王 楠，蘇明明，張曉聲，沈偉健，陳 靜

（大連海關(guān)技術(shù)中心，遼寧大連 116000）

四環(huán)素是四環(huán)素族抗生素中最基本的化合物，分子式為C22H24N2O8，本身及其鹽類都是黃色或淡黃色的晶體，在干燥狀態(tài)下穩(wěn)定性極高，除金霉素外,其他的四環(huán)素族的水溶液都相當穩(wěn)定。四環(huán)素族除可溶于低濃度的酸堿溶液，也可以微溶于水、甲醇、乙醇等溶液，但不溶于醚類溶液，如石油醚等[1～2]。四環(huán)素族抗生素主要包括金霉素、土霉素、四環(huán)素。四環(huán)素類抗生素在20 世紀中葉時期被科學(xué)家發(fā)現(xiàn)，屬于廣譜抗生素，廣泛應(yīng)用于革蘭氏細菌和細胞支原體引起的細菌感染[3～5]。目前，四環(huán)素作為生長促進劑在畜牧業(yè)發(fā)展中發(fā)揮了重要的作用，并且可以預(yù)防和治療動物養(yǎng)殖過程中產(chǎn)生的多種感染性疾病[6～7]。然而，在動物屠宰之前，動物體內(nèi)的四環(huán)素不能完全代謝掉，有很大一部分殘留下來，并主要集中在肝臟和腎臟部位[8～10]。人們在食用了有四環(huán)素類抗生素殘留的動物源食品，會對身體造成嚴重的傷害，引起較多嚴重疾病，比如肝腎中毒，影響中樞神經(jīng)系統(tǒng)以及血液系統(tǒng)的疾病等。如果長期食用，不僅會產(chǎn)生耐藥菌株，還會產(chǎn)生過敏反應(yīng)，降低對病菌的免疫能力[11]。我國2020年4月實施的GB 31650-2019《食品安全國家標準 食品中獸藥最大殘留限量》以及一些歐美等國家，都對食品中四環(huán)素類藥物殘留量做了嚴格的規(guī)定：土霉素、四環(huán)素、金霉素最低值都不得超過100 μg/kg。

目前，四環(huán)素類藥物檢測方法有許多種，主要有微生物檢測法、高效液相色譜法（HPLC）和酶聯(lián)免疫吸附法（ELISA）等。其中，微生物檢測法耗時較長，且容易被其他抗生素類干擾，檢測準確度不足。高效液相色譜法是目前常用的可以對大批量樣品進行檢測的方法，檢測靈敏度和準確度較高，但是前處理方法復(fù)雜費時，且成本較高，不適合快速檢測。酶聯(lián)免疫吸附法容易產(chǎn)生交互反應(yīng)，且需要對每一種抗體進行分別標記，導(dǎo)致檢測費用較高，且無法解決同時檢測四環(huán)素類藥物多殘留的問題[12～13]。Charm Ⅱ放射免疫分析法具有樣品前處理簡單快速、特異性強、檢測時間短等優(yōu)點，可以檢測四環(huán)素類藥物殘留總量，并且具有高效液相色譜法檢測的準確性和免疫吸附法檢測的高效性，適用于初篩檢測。該檢測方法也已經(jīng)得到了美國FDA和歐盟等國家的認可和應(yīng)用，具有廣闊的應(yīng)用前景。

1 材料和方法

1.1 設(shè)備和材料

Charm Ⅱ7600 分析儀（美國Charm 公司）；高速冷凍離心機；渦旋震蕩器；恒溫培養(yǎng)箱（80±2℃）；閃爍液加液器；離心管；硼硅玻璃試管及試管塞；液體閃爍計數(shù)器（美國Charm 公司）；藥片壓桿。

1.2 樣品和試劑

檢測基質(zhì)為羊和雞的血清：分別采集兩種動物血液，將采集好的血液置于容器內(nèi)，室溫下靜置10 h，等待其析出血清，并收集血清備用。檢測試劑為四環(huán)素類Charm Ⅱ檢測試劑盒、閃爍液、陰性對照液、多抗標準品等

1.3 實驗方法

1.3.1 實驗原理

微生物細胞表面存在著不同的特異性點位，并能夠與各種四環(huán)素類藥物共有功能基團相結(jié)合發(fā)生相應(yīng)的微生物受體反應(yīng)。檢測四環(huán)素類藥物殘留時，同時加入微生物受體結(jié)合物和[3H]標記過的金霉素。如果樣品中存在四環(huán)素類藥物殘留，就會同[3H]標記過的金霉素競爭結(jié)合微生物受體結(jié)合物的相關(guān)點位。用液體閃爍計數(shù)儀測定樣品反應(yīng)后的[3H]含量的cpm 值（即每分鐘脈沖數(shù)），cpm 值越低，則四環(huán)素類藥物殘留量越高。

1.3.2 樣品制備

在50 ml 離心管中加入1 ml 血液樣品和30 ml MSU 提取緩沖溶液，渦旋振蕩5 min。將離心管于（80±2）℃的恒溫培養(yǎng)箱中放置45 min，取出后置于冷水中10 min，1750 g 離心10 min，取上清液備用?；謴?fù)室溫后，測定其pH 值是否為7.5，如不準確則使用試劑盒配置的M2 緩沖液或1 mol/L鹽酸調(diào)節(jié)pH 值為7.5，即為樣品測試液。

1.3.3 測定步驟

用藥片壓桿的平端將白色藥片壓入已加入300 μl 蒸餾水的玻璃試管內(nèi)，渦旋振蕩10 s 直至藥片破碎。吸取4 ml 處理好的血液試樣放入試管中，壓入橙色藥片，用振蕩器上振蕩15 s，使樣品上下15 次，置于（65±1）℃的恒溫培養(yǎng)箱中3 min，取出后1750 g 離心5 min，離心停止后立即取出試管，倒掉上清液（此時不宜太用力，防止將有四環(huán)素標記的藥物甩出，造成結(jié)果不準確），用棉簽清理試管壁內(nèi)的殘漬，注意不可觸碰沉淀物。向試管中加入300 μl 蒸餾水，搖動試管直至沉淀物完全破碎，之后加入3 ml 閃爍液，渦旋混勻至試管無不均一的云狀物，放置1 min 后，將試管放入Charm Ⅱ7600 分析儀中，讀取[3H]的cpm 值。

1.3.4 控制點的建立

選取六份已知不含四環(huán)素類藥物殘留的血清樣品，按照試劑盒使用說明書的要求加入不同濃度的抗生素，按照上述測定步驟進行測定，得到6 次計數(shù)值，計算平均值，則可計算出控制點為：平均值×（1+20%）。

1.3.5 結(jié)果判定

當樣品計數(shù)值大于控制點時，則判定為陰性樣品。當樣品計數(shù)值小于等于控制點時，在初篩時判定為疑似陽性，此時應(yīng)對樣品進行復(fù)檢，同時增加一個陰性對照和陽性對照，判斷使用的檢測試劑是否失效，以及檢測的儀器是否出現(xiàn)問題。判定樣品為陽性有兩個要求：一是陰性對照的范圍內(nèi)波動不可以超過陰性對照平均值的80%～120%；二是陽性對照的計數(shù)值必須要小于控制點。如果可以同時滿足以上兩點，并且重新測試的樣品計數(shù)值也小于控制點，則可以判定為陽性樣品。

2 結(jié)果與分析

2.1 抗原抗體的競爭性

在Charm Ⅱ放射免疫分析中的受體和[3H]標記的金霉素抗原的量是固定的，因此可以通過對不同藥物濃度檢測來確定方法的靈敏度。以MSU 萃取緩沖液為零標準，將MSU 多種抗生素標準品依次配制成10.0、20.0、50.0、100.0、200.0、500.0、1000.0 μg/kg 標準溶液，并分別測定cpm 值，表1結(jié)果顯示，測定的cpm 值與添加的藥物濃度呈反比，當?shù)竭_一定濃度后cpm 值將不再變化。

表1 不同藥物濃度測定結(jié)果

2.2 檢出限以及線性范圍的確定

在已知陰性的基質(zhì)中添加不同濃度的MSU 多種抗生素標準品進行測試，以確定基質(zhì)的檢測限。分別向羊血清和雞血清中添加濃度分別為0、10.0、20.0、30.0、40.0、50.0 μg/kg 的四環(huán)素測試，得到結(jié)果見表2。

表2 不同基質(zhì)中不同添加水平的測定結(jié)果

以添加水平的自然對數(shù)ln(ρ)為自變量，分別對相應(yīng)質(zhì)量濃度的羊血清和雞血清的cpm 數(shù)值相對值（即相應(yīng)濃度cpm 值與陰性控制cpm 值的比值，B/B0）進行線性擬合，得到結(jié)果見圖1～2。

圖1 羊血清ln(ρ)與B/B0 值擬合曲線

圖2 雞血清ln(ρ)與B/B0 值擬合曲線

各數(shù)據(jù)點都較好地分布在擬合曲線兩側(cè)，擬合情況良好，各種基質(zhì)中l(wèi)n(ρ)均與cpm 值存在著良好的線性關(guān)系。根據(jù)實際情況確定檢測限時，考慮到分析相對標準偏差，一般要測定兩項內(nèi)容，分別是樣品空白加標與空白樣品，測定的cpm 值相對值應(yīng)該小于0.6，確定金霉素在動物血清中的最低濃度應(yīng)不小于20 μg/kg。

3 結(jié)論

Charm Ⅱ檢測方法不僅符合國內(nèi)四環(huán)素快速檢測要求，同時也是其他國家采用的快速檢測手段，符合國際標準。使用Charm Ⅱ放射免疫分析法檢測動物血清中四環(huán)素類藥物殘留，可以提高檢測效率，降低檢測成本，適用于對大量活體動物體內(nèi)四環(huán)素檢測的陽性初篩，具有檢測靈敏度高、穩(wěn)定性良好、特異性強、準確度高等優(yōu)點，是一種快速有效的檢測動物體內(nèi)四環(huán)素類藥物殘留的篩選方法。