謝勉姣, 周 鵬, 段 晶, 馬 秦, 王美青
(1. 軍事口腔醫(yī)學(xué)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,國(guó)家口腔疾病臨床醫(yī)學(xué)研究中心,陜西省口腔疾病國(guó)際聯(lián)合研究中心,空軍軍醫(yī)大學(xué)第三附屬醫(yī)院口腔解剖生理學(xué)教研室,2. 頜面外科,陜西 西安 710032;3. 佳木斯大學(xué)口腔醫(yī)學(xué)院口腔基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)教研室,黑龍江 佳木斯 154007)
軟骨細(xì)胞死亡是骨關(guān)節(jié)炎主要的細(xì)胞學(xué)變化之一[1],因此,軟骨細(xì)胞對(duì)力刺激的生物學(xué)響應(yīng)規(guī)律備受關(guān)注。 顳下頜關(guān)節(jié)髁突軟骨的主要功能之一是負(fù)重,生理性力刺激可促進(jìn)髁突軟骨的正常代謝活動(dòng),而異常力刺激則會(huì)影響細(xì)胞的正常功能,甚至導(dǎo)致細(xì)胞死亡[2]。 我們課題組在以往的研究中發(fā)現(xiàn),不同強(qiáng)度的流體剪切力(FFSS)可以導(dǎo)致大鼠髁突軟骨細(xì)胞出現(xiàn)不同的生物學(xué)響應(yīng)[3-4]。
整合素(Integrin)是重要的細(xì)胞表面跨膜受體,其胞內(nèi)區(qū)可以與骨架蛋白相接形成黏著斑,調(diào)節(jié)其與細(xì)胞外基質(zhì)(extracellular matrix,ECM)的結(jié)合,并介導(dǎo)細(xì)胞內(nèi)外力學(xué)信號(hào)的轉(zhuǎn)導(dǎo)[5]。 肌動(dòng)蛋白結(jié)合蛋白Talin 1 是細(xì)胞黏著斑的重要調(diào)節(jié)因子, 介導(dǎo)著Integrin 與肌動(dòng)蛋白(F-actin)的相互聯(lián)系,從而促進(jìn)細(xì)胞的遷移和斑點(diǎn)附著[6]。 當(dāng)整合素和Talin 1 與Factin 的結(jié)合因力刺激等原因而中斷,細(xì)胞便失去與ECM 的聯(lián)系, 過(guò)表達(dá)Bcl-2 家族中凋亡調(diào)節(jié)蛋白Bim, 釋放線(xiàn)粒體雙層膜腔內(nèi)儲(chǔ)存的細(xì)胞色素C(cytochrome C,Cyt C), 活化細(xì)胞內(nèi)源性凋亡通路,激活Caspase-3,從而引發(fā)凋亡[7]。
Calpain 的活化可以激發(fā)其水解多種活性蛋白,參與細(xì)胞骨架重構(gòu)、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)以及細(xì)胞凋亡等多種生理活動(dòng)[8-9]。 細(xì)胞內(nèi)鈣穩(wěn)態(tài)的失衡可以激活Calpain,而鈣內(nèi)流是細(xì)胞對(duì)力刺激的早期響應(yīng)之一,鈣內(nèi)流增加可通過(guò)活化Calpain 亞基鈣結(jié)合位點(diǎn), 引起Calpain 的構(gòu)象改變,促進(jìn)細(xì)胞骨架相關(guān)蛋白水解等效應(yīng)[10]。 本研究擬通過(guò)對(duì)軟骨細(xì)胞加載FFSS 引發(fā)細(xì)胞凋亡,觀(guān)察細(xì)胞內(nèi)鈣離子濃度的變化以及Calpain、Talin 和肌動(dòng)蛋白在此期間的變化情況, 以論證在FFSS 刺激作用下,軟骨細(xì)胞凋亡的相關(guān)分子機(jī)制。
取3 周齡雌性大鼠 (購(gòu)買(mǎi)于空軍軍醫(yī)大學(xué)動(dòng)物中心)10 只,體式顯微鏡下小心剝離髁突表面的組織,暴露軟骨本體部分,分離大鼠髁突軟骨細(xì)胞,于高糖培養(yǎng)基(HyClone 公司,美國(guó))中剪碎后,1 500 r/min 離心5 min,收集組織,使用5 mL 胰酶(HyClone 公司,美國(guó))于37 ℃消化組織20 min,使用2 mg/mL Ⅱ型膠原酶(Thermo 公司,美國(guó))于37 ℃下消化組織120 min,最終收集1 500 r/min 離心5 min后的沉淀, 使用新制含1%雙抗(HyClone 公司,美國(guó)),10%胎牛血清(Gibco 公司,美國(guó))高糖培養(yǎng)基重懸培養(yǎng)細(xì)胞,每2 天換1 次液。
將獲得的原代軟骨細(xì)胞接種于加力專(zhuān)用載玻片(Flexcell 公司,美國(guó))上,隨機(jī)分為對(duì)照組(即0 h組)、加力0.5 h 組、加力1 h 組、加力2 h 組、加力4 h 組;當(dāng)細(xì)胞生長(zhǎng)至90%融合時(shí),使用Flexcell 流體力學(xué)加載機(jī)以16 dyn/cm2(1 dyn/cm2=0.1 Pa)的剪切力進(jìn)行不同時(shí)長(zhǎng)的刺激。
根據(jù)試劑盒(Beyotime 公司,中國(guó))說(shuō)明,制作鈣離子含量標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn), 然后使用試劑盒中100 μL 細(xì)胞裂解液收集細(xì)胞,4 ℃、12 000×g離心5 min,取上清液;Bradford 法(Beyotime 公司,中國(guó))進(jìn)行蛋白濃度定量;設(shè)2 個(gè)重復(fù)孔,每個(gè)樣本取5 μL,使用去離子水補(bǔ)齊至50 μL;每孔加入150 μL 新制檢測(cè)工作液(檢測(cè)緩沖液∶顯色液=1∶1),室溫避光孵育10 min;酶標(biāo)儀(Eppendorf 公司,德國(guó))檢測(cè)575 nm 處吸光度值。 根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)求出每孔中鈣離子的含量,根據(jù)蛋白濃度換算1 μg 總蛋白細(xì)胞中含有的鈣離子量。
根據(jù)試劑盒(BioVision 公司,美國(guó))說(shuō)明,使用試劑盒中細(xì)胞裂解液100 μL 收集細(xì)胞,冰浴20 min后10 000×g離心1 min, 取上清液;Bradford 蛋白濃度定量后,取50 μg 總蛋白,使其體積為85 μL;設(shè)3 個(gè)重復(fù)孔,每個(gè)樣本內(nèi)加入10 μL 10×反應(yīng)液和5 μL Calpain 底物;避光37 ℃孵育1 h;使用熒光酶標(biāo)儀(Perkin Elmer 公司,美國(guó))讀取激發(fā)波長(zhǎng)400 nm、發(fā)射波長(zhǎng)505 nm 的熒光值。
用磷酸緩沖鹽溶液 (phosphate buffer saline,PBS)清洗細(xì)胞2 次后,4%甲醛溶液室溫固定細(xì)胞10 min;PBS 沖洗3 次, 每次10 min,0.5% Triton X-100 溶液室溫下通透細(xì)胞5 min;PBS 沖洗3 次,每次10 min,TRITC 標(biāo)記鬼筆環(huán)肽 (Yeasen Biotech公司,中國(guó))工作液覆蓋住玻璃板上細(xì)胞,室溫避光孵育30 min;PBS 沖洗3 次,每次10 min,含4′6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)抗熒光淬滅封片劑(赫特生物公司,中國(guó))封片;4 ℃避光保存,共聚焦顯微鏡(Nikon 公司,德國(guó))下觀(guān)察細(xì)胞。
于冰上使用200 μL 裂解液(BioVision 公司,美國(guó))收集各組加載后的細(xì)胞,12 000 r/min 轉(zhuǎn)速下離心5 min 后取上清液。 Bradford 法測(cè)定蛋白質(zhì)濃度,取20 μg 總蛋白上樣進(jìn)行十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳 (sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electropheresis,SDS-PAGE) (BioBrad 公司,美國(guó))分離蛋白,半干轉(zhuǎn)法將蛋白轉(zhuǎn)移至聚偏二氟乙烯膜(polyrinylidene fluoride,PVDF;Millipore 公司,美國(guó))上后置于5%脫脂奶粉-TBST 封閉液中封閉60 min,稀釋抗體Talin(1∶2 000)、Integrin β1(1∶5 000)、Bim(1∶2 000)(Abcam 公司,美國(guó)),Bcl-2(1∶500)、β-actin(1∶4 000)(Proteintech 公司,美國(guó)),Cleaved-Caspase-3(1∶1 000;Affinity 公司,美國(guó))后置于4 ℃過(guò)夜孵育PVDF 膜, 次日復(fù)溫30 min 后TBST 洗膜3 次, 每次10 min,HRP 二抗(Proteintech公司,美國(guó))室溫孵育60 min 后TBST 洗膜3 次,每次10 min,ECL 發(fā)光液(ZETA 公司,美國(guó))顯色發(fā)光,使用Image Lab 軟件半定量分析圖像灰度。
使用GraphPad Prism 8 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。 實(shí)驗(yàn)獨(dú)立重復(fù)3 次。 所有數(shù)據(jù)采取均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示。 多組間比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA),P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
使用鈣離子檢測(cè)試劑盒對(duì)細(xì)胞中鈣離子含量的檢測(cè)結(jié)果表明,16 dyn/cm2的FFSS 刺激0、0.5、1、2和4 h 后,蛋白總量為1 μg 的原代軟骨細(xì)胞中鈣離子的含量依次增加,于1 h 時(shí)達(dá)到峰值,并一直維持在較高水平(P<0.001,圖1)。
圖1 原代軟骨細(xì)胞在16 dyn/cm2 的FFSS 刺激下,總蛋白含量為1 μg 的細(xì)胞中鈣離子含量在不同加力時(shí)長(zhǎng)下的變化情況Figure 1 Stimulated by 16 dyn/cm2 fluid flow shear stress, the changes of calcium content at different time points of 1 μg total protein primary chondrocytes
使用Calpain 活性檢測(cè)試劑盒檢測(cè)發(fā)現(xiàn),與0 h組相比,加載0.5 h 后Calpain 的水解產(chǎn)物熒光強(qiáng)度便明顯升高,1 h 時(shí)達(dá)到高峰, 2 h 后依然維持在較高的活力水平(P<0.000 1),但4 h 時(shí)水解產(chǎn)物的熒光值降至0 h 組水平(P=0.151 8,圖2)。
圖2 不同時(shí)長(zhǎng)16 dyn/cm2 的FFSS 刺激下, 每50 μg 總蛋白含量的原代軟骨細(xì)胞內(nèi)Calpain 的活性變化Figure 2 Changes of calpain activity of 50 μg total protein primary chondrocytes stimulated by 16 dyn/cm2 fluid flow shear stress at different time points
使用鬼筆環(huán)肽對(duì)細(xì)胞骨架進(jìn)行熒光染色觀(guān)察,與0 h 組比較,剪切力刺激軟骨細(xì)胞0.5 h 時(shí),細(xì)胞骨架表達(dá)量減少得并不明顯(P=0.1 147);而在刺激1、2 和4 h 后, 細(xì)胞骨架的表達(dá)量隨加力時(shí)長(zhǎng)的增加而逐漸減少(P<0.001,圖3)。
Western blot 檢測(cè)結(jié)果顯示,Talin 1、Integrin β1和Bcl-2 蛋白的表達(dá)水平與0 h 組相比, 逐漸降低(P<0.01),而B(niǎo)im 及Cleaved-Caspase-3 的蛋白表達(dá)水平與0 h 組相比明顯升高(P<0.000 1,圖4)。
圖3 不同時(shí)長(zhǎng)16 dyn/cm2 的流體剪切力刺激下,細(xì)胞骨架F-actin 的變化情況Figure 3 The changes of cytoskeleton protein F-actin stimulated by 16 dyn/cm2 fluid flow shear stress at different time points
圖4 Western blot 檢測(cè)不同時(shí)長(zhǎng)16 dyn/cm2 的流體剪切力刺激下,Talin 1、Integrin β1、Bcl-2、Bim 以及Cleaved-Caspase3 的蛋白水平表達(dá)情況及其灰度值組間比較Figure 4 Comparison of the expression level and its gray-scale value of Talin 1,Integrin β1, Bcl-2, Bim and Cleaved-Caspase-3 proteins stimulated by 16 dyn/cm2 fluid flow shear stress at different time points observed by Western blot
鈣信號(hào)是真核細(xì)胞中最原始的第二信使,能夠調(diào)控各種生理、生化過(guò)程[11-12]。 我們課題組早期的研究發(fā)現(xiàn),在病理狀況下,存在于細(xì)胞膜表面的力敏感性半通道蛋白Cx43 會(huì)異?;钴S[13],使得鈣離子以非選擇性方式自由出入細(xì)胞, 導(dǎo)致細(xì)胞離子失衡,出現(xiàn)細(xì)胞死亡[14]。
Calpain 是鈣信號(hào)的主要效應(yīng)分子之一,廣泛分布于細(xì)胞質(zhì)和亞細(xì)胞器中,Calpain 常見(jiàn)的家族成員為Calpain1 和Calpain2, 微摩爾水平的Ca2+濃度即可激活Calpain,而毫摩爾水平的Ca2+才能激活Calpain2[15];當(dāng)Calpain 被過(guò)量激活時(shí),它將通過(guò)作用于凋亡相關(guān)的分子蛋白,參與調(diào)控細(xì)胞凋亡以及骨組織細(xì)胞退變的病理過(guò)程,造成相應(yīng)組織器官的功能障礙[16]。 本研究中,F(xiàn)FSS 刺激組細(xì)胞內(nèi)鈣離子的含量明顯高于不加力的對(duì)照組。
當(dāng)細(xì)胞內(nèi)鈣離子濃度升高后,Calpain 的活性將被過(guò)度激活。Calpain 的水解底物包括大多數(shù)的細(xì)胞骨架蛋白,如樁蛋白(Paxillin)、黏著斑蛋白(Vinculin)和踝蛋白(Talin)[17];細(xì)胞骨架為細(xì)胞質(zhì)提供了力學(xué)結(jié)構(gòu), 在機(jī)械壓力的傳導(dǎo)中起到核心作用,它的張力完整性直接影響細(xì)胞的形狀及功能[18]。 研究的結(jié)果表明,加力初期,作為細(xì)胞骨架結(jié)構(gòu),肌動(dòng)蛋白并未發(fā)生明顯的變化,1 h 后隨著加力時(shí)長(zhǎng)的推移其含量越來(lái)越少,Talin 蛋白的表達(dá)水平也呈下降趨勢(shì),說(shuō)明被激活的Calpain 降解骨架蛋白的活動(dòng)增強(qiáng)。
Talin 是一種黏附分子, 是構(gòu)成Integrin 和肌動(dòng)蛋白物理連接的重要成分。Talin 與肌動(dòng)蛋白相互作用保持黏著斑穩(wěn)定,Talin 與Integrin 相結(jié)合, 誘導(dǎo)Integrin 胞外段親和力改變,觸發(fā)Integrin 形成細(xì)胞黏附[19]。本文的研究結(jié)果表明,在FFSS 刺激下,胞內(nèi)大量的Talin 蛋白被Calpain 水解, 與其相結(jié)合的Integrin 表達(dá)水平也明顯減少,這可以導(dǎo)致Talin 與Integrin 在胞內(nèi)膜邊緣的黏著斑水解,細(xì)胞黏附作用減弱,成為細(xì)胞凋亡的重要基礎(chǔ)。
Bcl-2 蛋白家族中,Bcl-2 基因是一種原癌基因,具有抑制凋亡的作用, 而B(niǎo)im 蛋白在Bcl-2 蛋白家族中行使的卻是相反的作用——促進(jìn)凋亡作用,Bcl-2 蛋白的表達(dá)量降低, 凋亡相關(guān)分子Bim 蛋白高表達(dá), 均利于促進(jìn)Bax-Bak 復(fù)合體于線(xiàn)粒體膜上形成孔道,破壞線(xiàn)粒體外膜的完整性,釋放Cyt C,活化細(xì)胞內(nèi)源性凋亡通路,使凋亡執(zhí)行分子Caspase-3開(kāi)始工作, 生成大量Caspase-3 執(zhí)行功能活化形式的Cleaved-Caspase-3[20]。 本文的研究結(jié)果表明,F(xiàn)FSS作用下Calpain 的水解作用增強(qiáng), 使得黏著斑被大量水解,激活細(xì)胞內(nèi)內(nèi)源性凋亡通路,最終激活凋亡執(zhí)行分子Caspase-3 而導(dǎo)致細(xì)胞凋亡。
本研究中Calpain 活性于加力4 h 時(shí)降至與對(duì)照組無(wú)差異,可能是由于細(xì)胞經(jīng)過(guò)長(zhǎng)時(shí)間異常力刺激后進(jìn)入凋亡期,細(xì)胞合成蛋白的能力受到明顯的影響所致。 雖然FFSS 刺激4 h 后Calpain 的活性降低,但凋亡活動(dòng)一直保持在較高的水平。
綜上所述,本研究通過(guò)對(duì)原代髁突軟骨細(xì)胞施加不同時(shí)長(zhǎng)的流體剪切力刺激,使得胞內(nèi)鈣信號(hào)持續(xù)高度響應(yīng),進(jìn)而活化細(xì)胞內(nèi)Calpain,使其水解功能增強(qiáng),細(xì)胞骨架相關(guān)蛋白Talin 被水解,進(jìn)而引起細(xì)胞黏著斑松動(dòng),最終導(dǎo)致細(xì)胞凋亡。