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ARTP誘變技術選育黑木耳優(yōu)良發(fā)酵菌株初探*

2021-05-08 06:52馬欣欣平琳琳
中國食用菌 2021年3期
關鍵詞:菌絲體發(fā)酵液黑木耳

王 晨,馬欣欣,平琳琳,王 謙

(河北大學 生命科學院,河北 保定 071000)

當前食(藥)用真菌與發(fā)酵工業(yè)的交叉,成為食用菌行業(yè)進步的標志之一。液體菌種具有培養(yǎng)周期短、不受季節(jié)限制、利于規(guī)?;?、接種方便、菌絲體生長一致等優(yōu)勢[1-2],液體培養(yǎng)的方式能夠有效提高菌類產量和效益,而且在現代農業(yè)中的黑木耳產業(yè),液體菌種的應用已經成為產業(yè)常態(tài)。與此同時,對于其液體發(fā)酵過程中產生的次生代謝產物如黃酮、多酚、多糖等[3-6]的應用也愈發(fā)受到重視,良種選育已經成為發(fā)酵工業(yè)重要的應用基礎研究領域。黑木耳(Auricularia auriculae)作為我國食用菌產量排名第二的菌類,不僅口味鮮美而且營養(yǎng)豐富,還具有抗癌、降血脂、提高免疫力等作用[7]。目前食(藥)用菌一般采用孢子分離、雜交育種、紫外誘變等育種方法,近年來出現的ARTP誘變技術育種[8],在黑木耳育種研究中尚無報道。本試驗探究了ARTP育種技術在選育發(fā)酵性狀優(yōu)良的黑木耳細胞工程菌株方向的應用,并對其在發(fā)酵、液體菌種應用、多糖含量等方面開展了初步研究。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 供試菌種

供試菌株:出發(fā)菌株為黑木耳黑威半筋品種,黑龍江微生物研究所提供;細胞工程菌株:Aa66、Aa98、Aa101、Aa285。以上菌株均保存于河北大學食藥用真菌研究所。

1.1.2 供試培養(yǎng)基

PDA培養(yǎng)基:馬鈴薯(去皮) 20.0%、葡萄糖2.0%、麩皮 2.0%、瓊脂 2.0%、KH2PO40.1%、Mg-SO40.1%,pH自然。

液體發(fā)酵培養(yǎng)基:葡萄糖2.5%、玉米粉0.5%、豆粕粉0.5%、MgSO40.1%、酵母膏0.2%、KH2PO40.2%,pH自然。

1.2 ARTP誘變育種技術選育黑木耳細胞工程菌株

1.2.1 菌絲體的制備

按液體發(fā)酵培養(yǎng)基配方進行配制,500 mL三角瓶中裝液量200 mL,通過無菌操作對活化后的PDA斜面黑木耳菌種進行接種[9],并于28℃、160 r·min-1恒溫振蕩培養(yǎng)5 d[10],獲得黑木耳菌絲體。

1.2.2 菌懸液的制備

在超凈工作臺上,將制備好的黑木耳菌絲體發(fā)酵液經80目銅絲網過濾,濾液經移液槍取10 mL至離心管中,8 000 r·min-1離心5 min后棄上清,無菌水沖洗沉淀2次,再次離心后加入無菌水,搖勻后得菌懸液[11]。

1.2.3 ARTP誘變處理

在超凈工作臺中,用移液槍吸取10 μL菌懸液懸浮于載片上,并放入ARTP誘變儀操作倉中,將各參數分別設置為標準大氣壓下氣流量10 L·min-1、輸出功率100 W、輻射距離2 mm[12],誘變時間梯度為 0、10 s、15 s、20 s、25 s、30 s、35 s、40 s、45 s、50 s,在每個時間點設置3個平行樣品,0為對照組。將經過誘變處理后的載片夾放于裝有1 mL無菌水的EP管中,置于渦旋振蕩器上混合均勻,再用移液槍吸取300 μL液體涂布于再生培養(yǎng)基平板,封口膜密封后恒溫避光培養(yǎng)5 d~7 d,記錄再生菌株數,得到致死率曲線,并確定最佳誘變照射時間。

重復試驗,獲得大量黑木耳誘變菌株后,挑取再生培養(yǎng)基中長勢較好的菌株轉接于PDA培養(yǎng)基上,并進行標號記錄。

1.2.4 再生菌株的篩選

將經ARTP誘變所獲得的再生菌株以出發(fā)菌株黑威半筋為對照菌株,進行拮抗試驗[13]。選擇有明顯拮抗反應的再生菌種進行復篩試驗,包括萌發(fā)定植對比試驗[14]、生長速度和長勢對比試驗、營養(yǎng)生長酶活[15-19]對比試驗。

1.2.5 優(yōu)良菌種的真實性鑒定

經初篩與復篩后,參考中國農業(yè)行業(yè)標準NY/T 1730-2009食用菌菌種真實性鑒定ISSR法[20],選擇性狀優(yōu)良的再生菌株與出發(fā)株采用ISSR分子標記技術進行菌種真實性鑒定,確定其分子水平上的遺傳距離。

1.3 黑木耳細胞工程株發(fā)酵性能對比

1.3.1 發(fā)酵培養(yǎng)

按液體發(fā)酵培養(yǎng)基配方進行配制,250 mL三角瓶中裝液量100 mL,將PDA菌種以8%的接種量[10]轉接于制備好的液體發(fā)酵培養(yǎng)基中,并于28℃、160 r·min-1恒溫振蕩培養(yǎng)[10],進入搖床的第1天定時、定瓶(每隔8 h,每個菌種各3瓶) 取100 mL發(fā)酵全液進行各項指標檢測,并求平均值。

1.3.2 指標數值檢測

采用菌絲鮮重評價生物量[21];采用手持糖度計法測定殘?zhí)橇縖22];采用苯酚-硫酸法測定多糖含量[23]。

1.4 發(fā)酵菌種的生理指標檢測

經上述探究后,對較優(yōu)菌株進行發(fā)酵液pH[22]、氨基氮含量[24]、羧甲基纖維素酶、漆酶、半纖維素酶[15-19]等生理活性指標的檢測。

1.5 數據處理

數據采用SPSS軟件進行處理與分析。

2 結果與分析

2.1 ARTP誘變育種試驗結果

ARTP誘變菌絲體致死曲線見圖1。

圖1 ARTP誘變致死曲線Fig.1 Lethal curve of ARTP mutation

由圖1可知,在40 s時菌絲體的致死率為82.16%;45 s時菌絲體的致死率為91.08%;50 s時菌絲體的致死率為99.06%;55 s后致死率達到了100%。因此選用45 s為ARTP最佳誘變時間。

重復進行ARTP誘變試驗,共獲得285株長勢良好的再生菌株,依次編號為 Aa1、Aa2、Aa3、Aa4、……Aa285。

2.2 再生菌株初篩結果

通過ARTP誘變得到的285株再生菌株與出發(fā)菌株進行拮抗試驗后,共有36株與出發(fā)菌株產生明顯的拮抗反應,突變率為12.6%。

2.3 再生菌株復篩結果

經萌發(fā)定植對比試驗、生長速度和長勢對比試驗,對36株再生菌株進行比較,有23株生長較慢,菌絲較為稀疏,菌絲體較弱而淘汰。余下菌株篩選后有6株明顯優(yōu)于出發(fā)株,其生長情況對比見表1。

表1 6株再生菌株生長情況對比Tab.1 Growth comparison of 6 regenerated strains

由表1可知,Aa229表現較差,在萌發(fā)時間與菌絲生長速度上均弱于出發(fā)株黑威半筋,Aa278、Aa285表現與出發(fā)株較為接近,而Aa66、Aa98、Aa101表現較好,且與出發(fā)株黑威半筋存在極顯著性差異。6株再生菌株營養(yǎng)生殖階段的多酚氧化酶、漆酶、羧甲基纖維素酶酶活的對比情況見表2。

表2 6株再生菌株酶活性對比Tab.2 Comparison of enzyme activities of 6 regenerated strains

由表2可知,6株再生株在3中酶的活性測定中存在差異。綜合比較而言,Aa229、Aa278表現較差;其余4株菌株強于出發(fā)株黑威半筋、Aa66、Aa98、Aa101、Aa285明顯與出發(fā)株具有顯著性與極顯著性差異;Aa66在3種酶的測定中表現最優(yōu),且與出發(fā)株存在極顯著性差異。

2.4 菌株真實性鑒定結果

對篩選出的4株優(yōu)良菌株與出發(fā)株進行ISSRPCR擴增,其擴增圖譜見圖2。

圖2 部分引物對5個菌株的ISSR擴增圖譜Fig.2 ISSR amplification map of 5 strains by partial primers

由圖2可知,在隨機挑選的30條引物中,共有10條引物的擴增圖譜效果較好,穩(wěn)定合理且具有差異性。共獲得了42條擴增條帶,每條引物可獲得2條~5條擴增條帶,其中有27條擴增條帶與出發(fā)株黑威半筋有差異,擴增條帶大小在150 bp~2 000 bp內。采用Ntsys 2.10e對4株優(yōu)良再生菌株以及出發(fā)菌株的遺傳相似系數進行聚類分析,所構建遺傳關系聚類樹形圖見圖3。

圖3 優(yōu)良再生株與出發(fā)株遺傳關系聚類樹狀圖Fig.3 Dendrogram of genetic relationship between excellent regenerated plant and original plant

由圖3可知,4株優(yōu)良再生菌株與黑威半筋的變異范圍為0.650~0.880,表明4株優(yōu)良再生株均與出發(fā)株存在穩(wěn)定性差異。

2.5 液體發(fā)酵過程中生物量的變化

5株黑木耳菌株在液體培養(yǎng)過程中菌絲體鮮重變化結果見圖4。

圖4 5株黑木耳菌株在液體培養(yǎng)過程中菌絲體鮮重變化結果Fig.4 Changes of mycelial fresh weight of 5 strains of Auricularia auricula during liquid culture

由圖4可以得出,隨培養(yǎng)時間的增長,各菌株生物量均呈明顯上升趨勢。其中,4株優(yōu)良再生株最高生物量均高于出發(fā)株,但Aa285與其相差極小。觀察曲線走勢可看出,Aa101進入增殖生長期時間較晚,且與其他3株細胞工程株相差較大。綜合比較而言,Aa66與Aa98表現較為優(yōu)良,均在48 h時進入增值生長期,但Aa66較快的進入穩(wěn)定期,在136 h時生物量達到最大值32.96 g·100-1mL-1,明顯高于Aa98,更具有優(yōu)勢。

2.6 液體發(fā)酵培養(yǎng)中殘?zhí)橇康淖兓?/h3>

5株黑木耳菌株液體培養(yǎng)過程中發(fā)酵液內殘?zhí)堑淖兓Y果見圖5。

圖5 5株黑木耳菌株在液體培養(yǎng)過程中發(fā)酵液中殘?zhí)堑淖兓Y果Fig.5 Changes of residual sugar in fermentation broth of 5 strains of Auricularia auricula during liquid culture

由圖5可以得出,隨培養(yǎng)時間的增長,各菌株發(fā)酵液的殘?zhí)嵌染拭黠@下降趨勢,且與生物量的變化時間節(jié)點基本一致,這表明在菌絲生長的同時,會大量消耗碳源。對于碳源的分解能力依次為Aa66>Aa98>Aa101>黑威半筋>Aa285。

2.7 發(fā)酵液總多糖測定結果

5株黑木耳菌株發(fā)酵液多糖測定結果見表3。

表3 5株黑木耳菌株發(fā)酵液多糖測定結果Tab.3 Determination results of polysaccharides in fermented mash of 5 Auricularia auricular strains

在發(fā)酵培養(yǎng)過程中生物量達到最大時,取100 mL發(fā)酵液,經勻質機機械破碎,進行發(fā)酵液總多糖含量的測定,4株再生菌株多糖量均高于出發(fā)株,其中Aa66、Aa98與出發(fā)株相比有極顯著差異,其中Aa66最佳。

2.8 再生株Aa66的生理指標檢測結果

2.8.1 pH變化

再生株Aa66發(fā)酵過程中pH的變化情況見圖6。

圖6 pH變化情況Fig.6 Change of pH

如圖6所示,隨著發(fā)酵的進行,發(fā)酵液pH先下降后升高,但變化范圍較小,基本在5.5~7.4之間波動。

2.8.2 氨基氮含量測定結果

再生株Aa66發(fā)酵過程中氨基氮含量變化情況見圖7。

圖7 氨基氮含量變化Fig.7 Change of amino nitrogen content

如圖7所示,氨基氮含量隨發(fā)酵時間的上升呈增加趨勢,0~48 h時增加緩慢,48 h后增加較快。在160 h后,隨著生物量的下降,氨基氮含量呈上升趨勢,這表明在培養(yǎng)后期菌絲老化,發(fā)生菌球自溶現象,結構性蛋白快速分解,使得發(fā)酵液中氨基氮含量增多。

2.8.3 還原糖含量

再生株Aa66發(fā)酵過程中還原糖含量變化情況見圖8。

圖8 還原糖含量變化Fig.8 Change of reducing sugar content

如圖8所示,隨著發(fā)酵的進行,還原糖含量呈先增加后下降的趨勢,在遲緩期與對數生長期還原糖含量增加,表明在發(fā)酵初期菌絲體分解碳源能力較強,還原糖的生成量遠大于消耗量,在120 h時,達到最大值76.66 mg·100-1mL-1。在對數生長期后期以及進入穩(wěn)定期后,菌絲體大量生長,對于碳源的消耗能力進一步提高,還原糖含量下降。

2.8.4 酶活性測定結果

再生株Aa66發(fā)酵過程中3種酶活性變化情況見圖9。

圖9 酶活性變化Fig.9 Changes of enzyme activity

如圖9所示,在發(fā)酵培養(yǎng)過程中,3種酶活性均先增高后下降。羧甲基纖維素酶活性變化明顯,在0~48 h幾乎沒有變化,48 h后開始增加,96 h后快速上升,在136 h時達到最大值70.01 U·mL-1。而半纖維素酶與漆酶酶活性變化較小,半纖維素酶酶活性在144 h時達到最大值4.92 U·mL-1,漆酶酶活在120 h時達到最大值7.94 U·mL-1。在對數生長期,菌絲體生長迅速,需要較多的養(yǎng)分,因此產生大量的酶進行基質的分解,酶活性也隨之升高。當進入穩(wěn)定期,菌絲體產生大量次生代謝產物,此時對于養(yǎng)分需求逐步下降,導致酶的活力下降。由于酶易失活的特性,使其在后期呈直線下降。

3 討論

ARTP誘變育種作為一種微生物育種新技術,在細菌、放線菌、酵母菌上已有應用,在食(藥)用真菌領域的應用較少,而在黑木耳的誘變育種試驗中尚未報道。通過ARTP誘變育種技術,以黑威半筋為出發(fā)株,共獲得285株再生菌株,經一系列篩選試驗后,共獲得4株性狀優(yōu)良的再生株。通過液體發(fā)酵試驗,對比其發(fā)酵性能,通過生物量、分解碳源的能力、多糖產量為指標,確定最適發(fā)酵菌株為Aa66。后續(xù)試驗需要對Aa66菌株發(fā)酵的過程進行一系列生理指標的檢測,為Aa66菌株在生產上的應用奠定基礎。

在當前食用菌的發(fā)酵產業(yè)中,液體發(fā)酵工藝已取得規(guī)模性進展,菌種作為生產的第一要素,對食用菌產量與質量起決定性因素。細胞工程菌株Aa66是否可用于工業(yè)化生產,以及其在工業(yè)生產中實際的發(fā)酵性能,仍有待進一步探究。

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