張紀利，齊 是，欒新博，金亞波，黃崇峻，黎 平，韋建玉，顏 健

（1.廣西中煙工業(yè)有限責任公司，廣西 南寧 530001；2.華南農業(yè)大學資源環(huán)境學院/農業(yè)農村部華南熱帶農業(yè)環(huán)境重點實驗室/廣東省生態(tài)循環(huán)農業(yè)重點實驗室/廣東省現代生態(tài)農業(yè)與循環(huán)農業(yè)工程技術研究中心，廣東 廣州 510642）

【研究意義】眾所周知，植物病原微生物在植株根際定殖的數量是決定能否侵染植株的關鍵，所以土傳病害的發(fā)生是與土壤中病原菌數量變化呈一定關系的［1-2］。一般認為，土傳病原菌存在于土壤中，當土壤中病原菌數量激增對植株的侵染就會越發(fā)嚴重，待病原菌突破植株的自身防御體系便可以引發(fā)土傳病害。因此，在種植初期和發(fā)病早期對潛伏在土壤中的病原菌數量進行定量檢測，有助于監(jiān)測田間病害的發(fā)生，并針對性的選擇化學或者生物等防控技術手段，將病原菌數量控制在發(fā)病閾值內，從而減小經濟損失［3］。

【前人研究進展】目前，常用的病原菌檢測方法主要包括分離培養(yǎng)法、免疫學技術、流式細胞術和熒光定量聚合酶鏈式反應（PCR）和LAMP 技術等［4-6］。相對于普通PCR，熒光定量PCR（qPCR）靈敏度更高，具有實時監(jiān)測、假陽性低、可量化等優(yōu)點。此外，qPCR 可以檢測到土壤中無法分離培養(yǎng)的微生物，從而克服傳統(tǒng)檢測方法的局限性。qPCR 是在普通PCR 反應體系中加入特定的熒光結合物或熒光探針，然后通過特定的熒光識別儀器，實時檢測熒光信號的變化，得到模板基因通過擴增達到熒光檢測閾值所需的循環(huán)數（Ct 值），再根據已建立的標準曲線確定模板中的基因表達量，推導出在目標樣本內病原菌的含量，實現對病原體的定量［7］。該技術在植物病害檢測中已經得到廣泛的應用，如王倩等［8］建立了qPCR 分子檢測技術應用于土壤中早疫病菌茄鏈格孢（Alternaria solani）的檢測；陳清清等［9］利用qPCR 方法檢測小麥枯萎病菌索氏平臍蠕孢（Bipolaris sorokiniana）；Maud 等［10］建立了引起麥瘟病的稻瘟病菌（Pyricularia Oryzae）的qPCR 檢測方法；Eduardo 等［11］建立了一種精確檢測土壤和草莓植株中的茄病鐮刀菌（Fusarium solani）方法用于預測土傳病害枯萎病的發(fā)生。

【本研究切入點】枯萎病和煙草黑脛病是植煙土壤中最為常見的主要土傳病害，其病原菌分別是尖孢鐮刀菌（Fusarium oxysporum）和煙草疫霉（Phytophthora parasiticavar.nicotianae）。尖孢鐮刀菌是一種土傳病原真菌，能引起植物枯萎病和根腐病，該菌能侵染茄科、芭蕉科、薔薇科、葫蘆科、十字花科和豆科等100 種具有重要經濟價值的作物。尖孢鐮刀菌在植株根部維管束中定殖，導致導管堵塞，地上部分枯萎，根表皮產生褐色壞死斑，后期根部腐爛甚至整株植株死亡，嚴重影響植物的生長發(fā)育、產量以及品質［12］。煙草疫霉引起的真菌性病害，該病廣泛分布于我國各大煙區(qū)，是我國煙草上最具毀滅性的病害之一。該病多數發(fā)生于煙草成株期，少數發(fā)生于苗床期。該病原菌寄主廣泛，除煙草外還可侵染辣椒、黃瓜、番茄等多種植物的根、莖和葉，侵染后植株出現根系壞死、葉片黃化、植株萎蔫甚至枯死等癥狀［13］?？梢姡羵鞑『τ捎诰哂泻軓姷膫魅拘?，很難根治，提前檢測及事先預防極為重要?！緮M解決的關鍵問題】本研究利用PCR 預擴增，qPCR 后擴增定量的思路，建立同時檢測兩種病原菌的技術，該檢測技術為煙草種植過程中枯萎病和煙草黑脛病的病害發(fā)生和防控提供技術支持。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

1.1.1 供試土壤 發(fā)病土壤與健康土壤于2020 年6－7 月采集自廣西百色植煙區(qū)植煙土壤和廣東韶關煙區(qū)植煙土壤，田間煙草病害發(fā)生情況按《煙草病蟲害分級及調查方法》(GB/23222-2008)國家標準調查。每個樣地按照五點取樣法，其中煙草疫霉菌土樣33 份，鐮刀菌土樣9 份，健康土樣22 份，土壤取樣后裝入無菌自封袋中，放入液氮中冷藏，最后放于-80 ℃冰箱保存。室內分析試驗于2020 年6 月至2021 年3 月在華南農業(yè)大學完成。

1.1.2 供試病原菌及培養(yǎng)條件 枯萎病菌尖孢鐮刀菌（F.oxysporum，菌種編號3.18025）購于中國普通微生物菌種保藏管理中心CGMCC；煙草黑脛病病原菌寄生疫霉煙草致病變種（P.parasiticavar.nicotianae，BNCC354348）購于北京北納創(chuàng)聯微生物技術研究所。購買的菌種均按照對應所購公司提供的操作步驟說明書和培養(yǎng)條件進行復蘇和擴繁，其中尖孢鐮刀菌使用麥芽汁瓊脂培養(yǎng)基培養(yǎng)，寄生疫霉煙草致病變種使用馬鈴薯葡萄糖瓊脂（PDA）培養(yǎng)基培養(yǎng)。保藏方法：尖孢鐮刀菌和寄生疫霉煙草致病變種均通過打孔器取平板菌種生長邊緣的菌餅于25%甘油中貯存于-80 ℃冰箱內。

1.1.3 培養(yǎng)基和主要耗材 PDA 培養(yǎng)基購于廣東環(huán)凱微生物科技有限公司。麥芽汁瓊脂培養(yǎng)基：葡萄糖10 g/L，蛋白胨10 g/L，酵母提取物5 g/L，瓊脂20 g/L。真菌基因組DNA 快速抽提試劑盒和細菌基因組DNA 快速抽提試劑盒均購于上海生工生物工程股份有限公司。

1.1.4 主要設備 LRH 系列生化培養(yǎng)箱（上海一恒科學儀器有限公司）；ZHWY-103D 恒溫培養(yǎng)箱（上海智城分析儀器制造有限公司）；垂直流超凈工作臺（上海智城分析儀器制造有限公司）；高壓滅菌器（日本Hirayama Manufacturing公司）；電子天平（上海梅特勒-托利多儀器有限公司）；離心機（德國Eppendorf）；UV-2450 紫外分光光度計（日本島津公司）；酶標儀（美國Molecular Devices 公司）；恒溫培養(yǎng)震蕩器（天津歐諾儀器股份有限公司）；DK-8D 型電熱恒溫水浴鍋（上海精宏實驗設備有限公司）；NanoDrop One 微量紫外可見分光光度計（賽默飛世爾科技有限公司）；C1000 Touch PCR 儀/96孔梯度PCR 儀（美國Bio-rad 伯樂有限公司）；Applied BiosystemsqPCR 儀（北京新陽創(chuàng)業(yè)科技發(fā)展有限公司）。

1.2 試驗方法

1.2.1 病原微生物特異性引物的篩選 病原微生物基因組DNA 提取：煙草疫霉和尖孢鐮刀菌取菌絲100 mg 于離心管中，按照上海生工細菌基因組DNA 快速抽提試劑盒提取。DNA 提取結果通過Nanodrop One 檢測DNA 濃度和質量。

引物特異性篩選：針對煙草疫霉菌和尖孢鐮刀菌的ITS 序列，通過查閱文 獻［14-15］獲得多對引物（煙草疫霉：NIC (F:CCACCACGCAGCAAACTGCGGC,R:C A T T G A G T A G C C A G A G T C C G T C，P n i c (F:A A C C G A A G C T G C C A C C T A C,R:GAACAATGCAACTTATTGGACGTTT)，P n 3（F:G A C A A A C C A G T C G C C A A T T T,R:TGAACGCATATTGCACTTCC）；鐮刀菌引物YD (F:GCAGCGAGACCGCCACTAGATTT,R:T G C C T G T T C G A G C G T C A T T T C A)，J B (F:C A T A C C A C T T G T T G T C T C G G C,R:G A A C G C G A A T T A A C G C G A G T C)，AFP308 (F:CTTGGTCATTTAGAGGAAGTAA,R:CGAATTAACGCGAGTCCCAAC)，分別以3 種病原菌基因組DNA 和空白（水）對照為模板驗證引物的特異性，建立PCR 和qPCR 擴增的反應體系及反應條件如下：

PCR 反應體系：20 μL ：2 × Taq PCR Master Mix 10 μL，上、下游引物（10 μmol/L）各0.25 μL，模板DNA 濃度為100 ng，剩余用ddH2O 補足至20 μL。PCR 反應程序：94 ℃預變性3 min；94 ℃變性30 s，60 ℃退火30 s，72 ℃延伸30 s，15 個循環(huán)；72 ℃延伸8 min，4 ℃保存。

qPCR 反應體系：15 μL：3 × Taq qPCR Master Mix 5 μL，ROX Reference Dye（50×）0.3 μL，上、下游引物（10 μmol/L）各0.6 μL，模板DNA (PCR 反應產物) 1 μL，剩余用ddH2O 補足至15 μL。qPCR 反應程序：95 ℃預變性2 min；95 ℃變性15 s，60 ℃退火45 s，72 ℃延伸30 s，40 個循環(huán)；72 ℃延伸8 min。

1.2.2 病原菌熒光定量PCR 標準曲線建立 通過試劑盒提取的煙草疫霉和鐮刀菌基因組DNA，按照模板濃度100、10、1、0.1、0.01、0.001、0.0001 ng 加入qPCR 體系中，按照引物篩選特異性方法中的反應體系和程序進行qPCR 擴增，通過儀器檢測到的Ct 值繪制標準曲線。

1.2.3 土壤DNA 提取方法優(yōu)化 隨機選擇8 份土壤樣本，在Omega Bio-tek Soil DNA Kit D5625試劑盒的基礎上進行操作優(yōu)化。優(yōu)化主要是通過改變單因素變量，然后用NanoDrop One 測定DNA 濃度和質量作為評價指標。具體如下：針對樣本土壤干濕度程度，將土樣平分為兩份，其中一份置于60 ℃烘箱中烘干2 h，另一份作為對照。針對研磨程度，將土樣平分為兩份，其中一份置于研缽中研磨細，肉眼看不到塊狀顆粒為止，另一份作為對照。洗脫次數，以30 μL的洗脫溶劑洗脫第一次，然后再吸取上次洗脫液進行二次洗脫，得到的DNA，都用NanoDrop One 測定DNA濃度和質量。

1.2.4 土樣PCR 預擴增和qPCR 擴增反應體系及條件 以植煙土壤中提取的土壤微生物DNA 為模板，其余的PCR 預擴增和qPCR 反應體系和條件與驗證引物特異性方法的相同。

試驗數據采用WPS2019 和office 進行整理和作圖，采用SPSS17.0 進行多重比較，使用鄧肯式新復極差檢驗法進行差異顯著性測驗。

2 結果與分析

2.1 病原菌引物特異性篩選

各取100 ng 煙草疫霉菌、尖孢鐮刀菌，然后分別與一組非靶標病原菌（水、青枯菌、鐮刀菌或者水、青枯菌、煙草疫霉菌）的基因組DNA進行PCR 擴增并結合PCR的目標條帶（圖1）及qPCR的溶解曲線（圖2）與Ct 值結果，篩選出兩對引物，分別為煙草疫霉菌Pn3（正向引物：GACAAACCAGTCGCCAATTT；反向引物：TGAACGCATATTGCACTTCC）、尖孢鐮刀菌JBR（正向引物：CATACCACTTGTTGTCTCGGC；反向引物：GAACGCGAATTAACGCGAGTC）。

2.2 兩種病原菌熒光定量PCR 標準曲線制作

以10 倍濃度梯度稀釋的病原菌DNA 為模板進行qPCR 反應，反應結束后，以模板濃度的對數為x軸，以Ct 值為y軸作回歸曲線，獲得熒光定量檢測2 種病原菌的標準曲線。檢測在模板濃度1×102～1×10-4ng 之間具有良好的線性關系（圖3），線性范圍可達6 個數量級。煙草疫霉相關系數R2為0.9972、斜率為-3.6038，截距為18.588，最終得出模板濃度與循環(huán)閾值之間的線性關系曲線公式為：y=-3.6038x+18.588。鐮刀菌相關系數R2為0.9447、斜率為-3.8693，截距為26.25，最終得出模板濃度與循環(huán)閾值之間的線性關系曲線公式為：y=-3.8693x+26.25。溶解曲線（圖2）分析表明，兩種病原菌溶解曲線均是單一峰，無明顯雜峰，擴增產物Tm 值均一，煙草疫霉82.5（±0.5）℃，鐮刀菌83.5（±0.5）℃，表明換擴增產物單一，無非特異性擴增。

圖3 10 倍梯度稀釋的煙草疫霉和尖孢鐮刀菌DNA的qPCR 標準曲線Fig.3 qPCR standard curves of DNA of Phytophthora parasitica var.nicotianae and Fusarium oxysporum with 10-fold serial dilutions

2.3 土壤DNA 提取方法優(yōu)化

在按照Omega Bio-tek Soil DNA Kit D5625 試劑盒的基礎上針對樣品土壤的干燥、研磨、洗脫次數分別進行優(yōu)化處理，結果見圖4。相較于潮濕的土壤，風干后的土壤提取的DNA 濃度明顯更高（圖4A）。相對于未研磨的樣品，研磨后的樣品提取的DNA 濃度明顯更高（圖4B），可能是因為研磨后的土壤與裂解酶的接觸面積更大，更利于細胞破壁使更多DNA 釋放出來，得到DNA數量自然就更多。最后因為本研究建立的二次熒光定量PCR 方法所需的DNA 模板體積較小，所以通過30 μL的Elution Buffer 進行二次洗脫可以明顯增加DNA 濃度（圖4C），以達到體系中所需的DNA 模板量。

圖4 土壤DNA 提取方法優(yōu)化Fig.4 Optimization of soil DNA extraction method

2.4 土傳病害土壤采集及二次熒光定量PCR 檢測結果

從廣西百色植煙區(qū)采集健康和發(fā)病土壤樣本，從中選出具有一定代表性的土壤作為測試對象，檢測結果見圖5。

圖5 植煙土壤中2 種病原菌數量檢測結果Fig.5 Detection results of the quantities of Fusarium oxysporum and Phytophora parasitica var.nicotianae in tobacco planting soil

采集的土壤按照已建立的檢測方法進行檢測，從圖5 可以看出，煙草疫霉菌在黑脛病發(fā)病土壤和健康土壤中差異不顯著，可能是因為煙草疫霉寄生在宿主植物中，在煙稈還田前土壤中病原菌數量較健康土壤差異不明顯，尖孢鐮刀菌同樣在發(fā)病和健康土壤中不明顯。

3 討論

土壤是作物生長的根本，也是微生物生長的沃土，土壤中存在數量巨大、種類繁多的微生物，它們中的絕大部分是有益的，在土壤發(fā)育、物質轉化、結構形成、提高作物養(yǎng)分有效性、抑制病原菌活性等方面發(fā)揮著不可替代的作用［16］。但是，土壤中也存在著另一類引起作物病害的有害微生物，通稱為病原微生物。土傳病害的發(fā)生與土壤中病原微生物的數量及種類的致病力息息相關。

分子生物學檢測是實驗室進行植物病原菌檢測的重要手段［17］。土壤中微生物DNA 提取的質量關系到微生物數量，土壤基因組DNA 包括土壤中的微生物和動植物遺體等的總DNA，而且傳統(tǒng)的DNA 提取方法［18-19］很難有效除去土壤中的腐殖質等抑制因子。這種抑制因子在聚合酶鏈式反應PCR 中會影響酶的活力及反應體系，使最終的結果誤差較大。傳統(tǒng)的DNA 提取方法所需土壤樣品量大、操作繁瑣、費時費力，不利于大批量的DNA 提?。?0-21］，所以本實驗選擇通過試劑盒法進行DNA提?。?2］，且在試劑盒的方法上進行優(yōu)化，操作方便，適合大批量提取，提取的DNA 完全能夠滿足本實驗的要求。

隨著煙草集約化種植程度的提高，化肥和農藥的大量施用，管理不善、單一作物連續(xù)種植、煙稈還田等因素使得土壤微生物區(qū)系紊亂，導致農作物土傳病害日益嚴重，我們調查及文獻調研得知枯萎病和煙草黑脛病是煙草中最常見、危害最嚴重的病害種類。土傳病害的發(fā)生除了與土壤中病原菌的數量正相關外，病原菌的致病力的不同也是造成病害差異的重要因素。尖孢鐮刀菌具有遺傳多樣性，存在不同菌株專化型和生理小種等，而且不同生理小種對不同寄主的致病力不同［23］。該實驗由病原菌ITS 區(qū)序列設計引物，通過qPCR 擴增分析煙草疫霉菌和尖孢鐮刀菌在植煙土樣中的數量，可以在一定程度上反映煙草疫霉菌和尖孢鐮刀菌對煙株的致病力，但不能絕對辨別兩個菌株轉化型和生理小種。土傳病害的發(fā)生還有一些重要的外部因素，溫度、pH 值和光照對煙草疫霉菌和尖孢鐮刀菌的生物學特性都有影響［24-25］，高溫和高濕有利于土傳病害的發(fā)生［26］。本研究針對染病和健康土壤的病原菌數量，以植煙土樣中兩種常見病原菌（煙草疫霉菌和尖孢鐮刀菌）為參考進行定量檢測，從Ct 值可以看出染病土壤Ct 值小于健康土壤，可見染病土壤中的2種病原菌的數量高于健康土壤，為這兩類土傳病害的發(fā)生提供一定的預警效果，為后期利用土壤滅菌和生物防治土壤中病原菌提供技術參考。

目前對于這兩類病原菌引起的土傳病害的防治，往往是施用大量的化學藥劑，從而環(huán)境污染、藥物殘留、破壞生態(tài)平衡等缺點已經不符合農業(yè)健康、可持續(xù)發(fā)展的要求。因此，在檢測煙草疫霉菌和尖孢鐮刀菌數量的基礎上，針對輕度、中度的染病植煙土壤可以采用土壤微生態(tài)調節(jié)劑為生物修復策略，而對于重度污染的植煙土壤，應實施高效無污染熏蒸等土壤消毒劑。該研究為測土噴施調節(jié)劑或消毒劑防控土傳病害提供一定技術依據，完全符合當今煙葉綠色發(fā)展要求。

4 結論

本研究以植煙土壤中常見的病原菌煙草疫霉菌和尖孢鐮刀菌為研究對象，以染病和健康土壤中的病原菌DNA 為檢測目標，優(yōu)化植煙土壤中病原微生物DNA 提取方法，建立煙草疫霉菌和尖孢鐮刀菌的PCR 和qPCR 反應體系，篩選出特異性的兩對引物，研究結果表明PCR 和qPCR 聯用技術能夠快速地分辨和檢測植煙土壤中尖孢鐮刀菌和煙草疫霉菌DNA的濃度，能夠一定程度上反應出植煙土壤中兩種病原菌的數量。該研究對枯萎病和煙草黑脛病實時監(jiān)測和前期預警具有重要作用，可以為煙草土傳病害的防控策略提供參考價值。

參考文獻(（References）：

［1］ 黃新琦.生物有機肥防控黃瓜土傳立枯病效果及防控機理［D］.南京：南京農業(yè)大學；2012.

HUANG X Q.The effects and mechanisms of bio-organic fertilizers on biological control of cucumber rhizoctonia damping-off disease［D］.Nanjing:Nanjing Agricultural University,2012.

［2］ 張炳欣，張平.植物根圍外來微生物定殖的檢測方法［J］.浙江大學學報（農業(yè)與生命科學版）2000,26(6):624-628.

ZHANG B X,ZHANG P.Detection of introduced microorganisms to rhizosphere［J］.Journal of Zhejiang Universtiy (Agricultural and Life Science),2000,26(6):624-628.

［3］ 韋中，王佳寧，江高飛，王孝芳，徐陽春，沈其榮.土傳病原細菌的生存與致病權衡［J］.土壤學報，2021:1-11.DOI:10.11766/trxb202008310399.

WEI Z,WANG J,JIANG G F,WANG X F,XU Y C,SHEN Q R.Survival-virulence trade-off of soil-borne pathogenic bacteria［J］.Acta Pedologica Sinica,2021:1-11.DOI:10.11766/trxb202008310399.

［4］ 仝鐵錚，吳舒旭，李丹，何苗，楊天，施漢昌.基于PMA-定量PCR選擇性檢測技術的病原菌消毒特性研究［J］.環(huán)境科學，2011,32(4):1120-1126.DOI:10.13227/j.hjkx.2011.04.005.

TONG T Z，WU S X，LI D，HE M，YANG T，SHI H C.Evaluation of pathogen disinfection efficacy by chlorine and monochloramine disinfection based on quantitative PCR combined with propidium monoazide(PMA-qPCR)［J］.Environmental Science,2011,32(4):1120-1126.DOI:10.13227/j.hjkx.2011.04.005.

［5］ 薛超.植物病毒檢測技術研究進展分析［J］.農業(yè)與技術，2020,40(16):48-50.DOI:10.19754/j.nyyjs.20200830017.

XUE C.Progress in plant virus detection analysis［J］.Agriculture and Techology,2020,40(16):48-50.DOI:10.19754/j.nyyjs.20200830017.

［6］ 單長林，周圓，李孝軍.玉米細菌性枯萎病菌熒光重組酶介導等溫擴增檢測方法的建立與應用［J］.廣東農業(yè)科學，2021，48（1）：111-118. DOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2021.01.014.

SHAN C L,ZHOU Y,LI X J.Establishment and application of fluorescent recombinase-aided amplification method forPantoea stewartiisubsp.stewariidetection［J］.Guangdong Agricultural Sciences,2021,48(1):111-118.DOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2021.01.014.

［7］ LIEVENS B,BROUWER M,VANACHTER A C R C,CAMMUE B P A,THOMMA B P H J.Real-time PCR for detection and quantification of fungal and oomycete tomato pathogens in plant and soil samples［J］.Plant Science,2006,171(1):155-165.DOI:10.1016/j.plantsci.2006.03.009.

［8］ 王倩.土壤中茄鏈格孢半巢式和實時熒光定量PCR 檢測方法的建立［D］.保定：河北農業(yè)大學；2014.

WANG Q.Establishment of seminested-PCR and real-time quantitative PCR for the detection ofAlternaria solaniin soil［D］.Baoding:Agricultural University of Hebei,2014.

［9］ 陳清清，孫炳劍，袁虹霞，施艷，李洪連.小麥根腐病菌索氏平臍蠕孢SYBR Green I 實時熒光定量PCR 檢測技術研究［J］.菌物學報，2014,33(3):690-696.DOI:10.13346/j.mycosystema.130075.

CHEN Q Q,SUN B J,YUAN H X,SHI Y,LI H L.Quantitative detection ofBipolaris sorokinianain winter wheat based on SYBR green I real-time PCR［J］.Mycosystema,2014,33(3):690-696.DOI:10.13346/j.mycosystema.130075.

［10］ THIERRY M,GLADIEUX P,FOURNIE E,THARREAU D,IOOS R.A genomic approach to develop a new qPCR test enabling detection of thePyricularia Oryzaelineage causing wheat blast［J］.Plant Disease,2020,104(1):60-70.DOI:10.1094/PDIS-04-19-0685-RE.

［11］ EDUARDO D-L L,MARíA J B-U,BERTA D-S S,LUIS M,MARIA D V-D,NIEVES Capote.A taqMan real-time polymerase chain reaction assay for accurate detection and quantification ofFusarium solaniin strawberry plants and soil［J］.Scientia Horticulturae,2018,237:128-134,DOI:10.1016/j.scienta.2018.04.007.

［12］ 董超，方香玲.植物病原真菌尖孢鐮刀菌檢測與定量研究進 展［J］.草地學報，2021,29(7):1599-1604.DOI:10.11733/j.issn.1007-0435.2021.07.030.

DONG C,FANG X L.Rearch progress on detection and quantification of plant pathogenic fungi fusarium［J］.Acta Agrestia Sinica,2021,29(7):1599-1604,DOI:10.11733/j.issn.1007-0435.2021.07.030.

［13］ 劉暢，向立剛，汪漢成，曾隕濤，何永福，余知和.溫度對煙草黑脛病菌致病力及代謝表型的影響［J］.植物保護學報，2021,48(3):669-678.DOI:10.13802/j.cnki.zwbhxb.2021.2020091.

LIU C,XIANG L C,WANG H C,ZENG Y T,HE Y F,YU Z H.Effects of temperature on pathogenicity and metabolic phenotype of tobacco black shank pathogenPhytophthora nicotianae［J］.Journal of Plant Protection,2021,48(3):669-678.DOI:10.13802/j.cnki.zwbhxb.2021.2020091.

［14］ 劉芳，宋紀真，范藝寬，牟文君，奚家勤，胡利偉.基于鎖核苷酸(LNA)增敏的植煙土壤中煙草黑脛病菌定量PCR 檢測方法［J］.煙草科技，2015,48(12):14-19.DOI:10.16135/j.issn1002-0861.20151203.LIU F,SONG J Z,FAN Y K,MOU W J,XI J Q,HU L W,A quantitative PCR method for detectingPhytophthora parasiticavar.nicotianaein tobacco planting soil based on LNA sensitization［J］.Tobacco Science &Technology,2015,48(12):14-19.DOI:10.16135/j.issn1002-0861.20151203

［15］ 灑榮波，晁強，王曉輝，隋君康，劉訓理.楊樹枯萎病菌實時熒光定量PCR 檢測方法的建立及應用［J］.山東農業(yè)科學，2019,51(2):131-135.DOI:10.14083/j.issn.1001-4942.2019.02.026.

SA R B,CHAO Q,WANG X H,SUI J K,LIU X L.Establishment and application of a real -time fluorescent quantitative PCR method for detection of poplar wilt pathogen［J］.Shandong Agricultural Sciences,2019,51(2):131-135.DOI:10.14083/j.issn.1001-4942.2019.02.026.

［16］ HOSSAIN MI,SADEKUZZAMAN M,HA S D.Probiotics as potential alternative biocontrol agents in the agriculture and food industries:A review［J］.Food Research International,2017,100 (Part 1):63-73.DOI:10.1016/j.foodres.2017.07.077.

［17］ 陳霞，崔一平，彭埃天，宋曉兵，程保平，凌金鋒.仁化縣貢柑主要病害的調查與檢測［J］.廣東農業(yè)科學，2021,48(2):92-99.DOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2021.02.012.

CHEN X，CUI Y P，PENG A T，SONG X B，CHENG B P，LING J F.Investigation and detection of main diseases on gonggan in Renhua county［J］.Guangdong Agricultural Sciences,2021,48(2):92-99.DOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2021.02.012.

［18］ REBECCA E H,RICHARD J S,ALAN C Mc,DIANA H,HANS L,KATHY O K,SUE W H,IAN T R,ALAN E R.Direct measurement of roots in soil for single and mixed species using a quantitative DNAbased method［J］.Plant and Soil,2011,348(1-2):123-137.DOI:10.1007/s11104-011-0846-3.

［19］ JAMES W W,KATHRYN M W,PATRICIA M G,IAN P A,JEFF C P,GILES E B,NEIL B.A new large scale soil DNA extraction procedure and real-time PCR assay for the detection ofSclerotium cepivorumin soil［J］.European Journal of Plant Pathology,2012,134(3):467-473.DOI:10.1007/s10658-012-0025-2.

［20］ 熊明華，曹焰暉，楊芮，王光利，束良佐，朱繼榮.一種改良的可直接用于PCR 擴增的土壤DNA 提取方法［J］.基因組學與應用生物學，2019,38(4):1643-1648.DOI:10.13417/j.gab.038.001643.

XIONG M H,CAO Y H,YANG R,WANG G L,SHU L Z,ZHU J R.An improved soil DNA extraction method for dire ct PCR amplification［J］.Genomics and Applied Biology,2019,38(4):1643-1648.DOI:10.13417/j.gab.038.001643.

［21］ 陳弟，李可增，吳瓊，何應對，殷曉敏.火龍果根際土壤微生物2種DNA 提取方法的比較［J］.熱帶生物學報，2019,10(2):184-189.DOI:10.15886/j.cnki.rdswxb.2019.02.014.

CHEN D，LI K Z，WU Q，HE Y D，YIN X M.Comparison of two extraction methods in extraction of tota l DNA from soil microbes in therhizosphere of pitaya［J］.Journal of Tropocal Biology,2019,10(2):184-189.DOI:10.15886/j.cnki.rdswxb.2019.02.014.

［22］ 黃懷冬，肖姬玲，張屹，阮萬輝，魏林，梁志懷.一種改進的尖孢鐮刀菌的實時熒光定量PCR 檢測方法［J］.植物保護，2017,43(4):129-133,144.

HUANG H D,XIAO Y L,ZHANG Y,RUAN W H,WEI L,LIANG Z H.An improved real-time flurescence quantitative PCR method for detecting fusarium［J］.Plant and Crop,2017,43(4):129-133+144.

［23］ 王澤華，方香玲.尖孢鐮刀菌遺傳多樣性研究進展［J］.中 國草地學報，2021,43(5):106-114.DOI:10.16742/j.zgcdxb.20200275.

WANG Z H,FANG X L.The research on genetic diverstiy ofFusarium oxysporum［J］.Chinese Journal of Grassland,2021,43(5):106-114.DOI:10.16742/j.zgcdxb.2 0200275.

［24］ 沈會芳，林壁潤，孫光明，蒲小明，陸新華，張景欣，何衍彪，詹儒林.海南菠蘿心腐病菌煙草疫霉的生物學特性研究［J］.廣東農業(yè)科學，2014,41(2):92-95.DOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2014.02.017

SHEN H F,LIN B R,SUN G M,PU X M，LU X H,ZHANG J X，HE Y B,ZHAN R L.Research on the biological characteristics ofPhytophthora nicotianae,a pathogen of heart rot of pineapple in Hainan［J］.Guangdong Agricultural Sciences,2014,41(2):92-95.DOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2014.02.017.

［25］ 劉暢，向立剛，汪漢成，曾隕濤，何永福，余知和.溫度對煙草黑脛病菌致病力及代謝表型的影響［J］.植物保護學報，2021,48(3):669-678.DOI:10.13802/j.cnki.zwbhxb.2021.2020091.

LIU C,XIANG L G,WANG H C,ZENG Y T,HE Y F,YU Z H.Effects of temperature on pathogenicity and metabolic phenotype of tobacco black shank pathogenPhytophthora nicotianae［J］.Journal of Plant Protection,2021,48(3):669-678.DOI:10.13802/j.cnki.zwbhxb.2021.2020091.

［26］ 曹坳程，劉曉漫，郭美霞，王秋霞，李園，歐陽燦彬，顏冬冬.作物土傳病害的危害及防治技術［J］.植物保護，2017,43(2):6-16.

CAO A C,LIU X M,GUO M X,WANG Q X,LI Y,OUYANG C B,YAN D D.Incidences of soil-bor ne disease and control measure［J］.Plant Protection,2017,43(2):6-16.