張?zhí)N哲 苑 寧 李靳影 張夢澤 馬曉燕 張 偉,,3*
(1 河北農(nóng)業(yè)大學食品科技學院 河北保定071001 2 河北農(nóng)業(yè)大學理工學院 河北滄州061100 3 河北農(nóng)業(yè)大學生命科學學院 河北保定071001)
沙門氏菌是腸桿菌科中重要的食源性致病菌之一,能夠引起多種沙門氏菌病,例如腹瀉、嘔吐、腹部絞痛、肺炎甚至菌血癥等[1-2],在食物中不允許檢出。食源性沙門氏菌病已成為全球公眾健康的嚴重威脅。在美國,每年有120 萬人感染沙門氏菌,2016年沙門氏菌感染的發(fā)病率為15.4/10 萬[3]。在歐盟地區(qū),每年有超過16 萬人感染沙門氏菌[4]。沙門氏菌的傳統(tǒng)檢測方法大約需要5d 才能獲得陽性結(jié)果,該方法耗時,耗力,靈敏度低,無法滿足快速檢測的需求[5]。建立一種簡便、快捷的方法對于食品中沙門氏菌的檢測尤為重要。
本研究建立了1種新型的核酸體外等溫擴增方法-可視化跨越式滾環(huán)等溫擴增(Saltatory rolling circle amplification,SRCA)方法[6]。該方法僅需要1 對引物,在Bst DNA 聚合酶的作用下即可進行核酸體外等溫擴增??赏ㄟ^肉眼直接觀察熒光現(xiàn)象,實現(xiàn)結(jié)果判別可視化。與環(huán)介導等溫擴增技術(shù)(Loop-mediated isothermal amplification,LAMP)[7]相比,SRCA 引物數(shù)量減少,設(shè)計更加簡便,反應(yīng)體系簡單,檢測成本降低了約50%,并且可通過對反應(yīng)產(chǎn)物測序來證實擴增結(jié)果的準確性,而LAMP 則不能對擴增產(chǎn)物測序。與滾環(huán)擴增技術(shù)(Rolling circle amplification,RCA)[8]相比,SRCA 無需鎖式探針和連接酶環(huán)化,操作步驟簡單,反應(yīng)過程縮短約3 h,檢測成本亦大大降低。
SRCA 方法擴增原理[9]如圖1所示。首先,正向引物(Forward primer,F(xiàn)WP)與靶單鏈DNA(Single strand DNA,ssDNA)中的互補序列結(jié)合,進行鏈的延伸(步驟5)。當延伸至5' 末端即非閉合環(huán)狀交叉位點時,在Bst DNA 聚合酶的作用下通過添加堿基跨過這個交叉位點,并繼續(xù)延伸(步驟6)。Bst DNA 聚合酶有不依賴模板而獨立進行鏈的延伸的能力[10]。當延伸至之前的正向引物結(jié)合位點處,先前的DNA 鏈被替換下來,并繼續(xù)延伸(步驟7)。隨著鏈的延伸,反向引物(Reverse primer,RVP)結(jié)合位點暴露出來。RVP 隨后結(jié)合到新生成的ssDNA 的相應(yīng)結(jié)合位點(步驟8)。隨著鏈的延伸,之前的擴增產(chǎn)物被不斷置換下來(步驟9)。同時,F(xiàn)WP 與相應(yīng)的互補區(qū)域結(jié)合并進行鏈的延伸,由此產(chǎn)生許多串聯(lián)重復的線性雙鏈DNA(Double-stranded DNA,dsDNA)(步驟10,11)。
圖1 SRCA 反應(yīng)原理圖Fig.1 The schematic diagram of SRCA assay
本研究以stn 基因為靶基因,利用SRCA 擴增原理建立可視化跨越式滾環(huán)等溫擴增技術(shù)檢測沙門氏菌的方法,并評估此方法的檢出率、敏感性、特異性和符合率,為食品中致病菌的快速檢測提供了新的思路。
1.1.1 試驗菌株 本研究所用菌株如表1所示。
1.1.2 儀器與設(shè)備 DL-CJ.IN 超凈無菌工作臺,哈爾濱市東連公司;PCR 儀,德國Biometra 公司(Biometia Co.,Ltd);超凈無菌工作臺,蘇州雙天公司;DXY- 33A 型電泳儀,北京市六一儀器廠;DH-6000-AB 型電熱恒溫培養(yǎng)箱,天津市泰斯特儀器設(shè)備有限公司;UVIPro 凝膠成像系統(tǒng),英國UVItec 華粵企業(yè)有限公司;NanoDrop 2000 分光光度計,北京研興廣發(fā)公司;勝啟恒溫水浴鍋,南通海之星有限公司。
1.1.3 試驗試劑 本研究所用培養(yǎng)基均來自北京路橋技術(shù)有限公司;Taq 酶、dNTPs、MgSO4、100 bp DNA Marker、Cla I 限制性核酸內(nèi)切酶、Bst DNA聚合酶(8 U)、SYBR Green I 熒光染料,大連寶生物有限公司。膠回收試劑盒、DNA 提取試劑盒,北京華大生物有限公司。SRCA 引物合成于北京華大基因。
1.1.4 引物設(shè)計 本研究選取stn 基因為沙門氏菌的靶基因,根據(jù)GenBank 中公布的stn 基因序列進行BLAST 同源性分析,使用DNAMAMN 設(shè)計引物,并由北京華大基因合成,具體引物序列如表2所示。
1.2.1 細菌的培養(yǎng)與DNA 提取 將保存的細菌接種到營養(yǎng)瓊脂斜面上活化,于37 ℃下過夜培養(yǎng)。挑取活化好的菌落接種于新鮮的營養(yǎng)肉湯中,37 ℃條件下過夜培養(yǎng),備用。
本研究采用試劑盒法提取表1 中所有菌株的基因組DNA。
1.2.2 SRCA 和PCR 反應(yīng)體系 經(jīng)過優(yōu)化,建立了最佳的SRCA 擴增體系:模板DNA 1.0 μL(陰性對照不添加模板),上下游引物(10 μmol/L)各1 μL,4 μL dNTPs(2.5 mmol/L each),10×Bst DNA reaction buffer 2 μL,1 μL MgSO4(25 mmol/L),1 μL Bst DNA 聚合酶(8 000 U/mL),最終總反應(yīng)體系為20 μL。于62 ℃反應(yīng)90 min,并于80 ℃保持5 min 終止反應(yīng)。
本研究采用PCR 方法評估SRCA 的靈敏度和檢出限。其反應(yīng)體系(25 μL)如下:上下游引物各1 μL(與SRCA 上下游引物相同),dNTPs 4 μL,Buffer 1.5 μL,MgSO40.5 μL,1 μL Taq 聚合酶(5 U/μL),模板DNA 1 μL(陰性對照不添加模板),去離子水補足體系至25 μL。
1.2.3 SRCA 產(chǎn)物可視化分析 向SRCA 擴增產(chǎn)物中加入1 μL 熒光染料SYBR Green I,肉眼觀察顏色變化。陽性結(jié)果為綠色,陰性結(jié)果顯示為橙色。
1.2.4 SRCA 擴增產(chǎn)物測序分析和酶切分析 選取清晰的SRCA 擴增產(chǎn)物的條帶(從下往上共切取3 條)回收,純化后測序。
采用限制性內(nèi)切酶Cla I 對產(chǎn)物酶切驗證,于60 ℃條件下反應(yīng)3 h,通過凝膠電泳法觀察酶切產(chǎn)物。
1.2.5 SRCA 引物特異性分析 選取13 株沙門氏菌標準菌株和14 株非沙門氏菌菌株進行特異性分析,并通過熒光可視法驗證產(chǎn)物。
1.2.6 SRCA 靈敏度分析 為確定SRCA 檢測沙門氏菌DNA 的靈敏度,使用NanoDrop 2000 分光光度計測定提取的基因組DNA 濃度,并用無菌去離子水10 倍梯度稀釋。SRCA 產(chǎn)物通過熒光可視法分析,確定SRCA 反應(yīng)的靈敏度。
以PCR 檢測方法為對照,評估SRCA 方法的靈敏度。依照1.2.2 節(jié)中的PCR 反應(yīng)體系進行反應(yīng),擴增產(chǎn)物通過瓊脂糖凝膠電泳分析,確定PCR反應(yīng)的靈敏度,進而評估SRCA 法的靈敏度。
1.2.7 人工污染雞肉中沙門氏菌SRCA 檢出限分析 取25 g 通過傳統(tǒng)培養(yǎng)法確定不含沙門氏菌的雞肉樣品加入到225 mL 無菌生理鹽水中(該操作在無菌環(huán)境下進行)均質(zhì),取1 mL 過夜培養(yǎng)的沙門氏菌菌液加入上述9 mL 均質(zhì)液中制成菌懸液,采用滅菌的生理鹽水10 倍梯度稀釋。通過平板計數(shù)法確定活菌數(shù)為3.8×100~3.8×108CFU/g。取每個稀釋度菌懸液1 mL,采用試劑盒法提取基因組DNA,保存于-20 ℃?zhèn)溆谩RCA 產(chǎn)物通過熒光可視法分析,確定SRCA 方法的檢出限。
以PCR 檢測方法為對照,評估SRCA 方法的檢出限。將上述提取的基因組DNA 進行PCR 反應(yīng),擴增產(chǎn)物通過凝膠電泳法進行分析,確定PCR方法的檢出限,進而評估SRCA 法的檢出限。
1.2.8 SRCA 的實際應(yīng)用與評估 為了驗證SRCA 方法對實際樣品中沙門氏菌的檢出情況,在保定某農(nóng)貿(mào)市場隨機購買30種實際樣品,包括18種熟食、3種生肉、5種蛋和蛋制品、4種奶和奶制品,并通過SRCA 方法和GB 4789.4-2016[11]2種方法檢測30種樣品中沙門氏菌的污染情況。
采用敏感性(Sensitivity)、特異性(Specificity)及符合率(Accuracy)3 個指標評價SRCA 方法。計算公式如下:
SRCA 反應(yīng)結(jié)束后,向SRCA 反應(yīng)管中加入1 μL 的熒光染料SYBR Green I,由圖2可知,陽性反應(yīng)管(2)的顏色由橙色變?yōu)榫G色,而陰性對照管(1)仍為橙色。
圖2 跨越式滾環(huán)等溫擴增SRCA可視化結(jié)果Fig.2 The visualization results of the SRCA products
由圖3b可知,SRCA 擴增產(chǎn)物經(jīng)過Cla I 限制性內(nèi)切酶酶切消化后,其酶切片段為200 bp 左右,與理論計算值一致。為了進一步驗證SRCA產(chǎn)物,對圖3a 中的擴增產(chǎn)物電泳條帶(D1,D2,D3)進行測序分析。測序結(jié)果(圖3c)顯示靶片段與用于引物設(shè)計的stn 基因的同源性達到100%,并且產(chǎn)物是含有多個串聯(lián)重復單元的靶序列。表明,SRCA 擴增反應(yīng)符合SRCA 原理,擴增結(jié)果正確。
對27 株菌株進行特異性分析,檢測結(jié)果如圖4所示。其中,13 株沙門氏菌發(fā)生了SRCA 反應(yīng),而其它14 株非沙門氏菌均未發(fā)生SRCA 反應(yīng),說明SRCA 引物具有良好的特異性。
圖4 SRCA 反應(yīng)的特異性檢測結(jié)果Fig.4 The specificity test by SRCA
經(jīng)NanoDrop 2000 分光光度計測定,提取的沙門氏菌的DNA 質(zhì)量濃度為5.6×107fg/μL。對上述模板進行10 倍梯度稀釋,并進行SRCA 反應(yīng)。反應(yīng)結(jié)束后,向反應(yīng)管中分別加入1 μL SYBR Green I 熒光染料。當模板質(zhì)量濃度為5.6×107~5.6×100fg/μL 時,反應(yīng)管中的顏色呈綠色,當模板質(zhì)量濃度為5.6×10-1fg/μL 時,反應(yīng)管中的顏色仍為橙色。因此,SRCA 熒光可視法檢測沙門氏菌DNA 的靈敏度為5.6×100fg/μL。
采用上述稀釋模板進行PCR 反應(yīng),試驗結(jié)果如圖5b所示,當DNA 質(zhì)量濃度為5.6×107~5.6×102fg/μL 時,有目的條帶。當DNA 質(zhì)量濃度為5.6×101~5.6×10-1fg/μL 時沒有目的條帶,因此,PCR 法的靈敏度為5.6×102fg/μL。
由此可知,SRCA 法檢測的靈敏度為PCR 法的100 倍。
由圖6a可知,當人工污染雞肉樣品的活菌數(shù)為3.8×107~3.8×101CFU/g 時,反應(yīng)管中的顏色呈綠色。當人工污染雞肉樣品的活菌數(shù)為3.8×100CFU/g 時,反應(yīng)管中的顏色依然為橙色。因此,人工污染雞肉中沙門氏菌的SRCA 檢出限為3.8×101CFU/g。
對人工污染雞肉樣品進行PCR 檢測,結(jié)果由圖6b所示,當人工污染雞肉樣品的活菌數(shù)為3.8×107~3.8×103CFU/g 時,有明顯的目的條帶生成。然而,當活菌數(shù)再降低時,沒有出現(xiàn)目的條帶。因此,人工污染雞肉樣品的PCR 法檢出限為3.8×103CFU/g。
由此可知,SRCA 方法的檢出限為PCR 方法檢出限的100 倍。
圖5 靈敏度分析Fig.5 The analysis of sensitivity
圖6 檢出限分析Fig.6 The analysis of detection limit
利用GB 4789.4-2016[11]和SRCA 2種方法檢測30種食品。結(jié)果如表3所示。
表3 SRCA 方法評價Table 3 Evaluation of SRCA method
1)本研究建立了SRCA 快速檢測食品中沙門氏菌的方法,并通過肉眼觀察熒光顏色判斷結(jié)果,方便簡單。
2)采用SRCA 對13 株沙門氏菌和14 株非沙門氏菌進行特異性檢測,其中13 株沙門氏菌顯示為陽性,其它均顯示陰性結(jié)果,說明本研究設(shè)計的引物具有較好的特異性。
3)SRCA 技術(shù)檢測沙門氏菌DNA 的靈敏度為5.6×100fg/μL,人工污染雞肉樣品中的沙門氏菌檢出限為3.8×101CFU/g,均是傳統(tǒng)PCR 方法的100 倍,因此SRCA 技術(shù)具有更高的靈敏度和更低的檢出限。
4)使用GB 4789.4-2016 法[11]和SRCA 法對30種實際樣品進行沙門氏菌的檢測,并以GB 4789.4-2016 法為標準對SRCA 法進行評估,其敏感性為100%,特異性為96.30%,符合率為96.67%。
SRCA 方法具有操作簡便,體系簡單,特異性強,靈敏度高,檢出限低的優(yōu)點,因此,適合基層單位推廣應(yīng)用。