賀娜　耿樹(shù)香　寧德魯　肖良俊

摘要 以云南優(yōu)良品種“三臺(tái)”核桃4個(gè)不同成熟期種仁為材料，從分子水平上探索云南核桃（Juglans sigillata）種子不同成熟期種仁合成相關(guān)基因的表達(dá)模式。共有53 868條unigenes得到了注釋，其中33 407條unigenes注釋在Nr數(shù)據(jù)庫(kù)中;31 725條unigenes注釋在KEGG數(shù)據(jù)庫(kù)中;Swissprot數(shù)據(jù)庫(kù)中注釋到19 842條unigenes;COG數(shù)據(jù)庫(kù)中注釋到16 655條unigenes。四大數(shù)據(jù)庫(kù)共注釋到33 753條unigenes，占總unigenes的62.66%。CK-vs-HT1、CK-vs-HT2、CK-vs-HT3、HT1-vs-HT2、HT1-vs-HT3、HT2-vs-HT3分別有 2 417、2 703、4 166、1 256、5 347、3 283條上調(diào)表達(dá)的差異基因和9 515、12 455、9 498、1 751、3 132、1 365條下調(diào)表達(dá)的差異基因。不同時(shí)期基因差異表達(dá)富集度最高的為脂肪酸生物合成代謝通路。核桃果實(shí)在成熟中后期，油脂及蛋白大量積累，相關(guān)基因表達(dá)量增加。

關(guān)鍵詞 “三臺(tái)”核桃 ;成熟度;轉(zhuǎn)錄組;基因

中圖分類號(hào) S 664.1 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼 A 文章編號(hào) 0517-6611（2020）23-0165-05

doi：10.3969/j.issn.0517-6611.2020.23.041

Transcriptome Analysis of Santai Walnut Fruits at Different Ripening Stages

HE Na， GENG Shu-xiang， NING De-lu et al

（Yunnan Academy of Forestry and Grassland Sciences，Kunming， Yunnan 650201）

Abstract The expression patterns of genes related to seed synthesis at different mature stages of Juglans sigillata were explored at the molecular level by using 4 different mature kernels of Santai walnut as materials. A total of 53 868 unigenes were annotated， of which 33 407 were in the NR database， 31 725 in the KEGG database， 19 842 in the Swissprot database， and 16 655 in the COG database. A total of 33 753 unigenes were annotated in the four databases， accounting for 62.66% of the total. There were 2 417， 2 703， 4 166， 1 256， 5 347， 3 283 up regulated genes and 9 515， 1 2455， 9 498， 1 751， 3 132， 1 365 down regulated genes in CK-vs-HT1， CK-vs-HT2， CK-vs-HT3， HT1-vs-HT2， HT1-vs-HT3 and HT2-vs-HT3， respectively. Fatty acid biosynthesis pathway was the highest gene expression enrichment in different stages. In the middle and late stage of walnut fruit ripening， a large amount of oil and protein were accumulated， and the expression of related genes was increased.

Key words Santai walnut;Maturity;Transcriptome;Gene

云南“三臺(tái)”核桃是云南眾多深紋核桃（Juglans sigillata）中的一個(gè)主要栽培品種，產(chǎn)于云南賓川縣、大姚縣三臺(tái)鄉(xiāng)等地，無(wú)性系品種，脂肪含量44.42%～72.74%，蛋白質(zhì)含量17.26%[1]。普通核桃（Juglans regia）為二倍體植物（2n=32），全基因組約606 Mb[2]。核桃是藥食兼用植物，隨高通量測(cè)序技術(shù)的飛速發(fā)展，基于高通量測(cè)序的轉(zhuǎn)錄組分析成為核桃代謝組研究的有力工具。轉(zhuǎn)錄組學(xué)是核桃功能基因組學(xué)一個(gè)重要分支，在發(fā)現(xiàn)核桃次生代謝產(chǎn)物生物合成關(guān)鍵基因、闡明次生代謝調(diào)控、篩選分子標(biāo)記等方面具有重要的應(yīng)用價(jià)值[3]。核桃代謝產(chǎn)物的研究主要集中于普通核桃脂肪代謝機(jī)制的分子生物學(xué)研究上，利用轉(zhuǎn)錄組測(cè)序技術(shù)構(gòu)建普通核桃花后60、90和120 d脂肪積累期胚組織的轉(zhuǎn)錄組、表達(dá)譜，同時(shí)分析核桃胚脂肪積累期的基因表達(dá)模式及其代謝通路及核桃胚脂肪積累期脂肪代謝相關(guān)基因的表達(dá)模式，并利用轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)，克隆核桃異質(zhì)型乙酰輔酶A羧化酶People acetyl coenzyme A carboxylase（ACCase）4個(gè)亞基的基因ORF[4-5]。

項(xiàng)目在前期的研究中發(fā)現(xiàn)云南“三臺(tái)”核桃4個(gè)不同成熟期中的代謝產(chǎn)物含量差異較大，特別是次生代謝產(chǎn)物角鯊烯及磷脂類。選擇4個(gè)不同成熟期“三臺(tái)”核桃種仁構(gòu)建云南核桃不同成熟期轉(zhuǎn)錄組文庫(kù)，并利用生物信息學(xué)方法對(duì)轉(zhuǎn)錄的基因結(jié)構(gòu)進(jìn)行分析，對(duì)不同發(fā)育階段差異表達(dá)基因進(jìn)行GO功能富集分析，初步闡明不同成熟期云南核桃不同發(fā)育階段差異表達(dá)基因功能及轉(zhuǎn)錄水平。

1 材料與方法

1.1 植物材料

以云南主栽核桃 “三臺(tái)”為對(duì)象，依據(jù)方文亮等[1]對(duì)云南核桃果實(shí)成熟動(dòng)態(tài)的研究結(jié)果和Li等[6]對(duì)果實(shí)發(fā)育動(dòng)態(tài)的研究結(jié)果，分別在所選3株“三臺(tái)”核桃樣樹(shù)樹(shù)冠中部東南西北4個(gè)方位隨機(jī)采摘30個(gè)果實(shí)，立取種仁置于液氮中，于-80 ℃冰箱保存，備用。4個(gè)成熟期分別為硬核期（6月CK樣）、油脂轉(zhuǎn)化期（7月HT1樣）、油脂積累期（8月HT2樣）、果實(shí)成熟期（9月HT3樣）。

1.2 主要設(shè)備

冷凍高速離心機(jī)、核酸定量?jī)x、-80 ℃超低溫冰箱（德國(guó)Thermo公司）、全自動(dòng)凝膠圖像分析系統(tǒng)、水平電泳儀（美國(guó) Bio-rad公司）、PCR擴(kuò)增儀（美國(guó)ABI公司）、NanoPhotometer spectrophotometer、QuantStudio 12K Flex Real-Time PCR System（美國(guó)Thermo Fisher公司）、全套Eppendorf微量移液器（德國(guó)Eppendorf公司）、Agilent 2100 Bioanalyzer（Agilent RNA 6000 Nano Kit）。

1.3 主要試劑

Trizol reagent（Promega，Madison，USA）、NanoPhotometer spectrophotometer（IMPLEN，CA，USA）、NEBNext Ultra RNA Library Prep Kit for Illumina（Illumina Inc，San Diego，USA）、TruSeq PE Cluster Kit v3-cBot-HS（Illumia，San Diego，USA）、 SYBR Premix Ex Taq（TaKaRa，RR420）、DNA Marker-DL2000（TaKaRa 公司）、PCR 2×mix（上海碧云天生物技術(shù)有限公司）、SYBR Green Realtime PCR Master Mix（日本 Toyobo）。

1.4 試驗(yàn)及數(shù)據(jù)處理方法

1.4.1 “三臺(tái)”核桃果實(shí)RNA的提取。

使用Trizol試劑提取“三臺(tái)”核桃果實(shí)總RNA20 μg，再用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)RNA是否污染及降解，用Agilent2100 Bioanalyzer檢測(cè)總 RNA的濃度、RIN值等。使用Nano Drop超微量紫外分光光度計(jì)進(jìn)行總RNA純度檢測(cè)。

1.4.2 cDNA文庫(kù)構(gòu)建和測(cè)序。

“三臺(tái)”核桃的轉(zhuǎn)錄組測(cè)序由廣州基迪奧生物科技有限公司完成。構(gòu)建流程如下：通過(guò)帶有Oligo（dT）的磁珠富集具有polyA尾巴的真核mRNA后，用超聲波把mRNA打斷。以片段化的mRNA為模板，隨機(jī)寡核苷酸為引物，在M-MuLV逆轉(zhuǎn)錄酶體系中合成cDNA第一條鏈，隨后用RNase H降解RNA鏈，并在DNA polymerase I 體系下，以dNTPs為原料合成cDNA第二條鏈。純化后的雙鏈cDNA經(jīng)過(guò)末端修復(fù)、加A尾并連接測(cè)序接頭，用AMPure XP beads篩選200 bp左右的cDNA，進(jìn)行PCR擴(kuò)增并再次使用AMPure XP beads純化PCR產(chǎn)物，最終獲得文庫(kù)[7-8]。

1.4.3 測(cè)序數(shù)據(jù)的組裝。

經(jīng)測(cè)序儀產(chǎn)生的原始數(shù)據(jù)經(jīng)base caling轉(zhuǎn)化為序列數(shù)據(jù)，稱為raw reads，結(jié)果以fastq文件存儲(chǔ)，某些raw reads 帶有adaptor序列，含有少量低質(zhì)量序列包括N比例大于10%的reads、質(zhì)量值Q≤5的堿基數(shù)占整個(gè)read的50%以上，經(jīng)數(shù)據(jù)處理，得clean reads。使用短reads組裝軟件Trinity重頭組裝，先將具有一定長(zhǎng)度overlap的reads連成更長(zhǎng)片斷，通過(guò)reads overlap 關(guān)系得到的組裝片斷為Contig，再將reads比對(duì)回Contig，通過(guò)paired-end reads 確定來(lái)自同一轉(zhuǎn)錄本不同Contig及Contig之間的距離，Trinity將這些Contig 連一起，得到兩端不能再延長(zhǎng)的序列稱為Unigene，使用Tgicl去冗余和拼接，再對(duì)這些序列進(jìn)行同源轉(zhuǎn)錄本聚類，得最終Unigene[9]，該Unigene分為兩部分，一是clusters（CL開(kāi)頭），另一是singletons（以Unigene開(kāi)頭），再將Unigene序列與Blastx比對(duì)，取最好比對(duì)結(jié)果蛋白確定Unigene序列方向。

1.4.4 轉(zhuǎn)錄組基因功能注釋和表達(dá)分析。

為了獲得基因功能注釋，將所得的unigenes與NCBI的Nt數(shù)據(jù)庫(kù)（NCBI non-redundant protein sequences database）、Nr數(shù)據(jù)庫(kù)（NCBI nucleotide sequences database）、KOG 數(shù)據(jù)庫(kù)（euKaryotic Ortholog Groups）以及Swiss-Prot數(shù)據(jù)庫(kù)等進(jìn)行比對(duì)，過(guò)濾 E-value 的閾值設(shè)置為較低 1×10-5。在獲得所有 unigenes 的GO注釋信息后，使用WEGO軟件進(jìn)行GO功能分類。此外，使用Blastx，過(guò)濾 E-value 的閾值設(shè)置為1×10-10，將所有unigenes與KEGG數(shù)據(jù)（the Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes Pathway Database）進(jìn)行比對(duì)，分析核桃相關(guān)的代謝途徑，挖掘與核桃次生代謝產(chǎn)物合成相關(guān)的基因。

1.4.5 基因差異表達(dá)分析。

使用 Bowtie 2[10]將 clean reads 比對(duì)到參考序列以統(tǒng)計(jì)基因比對(duì)率，之后再使用 RSEM[11]計(jì)算基因和轉(zhuǎn)錄本的表達(dá)水平。RSEM是用于轉(zhuǎn)錄組reads計(jì)算基因以及轉(zhuǎn)錄本表達(dá)量的軟件包。RSEM 用 Paired-end的關(guān)系、reads的長(zhǎng)度、fragment的長(zhǎng)度分布、質(zhì)量值等，基于最大期望的算法建立最大似然的豐度估計(jì)模型，用以區(qū)分哪些轉(zhuǎn)錄本是同一個(gè)基因的不同亞型。表達(dá)定量的結(jié)果以FPKM 為單位。差異表達(dá)基因（differentially expressed gene，DEG）檢測(cè)基于泊松分布。為了提高 DEG的準(zhǔn)確性，將差異倍數(shù)為2倍以上并且 Q-value≤0.001 的基因定義為顯著差異表達(dá)基因。

2 結(jié)果與分析

2.1 轉(zhuǎn)錄組質(zhì)量評(píng)估

使用 BGISEQ-500平臺(tái)進(jìn)行測(cè)序，測(cè)序結(jié)果如表1所示，共得到 7 306 Mb 的原始數(shù)據(jù)，48 707 124條raw reads。通過(guò)去除低質(zhì)量 reads，獲得48 647 921條clean reads，且clean reads的Q20比例為97.71%，GC含量為42.91%。以上數(shù)據(jù)證明本次測(cè)序質(zhì)量較好，可用于后續(xù)拼接與分析。利用轉(zhuǎn)錄組拼接軟件 Trinity對(duì)clean reads進(jìn)行從頭拼接，拼接獲得的 unigene 數(shù)目為53 868個(gè)，總長(zhǎng)度為 52 736 772 bp，平均長(zhǎng)度為979 bp，N50長(zhǎng)度為1 710 bp。組裝結(jié)果質(zhì)量評(píng)估可從N50來(lái)評(píng)估。將所有unigene從長(zhǎng)到短排序，并依次累加長(zhǎng)度，當(dāng)累加片段長(zhǎng)度達(dá)到總片段長(zhǎng)度（所有unigene的長(zhǎng)度）的50%時(shí)，對(duì)應(yīng)那個(gè)片段的長(zhǎng)度和數(shù)量，即為unigene N50長(zhǎng)度和數(shù)量。unigene N50越長(zhǎng)，數(shù)量越少，說(shuō)明組裝質(zhì)量越好[12]。此項(xiàng)分析統(tǒng)計(jì)結(jié)果中包含了N50、GC含量等詳細(xì)統(tǒng)計(jì)結(jié)果（表1）。

2.2 基因注釋與分類

利用本地版Blast將獲得的unigenes與四大功能數(shù)據(jù)庫(kù) Nr、KEGG、Swissprot、GO/COG進(jìn)行比對(duì)，注釋情況見(jiàn)圖1 。共有53 868條unigenes得到了注釋，其中33 407條unigenes注釋在Nr數(shù)據(jù)庫(kù)中;31 725條unigenes注釋在KEGG數(shù)據(jù)庫(kù)中;Swissprot數(shù)據(jù)庫(kù)中注釋到19 842條unigenes;COG數(shù)據(jù)庫(kù)中注釋到16 655 unigenes。四大數(shù)據(jù)庫(kù)共注釋到33 753條unigenes，占總unigenes的62.66%。此外，仍有20 115條unigenes未獲得注釋信息，可能是由于數(shù)據(jù)庫(kù)中缺乏相關(guān)注釋信息或者為新的轉(zhuǎn)錄本。

2.3 Nr注釋分析

Nr數(shù)據(jù)庫(kù)屬于非冗余蛋白序列數(shù)據(jù)庫(kù)NR（non-redundant protein sequence database）非冗余蛋白庫(kù)，NCBI收錄，所有GenBank+EMBL+DDBJ+PDB中的非冗余蛋白序列，對(duì)于所有已知的或可能的編碼序列，NR記錄中都給出了相應(yīng)的氨基酸序列（通過(guò)已知或可能的讀碼框推斷而來(lái)）以及專門蛋白數(shù)據(jù)庫(kù)中的序列號(hào)[13]?！叭_(tái)”核桃序列與Nr數(shù)據(jù)庫(kù)比對(duì)的結(jié)果如圖2。其中有25 505條unigenes比對(duì)到云南核桃即鐵核桃上，基因配比率達(dá)76.34%，其余依次為土瓶草（2.46%）、可可（2.12%）、葡萄（1.14%）、木豆（1.01%）、黃麻（0.85%）、粉掌（0.76%）、棗（0.74%）、烏梅（0.61%）等。而其余13.37%的序列沒(méi)有明確匹配到相應(yīng)物種，可能是因?yàn)榉稚⒌搅硕喾N其他物種，或由于產(chǎn)生了一些數(shù)據(jù)庫(kù)里沒(méi)有的新基因。

2.4 KEGG pathway分析

基于 KEGG pathway的分析有助于進(jìn)一步了解核桃基因的生物學(xué)功能?！叭_(tái)”核桃的53 868條unigenes中有31 725條注釋到了KEGG數(shù)據(jù)庫(kù)中（表2）。KEGG（kyoto encyclopedia of genes and genomes）的代謝途徑主要分為新陳代謝（metabolism）、遺傳信息過(guò)程（geneticInformation processing）、環(huán)境信息過(guò)程（environmental information processing）、細(xì)胞過(guò)程（cellular processes）和生物系統(tǒng)（organismal systems）等。其中，新陳代謝共注釋到 6 662條unigenes（20.99%），遺傳信息過(guò)程注釋到 2 298條 unigenes（7.87%），環(huán)境信息過(guò)程注釋到546條unigenes，細(xì)胞過(guò)程注釋到567條 unigenes，生物系統(tǒng)注釋到422條unigenes（圖3）。

核桃的主要生物活性物質(zhì)為脂類和蛋白，因此著重對(duì)新陳代謝（metabolism）分類下的二級(jí)分類進(jìn)行分析。在KEGG注釋中與新陳代謝相關(guān)的是global and overview maps（2 633條unigenes，39.52%），碳水化合代謝（936條unigenes，14.05%），能量代謝（589條unigenes，8.84%），氨基酸代謝（586條unigenes，8.79%），脂類代謝（510條unigenes，7.65%），

輔因子和維生素代謝（310條unigenes，4.65%），其他次級(jí)代謝生物合成（256條unigenes，3.84%），核苷酸代謝（254條unigenes，3.81%），其他氨基酸代謝（253條unigenes，3.79%），萜類及聚酮化合物代謝（189條unigenes，2.83%），多糖的生物合成和代謝（146條unigenes，2.19%）。這些注釋將為進(jìn)一步研究與核桃油脂及蛋白合成有關(guān)的代謝途徑、基因的結(jié)構(gòu)和功能提供參考信息。

2.5 COG功能分類

COG 是直系同源家族蛋白數(shù)據(jù)庫(kù)，按照COG的分類信息將“三臺(tái)”核桃的16 655條unigenes分配到 25個(gè)類別里，結(jié)果見(jiàn)圖4。其中，最多的是一般功能預(yù)測(cè)，包含4 870條unigenes，占總unigenes的29.24%;其余有代表性的包括信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)機(jī)制（2 260條 unigenes，13.56%），轉(zhuǎn)錄后修飾、蛋白轉(zhuǎn)換、伴侶蛋白（1 889條 unigenes，11.34%），翻譯（1 121條 unigenes，6.73%），翻譯、核糖體構(gòu)成和起源（960條 unigenes，5.76%），胞內(nèi)運(yùn)輸、分泌及囊泡轉(zhuǎn)運(yùn)（917條 unigenes，5.50%），未知功能（903條 unigenes，5.42%），碳水化合物的運(yùn)輸和代謝（892條 unigenes，5.35%），RNA加工及修飾（784條 unigenes，4.70%），能量產(chǎn)生及轉(zhuǎn)化（704條 unigenes，4.22%），次生代謝產(chǎn)物合成、運(yùn)輸及分解（685條 unigenes，4.11%）等，其中最少是細(xì)胞遷移（13條 unigenes，0.08%），其中未知功能（903條 unigenes，5.42%）表明“三臺(tái)”核桃中存在許多新基因，其生物學(xué)功能有待挖掘。

2.6 不同成熟期核桃差異基因分析

將差異倍數(shù)為2倍以上并且 Q-value≤0.001 的基因確定為顯著差異表達(dá)基因。對(duì)云南“三臺(tái)”核桃4個(gè)不同成熟期樣進(jìn)行兩兩比較，進(jìn)行差異基因分析（圖5）。其中7月與6月相比有2 417個(gè)基因上調(diào)表達(dá)，9 515個(gè)基因下調(diào)表達(dá);8月與6月相比有2 703個(gè)基因上調(diào)表達(dá)，12 455個(gè)基因下調(diào)表達(dá);9月與6月相比有4 166個(gè)基因上調(diào)表達(dá)，9 498個(gè)基因下調(diào)表達(dá);8月與7月相比有1 256個(gè)基因上調(diào)表達(dá)，1 751個(gè)基因下調(diào)表達(dá);9月與7月相比有5 347個(gè)基因上調(diào)表達(dá)，3 132個(gè)基因下調(diào)表達(dá);9月與8月相比有3 283個(gè)基因上調(diào)表達(dá)，1 365個(gè)基因下調(diào)表達(dá)。核桃果實(shí)在成熟中后期，油脂及蛋白大量積累，相關(guān)基因表達(dá)量增加。在核桃發(fā)育期，果實(shí)油脂積累期與硬核期相比，下調(diào)表達(dá)基因最多，也是差異基因較多的一組，這與CK樣品有關(guān)，CK樣品為果實(shí)整個(gè)子房，其他3個(gè)樣品（HT1、HT2、HT3）均為果肉，另外，果實(shí)形成初期也是果實(shí)整個(gè)發(fā)育過(guò)程中代謝最活躍的時(shí)期，尤其是激素在子房中的含量，子房中幾乎包括果實(shí)發(fā)育期間所有必需的生物代謝途徑[14]。從HT1到HT3，后一個(gè)階段都比前一階段上調(diào)表達(dá)的基因多，這表明果實(shí)處于不斷發(fā)育變化中。HT1和HT3上調(diào)基因比例明顯增加，核桃發(fā)育最快，HT2和HT3相比差異基因減少，可能與后期果實(shí)成熟代謝減慢有關(guān)。

2.7 GO富集分析

Gene Ontology（簡(jiǎn)稱GO）是一個(gè)國(guó)際標(biāo)準(zhǔn)化的基因功能分類體系，提供了一套動(dòng)態(tài)更新的標(biāo)準(zhǔn)詞匯表（controlled vocabulary）來(lái)全面描述生物體中基因和基因產(chǎn)物的屬性。GO總共有3個(gè)ontology（本體），分別描述基因的分子功能（molecular function）、細(xì)胞組分（cellular component）、參與的生物過(guò)程（biological process）[15]。將不同成熟期“三臺(tái)”核桃的差異基因按照其功能進(jìn)行GO分類，將每個(gè)分類數(shù)量最多的2種term和數(shù)量列入圖6中。在生物學(xué)過(guò)程（biological process）中，metabolic process（代謝過(guò)程）、cellular process（細(xì)胞過(guò)程）和single-organism process（單組織過(guò)程）所占的比例最多;細(xì)胞成分（cellular component）中，cell（細(xì)胞）、cell part（細(xì)胞部分）、organelle（細(xì)胞類脂質(zhì)）所占的比例最多;分子功能（molecular function）中，數(shù)量最多的為catalytic activity（催化活性）和binding（結(jié)合）。

3 結(jié)論

（1）以4個(gè)不同成熟期（硬核期、油脂轉(zhuǎn)化期、油脂積累期、果實(shí)成熟期）云南主栽的“三臺(tái)”核桃為材料，轉(zhuǎn)錄組分析不同成熟期基因表達(dá)關(guān)系。共有53 868條unigenes得到了注釋，其中33 407條unigenes注釋在Nr數(shù)據(jù)庫(kù)中;31 725條unigenes注釋在KEGG數(shù)據(jù)庫(kù)中;Swissprot數(shù)據(jù)庫(kù)中注釋到19 842條unigenes;COG數(shù)據(jù)庫(kù)中注釋到16 655條unigenes。四大數(shù)據(jù)庫(kù)共注釋到33 753條unigenes，占總unigenes的62.66%。

（2）不同成熟期“三臺(tái)”核桃差異基因兩兩比較中，CK-vs-HT1、CK-vs-HT2、CK-vs-HT3、HT1-vs-HT2、HT1-vs-HT3、HT2-vs-HT3分別有 2 417、2 703、4 166、1 256、5 347、3 283條上調(diào)表達(dá)的差異基因和9 515、12 455、9 498、1 751、3 132、1 365條下調(diào)表達(dá)的差異基因。

（3）在“三臺(tái)”核桃生物合成途徑中，以次生代謝產(chǎn)物生物合成途徑注釋到的兩端不能再延長(zhǎng)的序列最多，在脂肪酸代謝途徑中富集到的差異表達(dá)基因最多，其中acc系列酶及FAB系列基因可能是“三臺(tái)”核桃油脂和脂肪酸生物合成關(guān)鍵基因，其后續(xù)通過(guò)表達(dá)載體構(gòu)建和蛋白異源表達(dá)等對(duì)基因功能進(jìn)行驗(yàn)證。

參考文獻(xiàn)

[1] 方文亮，寧德魯.云南核桃[M].北京：科學(xué)出版社，2019.

[2] YOU F M，DEAL K R，WANG J R，et al.Genome-wide SNP discovery in walnut with an AGSNP pipeline updated for SNP discovery in allogamous organisms [J].BMC Genomics，2012，13：1-16.

[3] RAI A，KAMOCHI H，SUZUKI H，et al.De novo transcriptome assembly and characterization of nine tissues of Lonicera japonica to identify potential candidate genes involved in chlorogenic acid，luteolosides，and secoiridoid biosynthesis pathways[J].Journal of natural medicines，2017，71（1）：1-15.

[4] 張楠.核桃胚脂肪積累期轉(zhuǎn)錄組分析[D].泰安：山東農(nóng)業(yè)大學(xué)，2014.

[5] 楊麗，陳虹，潘存德，等.核桃種子油脂轉(zhuǎn)化期轉(zhuǎn)錄組分析[J].果樹(shù)學(xué)報(bào)，2017，34（9）：1084-1094.

[6] LI Y T，MA S M，WANG Y F，et al.The dynamics of fat，protein and sugar metabolism during walnut（Juglans regia L.）fruit development [J].African journal of biotechnology，2012，11（5）：1267-1276.

[7] 潘教文，李臻，王慶國(guó)，等.NaCl處理谷子萌發(fā)期種子的轉(zhuǎn)錄組學(xué)分析[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)，2019，52（22）：3964-3976.

[8] 張坤.紅地球葡萄延后栽培生育后期樹(shù)體與果實(shí)的水分關(guān)系研究[D].蘭州：甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)，2018.

[9] 王燕.蘿卜鉛（Pb）脅迫響應(yīng)的分子機(jī)制研究[D].南京：南京農(nóng)業(yè)大學(xué)，2014.

[10] LANGMEAD B，SALZBERG S L.Fast gapped-read alignment with Bowtie 2[J].Nature methods，2012，9（4）：357-359.

[11] LI B，DEWEY C N.RSEM：Accurate transcript quantification from RNA-Seq data with or without a reference genome[J].BMC Bioinformatics，2011，12：1-16.

[12] 魯強(qiáng).三椏苦種子休眠的解除方法和初步機(jī)理研究[D].廣州： 廣州中醫(yī)藥大學(xué)，2019.

[13] 劉文浩.熏硫及脫硫處理對(duì)龍眼貯藏生理的影響及轉(zhuǎn)錄組研究[D].廣州：華南農(nóng)業(yè)大學(xué)，2016.

[14] 李文彬.‘紅陽(yáng)獼猴桃果實(shí)發(fā)育轉(zhuǎn)錄組及花青素累積機(jī)理研究[D].武漢：中國(guó)科學(xué)院研究生院（武漢植物園），2015.

[15] 白琳云.靈武長(zhǎng)棗嫁接與根蘗繁殖植株生長(zhǎng)、果實(shí)特性的比較[D].銀川：寧夏大學(xué)，2019.

基金項(xiàng)目 云南省重大專項(xiàng)科技計(jì)劃項(xiàng)目（2018ZG003）;云南省科技創(chuàng)新人才培養(yǎng)項(xiàng)目（2016HB004）。

作者簡(jiǎn)介 賀娜（1982—），女，湖北京山人，副研究員，碩士，從事經(jīng)濟(jì)林栽培及精深加工研究。

*通信作者，研究員，博士，從事植物資源評(píng)價(jià)及木本油料精深加工研究。

收稿日期 2020-05-07