宮能靜,姜玉玉,李小雨,高嬌嬌,程向陽
(蚌埠醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院麻醉科,蚌埠 233030;*通訊作者,E-mail:yxhyhr@163.com)
急性心肌梗死是世界范圍內常見的心血管疾病[1]。梗死后血流量的恢復加重了組織和器官的損傷,稱為缺血/再灌注(ischemia/reperfusion,I/R)損傷[2]。體內和體外的研究顯示,I/R損傷的潛在機制包括氧化應激、線粒體功能受損,自由基產生過多,最終導致細胞凋亡[3-5]。到目前為止,尚無有效的預防心肌I/R損傷的治療方法。因此,充分理解I/R損傷的復雜分子機制,尋找有效的克服I/R損傷后細胞凋亡的方法仍需要很大的努力。
miRNAs是一類高度保守的非編碼RNA,通過在轉錄后水平抑制基因的表達,參與了幾乎所有細胞過程[6]。越來越多的證據表明,miRNA表達失調與多種人類心血管疾病有關,包括心肌I/R損傷[7]。例如,miR-873通過Egln3而抑制H/R心肌細胞凋亡[8];過表達miR-124-3p可下調RIPK1表達,減輕心肌細胞H/R損傷,從而發(fā)揮心肌保護作用[9]。這些miRNA可能成為缺血性心臟病治療的潛在靶點。有研究表明,在肺動脈高壓大鼠的左右心室組織中,miR-702-3p表達升高[10],然而miR-702-3p在心肌梗死中的作用卻未見報道。
乙醛脫氫酶2(aldehyde dehydrogenase 2,ALDH2)是線粒體中重要的ALDH家族成員,其對心臟的保護作用已在各種模型中得到證實,包括心肌急性缺血/再灌注損傷[11,12]。通過靶基因預測網站Targetscan,預測ALDH2可能是miR-702-3p的靶基因。前期的研究表明,心肌細胞轉染miR-702-3p inhibitor后ALDH2蛋白的表達升高,然而,miR-702-3p是否通過ALDH2調控心肌梗死后細胞凋亡仍不清楚。在本研究通過構建缺氧/復氧(H/R)心肌細胞體外模型研究miR-702-3p在心肌I/R損傷過程中的抗凋亡作用,并探討其機制。
1-3日齡雄性SD大鼠乳鼠,SPF級,購于蚌埠醫(yī)學院實驗動物中心,合格證號:20180004002485。Ⅱ型膠原酶購自北京solarbio公司;Lipofectamin 2000轉染試劑、Trizol試劑購自美國Invitrogen公司;聚偏二氟乙烯膜(PVDF)購自美國Milipore公司;miR-702-3p抑制物(inhibitor),miR-702-3p引物購自上海吉瑪公司;RNA反轉錄試劑盒及熒光定量試劑盒均購自廣州GeneCopoeia公司;雙熒光素酶報告基因質粒載體購自美國Promega公司;Annexin Ⅴ-FITC細胞凋亡檢測試劑盒購自碧云天生物公司;兔多克隆抗ALDH2抗體購自美國Abcam公司;兔多克隆抗Bcl-2、Bax、cleaved Caspase-3、GAPDH抗體購自美國Affinity公司;辣根過氧化物酶標記的羊抗兔二抗購自Biosharp公司。
將1-3日齡乳鼠置于75%酒精浸泡消毒2 min,無菌取心尖組織,以預冷PBS清洗3次,剪成約1 mm3大小的碎塊,經含0.08%胰蛋白酶和1%Ⅱ型膠原酶的混合酶37 ℃消化5 min,輕輕吹打后收集細胞懸液;同法反復消化4-5次,取各次的細胞懸液與等體積含20%胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)基混勻終止消化,以900 r/min離心5 min,棄掉上清,將沉淀與含10%胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)基混合,用200目濾網過濾后將懸液轉移至培養(yǎng)瓶,于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)90 min進行差速貼壁后,吸取細胞懸液,以密度為5×105接種于6孔板,同時加入0.1 mmol/L Brdu(抑制心肌成纖維細胞生長),置于5%CO2、37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每隔24 h換液,待細胞密度達到70%時,進行后續(xù)實驗。
待細胞密度為70%左右時,建立缺氧/復氧模型。吸棄6孔板中的培養(yǎng)基,PBS沖洗2次,換無糖DMEM培養(yǎng)基,置入含1%O2和5%CO2的缺氧培養(yǎng)箱,在37 ℃條件下缺氧3 h,然后將6孔板取出,置換DMEM/F12完全培養(yǎng)液,并于5% CO2,37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4 h進行復氧處理[13]。
取對數生長期心肌細胞,將細胞隨機分為正常對照組(CON)、缺氧復氧組(H/R)、H/R+miR-702-3p inhibitor NC轉染組(H/R+inhibitor NC)、H/R+miR-702-3p inhibitor轉染組(H/R+inhibitor)。參照Lipofectamine2000轉染試劑說明書向心肌細胞分別轉染miR-702-3pinhibitor NC及miR-702-3pinhibitor,轉染6 h后將培養(yǎng)基更換為含有10%胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)24 h進行H/R處理。H/R處理完成后即可進行后續(xù)實驗。
將原代培養(yǎng)心肌細胞用胰蛋白酶消化并重懸,將細胞以5×103個細胞/孔接種于96孔板,放入5% CO2,37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過夜。各組進行轉染及H/R處理后,每孔加入10 μl CCK-8溶液,37 ℃避光孵育2 h,酶標儀檢測450 nm處吸光度(OD)值。
轉染及建立缺氧/復氧損傷模型后,收集各組心肌細胞,加入195 μl Annexin Ⅴ-FITC結合液重懸細胞,調整細胞密度(1×106個/ml),吸取1 ml細胞懸液加入5 μl Annexin Ⅴ-FITC,混勻后加入10 μl碘化丙啶染色液,輕輕混勻,20-25 ℃避光孵育20 min,流式細胞儀檢測凋亡率。
轉染及建立缺氧/復氧損傷模型后,收集各組心肌細胞,利用Trizol提取細胞總RNA,定量后吸取1 μg總RNA產物,按照廣州GeneCopoeia公司miRNA First-Strand cDNA Synthesis Kit進行逆轉錄合成cDNA。以cDNA為模板,按照廣州GeneCopoeia公司miRNA qPCR kit說明書進行qRT-PCR反應,反應體系共20 μl,反應條件如下:95 ℃預熱10 min(循環(huán)1次);95 ℃變性10 s,59 ℃退火20 s,72 ℃延伸10 s(循環(huán)40次)。以U6為內參,采用2-ΔΔCt法計算miR-702-3p的相對表達水平。
引物序列如下:miR-702-3p Forward:GCCGAGTGCCCACCCTTAC,Reverse:CTCAACTGGTGTCGTGGA;U6 Forward:GCTTCGGCAGCACATATACTAAAAT,Reverse:CGCTTCACGAATTTGCGTGTCAT。
轉染及H/R造模后,收集各組心肌細胞,加入RIPA裂解液提取細胞總蛋白,BCA法測定蛋白濃度。取30 μg總蛋白SDS-PAGE分離、轉膜、5%脫脂牛奶封閉,孵育一抗,包括兔源ALDH2(1 ∶1 000)、兔源Bcl-2(1 ∶1 000)、兔源Bax(1 ∶1 000)和兔源GAPDH(1 ∶3 000),4 ℃孵育過夜,加入辣根過氧化物酶標記的羊抗兔二抗(1 ∶10 000)孵育1 h。ECL顯影,放入Western blot成像系統曝光,顯影。Image J軟件用來分析蛋白的相對表達水平,GAPDH作為內參。
利用Targetscan分析miR-702-3p與ALDH2的3′UTR可能的結合位點,將含有miR-702-3p結合位點野生型(wild type,WT)和突變型(mutant type,MUT)的ALDH2 3′UTR基因序列插入pGL3熒光素酶報告基因載體,分別構建野生型(WT-ALDH2)與突變型(MUT-ALDH2)的ALDH2 3′UTR熒光素酶報告質粒載體,將WT-ALDH2、MUT-ALDH2分別與miR-702-3p mimics、miR-NC共轉染48 h收集細胞,采用雙熒光素酶報告基因檢測試劑盒檢測熒光素酶活性。
采用SPSS 18.0統計軟件進行數據處理。數據以均數±標準差表示。兩組間比較采用t檢驗,兩組以上比較采用單因素方差分析。以P<0.05為差異有統計學意義。
采用qRT-PCR檢測miR-702-3p在H/R處理后的表達情況。與對照組相比,H/R組miR-702-3p的表達水平顯著升高(P<0.01,見圖1)。
與對照組相比,* * P <0.01圖1 H/R處理后心肌細胞中miR-702-3p的相對表達Figure 1 Relative expression of miR-702-3p in cardiomyocytes after H/R treatment
為了確定miR-702-3p在細胞活力和凋亡中的作用,通過轉染miR-702-3p inhibitor,使miR-702-3p表達下調。結果顯示,miR-702-3p inhibitor轉染顯著降低了心肌細胞中miR-702-3p的表達水平(P<0.01,見圖2A)。CCK-8實驗檢測miR-702-3p下調對細胞活力的影響,結果表明,miR-702-3p下調可以顯著減輕H/R處理對細胞活力的影響(P<0.05,見圖2B),而轉染miR-702-3p NC對H/R處理心肌細胞的生存能力并沒有影響。此外,利用流式細胞術檢測miR-702-3p下調后心肌細胞的凋亡率,結果表明,缺氧顯著升高了心肌細胞的凋亡,而轉染miR-702-3p inhibitor后,心肌細胞凋亡率顯著下降;轉染miR-702-3p NC對細胞凋亡并沒有影響(見圖3)。
圖2 miR-702-3p對心肌細胞活力、細胞凋亡的影響Figure 2 The effect of miR-702-3p on cardiomyocyte viability and apoptosis
圖3 miR-702-3p inhibitor對H/R處理心肌細胞凋亡的影響Figure 3 Effect of miR-702-3p inhibitor on apoptosis of cardiomyocytes after H/R treatment
Western blot結果顯示,心肌細胞在H/R處理后,Bax和cleaved Caspase-3表達升高,Bcl-2表達下降,ALDH2表達降低。在H/R刺激的心肌細胞中,miR-702-3p inhibitor轉染顯著逆轉了H/R刺激引起的變化(見圖4)。
圖4 Western blot檢測心肌細胞中凋亡相關蛋白和ALDH2蛋白的表達Figure 4 Expression of apoptosis-related proteins and ALDH2 in cardiomyocytes after different treatment by Western blot
通過TargetScan預測ALDH2為miR-702-3p的靶基因(見圖5A)。雙熒光素酶報告基因實驗結果顯示,共轉染miR-702-3p mimics、WT-ALDH2組的熒光素酶活性明顯降低(P<0.01);而共轉染miR-702-3p、MUT-ALDH2組的熒光素酶活性無明顯變化(P>0.05,見圖5B)。
圖5 ALDH2是miR-702-3p的靶基因Figure 5 ALDH2 is a target gene of miR-702-3p
心肌缺血后血流量的恢復加重了組織和器官的損傷,稱為心肌缺血再灌注(I/R)損傷[2]。凋亡被認為是心肌I/R損傷的主要病理生理機制之一,并被認為是導致心肌I/R損傷后細胞死亡的主要因素[14]。調節(jié)細胞凋亡被認為是一種很有前途的心血管疾病治療策略。心肌細胞為終末分化細胞,其凋亡后導致的心肌損傷是不可逆的。本研究證實了在H/R條件下,細胞凋亡明顯增加。
miRNA已經成為多種心血管疾病過程中的重要介質,可能成為心血管疾病的治療靶點[15]。許多miRNA,如miR-26a-5p[16]和miR-30b-5p[17]都與心肌I/R損傷有關。據報道,miR-702-3p在丙泊酚麻醉的腦組織以及在肺動脈高壓的大鼠心肌組織中表達升高[10,18]。因此,我們推測miR-702-3p可能在心肌I/R損傷中發(fā)揮作用。本實驗重點研究了H/R條件下miR-702-3p在心肌細胞中的作用。將心肌細胞進行H/R處理模擬心肌I/R損傷,結果顯示,在H/R條件下miR-702-3p表達顯著升高。下調miR-702-3p可以減輕缺氧誘導的細胞損傷,細胞活力增加,凋亡率降低,提示下調miR-702-3p在H/R誘導的心肌細胞損傷中具有保護作用。
識別靶基因對揭示miR-702-3p功能的分子機制具有重要意義。本研究表明,下調miR-702-3p后ALDH2蛋白表達相應升高。ALDH2是一種抗凋亡酶[11],據報道,ALDH2廣泛表達于心臟,對心肌I/R損傷具有心臟保護作用[11,19]。在本研究中,H/R處理的心肌細胞ALDH2表達下降,與先前的結果一致。降低miR-702-3p表達時ALDH2表達升高,并且可以顯著減弱H/R誘導的心肌細胞凋亡,提高細胞活力。此外,雙熒光素酶報告基因實驗結果顯示,ALDH2是miR-702-3p的靶基因。這更證實了我們的想法。然而,本實驗的缺陷在于,需要進一步進行回復實驗,來驗證miR-702-3p降表達后同時降表達ALDH2,能否逆轉miR-702-3p的心肌保護作用。我們將在后續(xù)實驗中進行驗證。
總之,本研究表明,ALDH2是miR-702-3p的靶基因,降低miR-702-3p后ALDH2表達升高,心肌細胞凋亡率降低。因此,調控miR-702-3p表達可以在一定程度上為缺血再灌注損傷提供治療策略。