCR法標(biāo)準(zhǔn)曲線，從斜率、截距、線性相關(guān)數(shù)以及擴(kuò)增效率方面來分析載體DNA是否會(huì)影響沙門氏菌DNA熒光定量PCR檢測(cè)。

1.2.7 沙門氏菌DNA均勻性測(cè)試

選取7組沙門氏菌DNA作為平行樣品，經(jīng)實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀測(cè)定Ct值，每組實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次，同時(shí)以滅菌去離子純水作為陰性對(duì)照，用Excel整理數(shù)據(jù)，計(jì)算由滅菌去離子水存放的低濃度沙門氏菌DNA的均勻性。其中均勻性分析使用方差分析法，如公式(2)所示：

(2)

1.2.8 短期穩(wěn)定性測(cè)試

將沙門氏菌DNA標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)候選物儲(chǔ)存于溫度為(40±2) ℃的烘箱中，設(shè)計(jì)存儲(chǔ)時(shí)間(0、24、48、72、144 h或0、24、120、144、168 h)[14]，每個(gè)時(shí)間點(diǎn)包括3組平行樣品。使用實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀測(cè)定Ct值(每組實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次)，同時(shí)以去離子純水作為陰性對(duì)照，用Excel整理數(shù)據(jù)計(jì)算平均值，繪圖分析未稀釋的沙門氏菌DNA以及保護(hù)劑中存放的低濃度沙門氏菌DNA檢測(cè)樣的短期穩(wěn)定時(shí)間。

其中重復(fù)性計(jì)算如公式(3)、公式(4)所示：

(3)

(4)

復(fù)現(xiàn)性計(jì)算如公式(5)～公式(7)所示：

(5)

(6)

(7)

公式(3)、公式(4)表示的是置信概率為95%時(shí)實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法的重復(fù)性，公式(5)～公式(7)表示的是檢測(cè)方法的復(fù)現(xiàn)性，其中m為平行樣品的數(shù)量，n為平行測(cè)定次數(shù)。

穩(wěn)定性計(jì)算如公式(8)、公式(9)所示：

(8)

(9)

公式(8)表示的是直線的標(biāo)準(zhǔn)偏差，公式(9)表示的是斜率k的不確定度，自由度為n-2，95%置信水平的t分布因子查表可知，若|k|

1.2.9 反復(fù)凍融穩(wěn)定性測(cè)試

將沙門氏菌DNA標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)候選物放入冰箱(溫度-80 ℃，時(shí)間5 min)，常溫下解凍(時(shí)間10 min)，計(jì)劃操作次數(shù)(1、3、6、10次)，每次操作取3個(gè)平行樣品放入4 ℃冰箱備用。使用實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀測(cè)定Ct值(每個(gè)樣品重復(fù)實(shí)驗(yàn)3次)，同時(shí)以去離子純水作為陰性對(duì)照，用Excel整理數(shù)據(jù)計(jì)算平均值，繪圖分析未稀釋的沙門氏菌DNA以及保護(hù)劑中存放的低濃度沙門氏菌DNA檢測(cè)樣能夠經(jīng)受溫度變化的次數(shù)。

1.2.10 數(shù)據(jù)分析

基本數(shù)據(jù)采用Excel 2013進(jìn)行分析(計(jì)算平均值、斜率、截距、擴(kuò)增效率、重復(fù)性、復(fù)現(xiàn)性)，采用GraphPad Prism 5.0對(duì)不同研究條件的沙門氏菌檢測(cè)參數(shù)進(jìn)行分析(方差分析法、直線擬合法、t檢驗(yàn)統(tǒng)計(jì)檢驗(yàn)法)[16]。

2 結(jié)果與分析

2.1 方法驗(yàn)證結(jié)果分析

2.1.1 沙門氏菌熒光定量PCR檢測(cè)方法特異性分析

引物/探針組合對(duì)實(shí)驗(yàn)所檢測(cè)各物種的特異性實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示(表2)，當(dāng)使用引物和探針組合對(duì)31種DNA樣本進(jìn)行擴(kuò)增時(shí)，只有在沙門氏菌的DNA樣本出現(xiàn)擴(kuò)增曲線，可以獲取Ct值，而在其他細(xì)菌種類中沒有出現(xiàn)擴(kuò)增曲線。因此建立的沙門氏菌實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)方法具有高度的特異性。

2.1.2 不同PCR儀熒光定量PCR分析

根據(jù)實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)檢測(cè)結(jié)果，對(duì)相關(guān)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析(表3)，得到AB quant Studio 12K Flex和Light Cycler 480Ⅱ Roche兩臺(tái)PCR儀的線性分布圖(圖1)。從斜率和線性相關(guān)系數(shù)上分析，兩臺(tái)儀器的檢測(cè)結(jié)果相近，無明顯區(qū)別，均可用于沙門氏菌熒光定量PCR檢驗(yàn)。

2.1.3 TaqDNA聚合酶熒光定量PCR分析

使用市面上常見的4種酶，對(duì)沙門氏菌DNA建立不同的酶體系進(jìn)行Ct值分析(圖2)，評(píng)估不同酶體系作用于沙門氏菌DNA的熒光擴(kuò)增效率[公式(1)]，基本輸出是一個(gè)線性關(guān)系，表示不同濃度梯度的沙門氏菌DNA的Ct值，相關(guān)統(tǒng)計(jì)量如表4所示。不同的酶相關(guān)系數(shù)約為0.99和擴(kuò)增效率(在90%～100%)都處在實(shí)驗(yàn)接受范圍內(nèi)，表明這4種酶都適用于檢測(cè)沙門氏菌DNA，可根據(jù)自己的實(shí)驗(yàn)條件，選擇和調(diào)整適當(dāng)?shù)拿阁w系。

圖1 不同PCR儀比較線性分布圖Fig.1 Comparison of linear distribution of different PCR instruments

表3 不同PCR儀實(shí)驗(yàn)結(jié)果分析Table 3 Analysis of the experimental results of different PCR instruments

a-Fast TagMan Mixture;b-SuperReal PreMix;c-Premix Ex TaqTM;d-TaqMan Gence Expressin Master圖2 不同酶比較實(shí)驗(yàn)Fig.2 Comparison of different enzymes

表4 酶比較實(shí)驗(yàn)參數(shù)分析Table 4 Analysis of experimental parameters of enzyme comparison

2.1.4 保護(hù)劑熒光定量PCR分析

通過添加保護(hù)劑與未添加保護(hù)劑的沙門氏菌Ct值的比較(圖3)，用以驗(yàn)證添加的保護(hù)劑小牛胸腺載體DNA是否影響沙門氏菌DNA的熒光擴(kuò)增，相關(guān)統(tǒng)計(jì)量參數(shù)如表5所示。由表5可知，添加保護(hù)劑后的沙門氏菌DNA與為添加保護(hù)劑的沙門氏菌DNA熒光擴(kuò)增后有相近的斜率，截距，線性相關(guān)數(shù)以及擴(kuò)增效率[公式(1)]，可知小牛胸腺載體DNA不會(huì)影響沙門氏菌DNA的PCR檢測(cè)。

a-添加ddH2O;b-添加CT DNA圖3 驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)標(biāo)準(zhǔn)曲線圖Fig.3 Standard curve of validation experiment

表5 驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)參數(shù)分析Table 5 Analysis of validation experimental parameters

2.2 均勻性檢測(cè)分析

由于沙門氏菌標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)候選物包裝單位約為100個(gè)，因此，隨機(jī)抽取7個(gè)包裝單位作為均勻性檢測(cè)的樣品，每個(gè)樣品在不同的部位分別取3個(gè)試樣進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)。沙門氏菌均勻性檢測(cè)結(jié)果以及相關(guān)統(tǒng)計(jì)量如表6所示。

表6 沙門氏菌均勻性檢測(cè)結(jié)果Table 6 Detection results of homogeneity of Salmonella

均勻性檢驗(yàn)使用的是方差分析法，檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)在規(guī)定細(xì)分范圍內(nèi)其特性是否保持不變。根據(jù)表5和公式(2)可以計(jì)算出F=2.99，由F表可以查詢出F0.05(6,14)=3.96，可見F

2.3 短期穩(wěn)定性檢測(cè)分析

標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的短期穩(wěn)定性，主要關(guān)注的是標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)運(yùn)輸過程中的穩(wěn)定性。一般情況下，運(yùn)輸過程中的高溫環(huán)境對(duì)標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)有較大的影響。在不同的存儲(chǔ)時(shí)間中，沙門氏菌Ct值的會(huì)產(chǎn)生不同程度的變化(圖4)。根據(jù)直線擬合法的計(jì)算分析[公式(3)～公式(9)]，計(jì)算結(jié)果如表7所示，初始濃度的沙門氏菌DNA和保護(hù)劑中存放的低濃度沙門氏菌DNA量值是比較穩(wěn)定的，但是由滅菌去離子水中存放的低濃度沙門氏菌DNA量值不穩(wěn)定。

圖4 短期穩(wěn)定性測(cè)試Fig.4 Short-term stability test

表7 短期穩(wěn)定性結(jié)果分析Table 7 Stability analysis of Short-term

注：S,未稀釋過的沙門氏菌DNA；U,由滅菌去離子水存放的低濃度沙門氏菌DNA檢測(cè)樣；CT-U,由保護(hù)劑存放的低濃度沙門氏菌DNA檢測(cè)樣(下同)

2.4 反復(fù)凍融穩(wěn)定性檢測(cè)分析

反復(fù)凍融穩(wěn)定性，主要關(guān)注的是標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)在進(jìn)行實(shí)驗(yàn)分析過程中的穩(wěn)定性[17]。進(jìn)行反復(fù)凍融實(shí)驗(yàn)時(shí)，沙門氏菌Ct值的變化情況可以呈線性分布(圖5)。但是根據(jù)直線擬合法的計(jì)算分析(表8)，初始濃度沙門氏菌DNA經(jīng)過數(shù)次反復(fù)凍融仍然穩(wěn)定，可以進(jìn)行多次重復(fù)實(shí)驗(yàn)。但是低濃度的沙門氏菌DNA不允許反復(fù)凍融，為保證數(shù)據(jù)的可靠性，需對(duì)獲取的樣品進(jìn)行一次性操作。

圖5 反復(fù)凍融穩(wěn)定性測(cè)試Fig.5 Testing of the stability of repeated freezing and thawing

表8 反復(fù)凍融穩(wěn)定性分析Table 8 Stability analysis of repeated freezing and thawing

3 結(jié)論

本研究使用沙門氏菌DNA標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)對(duì)實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法進(jìn)行規(guī)范驗(yàn)證[18-20]，并選擇2臺(tái)不同的PCR儀[21]對(duì)檢測(cè)方法進(jìn)行比較驗(yàn)證。為優(yōu)化PCR體系，選擇4種不同的酶[22]進(jìn)行比較。在初步的實(shí)驗(yàn)中，直接使用沙門氏菌DNA進(jìn)行實(shí)驗(yàn)表明沙門氏菌DNA并不穩(wěn)定，所以為了降低沙門氏菌DNA的降解率，選擇使用小牛胸腺載體DNA[23]作為保護(hù)劑。

實(shí)驗(yàn)顯示，在95%置信水平時(shí)，沙門氏菌標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)樣品均勻。沙門氏菌標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的穩(wěn)定性研究[24]主要分為兩個(gè)部分，一個(gè)是模擬短期高溫穩(wěn)定性，另一個(gè)是反復(fù)凍融穩(wěn)定性，分別對(duì)初始濃度沙門氏菌DNA、ddH2O保存的低濃度沙門氏菌DNA檢測(cè)樣以及小牛胸腺DNA緩沖液保存的低濃度沙門氏菌DNA檢測(cè)樣進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。研究表明初始濃度沙門氏菌DNA檢測(cè)樣6 d內(nèi)量值穩(wěn)定，而且可以進(jìn)行反復(fù)凍融10次，針對(duì)一個(gè)樣品進(jìn)行多次實(shí)驗(yàn)操作，不會(huì)影響實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)的準(zhǔn)確性；由小牛胸腺DNA溶液保存的低濃度沙門氏菌DNA檢測(cè)樣7 d內(nèi)量值穩(wěn)定，但是進(jìn)行反復(fù)凍融實(shí)驗(yàn)時(shí)，沙門氏菌DNA結(jié)構(gòu)遭到破壞未能測(cè)到有效數(shù)據(jù)?？偟膩碚f，這兩種濃度的沙門氏菌短期穩(wěn)定時(shí)間長，作為標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)在運(yùn)輸過程中高溫影響小[25]，但實(shí)驗(yàn)時(shí)避免反復(fù)凍融。但是由ddH2O保存的低濃度沙門氏菌DNA檢測(cè)樣不管是短期穩(wěn)定實(shí)驗(yàn)還是反復(fù)凍融穩(wěn)定實(shí)驗(yàn)都表現(xiàn)出不穩(wěn)定，建議實(shí)驗(yàn)時(shí)對(duì)沙門氏菌DNA添加保護(hù)劑，降低沙門氏菌DNA的消耗。

在未來研究中將進(jìn)行長期穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)并分析影響沙門氏菌降解的影響因素，為沙門氏菌穩(wěn)定性研究提供參考資料。

實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法[26-28]在病原微生物快速檢測(cè)應(yīng)用中準(zhǔn)確性高，且沙門氏菌DNA穩(wěn)定性好，可用來檢驗(yàn)各實(shí)驗(yàn)室開展微生物核酸PCR方法的測(cè)量能力，保障微生物核酸檢測(cè)技術(shù)的溯源性和準(zhǔn)確性，從而提高我國在病原微生物核酸快速檢測(cè)的水平。