吳斌 崔漢青 張眉 邵春國(guó) 姜珊珊 郭霞 徐德坤 王升吉
摘要:借助高通量測(cè)序和生物學(xué)分析手段,篩選不同抗性品種間的差異表達(dá)miRNA,預(yù)測(cè)相關(guān)靶基因。對(duì)玉米抗、感粗縮病不同種質(zhì)材料高通量測(cè)序鑒定出的差異miRNA的靶基因,在Genome、Gene Ontology等生物信息數(shù)據(jù)庫(kù)中進(jìn)行比對(duì),同時(shí)做GO(Gene Ontology,簡(jiǎn)稱GO)、京都基因和基因組百科全書(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes,簡(jiǎn)稱KEGG)富集性分析。從某些相關(guān)差異miRNA的靶基因及其作用位點(diǎn)的有關(guān)GO ID及其生物學(xué)功能注釋中,發(fā)現(xiàn)一些可能與玉米粗縮病抗性有較大關(guān)系的miRNA,如zma-miR156a、zma-miR156k、zma-miR1432等;通過進(jìn)一步的miRNA靶基因KEGG富集性分析,獲得代謝通路ID,根據(jù)其生物功能注釋,推測(cè)也有一定數(shù)量的miRNA與玉米種質(zhì)抗(感)病相關(guān)。結(jié)合所涉差異miRNA在玉米抗、感種質(zhì)接毒前后上、下調(diào)的表現(xiàn),對(duì)這些重要miRNA靶基因可能涉及粗縮病的致病機(jī)制或玉米抗性相關(guān)的GO ID、KEGG通路ID所蘊(yùn)含的功能進(jìn)行了詮釋。研究旨在探明抗病相關(guān)miRNA通過靶向作用其靶基因,在抗病過程中可能發(fā)揮的重要生物學(xué)功能和作用途徑,研究結(jié)果可為探討玉米抗粗縮病的抗病機(jī)制研究奠定理論基礎(chǔ)。
關(guān)鍵詞:玉米粗縮病;差異miRNA;高通量測(cè)序;靶基因;富集分析
中圖分類號(hào):S435.13? 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A
文章編號(hào):1002-1302(2021)20-0064-06
收稿日期:2021-02-11
基金項(xiàng)目:山東省重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃(編號(hào):2018GSF121029);國(guó)家重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃(編號(hào):2018YFD0200603);山東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)業(yè)科學(xué)創(chuàng)新工程(編號(hào):CXGC2016B11-綠色防控)。
作者簡(jiǎn)介:吳 斌(1986—),男,山東臨清人,博士,助理研究員,主要從事植物病毒學(xué)研究。E-mail:wubin228@126.com。
通信作者:王升吉,碩士,研究員,主要從事植物病毒學(xué)研究。E-mail:shjiw@163.com。
玉米粗縮病(maize rough dwarf virus,簡(jiǎn)稱MRDV)是玉米生產(chǎn)中一類重要的病害,嚴(yán)重影響了玉米生產(chǎn)[1]。該病由帶毒灰飛虱傳播病毒,在山東省,其主要毒原為水稻黑條矮縮病病毒(rice black-streaked dwarf virus,簡(jiǎn)稱RBSDV)[2-3]。前期研究發(fā)現(xiàn),種植抗病品種是防治該病的重要措施,因此,發(fā)掘玉米粗縮病抗性相關(guān)基因、微小核糖核酸(miRNA)或反式作用干擾小RNA(ta-siRNA)等,分析其功能進(jìn)而探究其抗病機(jī)制,可為抗病品種的遺傳改良提供理論依據(jù)和技術(shù)支持。
miRNA是真核生物體內(nèi)的一類負(fù)調(diào)控因子,在植物生長(zhǎng)發(fā)育調(diào)節(jié)和病害防御中具有重要作用[4]。病毒在侵染寄主植物的過程中能夠誘導(dǎo)大量miRNA產(chǎn)生,這些miRNA在病毒侵染時(shí)上調(diào)或下調(diào)表達(dá),通過抑制防衛(wèi)反應(yīng)中的負(fù)調(diào)控因子和促進(jìn)防衛(wèi)反應(yīng)中的正調(diào)控因子來行使功能。Wu等發(fā)現(xiàn),水稻條紋病毒侵染水稻后,miR168與AGO18互作,調(diào)控水稻體內(nèi)AGO1的表達(dá),進(jìn)而表現(xiàn)出抗病[5]。
本研究對(duì)RBSDV侵染不同抗性玉米品種所獲葉片、莖稈組織進(jìn)行miRNA高通量測(cè)序,對(duì)鑒定出的重要差異表達(dá)miRNA的靶基因開展GO、KEGG富集性分析,對(duì)其在玉米抗粗縮病中的生物學(xué)功能進(jìn)行闡述和討論,以期探究其在抗病過程中發(fā)揮的重要生物學(xué)功能和作用途徑,進(jìn)而為研究玉米抗粗縮病的抗病機(jī)制奠定理論基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 試驗(yàn)材料
主要材料如下:玉米抗、感粗縮病品種分別為農(nóng)大108、鄭單958;感染水稻黑條矮縮病病毒(RBSDV)的水稻(或小麥)病株;人工養(yǎng)殖2~3齡的灰飛虱無毒若蟲;小麥易感病品種;健康水稻幼苗。
1.2 試驗(yàn)方法
1.2.1 測(cè)序用玉米病株、健康株的獲得 該工作是通過人工接RBSDV方法完成的,主要包括以下幾個(gè)步驟:人工養(yǎng)殖繼代灰飛虱;2個(gè)玉米品種的盆栽播種;2、3齡灰飛虱若蟲從RBSDV病株上飼毒,并將度過循回期的帶毒灰飛虱接于1~2葉期的玉米幼苗上傳毒;將獲毒后的玉米幼苗移栽于大田中并生長(zhǎng)至喇叭口期,具體參見任春梅等的方法[6-7]。同期播種的玉米苗,保留足夠數(shù)量不接毒的幼苗,肥、水等生長(zhǎng)栽培管理同人工接毒苗。
1.2.2 miRNA高通量測(cè)序 待鄭單958玉米接毒株充分發(fā)病后,依照測(cè)序樣品分類信息(表1)進(jìn)行樣品采集,用液氮速凍、干冰保存等方式送至杭州聯(lián)川生物技術(shù)股份有限公司進(jìn)行miRNA的文庫(kù)構(gòu)建和高通量測(cè)序。
1.2.3 miRNA測(cè)序原始數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析 測(cè)序獲得原始序列(raw reads)后,首先去除3′端接頭序列和垃圾序列,例如序列中有80%A/C/G/T、3N(不一定是連續(xù)的)序列,獲得凈化的序列(clean reads);然后進(jìn)行長(zhǎng)度篩選,對(duì)于植物,保留堿基為18~25 nt 的序列;接著將剩余的序列與mRNA、RFam(含rRNA、tRNA、snRNA等)和Repbase數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行比對(duì),并進(jìn)行過濾,獲得有效序列(valid reads),去除重復(fù)序列,獲得單一原始序列和單一有效序列;對(duì)miRNA的長(zhǎng)度分布情況進(jìn)行統(tǒng)計(jì)。
1.2.4 miRNA差異表達(dá)分析 統(tǒng)計(jì)測(cè)序結(jié)果中各樣品miRNA的表達(dá)量,并進(jìn)行2個(gè)品種相同組織在接種病毒、未接種病毒處理間的比對(duì),篩選差異表達(dá)miRNA的標(biāo)準(zhǔn)為差異倍數(shù)|log2 (fold change)|>2、P<0.05。
1.2.5 差異表達(dá)miRNA靶基因的預(yù)測(cè)及富集分析 借助Target Finder對(duì)差異表達(dá)miRNA的靶基因進(jìn)行預(yù)測(cè),通過靶基因注釋對(duì)玉米miRNA靶基因在生物學(xué)功能上行使的生物學(xué)作用進(jìn)行分析。候選靶基因的注釋借助于Gene Ontology(簡(jiǎn)稱GO,http://www.geneontology.org/)和Genome中的KEGG(http://www.genome.jp/kegg/)數(shù)據(jù)庫(kù)。
2 結(jié)果與分析
2.1 miRNA測(cè)序有效數(shù)據(jù)產(chǎn)出統(tǒng)計(jì)
待8個(gè)玉米miRNA文庫(kù)通過高通量測(cè)序后,對(duì)每個(gè)文庫(kù)內(nèi)的全部小RNA片段進(jìn)行測(cè)序,獲得相應(yīng)的原始序列數(shù)。然后進(jìn)行長(zhǎng)度篩選,過濾掉堿基長(zhǎng)度小于18 nt、大于25 nt的序列,去除重復(fù)的miRNA序列,分別獲得有效序列、單一有效序列等,詳見表2。
2.2 miRNA的長(zhǎng)度分布
在對(duì)測(cè)序的原始數(shù)據(jù)進(jìn)行分析統(tǒng)計(jì)的基礎(chǔ)上,對(duì)8個(gè)樣品文庫(kù)中過濾去重后的有效(valid)序列總數(shù)(total)以及種數(shù)(unique)進(jìn)行長(zhǎng)度分布統(tǒng)計(jì),發(fā)現(xiàn)其豐度主要集中于18~25 nt,且在24 nt處的序列豐度最大(圖1)。
2.3 差異miRNA的上下調(diào)統(tǒng)計(jì)分析
通過對(duì)抗、感粗縮病2個(gè)品種的相同組織在接種病毒、未接種病毒處理間進(jìn)行比對(duì),并用TPM算法進(jìn)行歸一化處理,獲得幾個(gè)樣品比較組有上調(diào)、下調(diào)差異性表達(dá)的miRNA情況。從圖2可以看出,抗病品種農(nóng)大108接毒后,健康植株莖稈、葉片材料較接毒前健康植株的比較組(ChL1 vs nChL1,ChL1 vs nChL1)的差異miRNA下調(diào)數(shù)明顯較上調(diào)數(shù)多,而感病品種鄭單958接毒后病株miRNA較接毒前健康植株(CdL9 vs nChL9,CdS9 vs nChS9)的比較組則相反,其差異miRNA的上調(diào)數(shù)較下調(diào)數(shù)多,尤其在葉片材料中,這可能是玉米抗病品種抗病機(jī)制的一種表現(xiàn)。
2.4 差異表達(dá)miRNA的篩選
通過對(duì)8個(gè)文庫(kù)中的miRNA進(jìn)行歸一化分析,確認(rèn)相關(guān)miRNA的表達(dá)差異。由表3可以看出,zma-miR156a-5p、zma-miR1432-5p、zma-miR390a-5p、zma-miR156k-5p、zma-miR396f-3p、zma-miR166a-3p、zma-miR164f-5p、zma-miR167e-5p、zma-miR394a-5p等9個(gè)miRNA在感病品種鄭單958和耐病品種農(nóng)大108的葉片、莖稈組織中接毒前后表達(dá)趨勢(shì)相反,因此選擇這9個(gè)miRNA作為重要miRNA展開研究。
2.5 差異表達(dá)miRNA靶基因的GO分析
對(duì)篩選出的9個(gè)差異miRNA的靶基因與Genome、Gene Ontology等生物信息數(shù)據(jù)庫(kù)中的數(shù)據(jù)進(jìn)行比對(duì),進(jìn)行GO富集性分析,發(fā)現(xiàn)差異miRNA的部分靶基因及其作用位點(diǎn)的生物學(xué)功能與玉米粗縮病抗性密切相關(guān)。其中,zma-miR156a-5p的部分靶基因與寄主對(duì)病原物的防御性反應(yīng)相關(guān),zma-miR1432-5p的部分靶基因與病毒的加工、裝配有關(guān),zma-miR390a-5p的部分靶基因與病毒粒子在寄主內(nèi)細(xì)胞間的傳輸有關(guān),其他miRNA的靶基因也多參與寄主的細(xì)胞信號(hào)傳導(dǎo)、免疫應(yīng)答的防衛(wèi)性反應(yīng)等(表4)。
2.6 差異表達(dá)miRNA靶基因KEGG分析
對(duì)篩選出的差異表達(dá)miRNA靶基因進(jìn)行KEGG富集性分析發(fā)現(xiàn),部分通路可能與玉米種質(zhì)抗?。ù挚s?。┬韵嚓P(guān)。其中多個(gè)miRNA涉及的ko04626-植物病毒與植物寄主與病原間的相互作用、ko00130-泛醌及其他萜類醌的生物合成、ko04075-植物激素信號(hào)傳導(dǎo)、ko00280-泛素介導(dǎo)的蛋白水解作用相關(guān)(表5)。對(duì)ko04626通路分析發(fā)現(xiàn),靶基因通過調(diào)控RAR1、SGT1、HSP90等關(guān)鍵基因參與玉米與病原物的互作(圖3)。
3 結(jié)論與討論
當(dāng)前對(duì)于玉米粗縮病的研究多聚焦于致病機(jī)制方面,對(duì)于其抗病機(jī)制的研究相對(duì)較少。水稻黑條矮縮病病毒通過細(xì)胞外壁的傷口或昆蟲介體刺吸而造成微傷侵染玉米后,會(huì)引起寄主防御系統(tǒng)中相關(guān)基因表達(dá)、蛋白質(zhì)合成、激素水平及生物途徑的變化,使玉米生長(zhǎng)受阻、發(fā)育不良,最終導(dǎo)致發(fā)病甚至死亡[8-10]。在此期間,玉米抗、耐病品種被植物病毒侵染誘導(dǎo)寄主產(chǎn)生大量的miRNA中,相關(guān)miRNA即可通過上調(diào)或者下調(diào)等模式,抑制防衛(wèi)反應(yīng)中的負(fù)調(diào)控因子或促進(jìn)防衛(wèi)反應(yīng)中的正向調(diào)控因子,進(jìn)而行使功能,可能是玉米抗耐病機(jī)制的一種表現(xiàn)[11]。本研究中涉及的zma-miR156、zma-miR1432、zma-miR390a-5p、zma-miR164f-5p等多個(gè)miRNA,均在受到RBSDV侵染脅迫后,在玉米抗、感病種質(zhì)材料中呈現(xiàn)相反的表達(dá)趨勢(shì),且存在2種情況,部分在抗性材料(農(nóng)大108)中表現(xiàn)為上調(diào),在感病材料(鄭單958)中表現(xiàn)為下調(diào),另一種情況恰好相反,分析其原因,可能是miRNA的靶基因在抗病防御性反應(yīng)中的正、負(fù)調(diào)控機(jī)制差異所致。
此外,在本研究中,抗耐病品種農(nóng)大108接毒后,與接毒前相比,健康植株莖稈、葉片中差異miRNA下調(diào)數(shù)明顯較上調(diào)數(shù)多,與感病品種鄭單958在接毒后病株與接毒前健康植株比較的情況相反,可能是玉米抗、感品種分別受到粗縮病侵染脅迫時(shí)內(nèi)源miRNA自身反饋調(diào)節(jié)的一種真實(shí)體現(xiàn)。農(nóng)大108受到粗縮病病原侵染后,差異miRNA下調(diào)數(shù)多于上調(diào)數(shù),可能由于miRNA所起作用的靶基因負(fù)調(diào)控作用機(jī)制相對(duì)較多,從而抑制了抗耐病品種植株發(fā)病,而感病品種鄭單958受到病毒侵染后,差異miRNA的上調(diào)數(shù)多于下調(diào)數(shù),植物病毒在與寄主的互作中占據(jù)優(yōu)勢(shì),導(dǎo)致寄主發(fā)病。
另有研究者分別對(duì)水稻與玉米miRNA及其靶基因?qū)τ衩状挚s病病毒的應(yīng)答通路進(jìn)行了研究[12-14],結(jié)果顯示,一些miRNA家族及其靶基因在玉米與病毒互作中起著重要作用[14]。例如,與泛素有關(guān)(miR166a-3p等)的靶基因的表達(dá)受抑制,泛素合成途徑相關(guān)基因的表達(dá)發(fā)生變化,表明泛素途徑在玉米抗粗縮病中起著重要作用。黃強(qiáng)的研究結(jié)果表明,RBSDV的侵染引起玉米中吲哚-3-乙酸(IAA)含量下降,玉米素核苷(ZR)相對(duì)保持不變,細(xì)胞分裂素與生長(zhǎng)素的比值(C/A)升高,引起玉米頂端優(yōu)勢(shì)喪失,并導(dǎo)致細(xì)胞分化的紊亂,出現(xiàn)植株矮縮、脈突、心葉無法抽出等生長(zhǎng)畸形癥狀,粗縮病癥狀迅速表現(xiàn),導(dǎo)致植株畸形生長(zhǎng)[9]。
此外,1種miRNA(例如miR156)可同時(shí)參與玉米的生長(zhǎng)發(fā)育、信號(hào)傳導(dǎo)、轉(zhuǎn)錄調(diào)控等多種功能,并在粗縮病脅迫響應(yīng)過程發(fā)揮重要作用[15-16]。分析其原因可能是玉米粗縮病誘導(dǎo)玉米體內(nèi)miRNA調(diào)控其靶基因參與信號(hào)傳導(dǎo)、抗氧化脅迫、自身反饋調(diào)節(jié)、抗病相關(guān)代謝等途徑[17-18],各類抗病途徑共同構(gòu)建了玉米抗粗縮病脅迫的復(fù)雜的防御機(jī)制。
參考文獻(xiàn):
[1]孫曉民,韓成衛(wèi),曾蘇明,等. 玉米粗縮病發(fā)生規(guī)律與防控對(duì)策[J]. 吉林農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,35(5):31-33.
[2]陳 佳,朱芹芹,袁從陽(yáng),等. 引起玉米粗縮病的水稻黑條矮縮病病毒山東分離物的分子特性[J]. 植物病理學(xué)報(bào),2008,38(5):540-543.
[3]王升吉,張恒木,趙玖華,等. 山東玉米粗縮病原S10序列分析[J]. 玉米科學(xué),2013,21(6):26-30.
[4]Carrington J C,Ambros V. Role of microRNAs in plant and animal development[J]. Science,2003,301(5631):336-338.
[5]Wu J G,Yang Z R,Wang Y,et al. Viral-inducible Argonaute18 confers broad-spectrum virus resistance in rice by sequestering a host microRNA[J]. Elife,2015,4:e05733.
[6]任春梅,楊 柳,劉保申,等. 一種高通量玉米粗縮病人工接種鑒定方法的建立及應(yīng)用[J]. 玉米科學(xué),2018,26(2):142-148.
[7]施 艷,韓曉玉,劉焱昆,等. 河南省玉米粗縮病抗病品種鑒定及病害與產(chǎn)量的相關(guān)性分析[J]. 河南科學(xué),2020,38(2):208-211.
[8]Liu H J,Wei C H,Zhong Y W,et al. Rice black-streaked dwarf virus minor core protein P8 is a nuclear dimeric protein and represses transcription in tobacco protoplasts[J]. FEBS Letters,2007,581(13):2534-2540.
[9]黃 強(qiáng). 玉米粗縮病癥與內(nèi)源激素水平變化的關(guān)系研究[D]. 成都:四川農(nóng)業(yè)大學(xué),2010.
[10]楊 青,郝俊杰,王新濤,等. 玉米粗縮病抗病基因定位和抗病育種研究進(jìn)展[J]. 分子植物育種,2020,18(12):4021-4028.
[11]Peng D,Wu J G,Zhang J Y,et al. Viral infection induces expression of novel phased microRNAs from conserved cellular microRNA precursors[J]. PLoS Pathogens,2011,7(8):e1002176.
[12]Xu D L,Mou G P,Wang K,et al. MicroRNAs responding to southern rice black streaked dwarf virus infection and their target genes associated with symptom development in rice[J]. Virus Research,2014,190(9):60-68.
[13]李榮改,陸艷梅,王月影,等. 玉米粗縮病的分子研究新進(jìn)展[J]. 植物學(xué)報(bào),2017,52(3):375-387.
[14]Zhou Y,Xu Z N,Duan C X,et al. Dual transcriptome analysis reveals insights into the response to rice black-streaked dwarf virus in maize[J]. Journal of Experimental Botany,2016,67(15):4593-4609.
[15]雷凱鍵,劉 浩. 植物調(diào)控樞紐miR156及其靶基因SPL家族研究進(jìn)展[J]. 生命的化學(xué),2016,36(1):13-20.
[16]Wang J W,Czech B,Weigel D. MiR156-regulated SPL transcription factors define an endogenous flowering pathway in Arabidopsis thaliana[J]. Cell,2009,138(4):738-749.
[17]朱早兵,虞夏清,翟于菲,等. 黃瓜microRNA171的克隆與功能分析[J]. 園藝學(xué)報(bào),2019,46(5):864-876.
[18]Li Z X,Li S G,Zhang L F,et al. Over-expression of miR166a inhibits cotyledon formation in somatic embryos and promotes lateral root development in seedlings of Larix leptolepis[J]. Plant Cell,Tissue and Organ Culture,2016,127(2):461-473.