苗欣月,朱立斌,朱 丹,牛廣財, ,魏文毅,寧志雪
(1.黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)食品學(xué)院,黑龍江大慶 163319;2.黑龍江省農(nóng)產(chǎn)品加工工程技術(shù)研究中心,黑龍江大慶 163319;3.黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院,黑龍江大慶 163319)
毛酸漿(Physalis pubescensL.)是茄科酸漿屬的一年生草本植物,又名黃菇娘,其成熟果實呈金黃色,可食藥兼用[1]。毛酸漿已被用于清熱解毒、治療咳嗽和泌尿生殖系統(tǒng)疾病等,還具有預(yù)防腫瘤、抗氧化、抗癌、降血脂和降血糖等功能[2?8]。毛酸漿籽作為毛酸漿在加工生產(chǎn)過程中產(chǎn)生的副產(chǎn)物,由于得不到有效利用而被丟棄或被作為下腳料處理[9]。目前,已有大量關(guān)于毛酸漿果實方面的研究報道[10?13],但有關(guān)毛酸漿果籽方面的研究較少,關(guān)于毛酸漿籽中蛋白質(zhì)的提取及其性質(zhì)的研究更是鮮見報道。郝曉磊等[14]、陸占國等[9]分別采用索氏微波提取法和超臨界CO2流體萃取法提取了毛酸漿籽油,并分析鑒定出毛酸漿籽油的脂肪酸組成為:亞油酸、油酸、棕櫚酸、十六(烷)酸、十八(烷)酸、亞油酸乙酯和硬脂酸等,其不飽和脂肪酸含量占81.0%~85.12%。張舵等[15]采用堿提酸沉法確定了紅菇娘籽中蛋白質(zhì)的最佳提取工藝條件,即在料液比為1:7,pH8.0,水浴溫度45 ℃,酸沉最佳pH 為4.0 時,紅菇娘籽蛋白質(zhì)的提取率為52.68%。
目前,提取植物蛋白的主要方法有酶解法、堿溶酸沉法、超聲輔助法等。酶解法提取條件溫和,但是提取溫度不宜過高,否則蛋白質(zhì)不易從植物細(xì)胞壁中溶出,導(dǎo)致提取效果不佳[16]。堿溶酸沉法提取率較低,提取時間長,也會改變活性物質(zhì)的結(jié)構(gòu)和性質(zhì)[17]。而超聲輔助提取技術(shù)具有的空穴效應(yīng)可產(chǎn)生較強的機械剪切力,有利于蛋白質(zhì)從固體物料中溶出,具有提取效率高、提取時間短等優(yōu)點[18]。唐詩琦等[19]采用超聲輔助堿法確定了辣木籽蛋白質(zhì)的最優(yōu)提取工藝條件為:pH8.0,提取時間45 min,提取溫度44 ℃,超聲功率150 W,此條件下辣木籽蛋白的提取率為44.03%。馬夢婷等[20]確定了超聲輔助堿提棉籽蛋白的最優(yōu)工藝條件為pH 11.0,液料比20:1 mL/g,超聲時間20 min,超聲溫度45 ℃,超聲功率600 W,在此條件下棉籽蛋白提取率為87.64%。
本試驗擬采用超聲輔助法提取毛酸漿籽中的蛋白質(zhì),并通過正交試驗對毛酸漿籽中蛋白質(zhì)的提取工藝進行優(yōu)化,分析超聲輔助提取的毛酸漿籽蛋白質(zhì)的溶解性、乳化性和起泡性,以期為毛酸漿籽蛋白質(zhì)的開發(fā)利用提供幫助。
毛酸漿籽 大慶地產(chǎn)毛酸漿,品種為鐵把小菇娘(physalis pubescensTieba),毛酸漿打漿后經(jīng)紗布過濾、水洗,干燥后得到毛酸漿籽,毛酸漿粗蛋白含量為5.37%,粗脂肪含量為2.89%;牛血清蛋白 北京索萊寶科技有限公司;考馬斯亮藍(lán)G-250 蛋白試劑 上海邁坤化工有限公司;乙醇 分析純,遼寧泉瑞試劑有限公司;硫酸鉀、硫酸銅、硫酸等 均為分析純,天津市富宇精細(xì)化工有限公司;十二烷基硫酸鈉 美國Sigma 公司。
DK-600B 電熱恒溫水槽 上海森信實驗儀器有限公司;LE203E/02 電子天平 梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;QDN-11 全自動凱氏定氮儀 杭州匯爾儀器設(shè)備有限公司;Beta2-8LD plus 冷凍干燥機德國Christ 公司;KH-500DE 型超聲波清洗器昆山禾創(chuàng)超聲儀器有限公司。
1.2.1 毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取工藝 參考李逸鶴等[21]的方法并稍加修改。將毛酸漿籽粉碎后置于真空干燥箱,45 ℃條件下干燥24 h,過40 目篩。取適量經(jīng)預(yù)處理后的毛酸漿籽粉,用石油醚(料液比1:5 g/mL)浸泡1 h,重復(fù)操作兩次,干燥后置于4 ℃冰箱貯存。實驗時,將2.0 g 毛酸漿籽粉按1:15 g/mL的料液比分散到蒸餾水中,加堿調(diào)節(jié)至一定的pH。一定溫度下水浴30 min,在設(shè)定的超聲功率、提取時間、提取溫度下進行毛酸漿籽粉中蛋白質(zhì)的提取。超聲輔助提取結(jié)束后,在轉(zhuǎn)速為4500 r/min 條件下離心20 min 取上清液。滴加HCl 溶液(1 mol/L)使上清液pH 至4.0,離心取沉淀蛋白質(zhì),加入蒸餾水將pH 調(diào)至7.0,最后冷凍干燥得到毛酸漿籽蛋白質(zhì)粉。
1.2.2 單因素實驗
1.2.2.1 超聲功率的選擇 將加入蒸餾水的毛酸漿籽溶液用NaOH 調(diào)pH 至9.0,充分?jǐn)嚢杌靹蚝笏?0 min,分別選擇超聲功率100、200、300、400、500 W 于溫度20 ℃條件下超聲提取20 min,計算毛酸漿籽蛋白質(zhì)的提取率,確定毛酸漿籽蛋白質(zhì)的最適超聲功率。
1.2.2.2 提取溫度的選擇 將加入蒸餾水的毛酸漿籽溶液用NaOH 調(diào)pH 至9.0,充分?jǐn)嚢杌靹蚝笏?0 min,分別選擇不同提取溫度20、30、40、50、60 ℃于功率300 W的條件下超聲提取20 min,計算毛酸漿籽蛋白質(zhì)的提取率,確定毛酸漿籽蛋白質(zhì)的最適提取溫度。
1.2.2.3 提取時間的選擇 將加入蒸餾水的毛酸漿籽溶液用NaOH 調(diào)pH 至9.0,充分?jǐn)嚢杌靹蚝笏?0 min,固定提取溫度20 ℃,超聲功率300 W,考察不同提取時間(20、30、40、50、60 min)對毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率的影響,確定毛酸漿籽蛋白質(zhì)的最適提取時間。
1.2.2.4 提取液pH的選擇 將加入蒸餾水的毛酸漿籽溶液用NaOH 調(diào)節(jié)pH 分別為7.0、8.0、9.0、10.0、11.0,充分?jǐn)嚢杌靹蚝笏?0 min,在提取時間20 min,超聲功率300 W,提取溫度20 ℃下進行實驗,計算毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率,確定毛酸漿籽蛋白質(zhì)的最適提取液pH。
1.2.3 正交試驗設(shè)計 根據(jù)單因素實驗結(jié)果,采用L9(34)正交設(shè)計優(yōu)化毛酸漿籽蛋白質(zhì)的提取條件,具體因素水平表見表1。
表1 正交試驗因素水平表Table 1 Factors and levels table of orthogonal experiment
1.2.4 蛋白質(zhì)提取率測定 采用考馬斯亮藍(lán)染色法測定上清液中蛋白質(zhì)的含量[22],毛酸漿籽中總蛋白質(zhì)含量用凱氏定氮法進行測定[23],毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率計算公式如下:
1.2.5 毛酸漿籽蛋白質(zhì)等電點測定 用1 mol/L HCl和1 mol/L NaOH 溶液將毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取液的pH 分別調(diào)至3.0、3.5、4.0、4.5、5.0、5.5,靜置一段時間后,離心(4500 r/min,20 min),取上清液比色測定,吸光值最小的即為等電點。
1.2.6 毛酸漿籽蛋白質(zhì)功能特性的測定
1.2.6.1 溶解性的測定 參考許英一等[24]的方法稍加修改。配制2.5%的樣品溶液,滴加HCl(1 mol/L)或 NaOH 溶液(1 mol/L)使pH 分別至2.0、4.0、6.0、8.0、10.0,室溫振蕩30 min,于6000 r/min 條件下離心20 min,上清液中氮含量采用微量凱氏定氮法進行測定。蛋白質(zhì)溶解性用氮溶解指數(shù)(NSI)來表示,計算公式如下:
1.2.6.2 乳化性的測定 參考李永恒等[25]的方法稍加修改。配制100 mL 濃度為2%的毛酸漿籽蛋白溶液,滴加HCl(1 mol/L)或 NaOH 溶液(1 mol/L)使pH 分別在3.0~10.0。分別取30 mL 溶液并加入液油體積比為4:1的大豆色拉油5 mL,用勻漿機(10000 r/min)攪拌2 min 后,從燒杯底部取樣50 μL加入到0.1% SDS 溶液中,以0.1% SDS 溶液作為空白對照,于500 nm 下測定吸光值A(chǔ)0。乳化性(EAI)計算公式如下:
式中:A0—樣品的吸光值;N—稀釋倍數(shù);φ—油相所占的體積分?jǐn)?shù);L—比色皿的光路長度,1 cm;c—毛酸漿籽蛋白質(zhì)的質(zhì)量濃度,g/mL。
1.2.6.3 起泡性的測定 參考李超楠等[26]的方法稍加修改。配制100 mL 濃度為2%的毛酸漿籽蛋白溶液,滴加HCl(1 mol/L)或 NaOH 溶液(1 mol/L)使pH 分別至3.0、4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0、10.0。攪拌1 h 后,以5000 r/min的轉(zhuǎn)速離心15 min,用勻漿機(10000 r/min)攪拌2 min 后,立即測定泡沫體積V0,起泡性(FA)的計算公式如下:
每個試驗重復(fù)3 次,結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,應(yīng)用SPSS 19.0 對試驗數(shù)據(jù)進行顯著性分析,當(dāng)P<0.05 差異顯著,P>0.05 無顯著差異;采用Origin軟件進行圖表制作。
2.1.1 超聲功率對毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率的影響從圖1 可知,當(dāng)超聲功率從100 W 升至200 W 過程中,毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率隨著功率的增加顯著增加(P<0.05),并在功率200 W 時達(dá)到最大值63.60%。這可能是由于超聲產(chǎn)生的空化效應(yīng)使毛酸漿籽粉細(xì)胞中的結(jié)構(gòu)被破壞,加速了毛酸漿籽粉中蛋白質(zhì)的溶出,有利于蛋白質(zhì)的提取[27]。功率在200 W 與300 W時對蛋白質(zhì)提取率的影響差異不顯著(P>0.05),而當(dāng)超聲功率高于300 W,毛酸漿籽中的蛋白質(zhì)提取率開始顯著降低,產(chǎn)生這種現(xiàn)象主要是因為當(dāng)超聲功率逐漸升高時,溶液溫度也隨之升高,從而導(dǎo)致蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)改變,引起毛酸漿籽蛋白質(zhì)破壞,從而影響蛋白質(zhì)提取率[28]。因此,選擇超聲功率100、200、300 W 進行后續(xù)優(yōu)化實驗。
圖1 超聲功率對毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率的影響Fig.1 Effect of ultrasonic power on the yield of Physalis pubescens L.seeds protein
2.1.2 提取溫度對毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率的影響由圖2 可知,提取溫度在20 ℃到40 ℃范圍時,毛酸漿籽蛋白質(zhì)的提取率顯著上升(P<0.05),這是因為適當(dāng)?shù)臏囟扔欣诿釢{籽中的蛋白質(zhì)從細(xì)胞中溶出,同時提高了毛酸漿籽蛋白質(zhì)的溶解度,從而有利于毛酸漿籽蛋白質(zhì)的提取。當(dāng)溫度高于50 ℃時,毛酸漿籽蛋白質(zhì)發(fā)生變性,溶解性降低,不利于毛酸漿籽粉中蛋白質(zhì)的提取[21]。因此,選擇提取溫度30、40、50 ℃進行后續(xù)優(yōu)化實驗。
圖2 提取溫度對毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率的影響Fig.2 Effect of temperature on the yield of Physalis pubescens L.seeds protein
2.1.3 提取時間對毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率的影響由圖3 可知,當(dāng)提取時間由20 min 增加到50 min時,毛酸漿籽蛋白質(zhì)的提取率顯著上升(P<0.05),在50 min 時提取率達(dá)77.89%,隨后顯著下降,這可能是由于超聲產(chǎn)生的空化作用使毛酸漿籽蛋白質(zhì)在很短的一段時間內(nèi)能最大限的溶出,從而增加了蛋白質(zhì)的提取率;隨著提取時間繼續(xù)增加,可能會使蛋白質(zhì)部分變性,不利于毛酸漿籽蛋白質(zhì)的提取[26]。因此,選擇提取時間40、50、60 min 進行后續(xù)優(yōu)化實驗。
圖3 提取時間對毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率的影響Fig.3 Effect of extraction time on the yield of Physalis pubescens L.seeds protein
2.1.4 提取液pH 對毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率的影響由圖4 可知,當(dāng)pH 由7.0 升至9.0 時,隨著pH的增加,蛋白質(zhì)提取率顯著增加(P<0.05),在pH 9.0 時達(dá)到最高值68.18%,這可能是因為毛酸漿籽中的蛋白質(zhì)在稀堿溶液中發(fā)生水解,蛋白質(zhì)分子間相互排斥,對蛋白質(zhì)分子有增溶作用,使毛酸漿籽蛋白質(zhì)的提取率增加[17]。但隨著提取液pH 繼續(xù)增大,毛酸漿籽蛋白質(zhì)的提取率呈逐漸下降的趨勢,這可能是由于堿性條件增加了毛酸漿籽蛋白質(zhì)的水解性,在酸沉?xí)r也會造成部分蛋白質(zhì)的損失;且堿性過強會使蛋白質(zhì)變性和水解,造成提取蛋白質(zhì)的品質(zhì)下降[24,29]。因此,選擇提取液pH8、9、10 進行后續(xù)優(yōu)化實驗。
圖4 提取液pH 對毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率的影響Fig.4 Effect of pH on the yield of Physalis pubescens L.seeds protein
在單因素實驗的基礎(chǔ)上,按L9(34)正交表對毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率的各影響因素進行正交試驗,結(jié)果見表2。
表2 正交試驗結(jié)果Table 2 Results of orthogonal experiment
由表2 可知,影響毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率的各因素的主次順序為:提取溫度(A)>超聲功率(D)>提取液pH(B)>提取時間(C)。最佳工藝組合為A3B2C2D3,即最佳提取條件為提取溫度50 ℃、功率300 W、提取液pH 9.0、提取時間50 min。
表3 為該正交試驗的方差分析結(jié)果。由表3 可知,考察的4 個因素中:提取溫度對毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率有較大的影響,差異極顯著(P<0.01);提取液pH 及超聲功率對毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率的影響顯著(P<0.05);而提取時間對毛酸漿籽蛋白質(zhì)提取率的影響不顯著(P>0.05)。
表3 正交試驗方差分析表Table 3 Variance analysis of orthogonal experiment
為驗證超聲輔助法提取毛酸漿籽蛋白質(zhì)的穩(wěn)定性和有效性,選取由正交試驗最佳工藝A3B2C2D3,即在提取時間50 min、提取溫度50 ℃、提取功率300 W、提取液為pH 9.0的條件下進行穩(wěn)定性試驗。此工藝條件下通過實驗得到毛酸漿籽蛋白質(zhì)的提取率為90.45%±0.16%。因此,此工藝條件對毛酸漿籽蛋白質(zhì)的提取具有較好的可行性。
由圖5 可知,pH 在3.0~5.5 范圍內(nèi),吸光值隨pH的增加呈先下降后升高,且pH 在4.0 時的吸光值最小,說明此pH 條件下蛋白質(zhì)沉淀最多,此時的pH 即為毛酸漿籽蛋白質(zhì)的等電點。
圖5 毛酸漿籽蛋白質(zhì)等電點的測定Fig.5 Determination of isoelectric point of Physalis pubescens L.seeds protein
2.5.1 毛酸漿籽蛋白質(zhì)溶解性 由圖6 可知,當(dāng)pH由2.0 升至10.0,毛酸漿籽蛋白質(zhì)的氮溶解指數(shù)先下降后升高;pH 為4.0 時,氮溶解指數(shù)達(dá)到最小值14.59%。這可能是因為在等電點(pH4.0)附近時,蛋白質(zhì)分子內(nèi)的凈電荷為0,分子顆粒間相互作用力減弱而發(fā)生碰撞、聚集,產(chǎn)生沉淀,此時蛋白質(zhì)的溶解度最低;當(dāng)pH 遠(yuǎn)離等電點時,蛋白質(zhì)與水分子之間的相互作用增強,蛋白質(zhì)的水溶性提高,從而增加了蛋白質(zhì)的溶解性[24,30]。在pH 為10.0 時,氮溶解指數(shù)達(dá)到最高值58.32%。
圖6 pH 對毛酸漿籽蛋白質(zhì)溶解性的影響Fig.6 Effect of pH on solubility of Physalis pubescens L.seeds protein
2.5.2 毛酸漿籽蛋白質(zhì)乳化性研究 由圖7 可知,毛酸漿籽蛋白質(zhì)的乳化性隨pH的增加先降低后升高,在pH 為4.0 時呈現(xiàn)最小值,這可能是因為處于等電點附近時毛酸漿籽蛋白質(zhì)的溶解度最低,且無凈電荷,所以蛋白質(zhì)乳化能力較弱[31]。在pH 為10.0 時,乳化性達(dá)到68.94 m2/g。
圖7 pH 對毛酸漿籽蛋白質(zhì)乳化性的影響Fig.7 Effect of pH on emulsification of Physalis pubescens L.seeds protein
2.5.3 毛酸漿籽蛋白質(zhì)起泡性研究 由圖8 可知,當(dāng)pH 由3.0 升至7.0,毛酸漿籽蛋白質(zhì)的起泡性先降低后升高。pH 為4.0 時呈現(xiàn)最小值,這可能是因為在等電點附近時未溶解的毛酸漿籽蛋白質(zhì)較多,起泡性較弱。而在pH7.0 時呈現(xiàn)最大值43%,但繼續(xù)增加pH,則起泡性又降低,說明過酸或過堿條件都不利于毛酸漿籽蛋白質(zhì)的起泡。
圖8 pH 對毛酸漿籽蛋白質(zhì)起泡性的影響Fig.8 Effect of pH on foaming characteristic of Physalis pubescens L.seeds protein
本研究在單因素實驗基礎(chǔ)上,通過正交試驗優(yōu)化了超聲輔助法提取毛酸漿籽中蛋白質(zhì)的提取條件,即在提取溫度50 ℃、功率300 W、提取液pH 9.0、提取時間50 min的條件下,毛酸漿籽蛋白質(zhì)的提取率可達(dá)90.45%±0.16%。超聲輔助法提取毛酸漿蛋白質(zhì)的功能特性表明,在等電點pH4.0 附近,毛酸漿籽蛋白質(zhì)的溶解性、起泡性和乳化性最弱,pH 為7.0 時,毛酸漿籽蛋白質(zhì)的起泡性最好,且毛酸漿籽蛋白質(zhì)在強堿性溶液中有較好溶解性。后續(xù)將進一步研究毛酸漿籽蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)和凝膠特性。