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QuEChERS-氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜-同位素內(nèi)標(biāo)法快速測(cè)定茶葉中氟蟲(chóng)腈及其代謝物殘留量

2020-07-04 10:58倪韻晨徐小民黃百芬徐美佳李祖光
食品科學(xué) 2020年12期
關(guān)鍵詞:氟蟲(chóng)丙酮代謝物

倪韻晨,徐小民*,黃百芬,徐美佳,李祖光*

(1.浙江工業(yè)大學(xué)教育科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,浙江 杭州 310014;2.浙江省疾病預(yù)防控制中心理化毒理所,浙江 杭州 310051;3.浙江工業(yè)大學(xué)化學(xué)工程學(xué)院,浙江 杭州 310014)

氟蟲(chóng)腈是一種苯基吡唑類殺蟲(chóng)劑,主要用于殺滅土壤中鞘翅目害蟲(chóng)的幼蟲(chóng),同時(shí)用以消除蚤、虱、蜱、蟑螂及螨等昆蟲(chóng)[1-2]。氟蟲(chóng)腈通過(guò)環(huán)境或生物轉(zhuǎn)化會(huì)產(chǎn)生氟甲腈、氟蟲(chóng)腈亞砜和氟蟲(chóng)腈砜等代謝物[3-4]。有研究表明其代謝物相對(duì)于氟蟲(chóng)腈具有更持久的穩(wěn)定性[5],且經(jīng)過(guò)對(duì)氟甲腈、氟蟲(chóng)腈亞砜和氟蟲(chóng)腈砜3 種代謝物的研究表明,其毒性高于氟蟲(chóng)腈原藥[6],因此,氟蟲(chóng)腈的代謝物更容易導(dǎo)致食品中的農(nóng)藥殘留問(wèn)題[7-8]。各國(guó)對(duì)氟蟲(chóng)腈的限量值作了嚴(yán)格規(guī)定,其中日本與歐盟茶葉中的限量值分別為2 μg/kg[9]與5 μg/kg[10],且只限于氟蟲(chóng)腈而不涉及其他代謝物。我國(guó)GB 2763—2016《食品中農(nóng)藥最大殘留限量》制定了氟蟲(chóng)腈在蔬菜、除糙米外的谷類等農(nóng)產(chǎn)品中的限量值分別為20 μg/kg與100 μg/kg,并以氟蟲(chóng)腈、氟甲腈(MB46513)、氟蟲(chóng)腈砜(MB46136)、氟蟲(chóng)腈亞砜(MB45950)之和計(jì)算[11],但沒(méi)有規(guī)定茶葉中氟蟲(chóng)腈的限量值。氟蟲(chóng)腈內(nèi)標(biāo)與氟蟲(chóng)腈及其代謝物化學(xué)結(jié)構(gòu)式見(jiàn)圖1。

圖1 氟蟲(chóng)腈-13C2,15N2同位素內(nèi)標(biāo)與氟蟲(chóng)腈及其代謝物的化學(xué)結(jié)構(gòu)式Fig. 1 Chemical structures of fipronil-13C2,15N2, fipronil and its metabolites

茶葉中氟蟲(chóng)腈及其代謝物的檢測(cè)方法有氣相色譜法[12-13]、氣相色譜-質(zhì)譜(gas chromatography-mass spectrometry,GC-MS)聯(lián)用法[14-15]、氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(gas chromatography-tandem mass spectrometry,GCMS/MS)法[16]和液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[17]等。提取溶劑主要包括丙酮-正己烷混合溶劑[12,14-15]或乙腈[13,16-17]。前處理主要采用固相萃取[8,12-13,15-16]或固相微萃取[14]。除了周昱等[14]開(kāi)發(fā)的固相萃取前處理技術(shù)與GC-MS的檢測(cè)方法可同時(shí)定量檢測(cè)氟蟲(chóng)腈及其代謝物,其他方法只能定量檢測(cè)氟蟲(chóng)腈一種成分。現(xiàn)有方法主要為外標(biāo)法定量,外標(biāo)法對(duì)操作條件的穩(wěn)定性和進(jìn)樣的重現(xiàn)性要求較高。榮杰峰等[15]采用固相萃取-GC-MS法檢測(cè)氟蟲(chóng)腈的定量限為1 μg/kg,周昱等[14]采用固相微萃取-GC-MS法檢測(cè)氟蟲(chóng)腈及其代謝物的定量限為1~4 μg/kg。雖然可通過(guò)高靈敏度的分析儀器或者大體積進(jìn)樣以降低定量限[15],然而更多的進(jìn)樣量可能導(dǎo)致嚴(yán)重的基質(zhì)效應(yīng)或者儀器污染等問(wèn)題。

QuEChERS技術(shù)[18-19]自發(fā)明以來(lái)廣泛應(yīng)用于植物源性食品農(nóng)藥殘留分析,以乙腈作為提取溶劑,前處理時(shí)間短且操作過(guò)程簡(jiǎn)單。采用同位素內(nèi)標(biāo)法定量,一定程度上消除了操作條件的變化所引起的誤差,測(cè)定結(jié)果準(zhǔn)確,可同時(shí)定量檢測(cè)氟蟲(chóng)腈及氟甲腈、氟蟲(chóng)腈砜、氟蟲(chóng)腈亞砜3 種代謝物。除此之外,QuEChERS技術(shù)與抗干擾能力強(qiáng)的二級(jí)質(zhì)譜聯(lián)用,不僅克服了基質(zhì)的干擾和假陽(yáng)性問(wèn)題,并且使二級(jí)質(zhì)譜的優(yōu)點(diǎn)得到充分發(fā)揮[15]。本方法采用氟蟲(chóng)腈-13C2,15N2同位素內(nèi)標(biāo)(化學(xué)結(jié)構(gòu)見(jiàn)圖1)法對(duì)茶葉中氟蟲(chóng)腈及其代謝物進(jìn)行QuEChERS-GC-MS/MS定量測(cè)定。在較簡(jiǎn)單、快速的前處理?xiàng)l件下完成對(duì)氟蟲(chóng)腈及其代謝物的準(zhǔn)確定量,氟蟲(chóng)腈及其代謝物的方法的定量限均可達(dá)到1 μg/kg,能夠滿足歐盟與日本的殘留限量要求的同時(shí),適合于茶葉中痕量氟蟲(chóng)腈及其代謝物殘留的快速分析。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

氟蟲(chóng)腈、氟甲腈、氟蟲(chóng)腈砜、氟蟲(chóng)腈亞砜(純度>95%)德國(guó)Dr. Ehrenstorfer公司;氟蟲(chóng)腈-13C2,15N2(同位素內(nèi)標(biāo),純度>98%) 加拿大TRC公司;乙腈、丙酮(均為色譜純) 美國(guó)Fisher Chemical公司;環(huán)己烷(色譜純)美國(guó)貝克公司;NaCl(分析純) 廣東光華科技公司;無(wú)水MgSO4(分析純) 江蘇永華化學(xué)科技公司;N-丙基乙二胺(N-propyl ethylenediamine,PSA,分析純)天津博納艾杰爾科技公司;石墨化碳黑(graphite carbon black,GCB,分析純) 美國(guó)Supelco公司。

1.2 儀器與設(shè)備

TQ-8040 GC-MS/MS聯(lián)用儀 日本島津公司;高速粉碎機(jī) 溫嶺市林大機(jī)械公司;KQ-500DE型數(shù)控超聲波清洗器 昆山市超聲儀器有限公司;WH-861旋渦混合器太倉(cāng)華利達(dá)實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;MTN-5800氮吹濃縮裝置天津市津南八里臺(tái)微電子公司;V-125AllegraTMX-22R離心機(jī) 德國(guó)Beckman Coulter公司;HC-3018高速離心機(jī)安徽中科中佳科學(xué)儀器有限公司。

1.3 方法

1.3.1 GC條件

色譜柱:Rxi-5Sil(30 m×0.25 mm,0.25 μm);升溫程序:50 ℃保持1 min,以20 ℃/min升至200 ℃,以40 ℃/min升至250 ℃,保持3 min,以40 ℃/min升至280 ℃,保持6 min;進(jìn)樣口溫度:240 ℃;載氣(He)壓力70 psi,進(jìn)樣量1 μL;不分流進(jìn)樣。

1.3.2 MS/MS條件

電子電離源;多反應(yīng)離子監(jiān)測(cè)(multiple reaction monitoring,MRM),離子源溫度為200 ℃;接口溫度為250 ℃;溶劑延遲為6 min。氟蟲(chóng)腈及其代謝物的保留時(shí)間、定量離子和定性離子見(jiàn)表1。

表1 氟蟲(chóng)腈及其代謝物的GC-MS/MS分析條件參數(shù)Table 1 Analytical parameters of fipronil and its metabolites by GC-MS/MS

1.3.3 基質(zhì)匹配校準(zhǔn)曲線

氟蟲(chóng)腈及其代謝物混合標(biāo)準(zhǔn)使用溶液:用丙酮配制成1 000 mg/L的單一標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,再用環(huán)己烷-丙酮(1∶1,V/V)逐級(jí)稀釋,配制成2.00 mg/L的混合標(biāo)準(zhǔn)使用溶液。

氟蟲(chóng)腈-13C2,15N2內(nèi)標(biāo)使用液:用丙酮配制成1 000 mg/L的內(nèi)標(biāo)儲(chǔ)備液,再用環(huán)己烷-丙酮(1∶1,V/V)逐級(jí)稀釋,配制成2.00 mg/L的內(nèi)標(biāo)使用溶液。

基質(zhì)校正曲線:用質(zhì)量濃度為0、0.4、0.8、1.0、2.0、5.0、10.0、20.0、50.0、100.0 μg/L的系列標(biāo)準(zhǔn)溶液各1 mL,分別溶解于經(jīng)過(guò)凈化氮吹至近干后的空白樣品基質(zhì),同時(shí)分別添加氟蟲(chóng)腈-13C2,15N2內(nèi)標(biāo)使用液10 μL,配制基質(zhì)匹配系列校正溶液。以氟蟲(chóng)腈及其代謝物的質(zhì)量濃度與內(nèi)標(biāo)的質(zhì)量濃度比為橫坐標(biāo)(X),氟蟲(chóng)腈及其代謝物儀器檢測(cè)的峰面積與內(nèi)標(biāo)的峰面積比為縱坐標(biāo)(Y),制作基質(zhì)校準(zhǔn)曲線。

1.3.4 樣品前處理

樣品預(yù)處理:茶葉樣品經(jīng)粉碎機(jī)粉碎混勻,制備好的試樣裝入潔凈食品塑料袋中保存。

提?。悍Q取2 g(精確至0.01 g)樣品至50 mL離心管中,加2.00 mg/L氟蟲(chóng)腈-13C2,15N2內(nèi)標(biāo)使用液50 μL,加2 mL水和10 mL乙腈,渦旋10 min,超聲10 min,加1 g NaCl和2 g MgSO4,混勻,8 000 r/min離心2 min。

凈化:取全部上清液至已添加200 mg無(wú)水MgSO4、PSA和GCB的10 mL塑料離心管中,渦旋1 min,8 000 r/min離心2 min。取凈化液2 mL于玻璃試管中,氮吹至近干,用1 mL環(huán)己烷-丙酮(1∶1,V/V)溶解殘?jiān)? 000 r/min離心2 min,取上清液,待測(cè)。

1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)及圖表繪制

以氟蟲(chóng)腈為例,其內(nèi)標(biāo)法的計(jì)算方法為以1.3.3節(jié)方法制作的基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線對(duì)未知含量的樣品進(jìn)行定量,標(biāo)準(zhǔn)曲線通用表達(dá)式見(jiàn)式(1),x、y具體計(jì)算見(jiàn)式(2)、(3):

式中:a為斜率;b為截距;y為氟蟲(chóng)腈峰面積(Af)與氟蟲(chóng)腈-13C2,15N2(Af-IS)內(nèi)標(biāo)的峰面積比值;x為氟蟲(chóng)腈含量(xf)與氟蟲(chóng)腈-13C2,15N2(xf-IS)內(nèi)標(biāo)的含量比值。

因樣品中提前加入了確定濃度的氟蟲(chóng)腈內(nèi)標(biāo),故未知濃度的樣品中氟蟲(chóng)腈含量計(jì)算見(jiàn)式(4):

本研究的氟蟲(chóng)腈及其代謝物的定量計(jì)算按照G B 2 7 6 3—2 0 1 6的要求,以氟蟲(chóng)腈、氟甲腈(MB46513)、氟蟲(chóng)腈砜(MB46136)、氟蟲(chóng)腈亞砜(MB45950)之和計(jì)算[11],見(jiàn)式(5):

式中:xA為氟蟲(chóng)腈及其代謝物的總含量;x1、x2、x3、x4分別為氟甲腈、氟蟲(chóng)腈亞砜、氟蟲(chóng)腈與氟蟲(chóng)腈砜的含量,該含量均為內(nèi)標(biāo)法計(jì)算得到。

根據(jù)所得數(shù)據(jù),柱狀圖采用GraphPad Prism 5軟件制作完成。

2 結(jié)果與分析

2.1 樣品前處理方法的優(yōu)化

除乙腈外,丙酮是QuEChERS法中另外一種較為常用的提取溶劑。與乙腈相比,丙酮揮發(fā)性更強(qiáng),大大縮短了樣品濃縮所需的時(shí)間[20]。付曉芳等[13]研究了乙腈和丙酮對(duì)茶葉中氟蟲(chóng)腈的提取回收率,均獲得了滿意的結(jié)果(81.49%~94.43%)。本實(shí)驗(yàn)的被測(cè)物包括氟蟲(chóng)腈及3 種代謝物,實(shí)驗(yàn)中對(duì)比考察乙腈、丙酮及兩者組成的混合溶劑對(duì)茶葉中氟蟲(chóng)腈及其代謝物的提取效果。在添加量25 μg/kg的條件下,分別比較乙腈-丙酮為1∶0、1∶1、2∶8(V/V)的混合溶劑對(duì)茶葉的提取效果,結(jié)果見(jiàn)表2,3 種提取液均符合回收率要求,但丙酮比例高時(shí),提取液顏色較深,雜質(zhì)較多,故選擇純乙腈作為提取液。

表2 不同配比溶劑對(duì)茶葉中氟蟲(chóng)腈及其代謝物的提取回收率(n=3)Table 2 Recoveries of fipronil and its metabolites in tea extracted with different solvents (n= 3)

PSA通過(guò)陰離子交換吸附蛋白質(zhì)、糖類和極性較高的酸性物質(zhì)[21]。在凈化茶葉過(guò)程中,PSA具有去除茶葉中色素和長(zhǎng)鏈脂肪酸等干擾物質(zhì)的良好效果[22-24]。且各種農(nóng)藥的回收率與PSA用量之間相關(guān)性不大,考慮茶葉樣品的復(fù)雜性,參照原始QuEChERS方法的用量,將PSA的用量定為每1 mL提取液使用25 mg PSA凈化[25]。為了加強(qiáng)儀器的維護(hù),在PSA的基礎(chǔ)上再加上一種吸附劑——C18或GCB[26]。GCB作為非極性吸附劑,能夠有效去除疏水性的化合物,如色素和甾醇等[27]。考慮到GCB具有良好的去除茶葉色素的能力,實(shí)驗(yàn)比較了加入GCB的凈化效果。如圖2所示,GCB能有效去除茶葉中的色素。根據(jù)回收率和基質(zhì)效應(yīng)優(yōu)化,分散固相萃取填料的用量為PSA 200 mg和GCB 200 mg。

圖2 不同凈化條件下的提取液對(duì)比Fig. 2 Comparison of extracts purified under two different cleaning conditions

2.2 內(nèi)標(biāo)特征離子的選擇

圖3 氟蟲(chóng)腈及其代謝物(5 μg/kg)的基質(zhì)加標(biāo)MRM色譜圖Fig. 3 MRM chromatograms for matrix-matched standards of fipronil and its metabolites (5 μg/kg)

氟蟲(chóng)腈-13C2,15N2同位素內(nèi)標(biāo)與氟蟲(chóng)腈無(wú)法用色譜分開(kāi)(圖3),且兩者之間只差4 個(gè)質(zhì)量數(shù),從圖4和圖5可以看出,內(nèi)標(biāo)的基峰m/z371會(huì)受氟蟲(chóng)腈同位素峰的干擾,本實(shí)驗(yàn)采用同位素內(nèi)標(biāo)質(zhì)譜次高峰m/z373作為母離子建立MRM條件,以消除氟蟲(chóng)腈同位素峰的干擾。

圖4 氟蟲(chóng)腈全掃描質(zhì)譜圖Fig. 4 Full-scan mass spectrum of fipronil

圖5 氟蟲(chóng)腈-13C2,15N2全掃描質(zhì)譜圖Fig. 5 Full-scan mass spectrum of fipronil-13C2,15N2

2.3 基質(zhì)效應(yīng)

質(zhì)譜分析中基質(zhì)干擾物會(huì)影響目標(biāo)化合物的離子化,造成目標(biāo)化合物儀器響應(yīng)信號(hào)的增強(qiáng)或抑制[28]。在相同加標(biāo)水平下,基質(zhì)效應(yīng)計(jì)算公式如下:

式中:A為純?nèi)軇┲修r(nóng)藥的響應(yīng)值;B為樣品基質(zhì)中添加的相同含量農(nóng)藥響應(yīng)值;基質(zhì)效應(yīng)>100%時(shí),為基質(zhì)增強(qiáng);基質(zhì)效應(yīng)<100%時(shí),為基質(zhì)抑制;基質(zhì)效應(yīng)=100%時(shí),無(wú)基質(zhì)增強(qiáng)或抑制效應(yīng)[29-30]。一般情況下,基質(zhì)效應(yīng)在80%~120%范圍內(nèi)為宜。

采用上述方法衡量茶葉基質(zhì)對(duì)氟蟲(chóng)腈及其代謝物儀器測(cè)定值的影響,空白基質(zhì)提取液采用1.3.3節(jié)的處理方法制備,比較25、200 μg/kg兩個(gè)添加水平下基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)溶液和溶劑標(biāo)準(zhǔn)溶液中被測(cè)物的儀器檢測(cè)峰面積,每個(gè)平行測(cè)定3 次。

結(jié)果表明,茶葉中氟蟲(chóng)腈及其代謝物在2 種不同添加量(25、200 μg/kg)下的基質(zhì)效應(yīng)在84.7%~111.7%(圖6),因此,本實(shí)驗(yàn)采用基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線以提高氟蟲(chóng)腈及其代謝物定量分析的準(zhǔn)確性。

圖6 不同添加量氟蟲(chóng)腈及其代謝物的基質(zhì)效應(yīng)Fig. 6 Matrix effects of fipronil and its metabolites at two different spiked concentrations

2.4 線性范圍與定量限

系列基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)工作溶液采用1.3.3節(jié)的方法制備,并制作基質(zhì)匹配的校準(zhǔn)曲線。結(jié)果見(jiàn)表3,氟蟲(chóng)腈及其代謝物在0.4~100 μg/L范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)(r2)均不小于0.995。氟蟲(chóng)腈及其代謝物檢出限和定量限分別按信噪比3和10計(jì)算,結(jié)果均分別為0.3 μg/kg和1 μg/kg。定量限水平基質(zhì)加標(biāo)的色譜圖見(jiàn)圖7,采用本方法前處理凈化,GC-MS/MS測(cè)定,茶葉基質(zhì)未見(jiàn)明顯干擾峰。

表3 氟蟲(chóng)腈及其代謝物的基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線的回歸方程、相關(guān)系數(shù)和線性范圍Table 3 Regression equations, correlation coef ficients and linear rangers for matrix-matched fipronil and its metabolites

圖7 氟蟲(chóng)腈及其代謝物基質(zhì)加標(biāo)1 μg/kg MRM色譜圖Fig. 7 MRM chromatograms of matrix-matched standards (1 μg/kg) of fipronil and its metabolites

2.5 精密度與回收率實(shí)驗(yàn)結(jié)果

空白茶葉樣品中分別添加1、5、20、200 μg/kg的氟蟲(chóng)腈及其代謝物,按照1.3.4節(jié)的方法進(jìn)行加標(biāo)實(shí)驗(yàn)(n=6),計(jì)算加標(biāo)回收率,結(jié)果見(jiàn)表4。方法的平均回收率為76.72%~96.53%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為4.76%~13.07%。

表4 茶葉中氟蟲(chóng)腈及其代謝物的平均回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(n=6)Table 4 Recoveries and RSDs of fipronil and its metabolites in tea (n= 6)

2.6 實(shí)際樣品檢測(cè)結(jié)果

隨機(jī)抽取市售的茶葉200 份,應(yīng)用建立的方法對(duì)樣品進(jìn)行測(cè)定,結(jié)果如圖8所示,在某一茶葉樣品中檢出氟蟲(chóng)腈及其代謝物總計(jì)27.18 μg/kg。

圖8 氟蟲(chóng)腈及其代謝物的陽(yáng)性樣品MRM色譜圖Fig. 8 MRM chromatograms of fipronil and its metabolites in positive samples

3 結(jié) 論

本實(shí)驗(yàn)采用QuEChERS技術(shù),建立茶葉中氟蟲(chóng)腈及3 種代謝物準(zhǔn)確、快速的定量測(cè)定方法。本方法涵蓋了GB 2763—2016及歐盟和日本的限量規(guī)定中氟蟲(chóng)腈的全部殘留標(biāo)志物檢測(cè),并通過(guò)提取試劑和凈化吸附劑的優(yōu)化,降低了基質(zhì)干擾,簡(jiǎn)化了前處理,同時(shí)采用同位素內(nèi)標(biāo)法定量,保證結(jié)果的準(zhǔn)確性和穩(wěn)定性,GC-MS/MS的高靈敏度檢測(cè),可以滿足目前國(guó)內(nèi)外的茶葉中氟蟲(chóng)腈及其代謝物殘留的限量要求。經(jīng)方法學(xué)驗(yàn)證,該方法回收率為76.72%~96.53%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為4.76%~13.07%,相關(guān)系數(shù)(r2)均不小于0.995,氟蟲(chóng)腈及其代謝物檢出限和定量限分別為0.3 μg/kg和1 μg/kg,說(shuō)明回收率、精密度、線性、定量限等均滿足殘留檢測(cè)方法確認(rèn)的要求,適用于茶葉中氟蟲(chóng)腈及其代謝物的快速定量測(cè)定。

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