季士亮,洪蕾,郭東凱,江翊國,徐飛,黃立峰
(南京醫(yī)科大學(xué)附屬蘇州科技城醫(yī)院,江蘇蘇州 215153)
神經(jīng)母細(xì)胞瘤(neuroblastoma,NB)是起源于神經(jīng)外胚層原始神經(jīng)嵴細(xì)胞的顱外惡性實(shí)體腫瘤,年發(fā)病率0.3/100 000~5.5/100 000,占兒童惡性腫瘤的8%~10%,已成為兒童主要死亡病因之一[1]。近年來,臨床對NB的治療手段不斷完善和改進(jìn),但療效并無顯著提升,約15%患者對誘導(dǎo)治療無反應(yīng),約50%患者臨床癥狀緩解后復(fù)發(fā),平均5年生存率30%~60%,病死率約為兒童時期腫瘤死亡病例的15%[2]。目前NB發(fā)病機(jī)制尚不明確,一般被認(rèn)為是一系列遺傳性改變累積導(dǎo)致,包括癌基因、抑癌基因和DNA修復(fù)基因的改變[3]。癌基因(MYC)的過度表達(dá)被認(rèn)為是NB發(fā)生發(fā)展的一個重要原因[4]。MYC是NB大量基因及遺傳通路失調(diào)的原因,MYC介導(dǎo)的致癌作用是通過調(diào)控與腫瘤相關(guān)的microRNA(miRNA)實(shí)現(xiàn)的。miRNA參與細(xì)胞分化、增殖、凋亡及器官發(fā)育等生理過程,并在腫瘤發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮著重要作用,是腫瘤惡性行為的重要調(diào)控因子。近期有研究表明,microRNA(miR)-515-5p在乳腺癌和前列腺癌中的表達(dá)異常[5]。miR-515-5p家族在NB細(xì)胞中表達(dá)異常及作用機(jī)制尚不清楚。因此,本研究探討了NB細(xì)胞中miR-515-5p對c-MYC-p53信號軸的調(diào)控作用及其對NB細(xì)胞系體外增殖和侵襲能力的影響。
SK-N-BE(2)和SK-N-AS購自上海中科院細(xì)胞庫;胎牛血清購自Gibco公司;miR-515-5p、mimics-NC購自Gene Pharma公司;脂質(zhì)體Lipo 2000購自Thermo Fisher公司,c-MYC、p53、甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)抗體及辣根過氧化物酶抗體(HRP)標(biāo)記二抗購自Santa 公司。
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng)與轉(zhuǎn)染 SK-N-BE(2)和SK-N-AS細(xì)胞培養(yǎng)于含有10%胎牛血清(FBS)的DMEM/FBS(Gibco)培養(yǎng)基,并放置于含有5% CO2的37 ℃孵箱中。采用胰蛋白酶將細(xì)胞消化后,將其濃度調(diào)整為1×105/mL,取1 mL接種至12孔板,37 ℃恒溫培養(yǎng)24 h。當(dāng)細(xì)胞密度接近50%時,采用Lipo 2000將接種的細(xì)胞分為miR-515-5p過表達(dá)組(miR-515-5p mimics組)和陰性對照組(NC mimics組),未進(jìn)行轉(zhuǎn)染組即空白對照組(Control組),轉(zhuǎn)染步驟按說明書操作。轉(zhuǎn)染48 h后進(jìn)行相關(guān)檢測。利用Gene Pharma miRNA提取試劑盒說明書的要求提取細(xì)胞中的miRNA。檢測RNA濃度,并取500 ng RNA進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng),以U6 RNA作為內(nèi)源性對照。在SYBR Green 5×PCR Master Mix作用下進(jìn)行實(shí)時定量PCR反應(yīng)。
1.2.2 MTT檢測 將轉(zhuǎn)染的細(xì)胞以3 000個/孔接種到96孔板中,連續(xù)檢測5 d。根據(jù)說明書,待測孔加入 10 μL CCK-8(Dojindo,Japan)分析細(xì)胞活性,37 ℃避光孵育2 h,于450 nm處檢測吸光度,根據(jù)吸光度值繪制增殖曲線,每個細(xì)胞做6個復(fù)孔。
1.2.3 Transwell小室和劃痕實(shí)驗(yàn) 將轉(zhuǎn)染的細(xì)胞計數(shù)并接種到Transwell小室(孔徑8 μm,1×105個細(xì)胞),在上室加入無血清培養(yǎng)基,下室采用含15% FBS的培養(yǎng)液覆蓋。培養(yǎng)24 h后取出Transwell小室,以4%多聚甲醛固定15 min,PBS洗滌2次,風(fēng)干。采用0.1%結(jié)晶紫(sigma)染色,在顯微鏡下隨機(jī)選擇4個視野觀察發(fā)生侵襲的細(xì)胞,并計數(shù)每個視野下發(fā)生侵襲的細(xì)胞。同理,轉(zhuǎn)染的細(xì)胞密集度達(dá)到90%左右時,利用500 mL的槍頭垂直均勻劃出交叉橫線,每孔至少穿過5條線。采用PBS清洗細(xì)胞,加入無血清培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。在顯微鏡下觀察劃痕后0、24、48、72 h劃痕愈合情況,反映細(xì)胞的遷移能力。
1.2.4 平板克隆形成實(shí)驗(yàn) 將轉(zhuǎn)染的細(xì)胞接種到6孔板(300個細(xì)胞/板),每3 d換液一次,7~10 d出現(xiàn)肉眼可見的克隆球時終止培養(yǎng),4%多聚甲醛固定30 min,采用吉姆薩染色,以顯微鏡觀察并計數(shù)。
1.2.5 細(xì)胞凋亡與周期實(shí)驗(yàn) 取轉(zhuǎn)染后48 h的細(xì)胞,消化離心用預(yù)冷PBS洗2次,調(diào)整細(xì)胞終濃度為1×106/mL,先后加入5 μL Annexin V-FITC染液和10 μL碘化丙啶(PI)染液,室溫孵育15 min,流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡率。同理,收集轉(zhuǎn)染后各組細(xì)胞,用預(yù)冷PBS洗2次,緩慢滴加3 mL 70%預(yù)冷的無水乙醇,4 ℃靜置過夜。離心重懸后加入20 μL核糖核酸酶(RNase),37 ℃溫箱孵育30 min;加入PI 20 μL至終濃度50 μg/mL,用錫箔紙包住,24 h內(nèi)上機(jī)檢測。
1.2.6 Western免疫印跡檢測 細(xì)胞轉(zhuǎn)染48 h后,利用RIPA裂解液裂解細(xì)胞提取細(xì)胞蛋白,進(jìn)行聚丙烯酰胺凝膠(SDS-PAGE)電泳。采用含5%脫脂奶粉的TBS進(jìn)行封閉。最后利用電化學(xué)發(fā)光(ECL)顯影,并分析條帶的強(qiáng)弱。
采用實(shí)時定量PCR檢測miR-515-5p在SK-N-BE(2)和SK-N-AS細(xì)胞中的轉(zhuǎn)染效率,見圖1A。通過熒光顯微鏡觀察到過表達(dá)miR-515-5p的細(xì)胞形態(tài)略有變化,細(xì)胞面積有所增加,見圖1B。利用CCK8實(shí)驗(yàn)對細(xì)胞的活性進(jìn)行檢測,結(jié)果顯示,與陰性對照組比較,轉(zhuǎn)染miR-515-5p mimics的SK-N-BE(2)和SK-N-AS細(xì)胞活性均降低(P<0.05),見圖1C。因此,miR-515-5p通過改變細(xì)胞形態(tài)抑制NB細(xì)胞的活性。
注:A.轉(zhuǎn)染miR-515-5p 48 h后細(xì)胞形態(tài)變化;B.轉(zhuǎn)染48 h后RT-PCR檢測miR-515-5p表達(dá)水平;C.轉(zhuǎn)染miR-515-5p 24、48、72和96 h后CCK8法觀察細(xì)胞活性變化。*與NC mimics組比較,P<0.05
與NC mimics組比較,miR-515-5p組細(xì)胞增殖、侵襲和遷移能力均降低(P<0.05),其中,過表達(dá)miR-515-5p后,miR-515-5p mimics組細(xì)胞集落平均形成率明顯減少(0.33±0.02),與NC mimics組(0.42±0.05)比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),見圖2A。劃痕實(shí)驗(yàn)顯示,過表達(dá)miR-515-5p的細(xì)胞在72 h后劃痕仍未愈合,而NC mimics組基本愈合(P<0.05),見圖2B。此外,Transwell小室侵襲實(shí)驗(yàn)顯示,過表達(dá)miR-515-5p降低了細(xì)胞侵襲能力(P<0.05),見圖2C。
注:A.轉(zhuǎn)染miR-515-5p后SK-N-BE(2)和SK-N-AS細(xì)胞克隆形成率;B.轉(zhuǎn)染miR-515-5p后通過劃痕實(shí)驗(yàn)測定0、24、48和72 h細(xì)胞遷移能力;C.轉(zhuǎn)染48 h后通過Transwell小室檢測細(xì)胞侵襲能力。*與NC mimics組比較,P<0.05
采用流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞周期與凋亡率,與NC mimics組比較,轉(zhuǎn)染miR-515-5p后細(xì)胞G1期比例明顯增加,S期比例明顯減少(P<0.05),見圖3A。同時,轉(zhuǎn)染miR-515-5p后細(xì)胞凋亡率增加(P<0.05),且與轉(zhuǎn)染miR-515-5p的濃度呈正比,見圖3B。因此,miR-515-5p可影響NB細(xì)胞的凋亡與自我更新能力。
采用Western Blot法檢測miR-515-5p對MYC及抑癌基因p53表達(dá)水平的影響。與NC mimics組比較,轉(zhuǎn)染miR-515-5p mimics的細(xì)胞中c-MYC水平降低,P-p53水平升高,而p53的表達(dá)水平?jīng)]有明顯變化,見圖4。因此,miR-515-5p通過調(diào)控c-MYC-p53信號軸抑制細(xì)胞增殖、侵襲和遷移。
注:A.轉(zhuǎn)染miR-515-5p后SK-N-BE(2)和SK-N-AS細(xì)胞G1期比例明顯增加,S期比例明顯減少;B.轉(zhuǎn)染miR-515-5p后細(xì)胞凋亡率增加。*與NC mimics組比較,P<0.05
圖4 Western Blot法檢測miR-515-5p對相關(guān)蛋白水平表達(dá)的影響
近年來,有研究表明NB的發(fā)生發(fā)展與miRNA密切相關(guān)[6-7]。miRNA是一類內(nèi)源性非編碼單鏈小RNA分子,通過堿基互補(bǔ)配對的方式,導(dǎo)致靶基因mRNA降解或mRNA的翻譯抑制,從而在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控靶基因表達(dá)[8]。筆者前期通過生物信息學(xué)技術(shù)和多種軟件預(yù)測方法,發(fā)現(xiàn)miR-515-5p在NB的表達(dá)不同于正常組織。本研究結(jié)果顯示,過表達(dá)miR-515-5p后,NB SK-N-BE(2)和SK-N-AS細(xì)胞的增殖、侵襲和遷移能力均下降,提示miR-515-5p可能作為NB診斷及預(yù)測預(yù)后的新分子。
有研究表明,MYC通過作用于一系列細(xì)胞周期和細(xì)胞凋亡相關(guān)的下游靶基因,導(dǎo)致細(xì)胞周期和增殖改變,最終引發(fā)腫瘤[9-10]。MYC下游靶分子包括p53、S期相關(guān)蛋白激酶-2、鳥氨酸脫羧酶-1、雙微體-2、miRNA和長鏈非編碼RNA(lncRNA),這些分子在NB細(xì)胞的增殖、凋亡及分化等方面具有重要作用[11]。有研究發(fā)現(xiàn),在MYC擴(kuò)增且預(yù)后不良的NB患者中,包括miR-184在內(nèi)的多種miRNA顯著下調(diào)[12]。為系統(tǒng)研究MYC調(diào)控的miR-515-5p在NB中的作用,本研究在前期工作中利用RNA干擾技術(shù)在NB細(xì)胞中抑制了內(nèi)源性MYC高表達(dá),并通過miRNA芯片檢測比較其與對照細(xì)胞miRNA的表達(dá)譜,證實(shí)miR-515-5p的表達(dá)水平低于正常組織。
p53是細(xì)胞中重要的腫瘤抑制因子之一,>50%腫瘤患者有p53基因突變。p53突變體喪失了與DNA結(jié)合的能力,因此失去了腫瘤抑制功能。有研究顯示,p53突變能夠抑制miR-27a的轉(zhuǎn)錄和表達(dá),從而促進(jìn)細(xì)胞增殖及腫瘤形成[13]。部分miRNA在高級別NB細(xì)胞中的表達(dá)發(fā)生變化,從而改變p53活性,促進(jìn)上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化和轉(zhuǎn)移[14]。本研究在利用生物信息學(xué)手段預(yù)測miR-515-5p轉(zhuǎn)錄調(diào)控機(jī)制中發(fā)現(xiàn),在其上游保守區(qū)域內(nèi)有MYC結(jié)合位點(diǎn),而轉(zhuǎn)染MYC的表達(dá)載體后,miR-515-5p的轉(zhuǎn)錄受到顯著抑制。進(jìn)一步表明miR-515-5p可通過 c-MYC-p53信號軸調(diào)控NB瘤細(xì)胞的生長。部分miRNA在高級別NB細(xì)胞中的表達(dá)發(fā)生變化,從而改變p53的活性,促進(jìn)上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化和轉(zhuǎn)移[14]。
綜上所述,MYC調(diào)控的miR-515-5p在NB惡性行為中的功能及其機(jī)制值得深入探討。本研究驗(yàn)證了miR-515-5p可能通過調(diào)控c-MYC-p53信號軸在NB發(fā)生和轉(zhuǎn)移中發(fā)揮促抑制作用。此外,本研究將進(jìn)行動物實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步探討miR-515-5p在傳遞MYC惡性行為信號過程中的功能和意義,并為NB的診斷和預(yù)測、預(yù)后提供具有應(yīng)用價值的新分子,為NB的生物治療提供新的作用靶點(diǎn)。