劉玲玲,孟甜甜,董希良,任 偉,張利鈞
(濟(jì)南市環(huán)境研究院,山東 濟(jì)南 250100)
有機氯農(nóng)藥(Organochlorine pesticides,OCPs)是公認(rèn)的環(huán)境中毒性最大的一類持久性有機污染物和疏水性有機污染物,被全面禁用后,其在環(huán)境介質(zhì)中的濃度顯著下降,但低水溶解性和強疏水性的特點使之易吸附在懸浮顆粒物上,并最終累積在沉積物和土壤中[1]。土壤作為OCPs的主要匯和儲蓄庫[2],不僅具有較強的滯留能力,而且還可作為其他介質(zhì)的污染源將其重新排放到大氣、地下水和生物體等環(huán)境中[3],并通過生物積累和放大效應(yīng)對生態(tài)系統(tǒng)和人體健康造成廣泛而持久的影響[4]。如已禁用的滴滴涕、六六六等有機氯農(nóng)藥因結(jié)構(gòu)穩(wěn)定,能夠長期殘留在土壤中,目前仍被頻繁檢出[5]。因此,建立一種快速、準(zhǔn)確檢測土壤中有機氯農(nóng)藥的方法尤為重要。
土壤中農(nóng)藥殘留檢測主要包括樣品前處理和儀器分析兩個部分,其中前處理包括提取和凈化兩種方式,提取方式主要為索氏提取(Soxhlet extraction)[4]、超聲提取(Ultrasound extraction)[6]、微波提取(Microwave extraction)[7]、快速溶劑萃取(Accelerated solvent extraction,ASE)[8]及QuEChERS方法[5]等,ASE因具有提取速度快、溶劑消耗量少、自動化程度高等優(yōu)勢,受到越來越多研究工作者的青睞[8-9],國內(nèi)外很多標(biāo)準(zhǔn)方法也優(yōu)先推薦該方式[10-11]。凈化方式主要有固相萃取(Solid phase extraction,SPE)凈化[9]、凝膠色譜凈化(Gel permeation chromatography,GPC)[12]方式。其中GPC可同時對多種物質(zhì)凈化,但溶劑消耗量大、耗時較長,不適合批量分析。而SPE凈化溶劑消耗量小、可自動化批量處理、操作簡單。有機氯農(nóng)藥檢測技術(shù)主要有氣相色譜法(GC)[7]、氣相色譜-質(zhì)譜法(GC-MS)[13]、氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(GC-MS/MS)[8]、液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(HPLC-MS/MS)[5]等,GC-MS由于分析速度快、定性能力強,近年來得到廣泛應(yīng)用[13-14]。
基質(zhì)效應(yīng)是農(nóng)殘檢測中普遍存在的現(xiàn)象,這主要取決于農(nóng)藥的種類、樣品類型、檢測儀器原理等多個方面。農(nóng)藥的極性及熱穩(wěn)定性是影響基質(zhì)效應(yīng)的重要因素,同一農(nóng)藥在不同樣品中的基質(zhì)效應(yīng)也有差異[15],GC-MS檢測時的基質(zhì)效應(yīng)主要是農(nóng)藥與硅醇基及其與玻璃襯管表面金屬離子間的相互作用所致[16]。對于不同的農(nóng)藥及樣品類型,常用的補償基質(zhì)效應(yīng)方法有基質(zhì)凈化法[17-18]、同位素標(biāo)記法[19-20]、基質(zhì)匹配校準(zhǔn)法[21-22]、加入分析保護(hù)劑法[23-24],而GC-MS檢測中常采用優(yōu)化進(jìn)樣技術(shù)的方式進(jìn)行基質(zhì)補償[13],實際研究工作中常將多種補償方法相結(jié)合?;|(zhì)匹配校準(zhǔn)法因并未減弱基質(zhì)效應(yīng),且無法獲得適用于所有基質(zhì)的統(tǒng)一空白基質(zhì),故存在一定缺陷。基質(zhì)凈化法則從根本上消除可能產(chǎn)生基質(zhì)效應(yīng)的共提物,凈化效果越好,待測溶液與標(biāo)準(zhǔn)溶液類型越相近,檢測結(jié)果受基質(zhì)效應(yīng)影響的程度就越小,在各種凈化方式中,SPE小柱凈化效果更為理想[15]。優(yōu)化進(jìn)樣技術(shù)無需復(fù)雜的操作即可達(dá)到降低基質(zhì)效應(yīng)的目的。目前農(nóng)殘基質(zhì)效應(yīng)的研究主要集中在農(nóng)產(chǎn)品中[13,18-21,23-24],而對土壤中有機氯農(nóng)藥基質(zhì)效應(yīng)的研究報道較少。本研究通過分析不同SPE凈化溶劑和不同進(jìn)樣方式對基質(zhì)效應(yīng)的補償作用,篩選出最優(yōu)預(yù)處理方法,旨在為我國土壤環(huán)境中OCPs的快速、準(zhǔn)確檢測提供參考依據(jù)。
7890B/5977B GC-MS儀(美國安捷倫公司);ASE350快速溶劑萃取儀(美國賽默飛公司);M10平行蒸發(fā)濃縮儀(北京萊伯泰科儀器股份有限公司);HP-5MS毛細(xì)管柱(30 m×0.25 mm,0.25 μm,美國安捷倫公司);Alpha 1-4LDplus冷凍干燥儀(德國Christ公司);RM200土壤臼式研磨儀、AS200土壤篩分儀(德國萊馳公司);Milli-Q超純水機(德國默克公司)。
正己烷、丙酮、二氯甲烷(色譜純,美國Tedia公司);弗羅里硅土小柱(500 mg/6 mL,美國安捷倫公司);無水硫酸鈉及石英砂顆粒(分析純,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);硅藻土顆粒(30~40目,美國賽默飛公司)。
α-六六六、β-六六六、γ-六六六、δ-六六六、p,p′-DDT、p,p′-DDE、o,p′-DDT、p,p′-DDD、六氯苯、α-氯丹、γ-氯丹、艾氏劑、狄氏劑、異狄氏劑、α-硫丹、β-硫丹、滅蟻靈、七氯、環(huán)氧化七氯、異狄氏劑醛、硫丹硫酸酯、異狄氏劑酮、甲氧滴滴涕23種有機氯農(nóng)藥混標(biāo)(質(zhì)量濃度均為1 000 μg·mL-1,美國AccuStandard公司);標(biāo)準(zhǔn)替代物:四氯間二甲苯、氯茵酸二丁酯和十氯聯(lián)苯的混標(biāo)(2 000 μg·mL-1)及內(nèi)標(biāo)(五氯硝基苯,1 000 μg·mL-1)均購于美國o2si公司。
1.2.1 樣品采集與制備采集表層土壤(0~20 cm)至潔凈的棕色玻璃瓶中,將采樣瓶裝滿、裝實,密封,于4 ℃下避光冷藏保存,保存時間不超過10 d。取適量樣品混勻,經(jīng)-55 ℃冷凍干燥后,用土壤臼式研磨儀研磨,過250 μm金屬網(wǎng)篩混勻后,置于棕色瓶中備用。
1.2.2 樣品提取與凈化提?。涸谳腿∏?34 mL)底部放置專用的玻璃纖維濾膜,濾膜上鋪一層硅藻土顆粒。準(zhǔn)確稱取20.00 g樣品,均勻混入硅藻土顆粒,同時加入15 μL 200 μg·mL-1替代物的混標(biāo)中間液,用硅藻土填滿萃取池,于加速溶劑萃取儀中萃取,萃取溶劑為正己烷∶丙酮(體積比1∶1);載氣(高純氮氣)壓力:1.0 MPa;萃取溫度:100 ℃;萃取池壓力:10 MPa;預(yù)加熱平衡時間:3 min;靜態(tài)萃取時間:5 min;放氣時間:2 min;循環(huán)次數(shù):2次;總萃取時間:22 min。萃取液收集于250 mL接收瓶中,待凈化。
凈化:向弗羅里硅土小柱中加入無水硫酸鈉及經(jīng)硝酸處理過的銅粉,分別用5 mL二氯甲烷、10 mL正己烷預(yù)淋洗弗羅里硅土小柱,然后將1 mL提取液移入柱內(nèi),用10 mL二氯甲烷∶正己烷(體積比1∶9)+10 mL丙酮∶正己烷(體積比1∶9)進(jìn)行洗脫,待洗脫液全部流出至濃縮杯中后,將其濃縮至約1 mL,再加入3 mL正己烷清洗濃縮杯內(nèi)壁,再濃縮至1 mL以下,將溶劑完全轉(zhuǎn)換為正己烷。加入8 μL內(nèi)標(biāo)物并準(zhǔn)確定容至1.0 mL,待測。
1.3.1 色譜條件色譜柱:HP-5ms(30 m×0.25 mm×0.25 μm);進(jìn)樣口溫度:250 ℃,脈沖不分流進(jìn)樣,脈沖壓力275.8 kPa;進(jìn)樣量:2.0 μL,柱流量:1.0 mL/min(恒流);程序升溫:初始溫度120 ℃,保持1 min;以12 ℃/min升至180 ℃,保持5 min,再以7 ℃/min升至240 ℃,保持1 min,再以1 ℃/min升至250 ℃,保持2 min,最后以15 ℃/min升至300 ℃,保持2 min。
圖1 23種有機氯、3種替代物及1種內(nèi)標(biāo)標(biāo)準(zhǔn)品的總離子流圖Fig.1 TIC of 23 organochlorine pesticides,3 surrogate standards and internal standard the number 1-23 were the same as those in Table 1
1.3.2 質(zhì)譜條件離子源:電子轟擊(EI)離子源;離子源溫度:230 ℃;掃描方式:選擇離子掃描模式;電離能量:70 eV;傳輸線溫度:280 ℃;溶劑延遲時間:5 min;目標(biāo)物質(zhì)譜參數(shù)見表1。
本實驗采用HP-5ms毛細(xì)管色譜柱對目標(biāo)物進(jìn)行分離,通過全掃描(Scan)和選擇離子監(jiān)測(SIM)模式進(jìn)行測定,選擇豐度高、干擾低的特征離子為定量離子,豐度較高、干擾較低的2個特征離子為定性離子。23種有機氯的SIM離子及保留時間見表1,總離子流色譜圖如圖1所示。
表1 23種有機氯農(nóng)藥保留時間與SIM 離子Table 1 Retention times and selected-ion monitoring ions of 23 organochlorine pesticides
回收率主要取決于ASE提取溶劑及凈化時洗脫溶劑的選擇。因此,采用分步加標(biāo)的方式考察了加速溶劑萃取及凈化步驟的回收率。
2.2.1 ASE提取溶劑的確定本研究參考環(huán)境標(biāo)準(zhǔn)方法《土壤和沉積物 有機氯農(nóng)藥的測定 氣相色譜-質(zhì)譜法》(HJ835-2017)[25],采用正己烷∶丙酮(體積比1∶1)對添加4 μg·mL-1有機氯混標(biāo)的硅藻土進(jìn)行提取,計算其回收率。結(jié)果顯示,23種有機氯農(nóng)藥的回收率為59.7%~114%,可滿足分析要求。因此,實驗選擇正己烷∶丙酮(體積比1∶1)為ASE的提取溶劑。與宋曉娟[8]、陶鑫[26]、黃志[27]等的研究結(jié)果一致。
2.2.2 SPE洗脫溶劑的選擇實驗考察了20 mL二氯甲烷∶正己烷(體積比1∶9)、20 mL丙酮∶正己烷(體積比1∶9)、10 mL二氯甲烷∶正己烷(體積比1∶9)+10 mL丙酮∶正己烷(體積比1∶9)為洗脫劑時對回收率的影響。結(jié)果顯示,20 mL二氯甲烷∶正己烷(體積比1∶9)對19種(占總檢測有機氯農(nóng)藥的82.6%)有機氯農(nóng)藥的回收率較高(>80%),在該洗脫劑條件下,Kruskal-Wallis(K-W)非參數(shù)檢驗結(jié)果表明,17種有機氯農(nóng)藥的回收率顯著高于其它兩種洗脫劑的回收率(p<0.05),4種農(nóng)藥的回收率則顯著低于其它2種洗脫劑,介于40.9%~63.2%之間,六氯苯和甲氧滴滴涕回收率差異則不顯著。10 mL二氯甲烷∶正己烷(體積比1∶9)+10 mL丙酮∶正己烷(體積比1∶9)為洗脫劑的回收率介于其它兩種洗脫劑之間,回收率為76.7%~121%。20 mL丙酮∶正己烷(體積比1∶9)洗脫時的回收率為62.1%~90.9%,顯著低于前兩種(p<0.05)。為保證大部分有機氯農(nóng)藥有較好的回收率,選擇10 mL二氯甲烷∶正己烷(體積比1∶9)+10 mL丙酮∶正己烷(體積比1∶9)為凈化的洗脫劑。
基質(zhì)效應(yīng)(ME)的計算公式采用公式[28]:ME=(Am/As-1)×100%,式中Am為基質(zhì)中農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)溶液的峰面積,As為純?nèi)軇┲修r(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)溶液的峰面積。|ME|<20%為弱基質(zhì)效應(yīng),無需采取補償措施;20%≤|ME|≤50%為中等程度基質(zhì)效應(yīng),|ME|>50%為強基質(zhì)效應(yīng),須采取措施補償基質(zhì)效應(yīng)[29]。本研究比較了同為4 μg·mL-1的溶劑標(biāo)準(zhǔn)溶液與土壤基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)溶液的響應(yīng)值,研究發(fā)現(xiàn),p,p′-DDD、o,p′-DDT、異狄氏劑醛、異狄氏劑酮呈現(xiàn)中等程度的基質(zhì)效應(yīng),p,p′-DDT、異狄氏劑、甲氧滴滴涕則存在強基質(zhì)效應(yīng),需采取補償措施,因此分析了基質(zhì)凈化法和不同進(jìn)樣方式對基質(zhì)效應(yīng)的補償作用。
2.3.1 不同洗脫溶劑對基質(zhì)效應(yīng)的補償作用洗脫溶劑是凈化條件中最主要的影響因素,不同洗脫溶劑對基質(zhì)效應(yīng)的補償作用也不同。本研究分析了20 mL二氯甲烷∶正己烷(體積比1∶9)、20 mL丙酮∶正己烷(體積比1∶9)、10 mL二氯甲烷∶正己烷(體積比1∶9)+10 mL丙酮∶正己烷(體積比1∶9) 3種洗脫溶劑對基質(zhì)效應(yīng)的影響。結(jié)果表明,采用凈化措施后,大部分有機氯農(nóng)藥的ME均有所降低,且以10 mL二氯甲烷∶正己烷(體積比1∶9)+10 mL丙酮∶正己烷(體積比1∶9)為洗脫劑時對中、強基質(zhì)效應(yīng)農(nóng)藥的基質(zhì)補償效果最好,18種有機氯農(nóng)藥(占比78.3%)的基質(zhì)效應(yīng)在20%以內(nèi)。其中,p,p′-DDD、異狄氏劑酮由中等程度基質(zhì)效應(yīng)降為弱基質(zhì)效應(yīng),p,p′-DDT、甲氧滴滴涕由強基質(zhì)效應(yīng)降為中等程度基質(zhì)效應(yīng)。
2.3.2 進(jìn)樣方式對基質(zhì)效應(yīng)的影響在氣相色譜-質(zhì)譜檢測過程中,不同的進(jìn)樣模式對基質(zhì)效應(yīng)的影響有著巨大的差別[15]。非脈沖和脈沖不分流進(jìn)樣是GC-MS中最常用的進(jìn)樣技術(shù),在脈沖不分流進(jìn)樣方式中,脈沖壓力是最重要的參數(shù)[13]。按照儀器條件對凈化后的土壤基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行測定,考察了非脈沖不分流進(jìn)樣和脈沖不分流進(jìn)樣對基質(zhì)效應(yīng)的影響。結(jié)果表明,脈沖進(jìn)樣的ME整體上較非脈沖進(jìn)樣低,所有農(nóng)藥的|ME|均在50%以內(nèi),不存在強基質(zhì)效應(yīng)。賀利民等[30]的研究也指出,脈沖不分流進(jìn)樣技術(shù)能夠大大減少基質(zhì)效應(yīng)。
在脈沖進(jìn)樣方式中,脈沖壓力為103.4、172.4、275.8 kPa時的|ME|值在20%以內(nèi)的農(nóng)藥數(shù)量分別為18、19、23,由此可見,隨著柱頭壓力的增大,其對應(yīng)的基質(zhì)效應(yīng)整體呈減弱趨勢,特別是對異狄氏劑和滅蟻靈的基質(zhì)減弱作用較為明顯。這是因為隨著進(jìn)樣過程中流速的增加和進(jìn)樣口壓力的增大,樣品在進(jìn)樣口的停留時間減少[30],減少了目標(biāo)物與襯管中活性位點的作用時間,從而降低了基質(zhì)效應(yīng)。
2.4.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線及檢出限在優(yōu)化凈化條件和進(jìn)樣方式下,23種有機氯農(nóng)藥均表現(xiàn)為弱基質(zhì)效應(yīng),可采用溶劑配標(biāo)法進(jìn)行定量,用正己烷將23種有機氯農(nóng)藥及替代物混標(biāo)分別稀釋成0.4、1、2、3、4、6、8、10 μg·mL-1,均加入8 μL內(nèi)標(biāo)物(1 000 μg·mL-1),最終質(zhì)量濃度為8 μg·mL-1。通過保留時間和NIST譜庫檢索對目標(biāo)物進(jìn)行定性分析,采用內(nèi)標(biāo)法定量。23種有機氯在0.4~10 μg·mL-1質(zhì)量濃度范圍內(nèi)線性良好,相關(guān)系數(shù)(r2)不低于0.999 2,校準(zhǔn)曲線中目標(biāo)物相對響應(yīng)因子(RRF)的RSDRRF為0.34%~9.8%。按照《環(huán)境監(jiān)測 分析方法標(biāo)準(zhǔn)制修訂技術(shù)導(dǎo)則》(HJ 168-2010)[31]中規(guī)定,方法檢出限(LOD)=3.143δ(δ為7個空白加標(biāo)平行測定的標(biāo)準(zhǔn)偏差),方法定量下限(LOQ)為4倍的LOD。本研究中23種有機氯農(nóng)藥的LOD為1.0~8.6 μg·kg-1,LOQ為4.0~34.4 μg·kg-1(表2)。
2.4.2 回收率及精密度在空白土壤中分別添加20、60、100 μg/kg的23種農(nóng)藥的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行空白基質(zhì)加標(biāo)回收實驗,每個濃度平行6個,在優(yōu)化條件下測定,計算各待測物的回收率及相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)。結(jié)果顯示,23種農(nóng)藥在3個加標(biāo)水平下的平均回收率為46.3%~127%,RSD為0.68%~15%(表2),回收率滿足40%~150%的要求[25],具有良好的準(zhǔn)確度及精密度。
表2 23 種有機氯農(nóng)藥的線性相關(guān)系數(shù)(r2)、RRF的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSDRRF)、平均回收率、相對標(biāo)準(zhǔn)偏差、檢出限及定量下限Table 2 Linear coefficients(r2),relative standard deviations of RRF(RSDRRF),average recoveries,RSDs,limits of detection(LODs) and limits of quantification(LOQs) of 23 organochlorine pesticides
圖2 實際土樣的色譜圖Fig.2 Chromatogram of soil sample the number 1-23 were the same as those in Table 1
在優(yōu)化條件下,采用本法對采集自濟(jì)南市某基地(36°41′10″N,117°4′45″E)的土壤樣品進(jìn)行檢測,結(jié)果檢出5種農(nóng)藥(圖2),分別為α-六六六、γ-六六六、p,p′-DDE、異狄氏劑醛、p,p′-DDT,含量為3.91~11.3 μg·kg-1。
本文建立了一種固相萃取/GC-MS同時測定土壤中23種有機氯農(nóng)藥的分析方法,并考察了凈化方式及進(jìn)樣條件對基質(zhì)效應(yīng)的影響,該方法操作簡單、高效,可用于復(fù)雜土壤樣品的分析。