黎玉環(huán) 熊光潤 鄭永強(qiáng) 李 敏
(宜昌市第二人民醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科,宜昌 443000)
腦卒中是由于血管堵塞或破裂導(dǎo)致大腦供血不足引起腦損傷的一種急性腦血管疾病[1],包括缺血性和出血性兩大類,其中缺血性腦卒中占80%以上[2]。缺血性腦卒中是一個(gè)復(fù)雜的生理病理過程,線粒體損傷、興奮性氨基酸毒性、氧化應(yīng)激、炎癥反應(yīng)等均會(huì)導(dǎo)致腦缺血損傷[3]?,F(xiàn)階段治療急性腦出血的主要手段是在合適時(shí)間窗內(nèi)溶栓,但此方案可能會(huì)進(jìn)一步加重腦缺血所致的炎癥及谷氨酸興奮毒性,導(dǎo)致腦缺血再灌注損傷[4]。近十幾年來,隨著對(duì)缺血性腦損傷的不斷探索,學(xué)者們發(fā)現(xiàn),多種分子與缺血再灌注損傷過程中的炎癥反應(yīng)和神經(jīng)元細(xì)胞凋亡有關(guān)[5]。磷酯酰肌醇-3-激酶(phosphatidylinositol 3 kinase,PI3K)/蛋白激酶B(protein kinase B,Akt)/哺乳動(dòng)物雷帕霉素靶蛋白(mammalian target of rapamycin,mTOR)是細(xì)胞內(nèi)經(jīng)典的促炎、促腫瘤通路,被先前的研究發(fā)現(xiàn)可通過調(diào)控氧化應(yīng)激、炎癥反應(yīng)、細(xì)胞凋亡等生理過程參與不同的神經(jīng)保護(hù)機(jī)制[6]。MicroRNA-200c(miR-200c)作為小非編碼RNA家族的一員,被證實(shí)與代謝性疾病以及惡性腫瘤疾病的進(jìn)展有關(guān)[7]。李蓋天[8]的研究表明,過表達(dá)miR-200c可通過調(diào)控PI3K/Akt信號(hào)通路抑制胃癌上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化過程,并影響胃癌細(xì)胞對(duì)阿霉素等藥物的抵抗性。然而,目前尚不清楚miR-200c調(diào)控PI3K/Akt/mTOR通路在腦缺血再灌注損傷過程中的作用機(jī)制。本研究探討側(cè)腦室注射miR-200c對(duì)腦缺血再灌注損傷大鼠腦保護(hù)作用,并研究其潛在調(diào)控機(jī)制,為腦缺血再灌注損傷提供更多治療靶點(diǎn)。
40只雄性SD大鼠由武漢大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)室提供[動(dòng)物許可證號(hào):SYXK(鄂)2017-0065],體質(zhì)量220~260 g。所有大鼠均飼養(yǎng)于恒溫的飼養(yǎng)籠中,保持相對(duì)濕度為55%左右,給予充足的光照和經(jīng)紫外線消毒后的水源,適應(yīng)性喂養(yǎng)1周。本次實(shí)驗(yàn)經(jīng)本院動(dòng)物保護(hù)委員會(huì)審查及批準(zhǔn)。倫理編號(hào):YC.20210114S0321510
40只大鼠隨機(jī)分為假手術(shù)組、模型組、miRNC組和miR-200c組,每組10只。除假手術(shù)組外,模型組、miR-NC和miR-200c組均采用線栓法構(gòu)建腦缺血再灌注損傷模型,具體操作如下:首先用10%的水合氯醛以腹腔注射的方式將各組大鼠進(jìn)行麻醉,由頸部正中切開皮膚,分離肌肉組織后暴露頸動(dòng)脈,夾緊頸總動(dòng)脈近心端和頸內(nèi)動(dòng)脈遠(yuǎn)心端,中間剪斷將直徑為0.26 mm的魚線沿頸內(nèi)動(dòng)脈方向輕柔插入,當(dāng)遇到阻力時(shí)停止,并在頸內(nèi)動(dòng)脈近心端結(jié)扎動(dòng)脈,縫合切口,線頭留置約3 cm于體外。缺血2 h后拔出魚線約10 min以達(dá)到再灌注的目的。假手術(shù)組大鼠插線深度維持在10 mm以下,其他處理與上述一致。手術(shù)過程順利且出現(xiàn)大鼠死亡,當(dāng)大鼠清醒后出現(xiàn)爬行追尾情況,提尾時(shí)左前肢內(nèi)收屈曲視為模型制作成功,手術(shù)結(jié)束后,各組大鼠仍保持單籠常規(guī)飼養(yǎng)。
模型制作成功3 d后,假手術(shù)組大鼠不做任何處理,其余各組大鼠用10%水合氯醛以腹腔注射的方式將各組大鼠進(jìn)行麻醉,將各組大鼠以俯臥位固定于腦立體定位儀上,切開頭皮,暴露頭骨,由前囪向右方及后方各平移3.5 mm,于顱骨處開孔后進(jìn)針3.8 mm,模型組、miR-NC組和miR-200c組分別經(jīng)側(cè)腦室注射生理鹽水、miR-NC和miR-200c,劑量均為2 μL,注射速率為0.25 μL/min,注射完畢后停留約10 min后緩慢拔出注射器,以防外溢,封閉顱骨處開孔。消毒后縫合頭皮,小鼠清醒后仍保持單籠常規(guī)飼養(yǎng)。
模型制作成功24 h后依據(jù)改良的Longa法[9]對(duì)各組大鼠神經(jīng)行為功能進(jìn)行評(píng)分,總分為0~5分,得分越高,神經(jīng)功能缺陷越嚴(yán)重。0分:大鼠行為正常,不存在神經(jīng)功能缺陷;1分:大鼠右前爪無法完全伸展;2分:大鼠表現(xiàn)為向右單側(cè)轉(zhuǎn)圈;3分:大鼠表現(xiàn)為向右單側(cè)傾倒及翻轉(zhuǎn);4分:大鼠不能行走或爬行,喪失意識(shí);5分:大鼠死亡。
模型制作成功24 h處死小鼠,切除小腦、腦干,清洗后稱重大腦濕重,干燥后稱大腦干重,按照干濕重比值計(jì)算腦組織含水量。
模型制作成功24 h后取腦組織保存于-20℃冷凍30 min,采用2,3,5-三苯基氯化四氮唑染色法測(cè)定各組大鼠腦梗死體積,將冰凍過的腦組織制成厚度約為2 mm的冠狀片,采用2%的2,3,5-三苯基氯化四氮唑溶液(上海齊源生物科技有限公司;貨號(hào):26-729)進(jìn)行染色,福爾馬林固定后拍照,采用Image-Pro Plus 6.0軟件按照“腦梗死體積=(病灶體積/腦總體積)× 100%”計(jì)算各組大鼠的腦梗死體積。
取各組大鼠腦組織,眼科剪剪碎后組織液進(jìn)行裂解,TRIzol提取腦組織內(nèi)的總RNA,并將其逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,GeneAmp PCR儀(美國ABI公司;型號(hào):9700型)檢測(cè)各組大鼠腦組織中以U6作為標(biāo)準(zhǔn)化內(nèi)參后miR-200c的相對(duì)mRNA表達(dá)水平,設(shè)置反應(yīng)條件為:95℃ 10 min,95℃ 5 s,60℃ 20 s,共循環(huán)40次,95℃ 60 s、95℃ 30 s、95℃ 30 s解離。miR-200c上游引物:5'-CGTCTT ACCCAGCAGTGTTT-3',下游引物:5'-ATACTGCC GGGTAATGATGGA-3'。
采用分光光度法[10]測(cè)定大鼠腦組織中氧化應(yīng)激指標(biāo)超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、丙二醛(malondialdehyde,MDA)和谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase,GSHPX)的水平。首先將各組大鼠腦組織從-20℃的冰箱內(nèi)取出,低溫條件下以生理鹽水稀釋,混勻后3 000 r/min高速離心20 min,收集上清液。以黃嘌呤氧化酶法檢測(cè)上清液中SOD含量,硫代巴比妥酸法檢測(cè)上清液中MDA含量,化學(xué)比色法檢測(cè)上清液中GSH-PX含量,嚴(yán)格按照說明書要求操作。以上試劑盒均購自武漢伊萊瑞特生物科技股份有限公司。
采用酶聯(lián)免疫吸附法[11]測(cè)定大鼠腦組織中炎癥因子白細(xì)胞介素-6(interleukin-6,IL-6)、白細(xì)胞介素-1β(interleukin-1β,IL-1β)和腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)的水平。取1.8中收集的腦組織上清液,采用IL-6、IL-1β和TNF-α試劑盒分別檢測(cè)IL-6、IL-1β、TNF-α的含量,嚴(yán)格按照說明書要求操作。以上試劑盒均購自武漢伊萊瑞特生物科技股份有限公司。
收集各組大鼠腦組織,在預(yù)冷的緩沖液中進(jìn)行勻漿,高速離心后收集上清液。采用BCA法檢測(cè)蛋白濃度,裂解液充分裂解后將各組蛋白質(zhì)濃度調(diào)整為等量,SDS-PAGE凝膠電泳后轉(zhuǎn)膜,與凋亡相關(guān)蛋白B淋巴細(xì)胞瘤-2(B-cell lymphoma-2,Bcl2)、Bcl-2關(guān)聯(lián)X蛋白(recombinant Bcl2 associated X protein,Bax)、半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶3(cysteine aspartic protease-3,caspase 3)、PI3K、Akt和mTOR等一抗兔抗大鼠(1∶1 000,武漢三鷹生物技術(shù)有限公司)4℃孵育過夜,再與辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗羊抗兔(1∶10 000,武漢三鷹生物技術(shù)有限公司)共同孵育1 h,采用GelDoc-2000 Imagine軟件進(jìn)行化學(xué)發(fā)光檢測(cè),以β-actin作為標(biāo)準(zhǔn)化內(nèi)參對(duì)各組蛋白條帶進(jìn)行定量。
本次實(shí)驗(yàn)中采用SPSS 22.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,計(jì)量資料均以±s表示,組間比較采用t檢驗(yàn),多組間比較以單因素方差分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
與假手術(shù)組相比,其他3組神經(jīng)功能評(píng)分、腦含水量和腦梗死體積均顯著升高(P<0.05),miR-200c組神經(jīng)功能評(píng)分、腦含水量和腦梗死體積顯著低于模型組和miR-NC組(P<0.05)(表1)。
表1 各組大鼠神經(jīng)功能評(píng)分、腦含水量、腦梗死體積差異(n=10,±s)
表1 各組大鼠神經(jīng)功能評(píng)分、腦含水量、腦梗死體積差異(n=10,±s)
*P<0.05 vs假手術(shù)組; #P<0.05 vs模型組;△P<0.05 vs miR-NC組
組別神經(jīng)功能評(píng)分(分)腦含水量(%)腦梗死體積(%)假手術(shù)組072.43±1.590模型組3.02±0.68*87.68±2.43*32.07±4.33*miR-NC組2.89±0.71*85.94±2.26*30.88±3.56*miR-200c組2.04±0.36*#△75.36±1.63*#△16.49±2.11*#△P<0.001<0.001<0.001
與假手術(shù)組、模型組和miR-NC組相比,miR-200c組miR-200c表達(dá)顯著上調(diào)(P<0.05)(圖1)。
圖1 各組大鼠腦組織內(nèi)miR-200c表達(dá)
與假手術(shù)組相比,其他3組Bax、caspase 3蛋白表達(dá)顯著上調(diào),Bcl2蛋白表達(dá)顯著下調(diào)(P<0.05);miR-200c組Bax、caspase 3蛋白表達(dá)顯著低于模型組和miR-NC組,Bcl2蛋白表達(dá)顯著高于模型組和miR-NC組(P<0.05)(圖2)。
圖2 各組大鼠神經(jīng)細(xì)胞凋亡相關(guān)分子表達(dá)差異
與假手術(shù)組相比,其他3組SOD和GSH-PX含量顯著降低,MDA含量顯著升高(P<0.05);miR-200c組SOD和GSH-PX含量較模型組和miR-NC組顯著升高,MDA含量顯著降低(P<0.05)(表2)。
表2 各組大鼠氧化應(yīng)激指標(biāo)差異(n=10,±s,pg/mL)
表2 各組大鼠氧化應(yīng)激指標(biāo)差異(n=10,±s,pg/mL)
*P<0.05 vs假手術(shù)組; #P<0.05 vs模型組;△P<0.05 vs miR-NC組
組別SODMDAGSH-PX假手術(shù)組135.62±15.33123.15±28.71121.23±16.08模型組 27.84±4.57* 1683.27±251.46* 32.46±5.12*miR-NC組 28.11±5.85* 1705.16±214.85* 30.87±4.95*miR-200c組 69.77±7.94*#△ 724.81±148.74*#△ 69.18±7.47*#△P<0.001<0.001<0.001
與假手術(shù)組相比,其他3組IL-6、IL-1β、TNF-α含量顯著增多(P<0.05),miR-200c組IL-6、IL-1β、 TNF-α含量顯著低于模型組和miR-NC組(P<0.05)(表3)。
表3 各組大鼠炎癥指標(biāo)差異(n=10,±s,pg/mL)
表3 各組大鼠炎癥指標(biāo)差異(n=10,±s,pg/mL)
*P<0.05 vs假手術(shù)組; #P<0.05 vs模型組;△P<0.05 vs miR-NC組
組別IL-6IL-1βTNF-α假手術(shù)組12.46±1.4718.45±2.1516.31±1.25模型組34.27±4.02*42.16±4.45*37.34±3.84*miR-NC組35.43±3.72*41.73±4.29*38.02±3.75*miR-200c組25.04±2.61*#△29.05±3.22*#△22.45±2.86*#△P<0.001<0.001<0.001
與假手術(shù)組相比,其他3組PI3K/Akt/mTOR通路被顯著抑制(P<0.05),miR-200c組PI3K/Akt/mTOR的活化水平顯著高于模型組和miR-NC組(P<0.05)(圖3)。
圖3 各組大鼠PI3K/Akt/mTOR通路分子表達(dá)差異
本研究采用線栓法構(gòu)建大鼠腦缺血再灌注損傷模型,觀察側(cè)腦室注射miR-200c對(duì)模型大鼠神經(jīng)損傷的保護(hù)作用及潛在機(jī)制,結(jié)果顯示模型大鼠神經(jīng)功能評(píng)分、腦含水量和腦梗死體積顯著升高,表明該方法建模成功。側(cè)腦室注射miR-200c后,miR-200c通過調(diào)控PI3K/Akt/mTOR通路顯著改善模型大鼠的腦損傷,為腦缺血再灌注損傷的診斷和治療提供新的分子靶點(diǎn)。
本研究結(jié)果顯示,miR-200c通過調(diào)控PI3K/Akt/mTOR通路顯著減輕腦組織內(nèi)氧化應(yīng)激反應(yīng)和炎癥反應(yīng),抑制神經(jīng)細(xì)胞凋亡,發(fā)揮顯著的腦保護(hù)作用。與既往國外文獻(xiàn)結(jié)論并不完全一致,Tang等[12]研究表明,緩激肽1受體拮抗劑可阻斷緩激肽1受體,抑制小膠質(zhì)細(xì)胞微囊泡miR-200c向神經(jīng)細(xì)胞進(jìn)行信號(hào)傳遞,進(jìn)而發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用。究其原因,可能與miR-200c靶向的下游分子不同有關(guān),本研究中miR-200c作用于PI3K/Akt/mTOR信號(hào)通路,上調(diào)其表達(dá),減少促氧化應(yīng)激指標(biāo)MDA的含量,增加抗氧化應(yīng)激指標(biāo)SOD和GSH-PX的含量,同時(shí)抑制炎癥因子IL-1β、TNF-α的水平,改善神經(jīng)功能評(píng)分、腦含水量和腦梗死體積,下調(diào)促凋亡蛋白Bax和caspase 3的表達(dá),上調(diào)抑凋亡蛋白Bcl2的表達(dá),減輕神經(jīng)細(xì)胞凋亡[13],為腦缺血再灌注導(dǎo)致的腦損傷提供新的有效治療和改善方案,對(duì)于腦卒中患者的臨床治療而言意義重大。
PI3K/Akt/mTOR信號(hào)通路是廣泛存在于細(xì)胞內(nèi)參與影響細(xì)胞生成、分化、增殖、遷移、侵襲和凋亡的經(jīng)典通路,參與多種惡性腫瘤疾病、急慢性炎癥疾病和損傷疾病的發(fā)生發(fā)展[14-15]。有研究顯示,miR-200c可通過調(diào)控PI3K/Akt通路促進(jìn)乳腺癌細(xì)胞的體外增殖、遷移和侵襲,與乳腺癌細(xì)胞的惡性生物學(xué)行為有關(guān)[16]。關(guān)于miR-200調(diào)控PI3K/Akt在神經(jīng)元及腦組織中發(fā)揮的效應(yīng)也有國外學(xué)者曾報(bào)道過。Du等[17]研究表明,miR-200c-3p在癲癇大鼠海馬組織中高表達(dá),miR-200c-3p通過激活A(yù)kt信號(hào)通路降低海馬組織中炎癥介質(zhì)的含量,減輕氧化應(yīng)激反應(yīng),抑制癲癇大鼠馬海神經(jīng)元凋亡,減輕神經(jīng)元損傷,這與本研究結(jié)果較為相符。本研究結(jié)果也顯示,側(cè)腦室注射miR-200c通過激活PI3K/Akt/mTOR信號(hào)通路的磷酸化水平,顯著抑制腦缺血再灌注大鼠氧化應(yīng)激反應(yīng)和炎癥反應(yīng),抑制神經(jīng)細(xì)胞凋亡,降低神經(jīng)功能評(píng)分、腦含水量和腦梗死體積。其機(jī)制可能與miR-200c對(duì)PI3K/Akt/mTOR通路的調(diào)控作用有關(guān),miR-200c通過酪氨酸激酶激活PI3K的磷酸化,并在丙酮酸脫氫酶激酶同工酶1的作用下活化Akt信號(hào)[18],再與磷酸化的結(jié)節(jié)性硬化復(fù)合物2結(jié)合,增強(qiáng)腦中富含的Ras同源蛋白活性,上調(diào)mTOR的磷酸化水平[19],發(fā)揮顯著的神經(jīng)保護(hù)作用。本研究結(jié)果進(jìn)一步說明miR-200c上調(diào)PI3K/Akt/mTOR信號(hào)級(jí)聯(lián)在腦缺血再灌注腦保護(hù)中發(fā)揮關(guān)鍵的生物學(xué)效應(yīng)。
綜上所述,miR-200c可通過激活PI3K/Akt/mTOR信號(hào)通路,顯著抑制腦缺血再灌注大鼠腦組織內(nèi)氧化應(yīng)激反應(yīng)和炎癥反應(yīng),改善神經(jīng)細(xì)胞凋亡,減輕模型大鼠神經(jīng)功能評(píng)分、腦含水量和腦梗死體積,發(fā)揮顯著的腦保護(hù)作用。本研究結(jié)果提示miR-200c和PI3K/Akt/mTOR信號(hào)通路在腦缺血再灌注患者的治療中擁有廣闊應(yīng)用前景,臨床可考慮將PI3K/Akt/mTOR通路作為改善缺血性腦卒中的重要靶點(diǎn),以減少患者腦卒后腦損傷。