江 全 鄭 旭 張 康 展 陽 唐羅忠
(南京林業(yè)大學(xué)南方現(xiàn)代林業(yè)協(xié)同創(chuàng)新中心,南京林業(yè)大學(xué)林學(xué)院,江蘇 南京,210037)
秤錘樹(Sinojackia xylocarpa)屬于安息香科(Styracaceae)秤錘樹屬落葉小喬木[1-3],最早發(fā)現(xiàn)于江蘇南京幕府山、鎮(zhèn)江句容寶華山等地?;ò咨麑?shí)宛如秤錘,懸掛于樹體,是優(yōu)良的觀花觀果園林綠化樹種,具有很高的應(yīng)用價值,是中國特有樹種,已被列為國家Ⅱ級保護(hù)瀕危植物[4-5]。導(dǎo)致秤錘樹瀕危的原因尚不清楚[6-10]。
已有的研究表明,秤錘樹種子萌發(fā)十分困難,播種后一般需要2~3 a才能發(fā)芽,且發(fā)芽率低,所以生產(chǎn)上播種的繁殖效率不高[11-12];秤錘樹的無性繁殖技術(shù)還不成熟,也未在生產(chǎn)中應(yīng)用[13-15]。針對這一困境,國內(nèi)有些研究者對秤錘樹種子結(jié)構(gòu)[16-17]、種子休眠與內(nèi)源抑制物[18-23]、種子催芽技術(shù)[12]等方面進(jìn)行了研究,但目前仍然沒有找到解除種子休眠的有效方法。本研究通過測定秤錘樹果實(shí)和種子基本性狀、使用不同濃度的秤錘樹果皮浸提液處理小白菜種子和秤錘樹種子進(jìn)行發(fā)芽試驗(yàn),試圖了解秤錘樹種子發(fā)芽困難的原因,為進(jìn)一步研究提供參考。
對南京林業(yè)大學(xué)校園內(nèi)生長狀況良好、樹齡 為30~50 a的20株 秤 錘 樹 進(jìn) 行 掛 牌 觀 察。2016年11月果實(shí)完全成熟時進(jìn)行采種,去除雜物,自然風(fēng)干后在室內(nèi)用濕沙按照3∶1的比例(沙與果實(shí)的體積比)混合貯藏;2017年11月也進(jìn)行采種、風(fēng)干,用于種子性狀測定和發(fā)芽試驗(yàn)。發(fā)芽試驗(yàn)中所用的小白菜種子為新鮮的“綠優(yōu)一號”,種子凈度99%以上,正常發(fā)芽率95%以上。
1.2.1 果實(shí)大小和質(zhì)量測定
將自然干燥的成熟果實(shí)充分混勻后,隨機(jī)取3個100粒,使用數(shù)顯游標(biāo)卡尺測定每粒果實(shí)的長度和寬度,并測定果實(shí)質(zhì)量;然后將果實(shí)分別切開,小心取出種子,測定種子質(zhì)量。
1.2.2 種子飽滿率與多胚率測定
根據(jù)上述切開的果實(shí)中是否具有飽滿的種子,來統(tǒng)計(jì)果實(shí)的飽滿率;如果一個果實(shí)中包含2個或2個以上的飽滿種胚,則稱之為多胚種子,根據(jù)多胚種子數(shù)量與果實(shí)的數(shù)量,計(jì)算多胚率。
1.2.3 果實(shí)含水率測定
隨機(jī)取3組新鮮的秤錘樹成熟果實(shí),每組50粒,分別稱量后放入恒溫烘箱中,先在103 ℃下殺青處理0.5 h,再在65 ℃下烘至恒質(zhì)量,稱量后計(jì)算果實(shí)含水率。用同樣方法測定和計(jì)算自然干燥后的果實(shí)含水率。
1.2.4 種子生活力測定
采用四唑染色法[24],對切開獲得的種子進(jìn)行染色處理,在恒溫培養(yǎng)箱35 ℃條件下培養(yǎng)24 h,根據(jù)種胚的染色情況判斷種子是否具有生活力。凡種子被染成紅色者表示有生活力,未染色的種子為無生活力種子。試驗(yàn)設(shè)置3個重復(fù),每個重復(fù)100粒種子。
1.2.5 果實(shí)千粒質(zhì)量測定
將自然干燥的純凈果實(shí)充分混勻后倒在光潔的桌面上,采用四分法提取測定樣品8份,從每份樣品中隨機(jī)取100粒果實(shí)為1組,用天平分別稱量,計(jì)算8組數(shù)據(jù)的變異系數(shù),如果變異系數(shù)小于4則合格,再計(jì)算果實(shí)的千粒質(zhì)量。
1.2.6 果實(shí)內(nèi)含物測定
可溶性蛋白質(zhì)含量的測定采用考馬斯亮藍(lán)法[25]。分別稱取粉碎后的果皮0.3 g和種子0.1 g,各3份,置于研缽中,加10 mL的蒸餾水和少量石英砂研磨成勻漿,倒入離心管。4 ℃下,10 000 r/min離心20 min。取上清液1 mL,用蒸餾水定容至25 mL,混勻,從中取1 mL,加入5 mL考馬斯亮藍(lán)G?250溶液,5 min后使用分光光度計(jì)在595 nm的波長下測定吸光值。
可溶性糖含量的測定采用蒽酮比色法[26]。分別稱取粉碎后的果皮0.3 g和種子0.1 g,各3份,置于研缽中,加10 mL的蒸餾水和少量石英砂研磨成勻漿,倒入試管,在沸水浴中煮沸30 min,冷卻后定容至25 mL,混勻后取5 mL,10 000 r/min離心20 min。吸取上清液0.5 mL,加1.5 mL蒸餾水,并加入蒽酮試劑和濃硫酸后,沸水浴1 min,冷卻后使用分光光度計(jì)在630 nm的波長下測定吸光值。
1.2.7 小白菜種子發(fā)芽試驗(yàn)
稱取一定質(zhì)量粉碎過篩(篩的孔徑為0.5 mm)的秤錘樹果皮(包括外果皮、中果皮和內(nèi)果皮),加入10倍于果皮質(zhì)量的蒸餾水,混勻并振蕩24 h后以4 000 r/min的轉(zhuǎn)速離心30 min,上清液作為果皮浸提原液,取部分原液用蒸餾水分別稀釋4倍(1/4濃度)和2倍(1/2濃度),置于2 ℃的冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>
在培養(yǎng)皿內(nèi)鋪一層濾紙,在濾紙上擺放100粒小白菜種子,設(shè)置4個處理,分別滴加蒸餾水、1/4濃度浸提液、1/2濃度浸提液、浸提原液,每個處理重復(fù)3次。置于25 ℃的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)7 d,定期觀察小白菜種子的發(fā)芽和幼苗生長狀況,并及時添加蒸餾水或相應(yīng)濃度的浸提液,7 d后計(jì)算小白菜發(fā)芽率,并測定小白菜幼苗的高度、根長、地上部分烘干質(zhì)量和根烘干質(zhì)量。
1.2.8 秤錘樹種子發(fā)芽試驗(yàn)
取室內(nèi)混沙濕藏1年半的秤錘樹果實(shí),小心去除果皮,取出完整的種子。在培養(yǎng)皿內(nèi)鋪一層濾紙,在濾紙上均勻擺放秤錘樹種子,設(shè)置2種處理,分別是滴加蒸餾水和秤錘樹果皮的水浸提原液(果皮與蒸餾水質(zhì)量比為1∶10的浸提液),各處理設(shè)置3個重復(fù),每個重復(fù)42粒種子。置于25 ℃的恒溫培養(yǎng)箱中,定期觀察并添加相應(yīng)處理液,待種子連續(xù)5 d不再發(fā)芽時停止發(fā)芽實(shí)驗(yàn),統(tǒng)計(jì)發(fā)芽率。
2.1.1 果實(shí)與種子的基本結(jié)構(gòu)
由圖1可見,秤錘樹成熟的果實(shí)呈棕褐色,果皮分為3層,分別為薄而木質(zhì)化的外果皮,厚而木栓質(zhì)化的中果皮,堅(jiān)硬、致密、木質(zhì)化的內(nèi)果皮。種子位于內(nèi)果皮內(nèi),種皮褐色膜質(zhì)。果皮質(zhì)量約占整個果實(shí)的90%以上,大多數(shù)果實(shí)內(nèi)部只有1粒種子,少數(shù)果實(shí)含有2?;?粒種子。完整的種子包含胚根、胚軸、胚乳、子葉和胚芽。
圖 1 秤錘樹果實(shí)的基本結(jié)構(gòu)Fig.1 The basic structure of theS. xylocarpafruits
由圖2可見,胚根位于果實(shí)的基部,種子萌發(fā)時果實(shí)基部首先開裂,胚根由此長出。
圖 2 秤錘樹種子的萌發(fā)狀態(tài)Fig.2 Germination state of theS. xylocarpaseeds
自然干燥后的秤錘樹果實(shí)平均長度為21.94 mm,平均寬度為12.06 mm,千粒質(zhì)量為479.58 g;新鮮的成熟果實(shí)含水率為65.47%,自然干燥后的果實(shí)含水率為8.70%;種子飽滿率為89.33%,多胚率為6.33%;種子生活力高達(dá)
88.54%。
2.1.2 果實(shí)與種子性狀的相關(guān)性分析
對300粒果實(shí)的長度(mm)、寬度(mm)、質(zhì)量(g/粒)以及相應(yīng)果實(shí)內(nèi)的種子質(zhì)量(g/粒)進(jìn)行線性相關(guān)性分析,結(jié)果(表1)表明:各個指標(biāo)之間均呈正相關(guān)關(guān)系,其中果實(shí)質(zhì)量與果實(shí)寬度間呈極顯著相關(guān)(P<0.01),其次是果實(shí)質(zhì)量與果實(shí)長度之間呈極顯著相關(guān)(P<0.01),果實(shí)寬度與果實(shí)長度之間也呈顯著相關(guān)(P<0.05),而種子質(zhì)量與果實(shí)的長度、寬度、質(zhì)量之間的相關(guān)性不顯著。
表 1 秤錘樹果實(shí)與種子大小、質(zhì)量之間的相關(guān)性分析Table 1 Correlation analysis between size and weight of theS. xylocarpafruits and seeds
2.1.3 種子和果皮可溶性糖和可溶性蛋白的含量
由表2可知,秤錘樹種子和果皮中含有一定數(shù)量的可溶性糖和可溶性蛋白質(zhì),且種子中的含量顯著高于果皮。
2.2.1 對小白菜種子發(fā)芽與幼苗生長的影響
果皮的水浸提液對小白菜種子發(fā)芽率的影響見表3。由表3可知,4種處理的小白菜種子發(fā)芽率基本相同,平均發(fā)芽率均達(dá)95%以上,因此秤錘樹果皮的水浸提液對小白菜種子的發(fā)芽并沒有影響。
表 2 秤錘樹種子和果皮的可溶性糖、可溶性蛋白質(zhì)含量Table 2 Contents of soluble sugar and soluble protein in seed and pericarp ofS. xylocarpa
表 3 不同處理的小白菜種子發(fā)芽率及幼苗生長量Table 3 Seeds germination rate and seedlings growth of pakchoi in different treatments
由表3、圖3可知,浸提液處理7 d后的小白菜幼苗生長情況均優(yōu)于蒸餾水處理,且隨著浸提液濃度的提高,小白菜苗高和葉片增大;但是,不同處理的小白菜幼苗根長呈蒸餾水>原液>1/4原液>1/2原液的趨勢;不同處理之間的幼苗生物量趨勢與苗高一致,即原液>1/2原液>1/4原液>蒸餾水;不同處理之間的幼苗根莖比趨勢與苗高、生物量相反,即蒸餾水>1/4原液>1/2原液>原液。
由此可見,秤錘樹果皮的水浸提液不但不會抑制小白菜發(fā)芽,反而能促進(jìn)其生長,且隨著浸提液濃度的提高,促進(jìn)作用增強(qiáng),表明秤錘樹果皮中可能含有較多的營養(yǎng)物質(zhì),有利于小白菜幼苗的生長。
圖 3 不同處理下的小白菜幼苗生長狀況Fig.3 Seedling growth situation of pakchoi in different treatments
2.2.2 果皮浸提液對秤錘樹種子發(fā)芽的影響
經(jīng)過40 d的發(fā)芽試驗(yàn),用蒸餾水處理的秤錘樹種子發(fā)芽率為30.16%,用秤錘樹果皮浸提液處理的秤錘樹種子發(fā)芽率為32.16%,略高于蒸餾水處理,兩者之間沒有顯著差異,表明秤錘樹果皮浸提液對秤錘樹種子的萌發(fā)沒有抑制作用。
本研究的秤錘樹果實(shí)大小比較均勻,飽滿率較高,質(zhì)量較好,這與賈書果[18]的研究結(jié)果相一致,但是與徐本美等[11]及史曉華等[21]的研究結(jié)果相差甚遠(yuǎn),這可能是由于母樹的生長環(huán)境不同所致,表明不同的立地條件對果實(shí)和種子的生長發(fā)育及品質(zhì)具有較大影響。
成熟的秤錘樹果實(shí)平均長度為22 mm左右,平均寬度為12 mm左右,千粒質(zhì)量為480 g左右,多胚率達(dá)6%左右,種子生活力高達(dá)88%左右。種子的可溶性糖和可溶性蛋白含量分別為10.29 mg/g和2.47 mg/g,均明顯高于果皮的可溶性糖含量(2.62 mg/g)和可溶性蛋白質(zhì)含量(0.27 mg/g)。
秤錘樹果皮的水浸提液并不會對小白菜種子的發(fā)芽產(chǎn)生抑制作用,相反,果皮浸提液對小白菜幼苗高生長具有促進(jìn)作用,這與劉超等[22]的研究結(jié)果有所不同,與相關(guān)研究[19-21,23]使用甲醇浸提液處理小白菜種子的結(jié)果也不一致,其原因還有待于進(jìn)一步研究。本研究還發(fā)現(xiàn),隨著浸提液濃度的提高,處理后的小白菜幼苗生物量逐漸增加,但是根莖比逐漸減小,說明在較高濃度浸提液處理下的小白菜幼苗在生長過程中不需要強(qiáng)大的根系即可吸收所需養(yǎng)分,表明秤錘樹果皮浸提液中含有一定數(shù)量的養(yǎng)分。同時本研究發(fā)現(xiàn),秤錘樹果皮的水浸提液對秤錘樹種子的萌發(fā)并沒有抑制作用,賈書果的研究[18]認(rèn)為,秤錘樹的種胚能夠正常發(fā)芽,且發(fā)芽率較高。
綜合表明,秤錘樹的種子質(zhì)量較高,但是自然萌發(fā)率很低,人工播種的種子發(fā)芽很慢(一般需要2~3 a才能發(fā)芽),且發(fā)芽率較低,其原因可能不是因?yàn)榉N子或果皮存在抑制發(fā)芽的內(nèi)含物,很可能是因?yàn)閳?jiān)硬的內(nèi)果皮阻礙了外界水分和空氣進(jìn)入種胚,并機(jī)械性束縛種胚的萌發(fā),從而導(dǎo)致秤錘樹種子難以快速發(fā)芽。今后有必要對內(nèi)果皮結(jié)構(gòu)進(jìn)行顯微觀察,并采用物理或化學(xué)方法進(jìn)行處理,以促進(jìn)種子萌發(fā),提高發(fā)芽率。