楊兆艷,胡紅娟,李 新,王玲麗,田艷花
(1 山西藥科職業(yè)學(xué)院食品工程系 太原 030031 2 山西省食品工業(yè)研究所 太原 030031 3 運(yùn)城學(xué)院生命科學(xué)系 山西運(yùn)城 044000)
機(jī)體在正常生長代謝過程中產(chǎn)生自由基,而自由基具有多種生理功能,如激活細(xì)胞活性,參與信號傳導(dǎo),排除細(xì)胞毒素并維持生命所需能量[1]。當(dāng)體內(nèi)產(chǎn)生過量的自由基時會導(dǎo)致機(jī)體正常細(xì)胞組織發(fā)生病變,引起氧化應(yīng)激反應(yīng),并促進(jìn)炎癥、癌癥和糖尿病等疾病的病理學(xué)發(fā)展[2-4]。當(dāng)機(jī)體受到內(nèi)源性損傷和外源性氧化物質(zhì)刺激時,機(jī)體內(nèi)自由基產(chǎn)生和清除的動態(tài)平衡被打破,造成活性氧(Reactive Oxygen Species,ROS)在機(jī)體內(nèi)大量堆積,引起細(xì)胞產(chǎn)生毒性作用[5-6]。此外,過量自由基會導(dǎo)致細(xì)胞膜發(fā)生過氧化,增加膜的通透性[7],同時降低細(xì)胞內(nèi)抗氧化酶系活性,損傷蛋白質(zhì)和DNA 等物質(zhì),并誘導(dǎo)細(xì)胞加速凋亡[8]。大量研究表明,通過膳食補(bǔ)充天然抗氧化成分,一方面可以調(diào)節(jié)機(jī)體內(nèi)自由基水平[9-10];另一方面可增強(qiáng)機(jī)體對外界的防御能力,進(jìn)而有助于維持機(jī)體的氧化動態(tài)平衡[11-12]。開發(fā)具有天然抗氧化活性的功能性食品和藥物已成為當(dāng)前研究的熱點(diǎn)。
藍(lán)莓又名越橘,屬于杜鵑花科越橘屬(Ericaceae Vaccinium.spp)[13],其果實(shí)呈現(xiàn)誘人的藍(lán)色,風(fēng)味獨(dú)特,主要種植于北美、俄羅斯和中國東北地區(qū)。其果實(shí)中富含豐富的花色苷、多酚、黃酮、維生素(A,C,E)、必需氨基酸和超氧化物歧化酶等多種活性成分,具有較高的醫(yī)學(xué)和營養(yǎng)價值,深受人們的喜愛[14],其中藍(lán)莓花色苷(Blueberry anthocyanins,BA) 是藍(lán)莓中重要的活性成分之一,被廣泛用于保健品和藥品等領(lǐng)域。大量研究表明BA 具有抗氧化、抗炎、抗腫瘤、增強(qiáng)視力和防衰老等功效[15]。此外,羅春麗等[16]研究發(fā)現(xiàn)紫薯花青素對H2O2引起的HepG2 細(xì)胞氧化損傷具有保護(hù)作用。林清華[17]研究結(jié)果表明BA 可通過提高細(xì)胞內(nèi)抗氧化酶活性,降低CCl4誘導(dǎo)小鼠肝損傷。張震等[18]研究發(fā)現(xiàn)BA 能顯著降低BGC-823 細(xì)胞內(nèi)ROS 水平,同時細(xì)胞內(nèi)GSH-Px 和CAT 活性顯著增加,降低H2O2引起B(yǎng)GC-823 細(xì)胞氧化損傷。Tang 等[19]研究發(fā)現(xiàn)枸杞花色苷提取物通過促進(jìn)細(xì)胞增殖,減輕脂質(zhì)過氧化和調(diào)節(jié)內(nèi)源性細(xì)胞抗氧化酶活性(GSH-Px、SOD 和CAT)來抑制H2O2誘導(dǎo)的PC12 細(xì)胞氧化損傷。劉玲玲等[20]研究結(jié)果表明花青素通過減少細(xì)胞內(nèi)ROS 含量和抑制H2O2對JNK 的激活,從而減輕阿爾茨海默癥模型細(xì)胞的氧化損傷。目前關(guān)于BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞氧化損傷保護(hù)作用及機(jī)制尚不明確。
鑒于此,本研究采用H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞來構(gòu)建氧化損傷模型,采用MTT 法檢測細(xì)胞存活率,確定H2O2濃度、處理時間及BA 濃度范圍。采用流式細(xì)胞分析儀測定細(xì)胞內(nèi)ROS 水平及凋亡率。ELISA 法檢測胞內(nèi)抗氧化酶(GSH-Px、SOD、CAT)活性及MDA 水平。RT-PCR 技術(shù)測定細(xì)胞內(nèi)抗氧化酶和凋亡相關(guān)蛋白的mRNA 表達(dá)量,Western blot 法檢測凋亡相關(guān)的蛋白表達(dá)量。通過上述研究評價BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞氧化損傷的保護(hù)作用及機(jī)制,為藍(lán)莓功能性食品開發(fā)和抗氧化藥物研究提供理論依據(jù)。
藍(lán)莓,2019年5月購于東北小興安嶺;BA,實(shí)驗(yàn)室經(jīng)超聲提取獲得;人肺癌A549 細(xì)胞,北京協(xié)和細(xì)胞庫;H2O2,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。MTT,北京碧云天生物科技研究所;二甲基亞砜(DMSO),上海萊昂生物科技有限公司;DMEM 和雙抗(青霉素/鏈霉素),日本同仁公司;胎牛血清(FBS),美國Sigma 公司;胰蛋白酶消化液,美國HyClone 公司;谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)、超氧化物歧化酶(SOD)、丙二醛(MDA)、過氧化氫酶(CAT)和活性氧(ROS)試劑盒,南京建成生物工程研究所;磷酸鹽緩沖液(PBS)、蛋白濃度測定試劑盒(BCA)、細(xì)胞裂解液(RIPA),北京佛博生物科技有限公司;TRIzol 試劑,賽默飛世爾科技(中國)有限公司;Bcl-2、Bax、Cytochrome c、Caspase-3/9 和GADPH 抗體,美國CST 公司;其余試劑均為分析純。
ZE5 流式細(xì)胞分析儀,美國BIO-RAD 公司;FV3000 激光共聚焦顯微鏡,美國Thorlabs 公司;DHP-9402 CO2恒溫培養(yǎng)箱,杭州俊升科學(xué)器材有限公司;EVOS M7000 倒置顯微鏡和電泳儀,賽默飛世爾科技(中國)有限公司;FD-1A-50 真空冷凍干燥機(jī),江蘇天翎儀器有限公司;SHZ-D(Ⅲ)型循環(huán)水式真空泵,鞏義儀器有限責(zé)任公司;RE-52AA 型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,上海亞榮生化儀器廠;TG18K-Ⅱ型高速冷凍離心機(jī),上海趙迪生物科技有限公司;JC-1086C Pro 全自動酶標(biāo)分析儀,青島聚創(chuàng)環(huán)保儀器有限公司。
1.3.1 BA 制備 采用超聲輔助提取法提取BA。具體操作如下:準(zhǔn)確稱取2 kg 藍(lán)莓,將其打漿凍干成果粉,提取工藝參數(shù)設(shè)置為:超聲功率350 W,乙醇體積分?jǐn)?shù)60%,提取時間25 min,提取溫度50 ℃,料液比1∶30 g/mL。在此條件下進(jìn)行提取,BA 提取率86.15%,將提取液真空抽濾凍干,制得BA 粉末,備用。
1.3.2 細(xì)胞培養(yǎng) 將A549 細(xì)胞接種于DMEM 培養(yǎng)基(10% FBS 和1%雙抗)中,然后將其置于37℃、5% CO2恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。當(dāng)細(xì)胞鋪滿培養(yǎng)皿底70%~80%時,將細(xì)胞進(jìn)行傳代,本研究均采用對數(shù)期細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。
1.3.3 H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞氧化損傷模型的建立按照6×103個/孔的細(xì)胞密度將對數(shù)期A549 細(xì)胞接種于96 孔板中,每孔200 μL,在37 ℃、5% CO2條件下培養(yǎng)24 h,待細(xì)胞完全貼壁時,棄去上清,加入用DMEM 培養(yǎng)基配制的不同濃度(0,50,100,200,400,800,1 600 μmol/L)H2O2溶液,分別處理3,6,9,12,24,48 h,每個濃度設(shè)置6 個復(fù)孔,隨后棄上清,用PBS 洗滌2 次,然后每孔加入200 μL DMEM 和20 μL(5 mg/mL)MTT,培養(yǎng)4 h,棄上清,每孔再加入150 μL DMSO,振蕩15 min,使藍(lán)色結(jié)晶溶解,置于酶標(biāo)儀中在490 nm 處測定其吸光值。依據(jù)式(1)計算細(xì)胞存活率[21]。
式中:A0——空白組的平均吸光度;A1——不同濃度H2O2處理組的平均吸光度。
1.3.4 BA 劑量的篩選 細(xì)胞培養(yǎng)操作同1.3.3節(jié),僅將加入的不同濃度H2O2,換成用DMEM 培養(yǎng)基配制的不同質(zhì)量濃度(0,30,60,90,180,360 mg/mL)BA,依據(jù)式(1)計算細(xì)胞存活率。
1.3.5 BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞存活率的影響采用MTT 方法測定細(xì)胞存活率。將對數(shù)期A549細(xì)胞(6×103個/孔)接種于96 孔板中,在37 ℃、5%CO2條件下培養(yǎng)12 h,然后每孔加入400 μmol/L H2O2溶液處理24 h,隨后每孔加入用DMEM 培養(yǎng)基配制的不同質(zhì)量濃度 (0,30,60,90 mg/mL)BA干預(yù)24 h,后續(xù)操作同1.3.3 節(jié),依據(jù)式(1)計算細(xì)胞存活率。
1.3.6 BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞內(nèi)ROS 的影響利用DCFH-DA 熒光探針檢測BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞內(nèi)ROS 的影響。按照細(xì)胞密度5×104個/孔將對數(shù)期A549 細(xì)胞接種于6 孔板中,培養(yǎng)12 h,每孔加入400 μmol/L H2O2培養(yǎng)24 h,然后每孔用不同質(zhì)量濃度 (0,30,60,90 mg/mL)BA 干預(yù)24 h,最后每孔加入終濃度5 μmol/L DCFHDA 熒光探針,在4 ℃條件下,避光反應(yīng)20 min,吸取探針,細(xì)胞用PBS 洗滌2 次,隨后利用胰蛋白酶將其消化,離心棄上清液,PBS 重懸,并采用流式細(xì)胞分析儀測定每孔樣品的熒光強(qiáng)度。
1.3.7 BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞MDA 水平的影響 利用南京建成生物工程研究所提供的試劑盒檢測BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞的MDA 水平的影響。選取對數(shù)期A549 細(xì)胞(5×104個/孔)接種于6 孔板中,在37 ℃、5% CO2條件下培養(yǎng)12 h,隨后每孔加入400 μmol/L H2O2培養(yǎng)24 h,然后每孔用不同質(zhì)量濃度(0,30,60,90 mg/mL)BA 干預(yù)24 h,最后每孔加入100 μL 細(xì)胞裂解液,在4 ℃、1 600 g 離心15 min,取上清液作為樣本,利用試劑盒檢測樣品中MDA 含量。
1.3.8 BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞內(nèi)抗氧化酶系的影響 采用試劑盒檢測BA 對H2O2誘導(dǎo)A549細(xì)胞內(nèi)抗氧化酶系的影響。將對數(shù)期A549 細(xì)胞(5×104個/孔)接種于6 孔板中,在37 ℃、5% CO2條件下培養(yǎng)12 h,在每孔中加入400 μmol/L H2O2培養(yǎng)24 h,然后加入不同質(zhì)量濃度(0,30,60,90 mg/mL)BA 干預(yù)24 h,棄去培養(yǎng)液,用預(yù)冷的PBS洗滌2 次,刮下細(xì)胞置于1.5 mL 離心管中,加入RIPA 細(xì)胞裂解液,在4 ℃、12 000 g 離心15 min,取上清液作為樣本。利用試劑盒檢測上清液中GSH-Px、SOD 和CAT 活性。
1.3.9 BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞凋亡的影響取對數(shù)期A549 細(xì)胞 (2.5×105個/孔) 接種于60 mm 細(xì)胞培養(yǎng)皿,在37 ℃、5% CO2條件下培養(yǎng)12 h,在每個皿中加入400 μmol/L H2O2培養(yǎng)24 h,然后加入不同質(zhì)量濃度(0,30,60,90 mg/mL)BA 干預(yù)24 h,棄去培養(yǎng)液,用胰蛋白酶消化,收集細(xì)胞,用PBS 洗2 次,采用Annexin V-FITC/PI 雙標(biāo)記染色法流式檢測細(xì)胞凋亡。同時利用Hoechst 33342 對細(xì)胞核進(jìn)行染色,利用激光共聚焦顯微鏡觀察細(xì)胞核形態(tài)。
1.3.10 RT-PCR 法檢測BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞 內(nèi)GSH-Px、SOD、CAT、Bcl-2、Bax、Cytochrome c 和Caspase-3/9 mRNA 表達(dá)水平的影響 按照細(xì)胞密度為5×104個/孔將對數(shù)期A549 細(xì)胞接種于6 孔板中,在37 ℃、5% CO2條件下培養(yǎng)12 h,隨后每孔加入400 μmol/L H2O2培養(yǎng)24 h,然后每孔用不同質(zhì)量濃度 (0,30,60,90 mg/mL)BA 干預(yù)24 h。利用TRIZOL 試劑提取每組細(xì)胞的RNA。根據(jù)Primer 5.0 設(shè)計引物序列,引物序列如下表所示。
按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄,然后RT-PCR 檢測GSH-Px、SOD、CAT、Bcl-2、Bax、Cytochrome c 和Caspase-3/9 轉(zhuǎn)錄水平表達(dá)。選取GAPDH 作為內(nèi)參,以GSH-Px、SOD、CAT、Bcl-2、Bax、Cytochrome c 和Caspase-3/9 與GAPDH 的mRNA 表達(dá)含量比值作為待測基因相對mRNA 表達(dá)水平。反轉(zhuǎn)錄程序如下:95 ℃保持5 min;94 ℃保持15 s;55 ℃保持20 s;72 ℃保持20 s,40 個循環(huán);設(shè)定收集熒光,每個處理重復(fù)3 次,2ΔΔct法計算待測基因的相對含量。
1.3.11 BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞內(nèi)相關(guān)凋亡蛋白表達(dá)量的影響 采用蛋白印跡法測定BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞內(nèi)相關(guān)凋亡蛋白表達(dá)量的影響。將對數(shù)期A549 細(xì)胞接種于60 mm 細(xì)胞培養(yǎng)皿(2.5×105個/孔),在37 ℃、5% CO2條件下培養(yǎng)12 h,每皿中加入400 μmol/L H2O2培養(yǎng)24 h,然后加入不同質(zhì)量濃度 (0,30,60,90 mg/mL)BA 干預(yù)24 h,隨后加入100 μL RIPA 細(xì)胞裂解液提取細(xì)胞總蛋白,利用BCA 試劑盒測定總蛋白含量。蛋白測定后,取20 μL 蛋白樣品上樣于5%~10%SDS-PAGE 凝膠,電泳分離,冰浴下將其轉(zhuǎn)移至PVDF 膜上,采用5%脫脂奶粉25 ℃搖床封閉1 h,加入對應(yīng)的一抗4 ℃孵育過夜。次日換為HRP標(biāo)記的二抗孵育1 h,采用ECL 化學(xué)發(fā)光顯影,通過凝膠成像檢測Bcl-2、Bax、Cytochrome c、Caspase-3/9 和GADPH 的蛋白表達(dá)水平。結(jié)果利用Image Lab 軟件對相應(yīng)蛋白表達(dá)水平進(jìn)行定量分析。
表1 內(nèi)參及目的基因引物序列Table 1 Primer sequence of target genes involved
1.3.12 數(shù)據(jù)處理 每組試驗(yàn)重復(fù)3 次,結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示;采用Statistix8.0 軟件對每組試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析(ANOVA);采用SAS8.0 軟件分析結(jié)果的顯著差異;Origin9.0 進(jìn)行繪圖。
采用H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞建立氧化損傷模型,其結(jié)果如圖1所示。由圖1可知,在不同處理時間下,不同濃度的H2O2均對A549 細(xì)胞的生長產(chǎn)生一定的抑制作用,且細(xì)胞的存活率均隨H2O2濃度增加和處理時間的延長而降低。與空白對照相比,不同濃度H2O2和處理時間均顯著抑制A549 細(xì)胞存活率(P<0.05)。當(dāng)H2O2濃度和處理時間分別在400 μmol/L 和24 h 時,細(xì)胞存活率達(dá)到(50.86±3.06)%。H2O2濃度過高和處理時間過長時,A549 細(xì)胞損傷越嚴(yán)重;但當(dāng)H2O2濃度過低和處理時間較短時,A549 細(xì)胞損傷不明顯。熊存全等[22]研究發(fā)現(xiàn)細(xì)胞存活率約為50%時,對應(yīng)的H2O2濃度及處理時間作為氧化損傷模型的最適條件。因此,本研究選擇H2O2濃度和處理時間分別為400 μmol/L 和24 h 來構(gòu)建細(xì)胞氧化損傷模型,并用于后續(xù)試驗(yàn)。
圖1 H2O2 濃度(a)和處理時間(b)對A549 細(xì)胞存活率的影響Fig.1 Effect of H2O2 concentration (a) and treatment time (b) on the survival rate of A549 cells
不同質(zhì)量濃度(0,30,60,90,180,360 mg/mL)BA 作用A549 細(xì)胞24 h 后,由圖2a 觀察可知,當(dāng)BA 質(zhì)量濃度在0~90 mg/mL 時,細(xì)胞完全貼壁,緊密相連,且細(xì)胞數(shù)目無顯著變化。由圖2b 可知,在此濃度范圍內(nèi),隨BA 濃度增加A549 細(xì)胞存活率無顯著變化(P>0.05)。結(jié)果表明BA 質(zhì)量濃度在0~90 mg/mL 時對A549 細(xì)胞無毒性作用。當(dāng)BA質(zhì)量濃度在180~360 mg/mL 范圍內(nèi),隨BA 濃度增加A549 細(xì)胞數(shù)目顯著降低,漂浮細(xì)胞增多,同時細(xì)胞存活率顯著降低(P<0.05)。由此說明高濃度BA 對A549 細(xì)胞具有毒性作用。故選擇BA 質(zhì)量濃度為30,60,90 mg/mL 進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。
圖2 不同濃度BA 對A549 細(xì)胞形態(tài)(a)和存活率(b)的影響Fig.2 Effects of different concentrations of BA on morphology (a) and survival rate (b) of A549 cells
細(xì)胞存活率能直觀反映外界環(huán)境對細(xì)胞損傷程度的影響。當(dāng)細(xì)胞受到氧化應(yīng)激時,導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)活性氧水平增加,對A549 細(xì)胞造成氧化損傷,進(jìn)一步誘導(dǎo)其凋亡[23]。因此,細(xì)胞存活率的降低是成功建立氧化損傷模型的重要標(biāo)志之一。H2O2性質(zhì)穩(wěn)定,是一種重要的活性氧分子,通常用于建立體外氧化損傷模型。因此,本研究利用H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞建立體外氧化損傷模型,其結(jié)果如圖3所示。由圖3可知,與空白對照相比,H2O2誘導(dǎo)組A549 細(xì)胞存活率顯著降低 (P<0.05)。結(jié)果表明H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞建立氧化損傷模型成功。與模型組相比,低劑量(30 mg/mL)BA 對細(xì)胞存活率無顯著影響(P>0.05),中劑量(60 mg/mL)和高劑量(90 mg/mL)BA 均能顯著提高細(xì)胞存活率(H2O2<0.05)。結(jié)果表明BA 對A549 細(xì)胞具有一定的保護(hù)作用,能緩解H2O2對A549 細(xì)胞的氧化損傷。
圖3 BA 對H2O2 誘導(dǎo)A549 細(xì)胞存活率的影響Fig.3 Effect of BA on the survival rate of A549 cells induced by H2O2
活性氧(ROS)包含羥自由基、單線態(tài)氧和超氧陰離子等,在正常生理狀態(tài)下,ROS 的產(chǎn)生和清除處于動態(tài)平衡過程,適量ROS 能提高巨噬細(xì)胞的吞噬能力和機(jī)體的免疫能力[24-25]。但在外界刺激時,細(xì)胞內(nèi)產(chǎn)生大量的ROS,過量的ROS 對細(xì)胞的細(xì)胞膜、蛋白質(zhì)和核酸造成氧化損傷,最終導(dǎo)致細(xì)胞凋亡[26]。利用DCFH-DA 熒光探針檢測BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞內(nèi)ROS 的影響,其平均熒光強(qiáng)度大小直觀反映ROS 水平。由圖4可知,與正常對照組相比,模型組ROS 水平顯著增加(P<0.05)。進(jìn)一步表明H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞的氧化損傷模型建立成功。與模型組相比,BA 低、中和高劑量組均能顯著降低細(xì)胞內(nèi)ROS 水平(P<0.05),且呈劑量效應(yīng)。試驗(yàn)結(jié)果表明BA 能有效抑制H2O2引起A549 細(xì)胞內(nèi)ROS 水平升高,降低ROS對細(xì)胞膜和胞內(nèi)物質(zhì)的氧化損傷,進(jìn)一步發(fā)揮抗氧化應(yīng)激的保護(hù)作用。
圖4 BA 對H2O2 誘導(dǎo)A549 細(xì)胞內(nèi)ROS 水平的影響Fig.4 Effect of BA on ROS levels in A549 cells induced by H2O2
機(jī)體自身存在抗氧化調(diào)控系統(tǒng),在一定程度上能抵抗外界氧化應(yīng)激導(dǎo)致的機(jī)體損傷[27]。但當(dāng)機(jī)體發(fā)生強(qiáng)烈的氧化應(yīng)激,且抗氧化體系無法修復(fù)機(jī)體損傷時,則首先引起細(xì)胞膜上不飽和脂肪酸發(fā)生過氧化,其主要的代謝產(chǎn)物為MDA。因此,MDA 水平的高低直接反映細(xì)胞膜受到自由基氧化損傷的嚴(yán)重程度[28]。本研究利用試劑盒檢測BA對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞MDA 水平的影響,其結(jié)果如圖5所示。由圖5可知,與正常組相比,模型組中MDA 水平顯著升高(P<0.05);與模型組相比,BA 低、中、高劑量組均能顯著降低MDA 水平(P<0.05),且呈劑量效應(yīng)。試驗(yàn)結(jié)果表明H2O2導(dǎo)致A549 細(xì)胞發(fā)生嚴(yán)重的氧化損傷,而BA 能顯著緩解活性氧對細(xì)胞膜脂質(zhì)氧化損傷的影響,同時能抑制自由基對機(jī)體的氧化損傷。
圖5 BA 對H2O2 誘導(dǎo)A549 細(xì)胞的MDA 水平的影響Fig.5 Effect of BA on MDA level of A549 cells induced by H2O2
機(jī)體自身存在兩大抗氧化體系(酶抗氧化體系和非酶抗氧化體系) 來共同抵御外界氧化應(yīng)激原[29]。其中GSH-Px、SOD 和CAT 是抗氧化酶的重要組成部分。SOD 和CAT 是抵御外界氧化應(yīng)激刺激的第一道防線;GSH-Px 在機(jī)體內(nèi)作為一種重要的過氧化物分解酶,能催化GSH 和過氧化物還原成無毒的羥基化合物和GSSG,從而有效抑制過氧化物的損傷。機(jī)體抗氧化物酶系在發(fā)揮機(jī)體抗氧化和調(diào)節(jié)氧化應(yīng)激動態(tài)平衡中起到至關(guān)重要的作用,抗氧化酶活力的高低直接反映出機(jī)體對外界氧化應(yīng)激損傷的調(diào)控能力。為探究BA 是否通過提高細(xì)胞內(nèi)抗氧化酶活性來降低H2O2誘導(dǎo)A549細(xì)胞氧化損傷,本研究利用抗氧化酶試劑盒測定BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞內(nèi)GSH-Px、SOD 和CAT 活性的影響,其結(jié)果如圖6所示。由圖6可知,與空白對照組相比,模型組中GSH-Px、SOD和CAT 活性均顯著降低(P<0.05);與模型組相比,BA 低、中和高劑量組均能顯著提高GSH-Px、SOD和CAT 活性(P<0.05)。試驗(yàn)結(jié)果表明H2O2破壞A549 細(xì)胞的氧化調(diào)節(jié)系統(tǒng),降低細(xì)胞內(nèi)抗氧化酶的活力,使得A549 細(xì)胞內(nèi)氧化動態(tài)被打破和胞內(nèi)MDA 水平增加,導(dǎo)致細(xì)胞發(fā)生不可逆的氧化損傷,進(jìn)一步說明H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞氧化損傷模型構(gòu)建成功。而經(jīng)過BA 干預(yù)后,能有效抑制H2O2造成的胞內(nèi)抗氧化酶活性的降低,并降低胞內(nèi)MDA 水平,對氧化損傷具有較好的保護(hù)作用,同時能提高機(jī)體對外界氧化應(yīng)激的調(diào)控能力。該結(jié)果與BA 能緩解H2O2所引起的細(xì)胞存活力降低和ROS 水平增加的結(jié)果一致。
圖6 BA 對H2O2 誘導(dǎo)A549 細(xì)胞內(nèi)GSH-Px(a)、SOD(b)和CAT(c)活性的影響Fig.6 Effect of BA on GSH-Px (a),SOD (b)and CAT (c) activities in A549 cells induced by H2O2
通過2.6 節(jié)研究發(fā)現(xiàn)BA 能顯著抑制H2O2所導(dǎo)致A549 細(xì)胞內(nèi)GSH-Px、SOD 和CAT 活性降低。為從基因?qū)用嫔线M(jìn)一步探究BA 是否能提高A549 細(xì)胞內(nèi)GSH-Px、SOD 和CAT 活性,來抵御H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞氧化損傷。本研究通過RTPCR 技術(shù)檢測GSH-Px、SOD 和CAT 相對mRNA表達(dá)量,其結(jié)果如圖7所示。由圖7可知,與空白對照組相比,經(jīng)H2O2處理A549 細(xì)胞,細(xì)胞內(nèi)GSH-Px、SOD 和CAT 相對mRNA 表達(dá)量顯著降低(P<0.05)。與H2O2處理組相比,BA 試驗(yàn)組均能顯著提高GSH-Px、SOD 和CAT 相對mRNA 表達(dá)量(P<0.05),且呈濃度依賴性。該試驗(yàn)結(jié)果與試劑盒檢測結(jié)果一致。進(jìn)一步證明BA 是通過提高胞內(nèi)抗氧化酶活性,抵御H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞氧化損傷。
圖7 BA 對H2O2 誘導(dǎo)A549 細(xì)胞內(nèi)GSH-Px(a)、SOD(b)和CAT(c)mRNA 表達(dá)量的影響Fig.7 Effect of BA on the expression of GSH-Px (a),SOD (b) and CAT (c) mRNA in A549 cells induced by H2O2
在正常情況下,氧化應(yīng)激在機(jī)體內(nèi)是存在的,且是機(jī)體內(nèi)不可避免的一種狀態(tài)。機(jī)體自身的適應(yīng)機(jī)制保護(hù)細(xì)胞免受不同程度的氧化損傷,外界的各種刺激往往能破壞氧化應(yīng)激的平衡狀態(tài),促使細(xì)胞凋亡甚至導(dǎo)致各種疾病的發(fā)生[30]。本研究首先通過Hoechst 33342 染色觀察BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞核熒光強(qiáng)度的影響,其結(jié)果如圖8a所示。由圖8a 可知,未經(jīng)H2O2處理的對照組A549 細(xì)胞核呈淡藍(lán)色;在模型組中,H2O2處理A549 細(xì)胞能增加細(xì)胞核的熒光強(qiáng)度;而經(jīng)低、中、高劑量的BA 干預(yù)A549 細(xì)胞后,細(xì)胞核的熒光強(qiáng)度逐漸降低。結(jié)果表明BA 能抑制H2O2誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡。為進(jìn)一步探究BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞凋亡率的影響,本試驗(yàn)采用流式細(xì)胞儀進(jìn)行分析研究,其結(jié)果如圖8b 和8c 所示。由圖8c 可知,與對照組相比,H2O2處理A549 細(xì)胞使細(xì)胞凋亡率顯著增加(P<0.05);而經(jīng)低、中、高劑量組的BA干預(yù)后,細(xì)胞凋亡率顯著降低(P<0.05),且呈顯著的劑量關(guān)系。結(jié)果表明H2O2處理顯著增加A549細(xì)胞凋亡率,而BA 能有效抑制H2O2誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡,從而保護(hù)細(xì)胞免受氧化損傷。
圖8 BA 對H2O2 誘導(dǎo)A549 細(xì)胞凋亡的影響Fig.8 Effect of BA on apoptosis of A549 cells induced by H2O2
由2.8 節(jié)研究結(jié)果可知BA 能顯著抑制H2O2所導(dǎo)致A549 細(xì)胞凋亡,為探究BA 保護(hù)H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞氧化損傷機(jī)制,本研究首先采用RTPCR 技術(shù)探究BA 對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞內(nèi)凋亡相關(guān)基因表達(dá)的影響,其結(jié)果如圖9所示。H2O2處理A549 細(xì)胞24 h 后,Bcl-2/Bax 相對mRNA 表達(dá)量顯著低于空白對照組 (P<0.05),而Cytochrome c、Caspase-9 和Caspase-3 相對mRNA表達(dá)量顯著高于空白對照組 (P<0.05)。采用高、中、低劑量的BA 干預(yù)H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞,研究發(fā)現(xiàn)BA 顯著增加Bcl-2/Bax 相對mRNA 表達(dá)量和降低Cytochrome c、Caspase-9 和Caspase-3 相對mRNA 表達(dá)量(P<0.05),呈劑量效應(yīng)。研究結(jié)果表明BA 通過上調(diào)Bcl-2/Bax 相對mRNA 表達(dá)量,下調(diào)Cytochrome c、Caspase-9 和Caspase-3 相對mRNA 表達(dá)量,來抵抗H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞氧化損傷。
圖9 BA 對H2O2 誘導(dǎo)A549 細(xì)胞的Bcl-2/Bax(a)、Cytochrome c(b)、Caspase-9(c)和Caspase-3(d)相對mRNA 表達(dá)量的影響Fig.9 Effect of BA on the expression mRNA levels of Bcl-2/Bax (a),Cytochrome c (b),Caspase-9 (c)and Caspase-3 (d) in A549 cells induced by H2O2
在真核生物中,線粒體作為能量和代謝的中心,為細(xì)胞的生命活動提供必要的基礎(chǔ)能量,同時參與細(xì)胞的代謝調(diào)控。許多外界因素(死亡受體信號、生長因子抑制劑、抗癌藥物等)會造成線粒體功能損傷,引起細(xì)胞凋亡[31]。線粒體直接決定細(xì)胞的生存與死亡,在各種信號通路中起著關(guān)鍵性作用,其功能作為凋亡途徑上游與天冬氨酸特異性的半胱氨酸蛋白水解酶、下游死亡執(zhí)行器之間連接[32]。大量研究表明H2O2可以激活“內(nèi)源性凋亡”或線粒體凋亡途徑,導(dǎo)致細(xì)胞氧化損傷,或啟動內(nèi)源性凋亡途徑和激活Bcl-2 家族。線粒體通路上的Bcl-2 家族在細(xì)胞凋亡中發(fā)揮“主開關(guān)”作用,并且Bcl-2/Bax 的比值大小直觀反映細(xì)胞受到凋亡刺激時的生存狀態(tài),其中抗凋亡蛋白Bcl-2 可通過抑制Bax 激活,阻止Bax 破壞線粒體外膜完整性并抑制Cytochrome c 的釋放和Caspase 前體激活,最終抑制細(xì)胞的凋亡[33-34]。為進(jìn)一步探究BA對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞的保護(hù)作用機(jī)制,本試驗(yàn)在2.9 節(jié)結(jié)果的基礎(chǔ)上,進(jìn)一步采用Western blot檢測BA 對相關(guān)凋亡蛋白表達(dá)量的影響,其結(jié)果如圖10所示。由圖10可知,與對照組相比,模型組Bcl-2/Bax的比值顯著下調(diào)(P<0.05),Cytochrome c、Caspase-9 和Caspase-3 相對蛋白表達(dá)量均顯著上調(diào)(P<0.05);與模型組相比,BA 低、中、高劑量組均能顯著上調(diào)Bcl-2/Bax 的比值,顯著下調(diào)Cytochrome c、Caspase-9 和Caspase-3 相對蛋白表達(dá)量,且呈劑量效應(yīng)(P<0.05)。結(jié)果表明H2O2激活線粒體凋亡通路和Caspase-3 凋亡通路,導(dǎo)致A549 細(xì)胞存活率降低,而BA 可顯著抑制H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞內(nèi)凋亡相關(guān)蛋白表達(dá)。進(jìn)一步說明BA 可通過協(xié)助細(xì)胞抵御氧化應(yīng)激對線粒體和DNA 的損傷,降低細(xì)胞氧化損傷和提高機(jī)體抗氧化應(yīng)激的調(diào)控能力。
圖10 BA 對H2O2 誘導(dǎo)A549 細(xì)胞的Bcl-2/Bax(b)、Cytochrome c(c)、Caspase-9(d)和Caspase-3(e)相對蛋白表達(dá)量的影響Fig.10 Effect of BA on the relative protein expression levels of Bcl-2/Bax (b),cytochrome c (c),caspase-9 (d)and caspase-3 (e) in A549 cells induced by H2O2
綜合以上的研究結(jié)果可知,當(dāng)A549 細(xì)胞受到氧化應(yīng)激原刺激后,首先會引起細(xì)胞內(nèi)的ROS 增加,使細(xì)胞膜脂質(zhì)過氧化產(chǎn)生大量的MDA 產(chǎn)物。為抵抗外界氧化應(yīng)激原刺激和維持細(xì)胞正常的生長,機(jī)體的抗氧化酶系發(fā)揮作用,但當(dāng)外界刺激程度過強(qiáng)時,自身的抗氧化酶系無法彌補(bǔ)外界刺激造成的細(xì)胞損傷,就會導(dǎo)致大量的抗氧化酶消耗和活性降低,氧化動態(tài)平衡被打破,導(dǎo)致細(xì)胞膜的通透性增強(qiáng),并對線粒體和DNA 造成損傷,引起線粒體通路中的Bcl-2/Bax 的比值下調(diào),Cytochrome c、Caspase-9 和Caspase-3 的mRNA 和蛋白表達(dá)量上調(diào),誘導(dǎo)其凋亡,最終使細(xì)胞的存活率降低和凋亡率增加。本研究結(jié)果顯示,BA 能提高A549 細(xì)胞存活率,降低MDA 和胞內(nèi)ROS 水平,抑制H2O2所引起的抗氧化酶活力降低和相關(guān)凋亡蛋白的表達(dá)水平。這與Zhang 等[35]、Tang 等[19]和Isaak 等[36]的研究結(jié)果一致。
試驗(yàn)以BA 為研究對象,以H2O2誘導(dǎo)A549細(xì)胞建立氧化損傷模型,分別從細(xì)胞存活率、凋亡率、MDA 和胞內(nèi)ROS 水平、抗氧化酶活性及其基因表達(dá)、凋亡相關(guān)基因和蛋白表達(dá)量來探討B(tài)A對H2O2誘導(dǎo)A549 細(xì)胞氧化損傷的保護(hù)作用及其作用機(jī)制。結(jié)果表明,BA 能顯著抑制H2O2引起的A549 細(xì)胞存活率降低,同時降低細(xì)胞凋亡率、MDA 和胞內(nèi)ROS 水平,提高抗氧化酶系酶活力和抗氧化酶相對mRNA 表達(dá),并上調(diào)Bcl-2/Bax的比值和下調(diào)Cytochrome c、Caspase-9 和Caspase-3 相對mRNA 和蛋白表達(dá)量。進(jìn)一步說明BA 能通過抑制細(xì)胞凋亡通路蛋白的表達(dá),提高細(xì)胞的抗氧化酶活性,清除胞內(nèi)過量ROS,從而達(dá)到緩解H2O2對A549 細(xì)胞造成的損傷。