李俊霞 馬麗雅 林河通

摘要：果蔬中殘留農(nóng)藥對(duì)人類的健康造成威脅，因此檢測(cè)果蔬中農(nóng)藥殘留具有重要意義。本文綜述了果蔬中農(nóng)藥殘留檢測(cè)分析方法的原理及應(yīng)用，包括前處理方法和檢測(cè)技術(shù)?？偨Y(jié)了應(yīng)用較廣的前處理技術(shù)：液液萃取、固相萃取、QuEChERS、分析比較色譜法、色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法、酶聯(lián)免疫法及生物傳感器等檢測(cè)技術(shù)。另外，介紹了納米材料在果蔬農(nóng)藥殘留分析中的應(yīng)用。

關(guān)鍵詞：果蔬;農(nóng)藥殘留;前處理;檢測(cè)

水果和蔬菜中含有豐富的維生素、礦物質(zhì)和膳食纖維，合理攝入果蔬不僅能夠減少中風(fēng)和缺血性心臟病的風(fēng)險(xiǎn)，而且還可以降低腸胃的患癌率[1]，是現(xiàn)代生活中不可或缺的部分。但是果蔬生長(zhǎng)周期長(zhǎng)，存在極大的病蟲害隱患，而農(nóng)藥或復(fù)合農(nóng)藥的施用在確保果蔬產(chǎn)量和質(zhì)量的過程中發(fā)揮著重要作用[2-4]。同時(shí)，農(nóng)藥種類和劑量的不合理施用，會(huì)造成果蔬中農(nóng)藥殘留甚至超標(biāo)現(xiàn)象，影響果蔬的出口貿(mào)易和人類健康[5-8]。近年來，食品安全問題已經(jīng)成為全球熱點(diǎn)，加強(qiáng)果蔬中農(nóng)藥殘留檢測(cè)具有重大意義。

由圖1可知，果蔬中農(nóng)藥殘留檢測(cè)所涉及的主要步驟包括樣品前處理（提取、凈化及富集），檢測(cè)（測(cè)定目標(biāo)物）及數(shù)據(jù)分析（評(píng)估可靠性）[9]。農(nóng)藥殘留種類多、樣品基質(zhì)復(fù)雜、干擾物多等是目前果蔬中農(nóng)藥殘留檢測(cè)面臨的挑戰(zhàn)[10-12]，因此，須要選擇合適的前處理和檢測(cè)技術(shù)，以提高果蔬中農(nóng)藥殘留檢測(cè)的精確度和靈敏度[13]。本文綜述了近年來國(guó)內(nèi)外在果蔬中農(nóng)藥殘留的前處理及檢測(cè)技術(shù)，并分析比較優(yōu)劣，以期為相關(guān)領(lǐng)域工作者提供借鑒。

1 農(nóng)藥殘留前處理技術(shù)

目前多種前處理技術(shù)已經(jīng)在果蔬中農(nóng)藥殘留檢測(cè)方面得以應(yīng)用，樣品前處理是農(nóng)藥殘留檢測(cè)過程中至關(guān)重要的步驟。針對(duì)基質(zhì)的差異性和目標(biāo)物的多樣性，果蔬中農(nóng)藥殘留前處理技術(shù)應(yīng)具有差異性，應(yīng)結(jié)合果蔬種類、數(shù)據(jù)分析要求、檢測(cè)儀器等確定合適的前處理技術(shù)[14]。

1.1 液液萃取法

液液萃?。╨iquid-liquid extraction，簡(jiǎn)稱LLE）也稱溶劑萃取和分離，它主要根據(jù)化合物在特殊不混溶液體中的相對(duì)溶解度來分離化合物[15]。LLE要使用不同的單一或者混合提取溶劑，例如乙腈[16]、二氯甲烷/丙酮[17]及氯仿/二氯甲烷[18]等溶劑。該技術(shù)適應(yīng)性強(qiáng)并且與大多數(shù)儀器兼容，過去10年來，LLE方法已作為常規(guī)技術(shù)在果蔬農(nóng)藥殘留檢測(cè)中廣泛應(yīng)用[19-20]。但LLE技術(shù)耗時(shí)，難以自動(dòng)化，毒性溶劑如氯仿等消耗大，大量有毒的有機(jī)溶劑可能對(duì)人類和環(huán)境構(gòu)成潛在威脅。同時(shí)，該技術(shù)對(duì)極性農(nóng)藥的提取效果較差[15]。

針對(duì)液液萃取的弊端，目前該技術(shù)已經(jīng)衍生出大量的改進(jìn)技術(shù)，如分散液-液微萃?。╠ispersive liquid-liquid micro-extraction，簡(jiǎn)稱DLLME）、空氣輔助液-液微萃?。╝ir-assisted liquid-liquid microextraction，簡(jiǎn)稱AALLME）、加糖液液萃?。╯ugaring-out liquid-liquid extraction，簡(jiǎn)稱SULLE）、鹽析輔助均相液液萃?。╯alting-out homogenous liquid-liquid extraction，簡(jiǎn)稱SHLLE）等，這些技術(shù)在果蔬農(nóng)藥殘留檢測(cè)中的應(yīng)用見表1。

1.2 固相萃取法

固相萃?。╯olid-phase extraction，簡(jiǎn)稱SPE）是一種柱色譜分離過程，以固體吸附劑作為固定相，將樣品中目標(biāo)化合物選擇性吸附，分離樣品的基體和干擾物，然后再通過合適的洗脫液進(jìn)行洗脫，達(dá)到分離和富集目標(biāo)化合物的效果[25]。與LLE相比，SPE消耗有機(jī)溶劑更少，分析時(shí)間更短，方法回收率更高，同時(shí)還能更有效地去除干擾化合物，在樣品預(yù)處理中起著越來越重要的作用[26]。但基于SPE技術(shù)是將分析物吸附到固體吸附劑上的特質(zhì)，因此選擇合適的吸附劑非常重要，SPE應(yīng)用于農(nóng)藥殘留的幾種常見商業(yè)吸附劑的類型及適用范圍見圖2，另外氨基固相吸附劑（—NH2）、復(fù)合吸附劑等也常用于果蔬樣品前處理[25，27-29]。

在固相萃取的原理上，SPE技術(shù)不斷發(fā)展，主要包括以下6種SPE：固相萃取、固相分散萃取（dispersive solid-phase extraction，簡(jiǎn)稱DSPE）、固相微萃?。╯olid-phase microextraction，簡(jiǎn)稱SPME）、磁固相萃?。╩agnetic solid-phase extraction，簡(jiǎn)稱MSPE）、基質(zhì)固相分散萃?。╩atrix solid-phase dispersion，簡(jiǎn)稱MSPD）、攪拌棒吸附萃?。╯tir bar sorptive extraction，簡(jiǎn)稱SBSE），這6種主要SPE模式的原理及優(yōu)缺點(diǎn)見表2。

近年來，大量的學(xué)者在果蔬農(nóng)藥殘留檢測(cè)過程中展開基于固相萃取技術(shù)的研究。Guan等利用基質(zhì)固相分散萃取快速濃縮，然后結(jié)合液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜同時(shí)分離檢測(cè)8種不同果蔬中的9種有機(jī)磷農(nóng)藥[30]。Zuin等比較了攪拌棒吸附萃取和膜輔助溶劑萃?。∕ASE）前處理技術(shù)在測(cè)定甘蔗汁中農(nóng)藥殘留的效果，2種前處理技術(shù)結(jié)合GC-MS，檢出限均可達(dá)到1 μg/L，但SBSE前處理具有更高的靈敏度和重復(fù)性[31]。Kin等在氣相色譜儀（電子捕獲檢測(cè)器，ECD）檢測(cè)前，選用固相微萃取法進(jìn)行前處理，評(píng)估了草莓和黃瓜中有機(jī)磷和有機(jī)氯農(nóng)藥殘留水平，具有較低的檢出限（0.01～1.00 μg/L）[32]。

1.3 QuEChERS法

QuEChERS（quick，easy，cheap，effective，rugged，safe）技術(shù)分為提取和凈化2個(gè)部分，第1個(gè)部分是用乙腈和鹽的混合物通過分配進(jìn)行萃取，第2個(gè)部分是通過包含1種或幾種吸附劑的分散固相萃?。╠-SPE）進(jìn)行凈化，去除潛在的干擾化合物，包括有機(jī)酸、色素、糖等，具體操作見圖3[33]。該方法因省時(shí)、安全、操作簡(jiǎn)單、成本低、可去除多種雜質(zhì)對(duì)分析物的干擾而在果蔬農(nóng)藥殘留分析中得以廣泛應(yīng)用[34-36]。盡管原始的QuEChERS法在大多數(shù)果蔬基質(zhì)中農(nóng)藥殘留提取十分有效，但針對(duì)特殊基質(zhì)或特殊農(nóng)藥，須對(duì)QuEChERS方法不斷完善發(fā)展。近年來，大量的學(xué)者針對(duì)QuEChERS方法的提取和凈化部分進(jìn)行不同程度的改進(jìn)，主要包括pH值、提取溶劑、凈化的優(yōu)化。

QuEChERS方法最初使用無緩沖液條件下進(jìn)行，在應(yīng)用過程中發(fā)現(xiàn)在高或低pH值下降解的敏感化合物的回收率差。為了克服局限性，歐洲標(biāo)準(zhǔn)委員會(huì)（CEN）[37]和美國(guó)分析化學(xué)家協(xié)會(huì)（AOAC）[38]制定了官方方法： 在提取過程中引入檸檬酸鹽緩沖液（相對(duì)較低的緩沖能力）或乙酸鹽緩沖液（較強(qiáng)的緩沖能力）。通過添加緩沖溶液，2種方法均出現(xiàn)pH值為5左右的萃取溶劑，有利于萃取pH值依賴性農(nóng)藥。Lehotay等在果蔬農(nóng)藥殘留檢測(cè)中添加醋酸鈉形成緩沖萃取劑，測(cè)定了32種農(nóng)藥殘留，回收率為 （95±10）%，包括百菌清等pH值敏感農(nóng)藥[39]。

目前大量的有機(jī)溶劑，如丙酮、乙腈、乙酸乙酯等，廣泛用于果蔬中農(nóng)藥殘留分析[40]，而乙腈（醋酸或甲酸酸化的乙腈）是最常見的萃取溶劑[37，40]，不僅在水果和蔬菜等含水量高的基質(zhì)中提取農(nóng)藥回收率高[41-42]，同時(shí)可以穿透樣品基體的水相，添加鹽后可以實(shí)現(xiàn)兩相分離[43]。隨著基質(zhì)的復(fù)雜化以及農(nóng)藥的多樣化，混合萃取溶劑在QuEChERS提取過程中不斷發(fā)展。Sivaperumal等用乙腈、乙酸乙酯（體積比為25 ∶ 75）混合溶液萃取，經(jīng)d-SPE凈化后采用超高效液相色譜串聯(lián)飛行質(zhì)譜（UHPLC-Q-TOF/MS）技術(shù)對(duì)芒果中68種殘留農(nóng)藥進(jìn)行測(cè)定，3種濃度水平（10、50、100 μg/kg）的回收率都在70%～122%之間，檢出限和定量限范圍分別為 0.5～7.0 μg/kg、2～25 μg/kg[44]。

凈化是QuEChERS法的關(guān)鍵步驟，可以極大程度地影響農(nóng)藥殘留檢測(cè)的定量限和檢出限，其中最常見的凈化劑為MgSO4、石墨化碳黑（GCB）、十八烷基硅烷（C18）等。根據(jù)這些傳統(tǒng)凈化劑的優(yōu)缺點(diǎn)[45]，可將果蔬分為3類，一般的果蔬、高色素的果蔬和高色素及脂肪的果蔬。在QuEChERS法中選擇合適的吸附劑組合很大程度上取決于果蔬的類別。一般的果蔬采用N-丙基乙二胺（PSA）+MgSO4進(jìn)行去除有機(jī)酸、部分糖[44，46]，高色素的果蔬則一般以PSA、石墨化碳（GCB）+MgSO4的組合去除有機(jī)酸、部分糖以及色素[47-48]，而對(duì)于高色素及脂肪的果蔬，會(huì)利用C18可以消除脂肪等非極性雜質(zhì)的優(yōu)勢(shì)，在此基礎(chǔ)上添加C18凈化劑進(jìn)行除雜[49]。

1.4 其他前處理技術(shù)

除以上幾種比較常用的前處理技術(shù)外，凝膠滲透色譜法（gel permeation chromatography，簡(jiǎn)稱GPC），超聲波輔助萃?。╱ltrasound assisted extraction，簡(jiǎn)稱UAE），濁點(diǎn)萃取法（cloud point extraction，簡(jiǎn)稱CPE）等在果蔬農(nóng)藥殘留前處理過程中也有所應(yīng)用。Ramos等開發(fā)了超聲輔助基質(zhì)固相分散法，用于提取和凈化水果中的15種有機(jī)磷農(nóng)藥和9種三嗪類農(nóng)藥，超聲反應(yīng)器在50%振幅下進(jìn)行 1 min 的超聲處理前處理效果最佳，基本沒有基質(zhì)效應(yīng)[50]。周璐等建立了濁點(diǎn)萃取-正己烷反萃取氣相色譜（FPD）聯(lián)用法對(duì)蘋果汁中5種有機(jī)磷農(nóng)藥的殘留進(jìn)行測(cè)定[51]。5種目標(biāo)物在0.05～2.00 mg/L范圍內(nèi)線性相關(guān)系數(shù)范圍為0.998 6～0.999 6，方法的檢出限為0.13～1.50 μg/kg。

2 農(nóng)藥殘留檢測(cè)技術(shù)

在過去的幾十年中，已經(jīng)開發(fā)出許多檢測(cè)技術(shù)來測(cè)定果蔬中的農(nóng)藥殘留，其中色譜法和色譜質(zhì)譜聯(lián)用法是檢測(cè)的主要手段。基于其靈敏度、分離和鑒定能力，氣相色譜和液相色譜通常是農(nóng)藥殘留檢測(cè)的首選。但是色譜法對(duì)復(fù)雜樣品的農(nóng)藥殘留檢測(cè)有一定的限制，針對(duì)這一局限性，色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法（氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)、液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)）得到了廣泛應(yīng)用。近年來，為了滿足快速、簡(jiǎn)單及選擇性高的農(nóng)藥檢測(cè)需求，酶聯(lián)免疫分析技術(shù)、生物傳感器等檢測(cè)技術(shù)不斷發(fā)展。表3總結(jié)了幾種檢測(cè)技術(shù)在果蔬農(nóng)藥殘留中的應(yīng)用。

2.1 色譜法

氣相色譜法（gas chromatography，GC）適用于以氣體和可揮發(fā)物質(zhì)作為分析對(duì)象，是一種經(jīng)典分析方法。其原理是將前處理后的樣品注入氣相色譜柱，升溫汽化固相分離檢測(cè)，通過物質(zhì)的保留時(shí)間進(jìn)行定性，峰高和標(biāo)準(zhǔn)曲線進(jìn)行定量。通過GC進(jìn)行農(nóng)藥殘留分析通常與特定的檢測(cè)器結(jié)合使用，例如電子捕獲檢測(cè)器（ECD）[52]、火焰光度檢測(cè)器（FPD）[8，53]、氮磷檢測(cè)器（NPD）[55]和火焰電離檢測(cè)器（FID）[22-23]。然而，隨著持久性和毒性較低的極性農(nóng)藥的使用增加，由于其熱穩(wěn)定性差和高沸點(diǎn)的特質(zhì)，GC檢測(cè)方法的弊端顯現(xiàn)，使用有所減少[15]。

液相色譜法（liquid chromatography，簡(jiǎn)稱LC）廣泛應(yīng)用于農(nóng)藥殘留分析，絕大部分采用了光電二極管陳列檢測(cè)器（PDA）、紫外檢測(cè)器（UV）、二極管陣列檢測(cè)器（DAD）[26]。高效液相色譜法（HPLC）是液相色譜法中最常用的方法，適用于相對(duì)分子量較大、極性較強(qiáng)、沸點(diǎn)較高及熱穩(wěn)定性較差的農(nóng)藥的分離檢測(cè)，彌補(bǔ)了氣相色譜不能分離熱穩(wěn)定性和揮發(fā)性差的農(nóng)藥的局限[67]。同時(shí)，HPLC因其快速、高效、準(zhǔn)確性高等優(yōu)勢(shì)在果蔬農(nóng)藥殘留檢測(cè)中廣泛應(yīng)用（表3）。

2.2 色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法

色譜-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)是結(jié)合色譜法和質(zhì)譜（MS）的新檢測(cè)技術(shù)，常用在果蔬農(nóng)藥多殘留分析領(lǐng)域。質(zhì)譜的引入可以克服結(jié)構(gòu)干擾，有效分離復(fù)雜樣品中的農(nóng)藥，檢測(cè)多殘留農(nóng)藥及其代謝物，還可同時(shí)對(duì)其進(jìn)行定量、定性分析，并提供來自精準(zhǔn)分子質(zhì)量和裂解模式的結(jié)構(gòu)信息。質(zhì)譜分析器種類很多，其中四級(jí)桿分析器（quadrupole，簡(jiǎn)稱Q）、離子阱分析器（ion trap，簡(jiǎn)稱IT）和飛行時(shí)間分析器（time of flight mass，簡(jiǎn)稱TOF）最為常用。為了達(dá)到增加結(jié)構(gòu)信息的目的，大多數(shù)情況下選用具有串聯(lián)質(zhì)譜功能的質(zhì)量分析器，如Q-TOF、Q-Q-Q[15]。在色譜-質(zhì)譜聯(lián)用系統(tǒng)中，被分析的樣品先在色譜系統(tǒng)中分離，然后從色譜柱中洗脫出來的餾分進(jìn)行電離并進(jìn)入質(zhì)量分析器進(jìn)行測(cè)定。農(nóng)藥覆蓋范圍廣、樣品制備簡(jiǎn)便、無需衍生化、靈敏度高、選擇性強(qiáng)等優(yōu)點(diǎn)[26，68-70]是色譜-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)廣泛應(yīng)用于農(nóng)藥檢測(cè)、鑒定和定量分析的重要原因。表3總結(jié)了色譜-質(zhì)譜聯(lián)用在果蔬農(nóng)藥殘留檢測(cè)的研究。

2.3 其他檢測(cè)方法

近年來，酶聯(lián)免疫分析技術(shù)及生物傳感器法在果蔬農(nóng)藥殘留檢測(cè)中的應(yīng)用頻頻被報(bào)道。酶聯(lián)免疫法（ELISA）在免疫分析中使用最為廣泛，是根據(jù)抗原與抗體相互作用原理來確定農(nóng)藥的含量[71]。該技術(shù)的缺點(diǎn)是抗體不穩(wěn)定，會(huì)導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)結(jié)果有偏差，且不能同時(shí)準(zhǔn)確分析多種農(nóng)藥成分，只能作為輔助方法進(jìn)行監(jiān)測(cè)[15]，但基于具有簡(jiǎn)易快捷的特點(diǎn)以及較高的靈敏度和選擇性，應(yīng)用在果蔬農(nóng)藥殘留快速檢測(cè)中具有很大的發(fā)展?jié)摿?。Navarro等使用雙酶聯(lián)免疫吸附法檢測(cè)了柑橘汁中氯吡硫磷和倍硫磷的殘留量，該方法測(cè)得氯吡硫磷的檢出限為（0.20±0.04） μg/L，倍硫磷檢出限為（0.50±006） μg/L，且二者的回收率均為95%～106%[62]。Sun等建立了一種多酶示蹤劑形式的ElISA法測(cè)定蔬菜和果汁中西維因和速滅威含量，2種農(nóng)藥回收率均超過70%，檢出限為0.15 μg/L（西維因）和1.2 μg/L（速滅威）[63]。

生物傳感器通過生物功能物質(zhì)與合適的轉(zhuǎn)換元件充分結(jié)合，對(duì)特定類別的化合物、生物活性物質(zhì)進(jìn)行選擇性分析。與傳統(tǒng)檢測(cè)技術(shù)相比，生物傳感器檢測(cè)法具有檢樣微量、成本低、靈敏度高、分析速度快等優(yōu)點(diǎn)[72]，其中壓電生物傳感器、光學(xué)生物傳感器、電化學(xué)生物傳感器等是果蔬農(nóng)藥殘留檢測(cè)的主要生物傳感器類型[15]。Caetano等構(gòu)建了基于抑制乙酰膽堿酯酶（AchE）活性的電化學(xué)生物傳感器，用于測(cè)定番茄中西維因的殘留量，該方法檢出限為3.2 μg/L[64]。

3 納米材料在果蔬農(nóng)藥殘留檢測(cè)的應(yīng)用

隨著納米材料的不斷發(fā)展，研究者們不斷開發(fā)基于納米材料的農(nóng)藥前處理技術(shù)和快速檢測(cè)方法。納米材料是一種三維空間中至少有一維在納米尺度范圍內(nèi)（1～100 nm）的材料。近年來，碳納米材料（碳納米管、石墨烯）、半導(dǎo)體納米材料（量子點(diǎn)）及納米氧化物（二氧化鈦、四氧化三鐵）等在果蔬農(nóng)藥殘留檢測(cè)中成為不可或缺的一部分[73-74]。

納米級(jí)別的材料具有塊狀材料所不具備的表面效應(yīng)及強(qiáng)吸附能力[75]。為實(shí)現(xiàn)檢出限低、分離和富集一體化的凈化效果，納米材料在固相微萃取、磁固相萃取、基質(zhì)固相萃取和QuEChERS等果蔬農(nóng)藥殘留前處理技術(shù)中應(yīng)用廣泛。Chatzimitakos等在基質(zhì)固相萃取時(shí)使用磁性氧化石墨烯進(jìn)行凈化后，利用GC-MS分離檢測(cè)了從蔬菜（白菜、韭菜、菊苣）提取的45種多類農(nóng)藥[73]。磁性氧化石墨烯具有親水性和強(qiáng)吸附性，可以與高含水量蔬菜有效混合，在3種蔬菜中檢出率均為89%～106%，定量限更是達(dá)到0.4～4.0 μg/kg。多壁碳納米管（MWCNT）結(jié)合其大表面積和獨(dú)特結(jié)構(gòu)，具有強(qiáng)吸附性，是一種固相微萃取的可替代凈化劑。Han等建立了QuEChERS-HPLC-MS/MS法測(cè)定韭菜、萵苣和花環(huán)菊花中70種農(nóng)藥殘留，前處理分別采用MWCNT、GCB、PSA作為凈化劑，結(jié)果表明，MWCNT的凈化性能優(yōu)于GCB和PSA，回收率較高，范圍為74%～119%，同時(shí)70種農(nóng)藥的檢出限（0.1～2.4 μg/kg）和定量限（0.3～7.9 μg/kg）都較低[76]。

金屬半導(dǎo)晶體納米材料量子點(diǎn)（quantum dot，簡(jiǎn)稱QD）擁有獨(dú)特的光學(xué)性質(zhì)，量子點(diǎn)與目標(biāo)分析物發(fā)生物理或化學(xué)反應(yīng)，能夠?qū)е掳l(fā)光增強(qiáng)或猝滅，以此來測(cè)定目標(biāo)物的濃度[77]。量子點(diǎn)表面易進(jìn)行功能修飾的特點(diǎn)以及光學(xué)性質(zhì)，促進(jìn)了其在農(nóng)藥殘留檢測(cè)中的應(yīng)用。Luan等以建立了CdTe量子點(diǎn)為信號(hào)傳感器、乙酰膽堿酯酶（AchE）為識(shí)別分子的生物傳感器，已經(jīng)應(yīng)用于蘋果中有機(jī)磷農(nóng)藥的測(cè)定[78]。有機(jī)磷農(nóng)藥抑制了AchE活力，從而改變CdTe/AchE的熒光強(qiáng)度，可以衡量有機(jī)磷農(nóng)藥含量。在最佳條件下，對(duì)硫磷和對(duì)氧磷的線性范圍為5～100 μg/L，檢測(cè)限為10 μg/L。為實(shí)現(xiàn)特異性檢測(cè)果蔬中農(nóng)藥殘留，Huang等用O，O-二甲基-（2，2-二氯乙烯基）磷酸酯的分子印跡聚合物（MIPs）包覆混合量子點(diǎn)，選擇性吸附測(cè)定敵敵畏，而量子點(diǎn)的加入大大提高了測(cè)定敵敵畏的靈敏度，檢出限達(dá)到1.27 μg/L，并成功應(yīng)用于白菜中敵敵畏的測(cè)定，回收率為87.4%～101.0%[79]。

4 總結(jié)與展望

隨著人們食品安全意識(shí)的不斷增強(qiáng)，果蔬的農(nóng)藥殘留問題越來越受重視。果蔬基質(zhì)的復(fù)雜性、農(nóng)藥的多樣性，對(duì)果蔬農(nóng)藥殘留分析技術(shù)的發(fā)展起了推動(dòng)作用。近年來，樣品前處理過程已進(jìn)行了很大改進(jìn)，這些改進(jìn)技術(shù)具有提高靈敏度，減少樣品量、有機(jī)試劑、分析時(shí)間、基質(zhì)干擾的發(fā)展趨勢(shì)。而檢測(cè)技術(shù)也逐漸從色譜技術(shù)向色譜-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)轉(zhuǎn)移，同時(shí)，生物傳感器法和免疫技術(shù)近年來在果蔬農(nóng)藥殘留檢測(cè)中不斷開發(fā)應(yīng)用。不同的前處理和檢測(cè)技術(shù)都具有各自的適用范圍和優(yōu)缺點(diǎn)，在實(shí)際檢測(cè)中，需要結(jié)合果蔬的種類、農(nóng)藥的種類和限度，選擇適當(dāng)?shù)那疤幚砗蜋z測(cè)技術(shù)，來提高果蔬中農(nóng)藥殘留檢測(cè)的準(zhǔn)確度。

最近幾年，農(nóng)藥產(chǎn)業(yè)迅速發(fā)展，出現(xiàn)了不少新型農(nóng)藥，新型農(nóng)藥正朝著復(fù)合農(nóng)藥的方向發(fā)展，農(nóng)藥殘留檢測(cè)也逐漸向多種組分同時(shí)檢測(cè)分析的趨勢(shì)發(fā)展。農(nóng)藥殘留檢測(cè)需要生物技術(shù)與多種現(xiàn)代儀器分析技術(shù)相結(jié)合來提高檢測(cè)的準(zhǔn)確性和靈敏度。未來的農(nóng)藥殘留分析將與新材料結(jié)合，朝著安全化、微型化和自動(dòng)化分析的方向發(fā)展。研發(fā)高效快捷、高靈敏、高通量及自動(dòng)化的新型農(nóng)藥殘留檢測(cè)技術(shù)并將其應(yīng)用到實(shí)踐，將是未來研究熱門方向之一，將為我國(guó)農(nóng)藥殘留檢測(cè)打開一個(gè)多元化局面。

參考文獻(xiàn)：

[1]World Health Organization. World health statistics 2016：monitoring health for the SDGs，sustainable development goals[M]. Geneva：WHO Press，2016.

[2]Chen F，Zeng L Q，Zhang Y Y，et al. Degradation behaviour of methamidophos and chlorpyrifos in apple juice treated with pulsed electric fields[J]. Food Chemistry，2009，112（4）：956-961.

[3]Li R，Wei W，He L，et al. Chlorpyrifos residual behaviors in field crops and transfers during duck pellet feed processing[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry，2014，62（42）：10215-10221.

[4]Azam S M R，Ma H，Xu B，et al. Efficacy of ultrasound treatment in the removal of pesticide residues from fresh vegetables：a review[J]. Trends in Food Science & Technology，2020，97：417-432.

[5]何麗芳，王芳宇，鄒征歐，等. 衡陽(yáng)市蔬菜水果農(nóng)藥殘留現(xiàn)狀、原因與對(duì)策[J]. 衡陽(yáng)師范學(xué)院學(xué)報(bào)，2012，33（3）：82-85.

[6]易承學(xué)，徐 虹，蒲彥利，等. 2014年鎮(zhèn)江市夏季蔬菜農(nóng)藥殘留監(jiān)測(cè)分析[J]. 職業(yè)與健康，2015，31（3）：326-328.

[7]韋江峰，李 翔，胡支向，等. 柑橘中有機(jī)磷類農(nóng)藥使用調(diào)查初探[J]. 農(nóng)業(yè)與技術(shù)，2015，35（5）：36-37.

[8]Blankson G K，Osei-Fosu P，Adeendze E A，et al. Contamination levels of organophosphorus and synthetic pyrethroid pesticides in vegetables marketed in Accra，Ghana[J]. Food Control，2016，68：174-180.

[9]Samsidar A，Siddiquee S，Shaarani S M. A review of extraction，analytical and advanced methods for determination of pesticides in environment and foodstuffs[J]. Trends in Food Science & Technology，2018，71：188-201.

[10]董亞蕾，劉文婧，曹 進(jìn)，等. 國(guó)內(nèi)食品中農(nóng)藥多殘留檢測(cè)技術(shù)的研究進(jìn)展[J]. 分析試驗(yàn)室，2017，36（2）：241-248.

[11]Golge O，Kabak B. Determination of 115 pesticide residues in oranges by high-performance liquid chromatography-triple-quadrupole mass spectrometry in combination with QuEChERS method[J]. Journal of Food Composition & Analysis，2015，41：86-97.

[12]Pang G F，Chang Q Y，Bai R B，et al. Simultaneous screening of 733 pesticide residues in fruits and vegetables by a GC/LC-Q-TOFMS combination technique[J]. Engineering，2019，6（4）：375-489.

[13]王新雄，成秀娟，徐偉松，等. 農(nóng)產(chǎn)品農(nóng)藥殘留檢測(cè)技術(shù)的研究進(jìn)展[J]. 廣西農(nóng)業(yè)科學(xué)，2008，39（5）：700-704.

[14]張人允，曲 瑩，徐佳佳. 食品農(nóng)藥殘留檢測(cè)中樣品前處理技術(shù)分析[J]. 食品安全導(dǎo)刊，2019（15）：82-83.

[15]Narenderan S T，Meyyanathan S N，Babu B. Review of pesticide residue analysis in fruits and vegetables. Pre-treatment，extraction and detection techniques[J]. Food Research International，2020，133：109141.

[16]李 曄，袁 佗. 濃縮果汁中擬除蟲菊酯類農(nóng)藥殘留檢測(cè)[J]. 中國(guó)衛(wèi)生檢驗(yàn)雜志，2008（9）：1774-1775.

[17]Pose-Juan E，Cancho-Grande B，Rial-Otero R，et al. The dissipation rates of cyprodinil，fludioxonil，procymidone and vinclozoline during storage of grape juice[J]. Food Control，2006，17，1012-1017.

[18]Sannino A，Bolzoni L，Bandini M. Application of liquid chromatography with electrospray tandem mass spectrometry to the determination of a new generation of pesticides in processed fruits and vegetables[J]. Journal of Chromatography A，2004，1036（2）：161-169.

[19]Wang P，Yang X，Wang J，et al. Multi-residue method for determination of seven neonicotinoid insecticides in grains using dispersive solid-phase extraction and dispersive liquid-liquid micro-extraction by high performance liquid chromatography[J]. Food Chemistry，2012，134（3）：1691-1698.

[20]Grimalt S，Sancho J V，Pozo O J，et al. Quantification，confirmation and screening capability of UHPLC coupled to triple quadrupole and hybrid quadrupole time-of-flight mass spectrometry in pesticide residue analysis[J]. Journal of Mass Spectrometry，2010，45（4）：421-436.

[21]Ho Y M，Tsoi Y K，Leung K S. Highly sensitive and selective organophosphate screening in twelve commodities of fruits，vegetables and herbal medicines by dispersive liquid-liquid microextraction[J]. Analytica Chimica Acta，2013，77（5）：58-66.

[22]Farajzadeh M A，Khoshmaram L. Air-assisted liquid-liquid microextraction-gas chromatography-flame ionisation detection：a fast and simple method for the assessment of triazole pesticides residues in surface water，cucumber，tomato and grape juices samples[J]. Food Chemistry，2013，141（3）：1881-1887.

[23]Farajzadeh M A，F(xiàn)eriduni B，Afshar M M. Development of counter current salting-out homogenous liquid-liquid extraction for isolation and preconcentration of some pesticides from aqueous samples[J]. Analytica Chimica Acta，2015，88 （5）：122-131.

[24]Timofeeva I，Shishov A，Kanashina D，et al. On-line in-syringe sugaring-out liquid-liquid extraction coupled with HPLC-MS/MS for the determination of pesticides in fruit and berry juices[J]. Talanta，2017，16 （7）：761-767.

[25]王慶齡，裘鈞陶，詹越城，等. 復(fù)合小柱結(jié)合HPLC-MS/MS法快速測(cè)定果蔬及茶葉和大米中34種農(nóng)藥殘留[J]. 農(nóng)產(chǎn)品加工，2019（6）：56-60.

[26]Jin B H，Xie L Q，Guo Y F，et al. Multi-residue detection of pesticides in juice and fruit wine：a review of extraction and detection methods[J]. Food Research International，2012，46（1）：399-409.

[27]Bakrc G T，Acay D B Y，Bakrc F，et al. Pesticide residues in fruits and vegetables from the Aegean region，Turkey[J]. Food chemistry，2014，160：379-392.

[28]Ravelo-Pérez L M，Hernández-Borges J，Rodríguez-Delgado M A. Multi-walled carbon nanotubes as efficient solid-phase extraction materials of organophosphorus pesticides from apple，grape，orange and pineapple fruit juices[J]. Journal of Chromatography A，2008，1211（1/2）：33-42.

[29]Fan S，Zhao P，Yu C，et al. Simultaneous determination of 36 pesticide residues in spinach and cauliflower by LC-MS/MS using multi-walled carbon nanotubes-based dispersive solid-phase clean-up[J]. Food Additives & Contaminants，2014，31（1）：73-82.

[30]Guan S X，Yu Z G，Yu H N，et al. Multi-Walled carbon nanotubes as matrix Solid-Phase dispersion extraction adsorbent for simultaneous analysis of residues of nine organophosphorus pesticides in fruit and vegetables by rapid resolution LC-MS-MS[J]. Chromatographia，2011，73（1）：33-41.

[31]Zuin V G，Schellin M，Montero L，et al. Comparison of stir bar sorptive extraction and membrane-assisted solvent extraction as enrichment techniques for the determination of pesticide and benzo[a]pyrene residues in Brazilian sugarcane juice[J]. Journal of Chromatography A，2006，1114（2）：180-187.

[32]Kin C M，Huat T G. Headspace solid-phase microextraction for the evaluation of pesticide residue contents in cucumber and strawberry after washing treatment[J]. Food Chemistry，2010，123（3）：760-764.

[33]Anastassiades M，Lehotay S J，Stajnbaher D，et al. Fast and easy multiresidue method employing acetonitrile extraction/partitioning and “dispersive solid-phase extraction” for the determination of pesticide residues in produce[J]. Journal of AOAC International，2003，86（2）：412-431.

[34]Biziuk M，Stocka J. Multiresidue methods for determination of currently used pesticides in fruits and vegetables using QuEChERS technique[J]. International Journal of Environmental Science and Development，2015，6（1）：18-22.

[35]Dankyi E，Carboo D，Gordon C，et al. Application of the QuEChERS procedure and LC-MS/MS for the assessment of neonicotinoid insecticide residues in cocoa beans and shells[J]. Journal of Food Composition and Analysis，2015，44：149-157.

[36]Prodhan M D H，Papadakis E N，Papadopoulou-Mourkidou E. Analysis of pesticide residues and their variability in cabbage using QuEChERS extraction in combination with LC-MS/MS[J]. Food Analytical Methods，2016，9（12）：3470-3478.

[37]Alexandre P. European Committee for Standardization[C]. Amman：Franco Jordanian Forum on Water Sustainability，2014.

[38]Lehotay S J. Determination of pesticide residues in foods by acetonitrile extraction and partitioning with magnesium sulfate：collaborative study[J]. Journal of AOAC International，2007，90（2）：485-520.

[39]Lehotay S J，Mastovská K，Lightfield A R. Use of buffering and other means to improve results of problematic pesticides in a fast and easy method for residue analysis of fruits and vegetables[J]. Journal of AOAC International，2005，88（2）：615-629.

[40]Kim L，Lee D，Cho H K，et al. Review of the QuEChERS method for the analysis of organic pollutants：persistent organic pollutants，polycyclic aromatic hydrocarbons，and pharmaceuticals[J]. Trends in Environmental Analytical Chemistry，2019，22：e00063.

[41]González-Curbelo M ，Socas-Rodríguez B，Herrera-Herrera A V，et al. Evolution and applications of the QuEChERS method[J]. TrAC Trends in Analytical Chemistry，2015，71：169-185.

[42]Grimalt S，Dehouck P. Review of analytical methods for the determination of pesticide residues in grapes[J]. Journal of Chromatography A，2016，1433：1-23.

[43]Schenck F J，Callery P，Gannett P M，et al. Comparison of magnesium sulfate and sodium sulfate for removal of water from pesticide extracts of foods[J]. Journal of AOAC International，2002，85（5）：1177-1180.

[44]Sivaperumal P，Salauddin A，Kumar A R，et al. Determination of pesticide residues in mango matrices by ultra high-performance liquid chromatography coupled with quadrupole time-of-flight mass spectrometry[J]. Food Analytical Methods，2017，10（7）：2346-2357.

[45]Alcntara D B，F(xiàn)ernandes T S M，Nascimento H O，et al. Diagnostic detection systems and QuEChERS methods for multiclass pesticide analyses in different types of fruits：an overview from the last decade[J]. Food Chemistry，2019，298：124958.

[46]Suganthi A，Bhuvaneswari K，Ramya M. Determination of neonicotinoid insecticide residues in sugarcane juice using LCMSMS[J]. Food Chemistry，2018，241：275-280.

[47]Chen K，Liu X，Wu X，et al. Simultaneous determination of afidopyropen and its metabolite in vegetables，fruit and soil using UHPLC-MS/MS[J]. Food Additives & Contaminants，2018，35（4）：716-723.

[48]Malhat F，Boulangé J，Abdelraheem E，et al. Validation of QuEChERS based method for determination of fenitrothion residues in tomatoes by gas chromatography-flame photometric detector：decline pattern and risk assessment[J]. Food Chemistry，2017，229：814-819.

[49]Lin X Y，Mou R X，Cao Z Y，et al. Analysis of pyrethroid pesticides in Chinese vegetables and fruits by GC-MS/MS[J]. Chemical Papers，2018，72（8）：1953-1962.

[50]Ramos J J，Rial-Otero R，Ramos L，et al. Ultrasonic-assisted matrix solid-phase dispersion as an improved methodology for the determination of pesticides in fruits[J]. Journal of Chromatography A，2008，1212（1/2）：145-149.

[51]周 璐，陳 敏，張 凱，等. 濁點(diǎn)萃取-正己烷反萃取氣相色譜法測(cè)定蘋果汁中5種有機(jī)磷農(nóng)藥殘留[J]. 山東農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)（自然科學(xué)版），2011，42（4）：492-498.

[52]董 娟，羅小玲，謝 勇，等. 胡蘿卜及胡蘿卜汁中百菌清和擬除蟲菊酯類農(nóng)藥的分析研究[J]. 現(xiàn)代食品科技，2009，25（1）：108-110.

[53]Xiao Q，Hu B，Yu C H，et al. Optimization of a single-drop microextraction procedure for the determination of organophosphorus pesticides in water and fruit juice with gas chromatography-flame photometric detection[J]. Talanta，2006，69（4）：848-855.

[54]Liu X，Mitrevski B，Li D，et al. Comprehensive two-dimensional gas chromatography with flame photometric detection applied to organophosphorus pesticides in food matrices[J]. Microchemical Journal，2013，111：25-31.

[55]Mahpishanian S，Sereshti H，Baghdadi M. Superparamagnetic core-shells anchored onto graphene oxide grafted with phenylethyl amine as a nano-adsorbent for extraction and enrichment of organophosphorus pesticides from fruit，vegetable and water samples[J]. Journal of Chromatography A，2015，140 （6）：48-58.

[56]Wang X L，Tang Q H，Wang Q Q，et al. Study of a molecularly imprinted solid-phase extraction coupled with high-performance liquid chromatography for simultaneous determination of trace trichlorfon and monocrotophos residues in vegetables[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture，2014，94（7）：1409-1415.

[57]Topuz S，zhan G，Alpertunga B. Simultaneous determination of various pesticides in fruit juices by HPLC-DAD[J]. Food Control，2005，16（1）：87-92.

[58]Tian F J，Qiao C K，Luo J，et al. Development and validation of a method for the analysis of five diamide insecticides in edible mushrooms using modified QuEChERS and HPLC-MS/MS[J]. Food Chemistry，2020，333：127468.

[59]Cervera M I，Portolés T，Pitarch E，et al. Application of gas chromatography time-of-flight mass spectrometry for target and non-target analysis of pesticide residues in fruits and vegetables[J]. Journal of Chromatography A，2012，1244：168-177.

[60]張偉軍. HPLC-MS/MS法同時(shí)測(cè)定蔬菜中38種農(nóng)藥殘留[J]. 湖南農(nóng)業(yè)科學(xué)，2018（6）：91-95.

[61]Lima V G，Campos V P，Santana T C，et al. Determination of agrochemical multi-residues in grapes. Identification and confirmation by gas chromatography-mass spectrometry[J]. Analytical Methods，2017，9（40）：5880-5889.

[62]Navarro P，Pérez A J，Gabaldón J A，et al. Detection of chemical residues in tangerine juices by a duplex immunoassay[J]. Talanta，2013，11（6）：33-38.

[63]Sun J，Dong T，Zhang Y，et al. Development of enzyme linked immunoassay for the simultaneous detection of carbaryl and metolcarb in different agricultural products[J]. Analytica Chimica Acta，2010，666（1/2）：76-82.

[64]Caetano J，Machado S A. Determination of carbaryl in tomato“in natura”using an amperometric biosensor based on the inhibition of acetylcholinesterase activity[J]. Sensors and Actuators B，2008，129（1）：40-46.

[65]Tan X，Hu Q，Wu J，et al. Electrochemical sensor based on molecularly imprinted polymer reduced graphene oxide and gold nanoparticles modified electrode for detection of carbofuran[J]. Sensors and Actuators B，2015，220：216-221.

[66]Miao S S，Wu M S，Ma L Y，et al. Electrochemiluminescence biosensor for determination of organophosphorous pesticides based on bimetallic Pt-Au/multi-walled carbon nanotubes modified electrode[J]. Talanta，2016，158：142-151.

[67]Seebunrueng K，Santaladchaiyakit Y，Srijaranai S. Vortex-assisted low density solvent based demulsified dispersive liquid-liquid microextraction and high-performance liquid chromatography for the determination of organophosphorus pesticides in water samples[J]. Chemosphere，2014，103：51-58.

[68]Kujawski M W，Namie s'nik J. Levels of 13 multi-class pesticide residues in Polish honeys determined by LC-ESI-MS/MS[J]. Food Control，2011，22（6）：914-919.

[69]Machado I，Gérez N，Pistón M，et al. Determination of pesticide residues in globe artichoke leaves and fruits by GC-MS and LC-MS/MS using the same QuEChERS procedure[J]. Food Chemistry，2017，227：227-236.

[70]趙 麗，農(nóng)蕊瑜，師 真，等. 分散固相萃取-氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用測(cè)定茶葉中的28種農(nóng)藥殘留[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué)，2020，48（12）：208-215.

[71]Qian G L，Wang L M，Wu Y R，et al. A monoclonal antibody-based sensitive enzyme-linked immunosorbent assay（ELISA）for the analysis of the organophosphorous pesticides chlorpyrifos-methyl in real samples[J]. Food Chemistry，2009，117（2）：364-370.

[72]Patel H，Rawtani D，Agrawal Y. A newly emerging trend of chitosan-based sensing platform for the organophosphate pesticide detection using acetylcholinesterase-a review[J]. Trends in food science & technology，2019，85：78-91.

[73]Chatzimitakos T G，Karali K K，Stalikas C D. Magnetic graphene oxide as a convenient nanosorbent to streamline matrix solid-phase dispersion towards the extraction of pesticides from vegetables and their determination by GC-MS[J]. Microchemical Journal，2019，151：104247.

[74]Dabbagh M S，F(xiàn)arajzadeh M A. Introduction of a new procedure for the synthesis of polysulfone magnetic nanoparticles and their application in magnetic solid phase extraction for the extraction of some pesticides from fruit and vegetable juices[J]. Microchemical Journal，2020，158：105238.

[75]Kaur R，Hasan A，Iqbal N，et al. Synthesis and surface engineering of magnetic nanoparticles for environmental cleanup and pesticide residue analysis：a review[J]. Journal of Separation Science，2014，37（14）：1805-1825.

[76]Han Y，Zou N，Song L，et al. Simultaneous determination of 70 pesticide residues in leek，leaf lettuce and garland chrysanthemum using modified QuEChERS method with multi-walled carbon nanotubes as reversed-dispersive solid-phase extraction materials[J]. Journal of Chromatography B，2015，1005：56-64.

[77]趙 芳，李為琴，段江蓮，等. 量子點(diǎn)傳感器在農(nóng)藥殘留檢測(cè)中的應(yīng)用研究進(jìn)展[J]. 食品研究與開發(fā)，2020，41（9）：213-220.

[78]Luan E X，Zheng Z Z，Li X Y，et al. Inkjet-assisted layer-by-layer printing of quantum dot/enzyme microarrays for highly sensitive detection of organophosphorous pesticides[J]. Analytica Chimica Acta，2016，916：77-83.

[79]Huang S Y，Tan L，Zhang L，et al. Molecularly imprinted mesoporous silica embedded with perovskite CsPbBr3 quantum dots for the fluorescence sensing of 2，2-dichlorovinyl dimethyl phosphate[J]. Sensors and Actuators B，2020，325：128751. 許洪高，周琪樂，魯 緋，等. 螺旋藻養(yǎng)殖加工和安全性研究進(jìn)展[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué)，2021，49（6）：10-19.