周俊鵬,章 蔚,劉 茹,朱旭萌,熊光權(quán),汪 蘭,吳文錦,石 柳,*
(1.湖北省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工與核農(nóng)技術(shù)研究所,湖北省農(nóng)業(yè)科技創(chuàng)新中心農(nóng)產(chǎn)品加工研究分中心,湖北武漢 430064;2.湖北工業(yè)大學(xué)生物工程與食品學(xué)院,湖北武漢 430068;3.華中農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院,湖北武漢 430070;4.長(zhǎng)江大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,湖北荊州 434025)
魚(yú)糜是以魚(yú)類(lèi)為原料,經(jīng)采肉、漂洗、斬拌、擂潰等工序制成,具有高蛋白、低脂肪等特點(diǎn),常常作為食品加工中的重要原料[1]。在工業(yè)化魚(yú)糜生產(chǎn)過(guò)程中,為了得到具有色澤白、彈性高的優(yōu)質(zhì)魚(yú)糜,加工過(guò)程中往往需要多次漂洗,去除有色物質(zhì)、脂肪和腥味物質(zhì)等[2]。同時(shí),漂洗處理也會(huì)導(dǎo)致約30%水溶性蛋白和少量鹽溶性蛋白損失,據(jù)統(tǒng)計(jì),生產(chǎn)1噸魚(yú)糜約產(chǎn)生20噸漂洗廢水,其中約含有3000 kg水溶性蛋白[3]。漂洗水中蛋白質(zhì)含量高,化學(xué)需氧量高,廢水處理費(fèi)用較高[4];若將其中蛋白質(zhì)回收,則可節(jié)約資源,降低生產(chǎn)成本和廢水處理成本。
有關(guān)學(xué)者進(jìn)行了魚(yú)糜漂洗廢水處理方面的研究,包括物理法、化學(xué)法和微生物發(fā)酵等方面[5-7]。目前,從廢水中回收蛋白質(zhì)的方法主要有絮凝法、等電點(diǎn)法、膜分離法等。常用的絮凝劑包括無(wú)機(jī)絮凝劑(無(wú)機(jī)氯化鐵、氯化鋁等)和有機(jī)絮凝劑(海藻酸鈉、殼聚糖等)。吳正奇等[8]報(bào)道了三氯化鐵、陽(yáng)離子聚丙烯酰胺、明礬等對(duì)淡水魚(yú)糜漂洗水中蛋白質(zhì)有較好的回收效果,但再利用較困難;邵明栓等[9]、武玉學(xué)等[10]和許永安等[11]分別研究了海藻酸鈉和殼聚糖對(duì)魚(yú)糜漂洗水中蛋白質(zhì)的回收。相比于無(wú)機(jī)絮凝劑,天然有機(jī)絮凝劑具有安全無(wú)害,價(jià)格低廉、來(lái)源廣和易降解等特點(diǎn)[12],且便于回收蛋白質(zhì)在食品加工中再次利用。等電點(diǎn)法主要是通過(guò)調(diào)節(jié)酸堿至漂洗水的等電點(diǎn)使蛋白質(zhì)發(fā)生沉降再進(jìn)行回收,如徐律等[13]利用磷酸和乙酸調(diào)節(jié)魚(yú)糜漂洗液中蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)來(lái)回收蛋白質(zhì),該法簡(jiǎn)便有效。膜分離法是以篩分效應(yīng)為基本原理,依靠壓力使溶液中的小分子溶質(zhì)透過(guò)膜,而大分子溶質(zhì)被截留進(jìn)行分離的過(guò)程膜,但膜分離法成本較高,且操作繁瑣[14-16]。
目前關(guān)于單因素對(duì)蛋白質(zhì)回收效果的研究較多,但系統(tǒng)研究各因素協(xié)同回收魚(yú)糜漂洗水中的蛋白質(zhì)還鮮有報(bào)道。本研究結(jié)合不同沉降溫度、時(shí)間、種類(lèi)的酸、pH、絮凝劑和添加量等多因素對(duì)魚(yú)糜漂洗水進(jìn)行處理,研究其對(duì)蛋白質(zhì)回收率、上清液透光率和蛋白質(zhì)的SDS-PAGE影響,為工業(yè)魚(yú)糜漂洗水中蛋白質(zhì)的回收和廢水凈化提供理論參考,還能有效降低企業(yè)魚(yú)糜生產(chǎn)成本,減輕環(huán)境污染。
20條約2000 g(540 mm×100 mm)鮮活白鰱(Silver Carp)購(gòu)于 湖北省武漢市白沙洲水產(chǎn)品批發(fā)市場(chǎng);Coomassie Brilliant Blue G250、Coomassie Brilliant BlueAlbuminR-250、Bovine V BIOSHARP;95%乙醇、85%磷酸、氯化鈉、乙酸鎂、鹽酸、冰乙酸、檸檬酸、殼聚糖、海藻酸鈉、黃原膠、甲醇、十二烷基硫酸鈉 國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;過(guò)硫酸銨、30%丙烯酰胺Acr-Bis、蛋白上樣液、電泳緩沖液、1.5 mol/L Tirs-HCl 武漢科瑞生物技術(shù)有限公司;Pre-stained Protein Marker(11~245 kDa) 天根生化科技有限公司(11~245 kDa);0.5 mol/L Tris-HCl 美國(guó)Dow Chemical公司;四甲基乙二胺(TEMED) 美國(guó)MYM公司。
MG12絞肉機(jī) 民發(fā)食品包裝機(jī)械廠;GD系列冷凍干燥機(jī) 江陰市新申寶科技有限公司;BCD-575WDBI 冰箱 青島海爾股份有限公司;JJ-1精密增力電動(dòng)攪拌器 江蘇金壇榮華儀器制造有限公司;722N可見(jiàn)分光光度計(jì) 上海儀電分析儀器有限公司;FG2-B便攜式pH計(jì) 梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;HH-ZK2恒溫水浴鍋 鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;DYY-12型電泳儀電源、24DN制膠器、電泳槽、WD-9406型膠片觀察燈 北京市六一儀器廠;Universal HoodⅡ凝膠拍照系統(tǒng) 美國(guó)Bio-Rad公司;SHA-C恒溫振蕩器 常州國(guó)華電器有限公司。
1.2.1 樣品制備 在4 ℃環(huán)境中將白鰱敲擊致暈,去除魚(yú)鱗、內(nèi)臟、頭部與尾部,流水清洗干凈后,切塊;將大小適宜魚(yú)塊用絞肉機(jī)制成魚(yú)肉泥,然后以魚(yú)肉泥和水按1∶3 (m∶V)比例進(jìn)行魚(yú)糜漂洗,攪拌10 min,靜置30 min,傾倒上層浮液,用紗布過(guò)濾器,收集漂洗水,以上操作重復(fù)2次;待白鰱魚(yú)糜漂洗水收集完成后,攪拌混勻,分裝,然后真空冷凍干燥;將干燥后的樣品分成多個(gè)小包裝真空包裝,置于恒溫干燥器中備用。
1.2.2 漂洗水復(fù)原 通過(guò)預(yù)實(shí)驗(yàn)確定復(fù)原漂洗水的最佳條件是20 g凍干樣品溶于1 L水中,攪拌60 min;稱(chēng)取20 g凍干樣品溶解于1 L水溶液中,進(jìn)行一定溫度的控制,并用JJ-1精密增力電動(dòng)攪拌器攪拌60 min,然后備用。
1.2.3 不同沉降溫度和時(shí)間的絮凝試驗(yàn) 按照1.2.2方法進(jìn)行漂洗水的復(fù)原,測(cè)得蛋白濃度為C0,然后分別在4和30 ℃環(huán)境中進(jìn)行10、30、60、90、120 min進(jìn)行溫度和時(shí)間沉降絮凝試驗(yàn),分別測(cè)定上清液蛋白濃度C1和透光率,然后計(jì)算蛋白質(zhì)的回收率,并用沉降絮凝樣品進(jìn)行SDS-PAGE電泳試驗(yàn),每組試樣平行操作3次。
1.2.4 不同種類(lèi)的酸和pH的絮凝試驗(yàn) 按照1.2.2方法進(jìn)行漂洗水的復(fù)原,測(cè)得蛋白濃度為C0,在確定溫度和沉降時(shí)間后,然后分別用鹽酸、乙酸和檸檬酸調(diào)節(jié)pH至3.0、3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、6.0、6.5進(jìn)行不同種類(lèi)酸和pH沉降絮凝試驗(yàn),分別測(cè)定上清液蛋白濃度C1和透光率,然后計(jì)算蛋白質(zhì)的回收率,并用沉降絮凝樣品進(jìn)行SDS-PAGE電泳試驗(yàn),每組試樣平行操作3次。
1.2.5 不同絮凝劑及其添加量的絮凝試驗(yàn) 按照1.2.2方法進(jìn)行漂洗水的復(fù)原,測(cè)得蛋白濃度為C0,在確定溫度、沉降時(shí)間、酸的種類(lèi)和pH后,然后分別殼聚糖、海藻酸鈉和黃原膠及0、0.2、0.4、0.6、0.6、0.8、1.0 mg/mL進(jìn)行不同絮凝劑和不同添加量沉降絮凝試驗(yàn),分別測(cè)定上清液蛋白濃度C1和透光率,然后計(jì)算蛋白質(zhì)的回收率,并用沉降絮凝樣品進(jìn)行SDS-PAGE電泳試驗(yàn),每組試樣平行操作3次。
1.2.6 分析方法
1.2.6.1 蛋白質(zhì)濃度測(cè)定 參考國(guó)標(biāo)SN/T 3926-2014[17]方法,取6支25 mL具塞比色管,標(biāo)準(zhǔn)牛血清蛋白100 μg/mL,分別加入0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL標(biāo)準(zhǔn)蛋白,然后各加入5.0 mL考馬斯亮藍(lán)G-250試劑,定容至6.0 mL,搖勻,放置5 min后于595 nm波長(zhǎng)下比色,以蛋白質(zhì)含量為橫坐標(biāo),以吸光度值為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線;另取3支25 mL具塞比色管,各加入1 mL樣品溶液,5 mL 考馬斯亮藍(lán)G-250溶液,充分混合后,放置5 min后于595 nm波長(zhǎng)下比色,測(cè)定吸光度,通過(guò)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算樣品中蛋白質(zhì)的含量。
1.2.6.2 蛋白質(zhì)回收率 經(jīng)過(guò)絮凝試驗(yàn)后,參考許永安等[11]方法,分別測(cè)定漂洗水復(fù)原液和絮凝試驗(yàn)后其上清液的蛋白質(zhì)濃度,按照下列公式計(jì)算蛋白質(zhì)的回收率:
式中:C0-漂洗水復(fù)原液蛋白質(zhì)濃度,mg/mL;C1-上清液蛋白質(zhì)濃度,mg/mL。
1.2.6.3 透光率 經(jīng)過(guò)絮凝試驗(yàn)后,參考許永安等[11]法,用可見(jiàn)分光光度計(jì)在600 nm處測(cè)定絮凝試驗(yàn)后其上清液透光率,用去離子水作為對(duì)照組。
1.2.6.4 SDS-PAGE 經(jīng)絮凝試驗(yàn)后,參考朱萌等[18]方法,在分別確定酸種類(lèi)、pH、絮凝劑和添加量的過(guò)程中,收集不同條件下絮凝蛋白質(zhì)和漂洗水制成1 mg/mL電泳樣品,然后進(jìn)行SDS-PAGE電泳試驗(yàn)。先進(jìn)行制膠,濃縮膠濃度為5%,分離膠濃度為12%,按照表1進(jìn)行制膠。待膠凝固后,進(jìn)行上樣,其中蛋白標(biāo)準(zhǔn)品上樣5 μL,蛋白樣品上樣7 μL;完成上樣后,在電泳槽中加入適量的電泳緩沖液且沒(méi)過(guò)凝膠;連接電源,在濃縮膠階段,設(shè)定電泳80 V,電流50 mA,待進(jìn)入分離膠后,調(diào)節(jié)電壓至120 V,當(dāng)藍(lán)色指示線條到凝膠底部邊沿時(shí),表明電泳完成;然后將玻璃板上凝膠剝離,在染色液(50%甲醇+10%冰乙酸+0.1%考馬斯亮藍(lán)R-250+40%水)中振蕩浸泡2 h,然后轉(zhuǎn)移至脫色液(50%甲醇+10%冰乙酸+40%水)中脫色30 min,再用去離子水浸泡凝膠,并每2 h更換1次去離子水,直至凝膠中電泳條帶清晰;最后采用Universal Hood Ⅱ凝膠拍照系統(tǒng)進(jìn)行拍照。
表1 濃縮膠及分離膠配制Table 1 Preparation of concentrated glue and separation gel
采用SPSS 20.0進(jìn)行差異顯著性分析,實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)用GraphPad Prism5.0作圖。
蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖1,回歸方程y=0.006x+0.0098,R2=0.9991,表明蛋白質(zhì)質(zhì)量濃度在0~100 μg/mL范圍與吸光度A間線性關(guān)系良好,在后續(xù)試驗(yàn)中蛋白質(zhì)濃度的測(cè)定中均使用此標(biāo)準(zhǔn)曲線。
圖1 蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 Protein standard curve
如圖2A和圖2B所示,經(jīng)不同溫度和時(shí)間沉降絮凝后,魚(yú)糜漂洗水其蛋白質(zhì)回收率和上清液透光率都存在顯著性差異(P<0.05)。在4和30 ℃條件下,漂洗水中蛋白質(zhì)回收率隨著沉降時(shí)間延長(zhǎng)都呈現(xiàn)先增大后減小,最后趨于平衡的趨勢(shì);在前60 min過(guò)程中,30 ℃條件下蛋白質(zhì)的回收率大于4 ℃,60 min后則相反;在30 min時(shí),4和30 ℃環(huán)境中漂洗水的蛋白質(zhì)回收率均達(dá)到最大值,分別為25.3%和44.7%,且30 ℃條件下蛋白質(zhì)回收率大于4 ℃。
圖2 不同沉降時(shí)間和溫度對(duì)魚(yú)糜漂洗水蛋白質(zhì)回收率(A)、透光率(B)和SDS-PAGE(C)的影響Fig.2 Effect of different time and temperature on protein recovery yield(A),light transmittance(B)and SDS-PAGE(C)of surimi rinsing water注:不同小寫(xiě)字母代表不同溫度間存在顯著差異(P<0.05);不同大寫(xiě)字母代表不同沉降時(shí)間間存在顯著差異(P<0.05)。
漂洗水經(jīng)過(guò)沉降后,上清液的透光率隨沉降時(shí)間延長(zhǎng)逐漸增大,且30 ℃條件下上清液透光率大于4 ℃。隨環(huán)境溫度升高,漂洗水中蛋白質(zhì)發(fā)生變性,蛋白質(zhì)在水溶液中穩(wěn)定性降低,在重力作用下發(fā)生沉降。因此,30 ℃環(huán)境條件下魚(yú)糜漂洗水的蛋白質(zhì)回收率和上清液透光率均大于4 ℃,且變化速率較快。這一現(xiàn)象在Bourtoom等[19]和Scopes等[20]研究中得到了證實(shí)。在自然沉降條件下,漂洗水上清液的透光率分布范圍為1.0%~1.3%,此時(shí)上清液仍較為渾濁,表明蛋白質(zhì)沉降不完全。隨沉降時(shí)間延長(zhǎng),蛋白質(zhì)回收率和上清液透光率均逐漸增大,最終趨于穩(wěn)定。
漂洗水回收蛋白的SDS-PAGE結(jié)果如圖2C所示。漂洗水中主要含有分子量約為35、42、48、63和100 kDa附近蛋白質(zhì),還含有少量分子量為190 kDa的蛋白質(zhì)。在一定環(huán)境條件下沉降后,已有的蛋白條帶濃度加深,且在25~28 kDa附近出現(xiàn)了多條新的電泳條帶。漂洗水中不同分子量的蛋白質(zhì)在溫度和時(shí)間作用下發(fā)生富集,這是25~100 kDa分子量蛋白質(zhì)濃度升高的主要原因。同時(shí)190 kDa的電泳條帶消失,可能是漂洗水中蛋白質(zhì)在蛋白水解酶的作用下發(fā)生降解[21]。結(jié)合環(huán)境溫度對(duì)蛋白質(zhì)性質(zhì)的影響和實(shí)際生產(chǎn)情況考慮,采用4 ℃條件下沉降60 min來(lái)回收魚(yú)糜漂洗水中的蛋白質(zhì)。
如圖3A和圖3B所示,在確定溫度和沉降時(shí)間后,采用不同種類(lèi)酸和pH處理后,魚(yú)糜漂洗水蛋白質(zhì)回收率和透光率存在顯著性差異(P<0.05)。采用鹽酸、乙酸和檸檬酸調(diào)節(jié)魚(yú)糜漂洗水至酸性,其蛋白質(zhì)回收率分別在pH5.5、5.0和5.5處達(dá)到最大值,分別是65.8%、25.5%和38.4%。由此可知,本試驗(yàn)中漂洗水的等電點(diǎn)范圍為5.0~5.5,與王路[7]的研究較為一致。采用鹽酸調(diào)節(jié)漂洗水pH,其蛋白質(zhì)回收率始終高于乙酸和檸檬酸,這可能因?yàn)椴煌嵩谒芤褐锌呻婋x出的氫離子濃度不同,對(duì)蛋白質(zhì)分子所帶的負(fù)電荷產(chǎn)生不同程度中和,最終使蛋白質(zhì)產(chǎn)生差異性沉降效果[3,13]。
圖3 不同種類(lèi)酸和pH對(duì)魚(yú)糜漂洗水蛋白質(zhì)回收率(A)、透光率(B)和SDS-PAGE(C)的影響Fig.3 Effect of different acid and pH on protein recovery yield(A),light transmittance(B)and SDS-PAGE(C)of surimi rinsing water注:不同小寫(xiě)字母代表不同種類(lèi)酸間存在顯著差異(P<0.05);不同大寫(xiě)字母代表不同pH間存在顯著差異(P<0.05)。
當(dāng)漂洗水pH低于5.0(鹽酸)或4.5(乙酸和檸檬酸)時(shí),上清液透光率約為1%~2%,與圖2B相似。當(dāng)pH繼續(xù)升高時(shí),鹽酸處理組的上清液透光率呈持續(xù)上升趨勢(shì),乙酸和檸檬酸處理組上清液透光率均在pH5.5處達(dá)到最大值,結(jié)合蛋白質(zhì)回收率和透光率可以得出白鰱魚(yú)糜漂洗水等電點(diǎn)在pH5.5附近。
確定溫度和時(shí)間后,不同酸和pH處理的回收蛋白SDS-PAGE結(jié)果如圖3C所示,其處理組蛋白質(zhì)電泳條帶較漂洗水條帶濃度進(jìn)一步加深,且pH至5.0~7.0左右時(shí)30.0 kDa附近的蛋白質(zhì)電泳條帶缺失,這可能是因?yàn)閜H到一定時(shí)會(huì)使30.0 kDa附近蛋白質(zhì)發(fā)生降解[22]。結(jié)合酸堿對(duì)蛋白質(zhì)性質(zhì)的影響,采用鹽酸調(diào)節(jié)pH5.5來(lái)回收魚(yú)糜漂洗水中的蛋白質(zhì)。
如圖4A和圖4B所示,在確定溫度、時(shí)間、鹽酸調(diào)節(jié)pH5.5后,魚(yú)糜漂洗水蛋白質(zhì)回收率和透光率受絮凝劑種類(lèi)和添加量影響(P<0.05)。隨絮凝劑添加量逐漸增大,魚(yú)糜漂洗水的蛋白質(zhì)回收率呈現(xiàn)不同的變化趨勢(shì),其中殼聚糖和黃原膠處理后蛋白質(zhì)回收率逐漸增大,而海藻酸鈉處理后蛋白質(zhì)回收率先增加,當(dāng)添加量大于0.6 mg/mL時(shí)蛋白質(zhì)回收率呈減小趨勢(shì)。經(jīng)鹽酸調(diào)節(jié)pH5.5處理后,蛋白質(zhì)回收率進(jìn)一步升高,這是因?yàn)轸~(yú)糜漂洗水中殘留的蛋白質(zhì)與絮凝劑之間產(chǎn)生橋連作用、靜電相互作用和基團(tuán)反應(yīng)而沉降聚集[23-26]。Wenbei等[27]研究表明在酸性溶液中經(jīng)質(zhì)子化后殼聚糖會(huì)形成帶正電荷的分子,其與魚(yú)糜漂洗水中殘留蛋白質(zhì)經(jīng)靜電相互作用發(fā)生沉降,同時(shí)殼聚糖分子通過(guò)離子鍵、氫鍵形成中間“橋梁”或某些活性基團(tuán)反應(yīng)也會(huì)使殘留蛋白質(zhì)發(fā)生沉降[28]。而海藻酸鈉隨著添加量增大后期會(huì)出現(xiàn)蛋白質(zhì)回收率下降,可能因?yàn)楹T逅徕c添加過(guò)量會(huì)使已經(jīng)形成的絮凝狀態(tài)變成穩(wěn)定膠體且不能進(jìn)行有效地絡(luò)合作用降低絮凝效果,這種現(xiàn)象在劉婷婷等[29]和施亞芳[26]研究中得到了證實(shí)。黃原膠具有絮凝效果,這可能是因?yàn)樵谌芤褐悬S原膠與等電點(diǎn)處蛋白質(zhì)發(fā)生絡(luò)合,使漂洗水中蛋白質(zhì)發(fā)生沉降[30]。
圖4 不同絮凝劑和添加量對(duì)蛋白質(zhì)回收率(A)、透光率(B)和SDS-PAGE(C)的影響Fig.4 Effect of different flocculants and additions on protein recovery yield(A),light transmittance(B)and SDS-PAGE(C)of surimi rinsing water注:不同小寫(xiě)字母代表不同種類(lèi)絮凝劑間存在顯著差異(P<0.05);不同大寫(xiě)字母代表不同添加量間存在顯著差異(P<0.05)。
漂洗水添加絮凝劑后,上清液透光率差異顯著(P<0.05)。隨絮凝劑添加量增大,殼聚糖和黃原膠處理組的上清液透光率呈先增大后略有減小趨勢(shì),海藻酸鈉處理組呈持續(xù)減小趨勢(shì),與蛋白質(zhì)回收率變化趨勢(shì)相似。當(dāng)絮凝劑添加量低于0.6 mg/mL時(shí),殼聚糖和黃原膠處理組的上清液透光率無(wú)顯著性差異(P>0.05),當(dāng)添加量繼續(xù)增大時(shí),黃原膠處理組的上清液透光率高于殼聚糖組;海藻酸鈉處理組的上清液透光率始終最低,這可能是因?yàn)楹T逅徕c處于酸性環(huán)境(pH5.5)時(shí)其—COO-轉(zhuǎn)變成—COOH,電離度降低,親水性降低,使漂洗水上清液透光率降低[31]。通過(guò)添加絮凝劑,漂洗水上清液透光率從1.2%繼續(xù)上升至87.8%。
結(jié)合以上溫度、時(shí)間、pH結(jié)果,采用絮凝劑進(jìn)一步處理回收的蛋白SDS-PAGE結(jié)果如圖4C所示。經(jīng)絮凝劑處理后,不同分子量蛋白質(zhì)的條帶濃度繼續(xù)加深,且殼聚糖處理組蛋白條濃度帶明顯高于海藻酸鈉和黃原膠處理組,表明添加絮凝劑使蛋白回收效果進(jìn)一步加強(qiáng),殼聚糖的回收蛋白效果優(yōu)于其他兩種物質(zhì),且在20 kDa附近出現(xiàn)新的電泳條帶,說(shuō)明小分子量蛋白質(zhì)隨著回收效果的加強(qiáng)也得到了一定的回收。因此,結(jié)合蛋白質(zhì)回收率、上清液透光率和電泳結(jié)果考慮,0.6 mg/mL殼聚糖添加量使蛋白質(zhì)回收效果最優(yōu)。
本試驗(yàn)通過(guò)確定4 ℃沉降60 min、鹽酸調(diào)節(jié)pH5.5、添加0.6 mg/mL殼聚糖等各條件,魚(yú)糜漂洗水的蛋白質(zhì)回收效果不斷提高,蛋白質(zhì)回收率依次為22.5%、65.8%和85.7%,上清液透光率依次為1.2%、50.1%和87.8%;SDS-PAGE電泳實(shí)驗(yàn)也表明,經(jīng)系列條件處理后不同分子量蛋白質(zhì)含量也顯著提高。在本試驗(yàn)確定的條件下,魚(yú)糜漂洗水中絕大部分的蛋白質(zhì)都能得到回收,且廢水澄清度也得到較好提升,這為工業(yè)魚(yú)糜漂洗水中蛋白質(zhì)的回收和廢水凈化提供了一定的指導(dǎo),同時(shí)也具有較好的經(jīng)濟(jì)效益。