李昕輝，張 勖，王 森，陳 娟

（中南林業(yè)科技大學(xué) 經(jīng)濟(jì)林育種與栽培國家林業(yè)局重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，湖南 長沙 410004）

棗樹Zizyphus jujubeMill 為鼠李科Rhamnaceae棗屬Zizyphus植物[1]，原產(chǎn)中國，栽培歷史悠久。通過幾千年的馴化和培育，品種資源豐富[2]，已經(jīng)成為中國名優(yōu)特產(chǎn)樹種[3]，也是我國重要的經(jīng)濟(jì)林樹種[4]，不僅食用價(jià)值高[5-6]，還可用于加工產(chǎn)業(yè)，如棗酒[7]、棗醋、棗飲料[8]等。隨著人們對果實(shí)口感的要求越來越高，果實(shí)品質(zhì)的提高也勢在必行［9］，果實(shí)品質(zhì)已成為當(dāng)前及未來經(jīng)濟(jì)林果樹產(chǎn)業(yè)健康發(fā)展和市場競爭力的核心。

在果樹實(shí)際生產(chǎn)中，通過外施植物激素是提高果實(shí)品質(zhì)的重要方式之一。GA3作為一種植物生長促進(jìn)激素[10]，以化學(xué)信號的方式影響植物內(nèi)源激素系統(tǒng)，控制植株的生理生化，在植物整個(gè)生長發(fā)育過程起到重要作用[11]。目前外源GA3在果樹上的應(yīng)用研究較多，鄭強(qiáng)卿等[12]在花期對棗樹噴施GA3，可以增加果實(shí)的口感和單果質(zhì)量，果實(shí)品質(zhì)提高。李文楊等[9]對葡萄幼果施用外源GA3，可以影響葡萄的生長和發(fā)育，誘導(dǎo)葡萄果實(shí)膨大，提高了果實(shí)的可溶性糖含量。也有研究[13]認(rèn)為是外源植物激素提高了源對營養(yǎng)物質(zhì)的輸送能力，增強(qiáng)了源葉的供應(yīng)能力從而對果實(shí)發(fā)育產(chǎn)生影響。中秋酥脆棗是“糖棗”芽變選育出的新品種[14]，果大、皮薄，酥脆，可食率高。并具有產(chǎn)量高、適應(yīng)性強(qiáng)、耐貯運(yùn)等諸多優(yōu)點(diǎn)，已成為我國南方地區(qū)鮮食棗主栽品種[15]。隨著中秋酥脆棗種植面積的增加，如何保持并改善其果實(shí)品質(zhì)也成為必然趨勢。

本研究以中秋酥脆棗為試驗(yàn)材料，通過在花蕾期對棗樹外施不同濃度的GA3，研究果實(shí)發(fā)育不同時(shí)期內(nèi)源激素含量的變化和果實(shí)品質(zhì)的變化，以此探尋提高中秋酥脆棗果實(shí)品質(zhì)的有效方案，為中秋酥脆棗的實(shí)際生產(chǎn)和可持續(xù)發(fā)展提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)地概況

本試驗(yàn)以南方鮮食棗中的中秋酥脆棗為試驗(yàn)材料，于2019—2020年在湖南省祁東縣新豐果業(yè)中秋酥脆棗試驗(yàn)基地進(jìn)行。祁東縣位于湖南省衡陽市西南部、湘江中游北岸，氣候溫和，光照較足，春秋季雨量充足，夏季干旱少雨，土壤類型以紫色土為主。試驗(yàn)園是南北走向的塊狀田地。試驗(yàn)材料為9 a 生，樹勢中等，長勢一致，無明顯病蟲害的棗樹。株行距是2 m×3.5 m，試驗(yàn)樹采用正常的抹芽、摘心、修剪、環(huán)割和施肥等棗園管理。

1.2 試驗(yàn)設(shè)計(jì)

于2020年6月初進(jìn)行試驗(yàn)，于花蕾期分別對棗花噴施400（G1）、200（G2）、100 mg/L(G3)的GA3，以噴施清水為對照（CK），共4 個(gè)處理，每處理取3 個(gè)重復(fù)，并隨機(jī)選取試驗(yàn)園中生長發(fā)育一致的15 株棗樹，在每株樹上，選取東、南、西、北4 個(gè)方向，長勢一致的二次枝各2 個(gè)，每處理每棵樹共選取8 個(gè)二次枝作為試驗(yàn)枝，掛牌標(biāo)記注明所噴施的激素種類和濃度，在二次枝上摘去已開放的花朵和棗丁，留下處于花蕾期的花朵，選擇晴朗無風(fēng)天氣，于早上7:00 開始噴施相應(yīng)濃度的激素。

于噴施后的2 h、4 h、6 h、8 h、12 h、24 h、36 h、2 d、3 d、5 d、10 d、15 d、20 d、30 d、40 d各個(gè)時(shí)期采樣，花期采花，果期采果，一部分用于相關(guān)生理指標(biāo)的測量，另一部分放入液氮速凍保存，帶回實(shí)驗(yàn)室貯于-80 ℃冰箱備用。

1.3 試驗(yàn)方法

1.3.1 果實(shí)形態(tài)特征測定

待中秋酥脆棗開始結(jié)果后，每處理每次分別從試驗(yàn)樹的4個(gè)方向上的棗吊采樣，采摘下的果實(shí)，立即用游標(biāo)卡尺測定其縱橫徑，并測定其果形指數(shù)；用1/1 000 的電子天平稱量果實(shí)單質(zhì)量，每個(gè)果實(shí)均測3 次重復(fù)。

1.3.2 可溶性糖的測定

采用蒽酮比色法測定成熟果實(shí)的可溶性糖含量[16]。將分析純蔗糖在80 ℃下烘干準(zhǔn)確稱取1 g，加水溶解轉(zhuǎn)入100 ml 容量瓶，加入0.5 ml 濃硫酸，用蒸餾水定容，即得1%蔗糖標(biāo)準(zhǔn)液；稀釋得到100 ug/L 蔗糖標(biāo)準(zhǔn)液，取不同量的100 ug/L標(biāo)準(zhǔn)液與蒸餾水加入刻度試管，再次加入0.5 ml的恩酮乙酸乙酯和5 mL 濃硫酸，震蕩沸水浴保溫1 min，冷卻后在630 nm 波長下測定其吸光度，以不同量標(biāo)準(zhǔn)液對應(yīng)的糖含量為橫坐標(biāo)，以吸光度為縱坐標(biāo)，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

取樣品提取液進(jìn)行以上相同操作，在630 nm下測定吸光度，根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線求出糖含量。計(jì)算公式如下：可溶性糖含量（%）=（C·Vt·N）/（W·Vs·104）。

C：標(biāo)準(zhǔn)曲線上求出的糖量ug；Vt：提取液總體積ml；Vs：測定時(shí)取用的樣品提取液體積ml；N：稀釋倍數(shù)；W：樣品質(zhì)量g。

1.3.3 可溶性蛋白的測定

采用考馬斯亮藍(lán)法測定成熟果實(shí)中可溶性蛋白質(zhì)的含量[16]。分別配置蛋白質(zhì)含量為0、20、40、60、80、100 ml 的100 ug/ml 濃度的標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)溶液，加入5 ml 考馬斯亮藍(lán)G-250 溶液和蒸餾水，搖勻，靜置2 min，在595 nm 下測定吸光度。以標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)含量（ug）為橫坐標(biāo)，以吸光度為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。準(zhǔn)確稱取剪碎混合后的鮮樣0.5～1.0 g，研磨成勻漿，沖洗研缽，轉(zhuǎn)至離心管，在4 000 r/min下離心20 min，將上清液轉(zhuǎn)入10 ml 容量瓶并定容，即得待測樣品提取液。吸取0.1 ml 提取液，放入刻度試管中，加入5 ml 考馬斯亮藍(lán)溶液，混合靜置2 min，在595 nm 下測定吸光度，并通過標(biāo)準(zhǔn)曲線查得蛋白質(zhì)含量。計(jì)算公式如下：樣品中蛋白質(zhì)含量（mg/g）=（X·Vt·N）/（W·Vs·1 000）。

X：根據(jù)樣品吸光度求出的蛋白質(zhì)質(zhì)量（ug）；Vt：提取液總體積（ml）；W：樣品鮮質(zhì)量；Vs：測定時(shí)加樣量（ml）；N：稀釋倍數(shù)。

1.3.4 可溶性固形物的測定

可溶性固形物使用便攜手持折光儀進(jìn)行檢測[16]。首先零點(diǎn)校正，打開手持式折光儀蓋板，在棱鏡玻璃面上滴2 滴蒸餾水，蓋上蓋板，檢查視中明暗交界線是否處在刻度的零線上，若與零線不重合，則旋動刻度調(diào)節(jié)螺旋，使分界線剛好在零線上。測量時(shí)打開蓋板，用吸水紙將棱鏡表面的蒸餾水擦干，然后在棱鏡玻璃面上滴2 滴待測液，進(jìn)行觀測，讀取視野中明暗交界線上的刻度即為果實(shí)中的可溶性固形物的含量（%），記錄相同部位的果實(shí)，重復(fù)測定3～5 次，結(jié)果以重復(fù)測得的平均值作為最終的實(shí)驗(yàn)結(jié)果。

1.3.5 維生素C 的測定

采用二甲苯萃取比色法測定維生素C的含量[16]。首先制作標(biāo)準(zhǔn)曲線，取具塞大試管6 個(gè)，分別吸取抗壞血酸標(biāo)準(zhǔn)溶液0、1、2、2.5、3、4 mL，用1%草酸補(bǔ)充至4 mL，各管中抗壞血酸含量相應(yīng)為0.05、0.10、0.125、0.15、0.20 mg。各管中加入染料溶液2 mL，隨即加入二甲苯5 mL，迅速搖動約0.5 min，靜置后二甲苯與水層分離，將上層二甲苯萃取液輕輕倒入1 cm 比色杯，在500 nm 波長下測定吸光度值。以二甲苯作空白調(diào)零，建立標(biāo)準(zhǔn)系列抗壞血酸毫克數(shù)與相應(yīng)的吸光度值的回歸方程。

取2 g 樣品放至研缽中，加入3 mL 2%草酸研磨均勻，然后將勻漿轉(zhuǎn)至100 mL 容量瓶中，殘?jiān)?%草酸沖洗后一并倒入容量瓶中，加入30%硫酸鋅1 mL，搖動容量瓶，再加入15%亞鐵氰化鉀1 mL，以除去脂溶性色素，再用1%草酸定容，搖勻過濾到小燒杯中，得到樣品提取液。

取2 ml 提取液至具塞大試管中，依次加入1%草酸2 ml、染料2 ml，二甲苯5 ml，按標(biāo)準(zhǔn)曲線的方法測定吸光度。計(jì)算公式如下：抗壞血酸含量（mg/100g）=(X·Vt·100)/(W·Vs)。

X：提取液中含抗壞血酸的mg 數(shù)；Vt：提取液總體積ml；W：樣品鮮質(zhì)量g；Vs：測定用樣品體積ml。

1.3.5 內(nèi)源激素的測定

采用酶聯(lián)免疫法[17-18]測定中秋酥脆棗各個(gè)時(shí)期的內(nèi)源激素含量。每處理每時(shí)期測3次取平均值。

1.4 數(shù)據(jù)處理

所有的數(shù)據(jù)使用Excel 2019 和SPSS 19.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)和分析。

2 結(jié)果與分析

2.1 外源GA3 對中秋酥脆棗內(nèi)源激素GA3 的影響

不同處理果實(shí)的內(nèi)源GA3含量變化如圖1，中秋酥脆棗在噴施2 h 后各處理的GA3含量發(fā)生顯著變化，達(dá)到顯著差異水平，其中G1、G2、G3 處理的GA3含量均顯著高于CK，G1 的GA3含量高達(dá)262.75 ng/g，CK 的為128.62 ng/g，由高到低依次為G1＞G2＞G3＞CK；噴施后2 h至36 h，各處理的GA3含量基本保持平穩(wěn)，變化趨勢不大，CK 處理的GA3含量最低；從36 h 開始，各處理的GA3含量發(fā)生急劇變化，含量開始快速增加，且增加速率G1＞G2＞G3＞CK，G1、G2、G3 處理在第2 天即達(dá)到峰值，分別為433.09、385.11、330.35 ng/g，CK 為199.91 ng/g，G1、G2、G3 第2 天的GA3含量均顯著高于CK；隨后G1、G2、G3 處理的GA3含量開始急劇下降，之后趨于平緩，G1、G2、G3 第2 天到第3 天的下降速率較快，3 d 后的下降速率比較平緩，而CK從36 h 至第5 天期間一直呈緩慢上升趨勢，到第5 天達(dá)到峰值為305.41 ng/g，隨后才開始緩慢下降；至第40 天G1、G2、G3、CK 的含量分別為218.58、191.55、199.18、146.65 ng/g，從高到低依次為G1＞G3＞G2＞CK，G1、G2、G3 均顯著高于CK，G2 和G3 無顯著性差異；CK 和G3處理40 d 的GA3 含量與2 h 的無顯著差異，G1、G2 處理40 d 的GA3含量都要顯著少于2 h 的。

圖1 不同處理對中秋酥脆棗GA3 含量的影響加入誤差線Fig.1 Effects of different treatments on the content of GA3 in Mid-Autumn Crispy Jujube

2.2 外源GA3 對中秋酥脆棗內(nèi)源激素NAA 的影響

不同處理果實(shí)的內(nèi)源NAA 含量變化如圖2，中秋酥脆棗在花后噴施2 h 后各處理的NAA 含量達(dá)到顯著差異水平，由高到低依次為G1＞G2＞G3＞CK，其中G1、G2、G3 處理的NAA 含量均顯著高于CK，G1 的NAA 含量高達(dá)36.00 ug/g，CK 的為15.11 ug/g；噴施后2 h 至36 h，各處理的NAA 含量基本保持平穩(wěn)，變化趨勢不大，CK 處理的NAA 含量始終最低；從36 h 開始，各處理的NAA 含量變化顯著，NAA 含量快速增加，且增加速率G1＞G2＞G3＞CK，G1、G2、G3 在第2 天達(dá)到峰值，分別為53.98、44.79、42.98 ug/g，CK 處理第2 天的NAA 含量為30.38 ug/g，G1、G2、G3 處理均極顯著高于CK，G2 和G3 無顯著性差異；隨后G1、G2、G3 處理的NAA 含量開始急劇下降，第2 天到第3 天的下降速率較快，3 d 后的下降速率比較平緩，而CK 從36 h 至10 d期間一直呈緩慢上升趨勢，到第10 天達(dá)到峰值為41.20 ug/g，隨后才開始緩慢下降；到第40 天G1、G2、G3、CK 的含量分別為29.75、25.14、22.08、24.04 ug/g，從高到低依次為G1＞G2＞G3＞CK，G1、G2 均顯著高于CK，CK 和G3 無顯著性差異。但CK 處理40 d 的NAA 含量顯著高于2 h 的含量，G3 處理40 d 的NAA 含量與2 h 的無顯著差異，G1 和G2 處理40d 的NAA 含量都要顯著低于2 h 的含量。

圖2 不同處理對中秋酥脆棗NAA 含量的影響Fig.2 Effects of different treatments on NAA content of Mid-Autumn Crispy Jujube

2.3 外源GA3 對中秋酥脆棗內(nèi)源激素ABA 的影響

不同處理果實(shí)的內(nèi)源ABA 含量變化如圖3，中秋酥脆棗在花后噴施2 h 后G1、G2、G3、CK的ABA 含量分別為721.39、456.77、419.29、284.97 ng/g，由高到低依次為G1＞G2＞G3＞CK，且G1 處理顯著高于G2、G3 和CK，G2 和G3 又顯著高于CK，G2 和G3 無顯著性差異；在2 h 至36 h 期間，G1 的ABA 含量呈現(xiàn)先下降后上升的趨勢，在36 h 達(dá)到714.75 ng/g，與2 h 的ABA 含量無顯著差異；而G2、G3、CK 在這期間的ABA 含量有所波動，但CK 處理36 h 的ABA含量與2 h 的無顯著差異；G2 和G3 處理36 h 的ABA 含量都要顯著高于2 h 的；CK 處理的ABA含量始終最低；從36 h 開始各處理的ABA 含量變化顯著，ABA 含量快速增加，且增加速率G1＞G2＞G3＞CK，G1、G2、G3 在第2 天達(dá)到峰值，分別為1 033.55、993.85、944.75 ng/g，均極顯著高于G1、G2、G3 處理36 h 的ABA 含量；CK 第2 天的ABA 含量為382.28 ng/g，G1、G2、G3 均顯著高于CK，G1、G2 顯著高于G3，G1 和G2無顯著性差異；隨后G1、G2、G3 處理的ABA 含量開始急劇下降，第2 天到第3 天的下降速率較快，3 天后的下降速率比較平緩，而CK 從36 h 至第5 天期間一直呈緩慢上升趨勢，到第5 天達(dá)到峰值為887.77 ng/g，隨后才開始緩慢下降；到第40 天G1、G2、G3、CK 的含量分別為641.86、583.87、536.75、469.25 ng/g，從高到低依次為G1＞G2＞G3＞CK，G1、G2、G3 均顯著高于CK。CK、G2、G3 處理40 d 的ABA 含量都要顯著高于2 h 的含量，G1 處理40 d 的ABA 含量顯著低于2 h 的含量。

圖3 不同處理對中秋酥脆棗ABA 含量的影響Fig.3 Effects of different treatments on ABA content of Mid-Autumn Crispy Jujube

2.4 外源GA3 對中秋酥脆棗果實(shí)生長發(fā)育的影響

不同處理對果實(shí)縱徑生長的影響如圖4，在處理10 d 后，CK、G1、G2、G3 各處理的果實(shí)縱徑分別為7.61、4.18、5.32、6.52 mm，從大到小依次為CK＞G3＞G2＞G1，其中CK 顯著高于G1 和G2，G1 與G2、CK 與G3 均無顯著性差異；處理10 d 到15 d 期間各處理縱徑的生長速率較快，G1 的生長速率最快，處理15 d 后，各處理縱徑的生長速率開始逐漸減小，但自25 d 開始CK、G1、G2 縱徑的生長速率加快，至40 d 時(shí)縱徑大小超過CK，此時(shí)CK、G1、G2、G3 的縱徑分別為25.69、27.58、26.34、25.46 mm，各處理間無顯著性差異。

圖4 不同處理對中秋酥脆棗果實(shí)縱徑的影響Fig.4 Effects of different treatments on the longitudinal diameter of Mid-Autumn Crispy Jujube fruit

不同處理對果實(shí)橫徑生長的影響如圖5，在處理10 d 后，CK、G1、G2、G3 各處理的果實(shí)縱徑分別為4.99、2.86、3.70、4.08 mm，從大到小依次為CK＞G3＞G2＞G1，其中CK 顯著高于G1、G2 和G3，G2 與G3 無顯著性差異；處理10 d 到15 d 期間各處理橫徑的生長速率較快，G1 的生長速率最快，處理15 d 后，各處理縱徑的生長速率開始逐漸減小，但自25 d 開始CK、G1、G2 縱徑的生長速率加快，至40 d 時(shí)橫徑大小超過CK，此時(shí)CK、G1、G2、G3 的縱徑分別為19.90、22.29、19.54、20.35 mm，G1 顯著高于各處理，CK、G2、G3 各處理間無顯著性差異。

圖5 不同處理對中秋酥脆棗果實(shí)橫徑的影響Fig.5 Effects of different treatments on the transverse diameter of Mid-Autumn Crispy Jujube fruit

不同處理對果實(shí)果形指數(shù)的影響如圖6，由此可看出，CK 和G3 果形指數(shù)的變化趨勢相同，呈現(xiàn)先降低后上升再降低的趨勢，在第20 天時(shí)CK和G3 的果形指數(shù)達(dá)到最大，分別為1.72、1.73，兩者無顯著性差異，之后CK 和G3 開始下將，下降速率先快后慢，至第40 天時(shí)CK 和G3 的果形指數(shù)分別為1.29、1.25；G1 和G2 的果形指數(shù)變化趨勢相同，呈現(xiàn)先上升后緩慢下將的趨勢，在第15 天時(shí)G1 和G2 的果形指數(shù)達(dá)到最大，分別為1.64、1.59，之后G1 和G2 開始緩慢下降，至第40 天時(shí)G1 和G2 的果形指數(shù)分別為1.24、1.35；第40 天各處理的果形指數(shù)均無顯著性差異。

圖6 不同處理對中秋酥脆棗果形指數(shù)的影響Fig.6 Effects of different treatments on fruit-shape index of Mid-Autumn Crispy Jujube

不同處理對果實(shí)單質(zhì)量的影響如圖7，在處理10 d 后，果實(shí)生長不明顯，CK、G1、G2、G3 各處理果實(shí)的單質(zhì)量分別為0.199 0、0.103 0、0.062 3、0.049 3 g，從 大 到 小 依 次 為CK＞G1＞G2＞G3，其中CK 顯著高于G1、G2 和G3，G2 與G3無顯著性差異；處理10 d 后各處理果實(shí)單質(zhì)量的生長速率開始較快，G1 的生長速率最大，10 d 至25 d 之間，CK 的果實(shí)單質(zhì)量增加速率和大小始終都是最大的，但自25 d 開始CK、G1、G2 的果實(shí)單質(zhì)量的生長速率加快，至40 d 時(shí)果實(shí)單質(zhì)量超過CK，此時(shí)CK、G1、G2、G3 的果實(shí)單質(zhì)量分別為5.025 0、5.923 5、5.751 0、4.641 5 g，G1 顯著高于G3，CK、G2、G3 各處理間無顯著性差異。

圖7 不同處理對中秋酥脆棗果實(shí)單質(zhì)量的影響Fig.7 Effects of different treatments on the single fruit mass of Mid-Autumn Crispy Jujube

2.5 外源GA3 對中秋酥脆棗果實(shí)品質(zhì)的影響

不同處理對中秋酥脆棗果實(shí)可溶性糖的影響如表1，由表1可看出，G2 處理的可溶性糖含量最大，為24.91%，G2 顯著高于CK，CK、G1、G3 的可溶性糖含量分別為14.48%、9.70%、13.88%，G1 的可溶性糖含量最低，G2 處理的果實(shí)可溶性糖含量分別比CK、G2、G3 多10.43%、15.21%、11.03%，G2 顯著高于CK、G1、G3，CK、G1、G3 三者無顯著性差異。

表1 不同處理對中秋酥脆棗果實(shí)品質(zhì)的影響?Table 1 Effects of different treatments on the quality of Mid-Autumn Crispy Jujube fruit

不同處理對中秋酥脆棗果實(shí)可溶性蛋白的影響如表1，由表1可看出，G2 處理的果實(shí)可溶性蛋白含量最大，為24.99 mg/g，CK、G1、G3 處理的果實(shí)可溶性蛋白含量分別為15.27、12.75、17.63 mg/g，G1 處理的果實(shí)可溶性蛋白含量最低，G2 處理的果實(shí)可溶性蛋白含量分別比CK、G1、G3 多7.35、12.24、7.36 mg/g，顯著高于CK、G1、G3，CK、G1、G3 三者無顯著性差異。不同處理對中秋酥脆棗果實(shí)可溶性固形物的影響如表1，可知，CK、G1、G2、G3 處理的果實(shí)可溶性固形物含量分別為19.6%、13.8%、17.4%、18.8%，G2、G3 與CK 均無顯著性差異，但CK、G2、G3處理的果實(shí)可溶性固形物含量都顯著高于G1，分別比G1 高5.8%、3.6%、5.0%，CK 最高，G1 最低。

不同處理對中秋酥脆棗果實(shí)維生素C 含量的影響如表1，由表1可看出，CK、G1、G2、G3處理的果實(shí)維生素C 含量分別為426.29、360.00、510.10、421.23 mg/100g，G2＞CK＞G3＞G1，G2 處理的果實(shí)維生素C 含量顯著高于CK 和G3，分別比CK 和G3 高83.81、88.87 mg/100g。CK 和G3 無顯著性差異，且都顯著高于G1，分別比G1 多66.29、61.23 mg/100g，G2 處理的果實(shí)維生素C 含量最大，G1 最低。

3 討論與結(jié)論

GA3作為一種植物激素，可以通過改變植物生長素、赤霉素、脫落酸等內(nèi)源激素含量，影響內(nèi)源激素間的平衡來調(diào)節(jié)自身的代謝水平[19]，調(diào)控花、果實(shí)及種子等重要器官的形態(tài)建成[20]，促進(jìn)細(xì)胞分裂和延伸從而參與果樹生長發(fā)育的各個(gè)環(huán)節(jié)[9]。外源GA3可以調(diào)節(jié)植物的生長發(fā)育[21-22]，改變果樹結(jié)果的大小年[23]，促進(jìn)坐果和果實(shí)生長，改善果實(shí)的品質(zhì)[24-25]，在果樹生產(chǎn)中具有重要作用[26-28]。

已有研究表明，適當(dāng)?shù)腉A3濃度可以提高果實(shí)品質(zhì)，周詠梅等[29]在花期對巨峰葡萄冬果進(jìn)行外源赤霉素處理，可以增加冬果風(fēng)味，提高果實(shí)品質(zhì)；杜曉彧等[30]研究發(fā)現(xiàn)用100 mg/L 和200 mg/L的赤霉素處理金絲小棗，能增加果實(shí)可溶性糖和可溶性固形物含量，有效提高金絲小棗的產(chǎn)量和品質(zhì)；溫玥[31]結(jié)果表明不同赤霉素處理可以顯著提高油茶的可溶性糖和可溶性蛋白；呂秀蘭等[32]在花后對歐洲甜櫻桃噴施10 mg/g 的GA3，發(fā)現(xiàn)可以提高果實(shí)的可溶性糖和可溶性固形物含量；楊海燕等[33]也發(fā)現(xiàn)用不同濃度的GA3處理藍(lán)莓后，藍(lán)莓的單質(zhì)量、縱橫徑、可溶性固形物含量較對照也有所增加，果實(shí)品質(zhì)提高。本試驗(yàn)結(jié)果表明，G2 處理能顯著提高中秋酥脆棗可溶性糖、可溶性蛋白、VC 含量，提高果實(shí)品質(zhì)，與上述研究結(jié)果相似。但是也有研究表明，赤霉素濃度過高或過低也會降低果實(shí)的品質(zhì)，薛菀菀等[24]在對紅燈甜櫻桃的處理中發(fā)現(xiàn)不同濃度GA3處理降低了可溶性糖、維生素C 和可溶性固形物含量，導(dǎo)致果實(shí)品質(zhì)下降，李慧等[34]在對靈武長棗的研究中發(fā)現(xiàn)，于花期噴施外源GA3會降低果實(shí)的可溶性固形物、可溶性糖含量。本試驗(yàn)中G1 處理的可溶性固形物含量顯著低于對照CK 和其他處理，且G1處理的可溶性糖和可溶性蛋白含量都低于對照CK和其他處理，使果實(shí)品質(zhì)下降，這與上述薛菀菀等人研究結(jié)果相似。但G1 處理的單質(zhì)量顯著高于對照CK，這可能是因?yàn)楦邼舛菺A3能促進(jìn)細(xì)胞膨大，刺激果實(shí)生長，已有研究[35-36]表明外源激素對果實(shí)生長發(fā)育至關(guān)重要，赤霉素可以刺激觸發(fā)子房壁細(xì)胞的分裂和周圍組織的生長，從而決定果實(shí)的大小；丁長奎和章恢志等[37]認(rèn)為外施GA3處理可以促進(jìn)前期細(xì)胞分裂。果實(shí)生長前期細(xì)胞分裂決定了細(xì)胞數(shù)目，花期外施赤霉素處理提高了葡萄幼果細(xì)胞分裂素的含量，促進(jìn)了細(xì)胞分裂，使葡萄幼果膨大。本試驗(yàn)中各處理與對照CK 的縱橫徑、果形指數(shù)均無顯著性差異，但楊文莉等［38］以輪臺白杏為研究對象的結(jié)果表明，一定濃度的GA3處理能有效促進(jìn)果實(shí)縱徑、橫徑的生長，本試驗(yàn)結(jié)果與其相反，這可能是GA3濃度以及果樹種類的不同所致。

本試驗(yàn)于花期噴施外源GA3能顯著提高中秋酥脆棗的內(nèi)源GA3、NAA、ABA 含量，與吳月燕等[39]噴施外源GA3可以提高杜鵑的內(nèi)源GA3含量的研究結(jié)果相似，與丁長奎和章恢志等[37]花前赤霉素處理能提高枇杷果實(shí)的生長素相似；但與吳建明等[40]噴施外源GA3降低甘蔗的內(nèi)源ABA含量的研究結(jié)果相反；且處理后的各內(nèi)源激素的變化趨勢基本一致，與胡芳名等[41]研究結(jié)果相符；從噴施后2 h 至36 h 內(nèi)源激素變化不大，然后開始快速增加達(dá)到峰值，之后開始下降。在本試驗(yàn)中，于花蕾期對棗花進(jìn)行外源GA3處理后，發(fā)現(xiàn)內(nèi)源GA3、NAA、ABA 的激素含量峰值均比對照提前到達(dá)，CK 處理大概在噴施后第5～10 天內(nèi)源激素含量達(dá)到峰值，而處理組在噴施36 h 后內(nèi)源激素開始快速增加，在第2 天時(shí)各處理的內(nèi)源激素含量就達(dá)到峰值，且GA3濃度越高，與對照CK 的差異性越顯著，因?yàn)闂椈ㄔ谡Ｇ闆r下由花蕾期到經(jīng)歷授粉受精需要1～2 d 時(shí)間，而核子形成一般需要3 d 時(shí)間，正好在噴施后第5 天左右核子形成，此時(shí)內(nèi)部進(jìn)行著劇烈的代謝反應(yīng)，從而導(dǎo)致內(nèi)源激素含量快速增加，達(dá)到最大值，在核子形成后，子房內(nèi)部趨于穩(wěn)定，內(nèi)源激素含量開始緩慢下降[42]。而本試驗(yàn)通過外源GA3處理后發(fā)現(xiàn)子房內(nèi)部的內(nèi)源激素含量在噴施后第2 天時(shí)達(dá)到峰值，比對照CK 提前3 d 左右時(shí)間，說明棗花在外源GA3的刺激下核子會提前形成，這與吳月燕等[39]在西洋杜鵑的研究上發(fā)現(xiàn)外源GA3對花期有顯著的提前作用相符。

本試驗(yàn)研究表明，在花蕾期對中秋酥脆棗噴施外源GA3，能顯著提高中秋酥脆棗的內(nèi)源GA3、NAA、ABA 含量，且能使內(nèi)源激素含量峰值提前到達(dá)。G1、G2、G3 處理的內(nèi)源激素含量顯著高于對照CK。各處理的果形指數(shù)無顯著性差異，說明外源GA3對果形指數(shù)沒有顯著影響。G1 處理的果實(shí)的縱橫徑、果實(shí)單質(zhì)量最大，但可溶性糖、可溶性蛋白、可溶性固形物和維生素C 含量最?。籊2 處理的可溶性糖、可溶性蛋白和維生素C 含量最大；CK 處理的可溶性固形物含量最大。因此在試驗(yàn)水平范圍內(nèi)，200 mg/L 的處理能有效提高中秋酥脆棗果實(shí)品質(zhì)；400 mg/L 的GA3濃度反而會降低果實(shí)品質(zhì)。

但是本研究僅使用3 種GA3濃度對中秋酥脆棗處理，其它濃度以及其它外源激素對棗果實(shí)品質(zhì)的影響尚不可知，并且棗核也是影響其品質(zhì)的一項(xiàng)重要指標(biāo)，棗核的大小、核型以及硬度都會對棗的發(fā)育和果實(shí)的品質(zhì)產(chǎn)生重要影響。因此今后本研究將對中秋酥脆棗的果核進(jìn)行研究，探索果核生長和果實(shí)發(fā)育之間的聯(lián)系，試圖使棗核變小、變薄、達(dá)到可食狀態(tài)，為今后棗核的退化提供理論依據(jù)。