王莉芳,馮正平,李曉春,張金山
(1. 陜西省食品藥品監(jiān)督檢驗(yàn)研究院,陜西 西安 710062; 2. 西北瀕危藥材資源開(kāi)發(fā)國(guó)家工程實(shí)驗(yàn)室·藥用資源與天然藥物化學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室·陜西師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,陜西 西安 710062; 3. 中國(guó)人民解放軍空軍軍醫(yī)大學(xué)解剖與組織胚胎學(xué)教研室,陜西 西安 710062)
腎缺血再灌注導(dǎo)致腎臟血管內(nèi)皮細(xì)胞和腎小管上皮細(xì)胞結(jié)構(gòu)和功能的破壞,使細(xì)胞間的連接喪失,造成細(xì)胞凋亡、壞死而引起炎性反應(yīng),是引起急性腎損傷的重要因素[1-2],同時(shí)也是導(dǎo)致腎移植后功能恢復(fù)困難的主要因素,甚至可能出現(xiàn)急性腎功能衰竭,嚴(yán)重的可能導(dǎo)致死亡[3]。胃饑餓素是由28 個(gè)氨基酸組成的多肽,是生長(zhǎng)激素促分泌素受體(GHS-R)的內(nèi)源性配體[4],廣泛分布于人、鼠及多種動(dòng)物的中樞神經(jīng)系統(tǒng)和外周組織器官中,如腦干、垂體、胃、腸、肝、腎等[5]。胃饑餓素與GHS-R 結(jié)合發(fā)揮作用,通過(guò)激活Ca2+釋放進(jìn)入細(xì)胞內(nèi),通過(guò)Ca2+刺激生長(zhǎng)激素(GH)的釋放[6]。本研究中選用C57 小鼠構(gòu)建腎缺血再灌注損傷模型,探討胃饑餓素對(duì)腎缺血再灌注損傷后的保護(hù)作用及其機(jī)制?,F(xiàn)報(bào)道如下。
動(dòng)物:成年C57 小鼠50 只,雄性,SPF 級(jí),體質(zhì)量18 ~22 g,購(gòu)自成都達(dá)碩實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司,動(dòng)物許可證號(hào)為SYXK(陜)2013 -001。飼料及鼠籠均購(gòu)自西安交通大學(xué)動(dòng)物中心,大鼠飼養(yǎng)溫度為18 ~22 ℃,相對(duì)濕度為50% ~60%,自然光照。
儀器:3131 型三氣培養(yǎng)箱,1300 SERIES A2 型生物安全柜,均購(gòu)自美國(guó)Thermo 公司;MCO-18AIC 型二氧化碳培養(yǎng)箱(日本SANYO 公司);Do X6 型全自動(dòng)化學(xué)發(fā)光圖像分析系統(tǒng)(上海天能公司)。
試藥:SYBR?Premix Ex TaqTMⅡ(TaKaRa 公司);胃饑餓素(Sigma 公司);白細(xì)胞介素(IL)-1β,腫瘤壞死因子-α(TNF-α),IL-6,酶聯(lián)免疫吸附(ELISA)試劑盒,均購(gòu)自Invitrogen 公司;缺口末端標(biāo)記(TUNEL)試劑盒(Roch 公司);HK-2 細(xì)胞(中科院細(xì)胞所);ERK 一抗,p-ERK 一抗,P38 兔一抗,p-P38 兔一抗,均采購(gòu)于CST 公司;GHS-R,β-actin 兔一抗及HRP 標(biāo)記兔二抗,均購(gòu)自Abcam 公司;其他試劑均為分析純。
1.2.1 動(dòng)物分組及模型制備
將已適應(yīng)性喂養(yǎng)7 d 的C57 小鼠隨機(jī)分為假手術(shù)組(A 組),模型組(B 組),胃饑餓素低、中、高劑量組(C1組、C2組、C3組),各10 只。A 組小鼠僅打開(kāi)腹腔,游離雙側(cè)腎,不夾閉腎蒂;B 組、C1組、C2組、C3組小鼠稱(chēng)定質(zhì)量后,腹腔注射戊巴比妥鈉0.1 g/kg 麻醉,仰臥位固定于手術(shù)板上,腹部備皮后酒精消毒,做長(zhǎng)約2 cm 的腹部正中切口,打開(kāi)腹腔,左、右腎脂肪囊內(nèi)游離雙側(cè)腎蒂,無(wú)創(chuàng)微血管夾夾閉,觀(guān)察腎臟顏色,由紅潤(rùn)變?yōu)榛野咨硎緤A閉有效,并開(kāi)始計(jì)時(shí),雙側(cè)腎缺血40 min 后移去血管夾,觀(guān)察腎臟顏色,出現(xiàn)紫黑至恢復(fù)紅潤(rùn)提示再灌注良好,手術(shù)線(xiàn)逐層關(guān)腹;C1組、C2組、C3組于再灌注時(shí)分別腹腔注射胃饑餓素10,20,40 μg/kg。各組小鼠在術(shù)前12 h 禁食不禁飲?;謴?fù)供血24 h 后,各組小鼠心臟采血并摘取雙側(cè)腎。
1.2.2 ELISA 法檢測(cè)小鼠血清IL-1β,IL-6,TNF-α 水平
按ELISA 試劑盒說(shuō)明書(shū)操作,取各組小鼠眼球血,每組4 只,分離血清,檢測(cè)缺血再灌注后24 h 的IL-1β,IL-6,TNF-α 水平,用多功能微孔板檢測(cè)儀(λ =450 nm)測(cè)定吸光度(A)。
1.2.3 腎組織過(guò)碘酸希夫反應(yīng)(PAS)染色
腎組織切片,置95%乙醇中固定1 min,水洗后再將切片浸于1%過(guò)碘酸溶液中氧化5 min 后水洗,把切片放于雪夫試劑中染色5 min 后水洗,再以偏亞硫酸鈉溶液浸泡1 min 后,水洗,自然晾干,滴加1 滴香柏油,置普通光學(xué)顯微鏡下觀(guān)察。
1.2.4 TUNEL 法檢測(cè)腎小管上皮細(xì)胞凋亡
將4%中性甲醛固定的腎組織常規(guī)石蠟包埋,脫蠟至水,不含DNase 蛋白酶K 消化,以鏈霉親和素(streptavidin)工作液覆蓋孵育樣品,DAPI 復(fù)染封片。200倍顯微鏡下觀(guān)察細(xì)胞核呈黃色為陽(yáng)性的凋亡細(xì)胞。
1.2.5 實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(RT -PCR)檢測(cè)腎組織中GHS-R 的表達(dá)
各組小鼠腎組織低溫研碎后用Trizol 提取其總RNA,按TaKaRa PrimeScriptTM RT reagent Kit 試劑盒說(shuō)明書(shū)將其反轉(zhuǎn)成cDNA,根據(jù)SYBRP?remix Ex TaqTMⅡ(Tli RNaseH Plus)試劑盒步驟上機(jī)檢測(cè),結(jié)果通過(guò)計(jì)算2-△△Ct進(jìn)行相對(duì)定量計(jì)算。
1.2.6 蛋白質(zhì)印跡(WB)法檢測(cè)腎組織GHS-R 的表達(dá)
低溫研碎后的腎組織用RIPA 裂解液提取其總蛋白,30 μg 的蛋白樣品在10%的SDS-PAGE 凝膠上分離,并轉(zhuǎn)移到PVDF 膜上。PVDF 膜用5%脫脂牛奶封閉2 h。PVDF 膜在4 ℃溫度下與GHS-R 和β-actin 一抗孵育過(guò)夜,再用1 ∶2 000 辣根過(guò)氧化物酶結(jié)合的二級(jí)抗體室溫下孵育1 h。最后,蛋白條帶以化學(xué)發(fā)光法顯色獲得。
采用Graphpad Prism 5 統(tǒng)計(jì)軟件分析。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)經(jīng)單因素方差分析(One -way ANOVA)表示,組間比較采用Tukey′s Multiple Comparisons Test。P <0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
結(jié)果見(jiàn)表1??梢?jiàn),腎缺血再灌注后,B 組中IL-1β,IL-6,TNF -α 表達(dá)水平均顯著高于A(yíng) 組(P <0.05);但胃饑餓素處理組(C1組、C2組、C3組)以上3 種指標(biāo)水平均低于模型組,C2組和C3組顯著降低(P <0.05),降低程度與胃饑餓素質(zhì)量濃度呈正相關(guān)。
表1 各組小鼠血清IL -1 ,IL -6,TNF - 表達(dá)水平比較(± s,pg /mL,n =10)
表1 各組小鼠血清IL -1 ,IL -6,TNF - 表達(dá)水平比較(± s,pg /mL,n =10)
注:與A 組比較,#P <0.05;與B 組比較, P <0.05。
組別A 組B 組C1 組C2 組C3 組IL -1 16.54 ±1.68 23.30 ±1.14#21.90 ±0.80 20.28 ±1.30 19.21 ±0.75 IL -6 286.6 ±13.22 523.5 ±45.07#491.4 ±22.23 413.2 ±22.80 332.6 ±42.43 TNF -349.2 ±3.694 537.3 ±28.17#516.9 ±19.03 427.3 ±32.58 378.2 ±15.97
圖1 腎組織染色結(jié)果( ×200)
結(jié)果見(jiàn)圖1。可見(jiàn),A 組腎組織結(jié)構(gòu)清晰,腎小管上皮細(xì)胞完整、排列整齊、胞漿豐富;B 組腎小管排列紊亂、胞漿萎縮、細(xì)胞間質(zhì)增寬,腎小管上皮細(xì)胞腫脹,出現(xiàn)空泡變性,紋狀緣消失,腎間質(zhì)炎性細(xì)胞浸潤(rùn),出現(xiàn)明顯的腎損傷。與B 組比較,C1組、C2組和C3組的腎損傷依次明顯減弱,炎性反應(yīng)減弱,其中C2組基本接近A 組水平。
結(jié)果見(jiàn)圖1??梢?jiàn),A 組基本無(wú)細(xì)胞凋亡出現(xiàn),B 組中腎細(xì)胞出現(xiàn)明顯凋亡現(xiàn)象,C1組、C2組和C3組腎細(xì)胞的凋亡程度下降,且有隨著胃饑餓素濃度升高而降低的趨勢(shì)。
結(jié)果見(jiàn)圖2。可見(jiàn),腎缺血再灌注后,B 組腎組織中GHS-R 轉(zhuǎn)錄水平表達(dá)量顯著低于A(yíng) 組(P <0.01),C1組的GHS-R 轉(zhuǎn)錄水平表達(dá)量與B 組相比無(wú)顯著差異,C2組和C3組有不同程度的升高,且具有顯著性(P <0.01),基本達(dá)到A 組表達(dá)量。
結(jié)果見(jiàn)圖3??梢?jiàn),與A 組比較,B 組中GHS-R 蛋白顯著降低(P <0.01);C1組、C2組、C3組的GHS-R蛋白水平表達(dá)較B 組均有不同程度升高,但C1組無(wú)顯著差異,C2組和C3組均顯著升高(P <0.05),與轉(zhuǎn)錄水平的趨勢(shì)具有一致性。
圖2 腎組織中GHS -R mRNA 水平的表達(dá)
圖3 腎組織中GHS -R 蛋白水平的表達(dá)
腎臟的血流量非常豐富,具有血液代謝廢物過(guò)濾及生成尿液排出體外的功能,人雙側(cè)腎臟的血液灌注可達(dá)到1 200 mL /min,是人體重要的器官之一。腎臟對(duì)缺血缺氧十分敏感,缺血后,腎細(xì)胞就開(kāi)始積累代謝廢物,出現(xiàn)細(xì)胞凋亡。血液重新灌注后,腎組織的功能不能得到立刻恢復(fù),反而會(huì)進(jìn)一步加劇損傷[7]。缺血再灌注模型損傷的病理反應(yīng)與細(xì)胞凋亡和炎性反應(yīng)關(guān)系密切,主要是在缺血再灌注模型過(guò)程中出現(xiàn)缺氧,導(dǎo)致氧自由基大量聚集,致使細(xì)胞DNA 斷裂,從而誘發(fā)細(xì)胞凋亡[8]。同時(shí),在缺血再灌注損傷過(guò)程中會(huì)導(dǎo)致大量炎性因子的釋放,引起一系列炎性級(jí)聯(lián)反應(yīng),結(jié)合相關(guān)受體,也會(huì)激活相關(guān)凋亡基因,導(dǎo)致細(xì)胞凋亡[9-11]。
胃饑餓素在腎臟中可激活抗氧化應(yīng)激機(jī)制,保護(hù)免受血管緊張素Ⅱ(Ang Ⅱ)引起的腎臟損害[12]。RAJAN等[13]發(fā)現(xiàn),胃饑餓素可能通過(guò)迷走神經(jīng)對(duì)動(dòng)物腎缺血再灌注損傷有防護(hù)作用。TAKEDA 等[14]研究發(fā)現(xiàn),胃饑餓素可能通過(guò)胰島素樣生長(zhǎng)因子-1 介導(dǎo)改善內(nèi)皮功能來(lái)保護(hù)腎臟免受缺血再灌注損傷。這也提示胃饑餓素可能通過(guò)多種途徑對(duì)腎缺血再灌注損傷起防護(hù)作用。
本研究結(jié)果顯示,腎缺血再灌注模型損傷后,B 組炎性因子IL -1β,IL-6,TNF-α 較A 組顯著升高,且腎組織的PAS 染色結(jié)果顯示,炎性細(xì)胞浸潤(rùn);腎組織切片結(jié)果顯示,細(xì)胞有凋亡現(xiàn)象,同時(shí)GHS-R 的基因和蛋白水平表達(dá)均顯著降低。再灌注時(shí)不同質(zhì)量濃度胃饑餓素預(yù)處理后,發(fā)現(xiàn)各組中IL-1β,IL -6,TNF-α 表達(dá)水平下降,腎組織的損傷減弱,且炎性癥狀消除,同時(shí)凋亡細(xì)胞數(shù)量減少,GHS-R 的表達(dá)量升高,且這些表現(xiàn)與胃饑餓素的質(zhì)量濃度呈正相關(guān)。結(jié)果顯示,胃饑餓素的預(yù)處理能有效減少腎缺血再灌注模型損傷后的炎性反應(yīng)及細(xì)胞凋亡情況,減輕了腎損傷的病理性改變,且促進(jìn)GHS-R 的表達(dá)。提示胃饑餓素能減少腎缺血再灌注模型損傷后的炎性反應(yīng),而炎性反應(yīng)的減弱有助于腎缺血再灌注模型損傷后功能的恢復(fù),同時(shí)炎性因子的減少可能抑制凋亡基因的激活,進(jìn)一步減少細(xì)胞的凋亡,但有待于進(jìn)一步研究。腎缺血再灌注模型損傷后胃饑餓素受體GHS-R 的表達(dá)顯著降低,胃饑餓素處理后GHS-R 的表達(dá)升高,且高劑量胃饑餓素處理后能達(dá)到缺血再灌注模型損傷前水平,提示腎缺血再灌注模型損傷后生長(zhǎng)素的減少可能是其損失加重的因素,胃饑餓素能通過(guò)增加GHS-R 的表達(dá),兩者結(jié)合后能刺激GH 的釋放,起到對(duì)腎缺血再灌注損傷模型的保護(hù)作用。