張曦戈 費(fèi)棟棟 王埡錚 張楊 王曉雨 葛曉彤 王勤濤
牙周膜干細(xì)胞(periodontal ligament stem cells, PDLSCs)是從牙周組織分離的成體干細(xì)胞,具有增殖,自我更新以及多向分化等特性,在牙周組織再生領(lǐng)域具有廣闊的應(yīng)用前景[1-2]。成骨分化潛能是PDLSCs重要特性,然而,大量研究表明,老年個(gè)體來源的牙周膜干細(xì)胞(PDLSCs from the old,O-PDLSCs)成骨分化潛能顯著降低,并已成為老年人牙槽骨骨質(zhì)疏松的重要因素[3-7]。因此,對(duì)于增齡相關(guān) PDLSCs成骨分化能力減弱的機(jī)制研究具有重要意義。
未折疊蛋白反應(yīng)(unfolded protein response,UPR)是一種細(xì)胞維持蛋白質(zhì)穩(wěn)態(tài)的適應(yīng)性反應(yīng)。UPR主要由三個(gè)跨膜蛋白啟動(dòng):蛋白激酶R樣內(nèi)質(zhì)網(wǎng)激酶(protein kinase R like endoplasmic reticulum kinase,PERK),肌醇需要酶 1(inositol requiring enzyme 1,IRE1)和轉(zhuǎn)錄活化因子6(activating transcription factor-6,ATF6),UPR通過減少蛋白合成,上調(diào)分子伴侶的表達(dá)和促進(jìn)錯(cuò)誤折疊蛋白質(zhì)的降解以恢復(fù)蛋白質(zhì)穩(wěn)態(tài)[8]。PERK-轉(zhuǎn)錄活化因子 4(activating transcription factor 4,ATF4)通路是UPR的經(jīng)典通路之一,主要通過抑制蛋白質(zhì)翻譯以減輕內(nèi)質(zhì)網(wǎng)負(fù)荷[9]。有研究表明,衰老因素可影響PERK-ATF4通路,導(dǎo)致細(xì)胞功能改變[10-11]。此外,也有研究證實(shí) PERK-ATF4通路對(duì)間充質(zhì)干細(xì)胞的成骨分化具有重要調(diào)控作用[12-14]。但PERK-ATF4通路是否參與增齡相關(guān)PDLSCs成骨分化能力降低目前尚不可知。本實(shí)驗(yàn)擬探究PERKATF4通路對(duì)增齡性PDLSCs成骨分化能力的調(diào)控作用,以期為老年患者的牙周組織修復(fù)提供新思路。
本項(xiàng)研究經(jīng)第四軍醫(yī)大學(xué)口腔醫(yī)院倫理委員會(huì)的批準(zhǔn)(批號(hào):IRB-YJ-2018066),所有受試者均簽署了知情同意書。
α-最低必須培養(yǎng)基(Gibco,美國);胎牛血清(杭州四季青生物有限公司);青霉素鏈霉素、胰蛋白酶、茜素紅染色液(北京索萊寶公司);Ⅰ型膠原酶(Bio-Froxx,德國);PERK基因過表達(dá)質(zhì)粒(上海吉?jiǎng)P基因);PERK siRNA(Santa Cruz Biotechnology,美國);總RNA提取試劑 Trizol Reagent(Invitrogen,美國);cDNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒和實(shí)時(shí)熒光定量PCR(qRT-PCR)試劑盒(TaKaRa,日本);YJ-875型超凈工作臺(tái)(蘇州凈化設(shè)備廠);實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀(Bio-Rad,美國);倒置相差顯微鏡(Olympus,日本)。
Y-PDLSCs來源于15~30歲患者健康的第三磨牙及因正畸需要拔除的健康前磨牙,O-PDLSCs來源于55~75歲牙周無明顯炎癥的牙齒,所有患者均無系統(tǒng)性疾病,刮取離體牙牙根中1/3牙周膜,使用Ⅰ型膠原酶于37℃消化40~60 min,每間隔10 min震蕩1次,組織碎片加入完全α-MEM培養(yǎng)基重懸,接種于六孔板中,在含5%CO2的37℃恒溫孵箱中孵育。實(shí)驗(yàn)過程中使用第3~4代PDLSCs。
將O-PDLSCs接種至六孔板,待細(xì)胞匯合90%~95%時(shí)轉(zhuǎn)染,轉(zhuǎn)染前2 h對(duì)細(xì)胞換液,加入1.5 mL無雙抗無血清α-MEM培養(yǎng)基;將轉(zhuǎn)染復(fù)合物和siRNA混合物混勻,室溫靜置20 min,500μL轉(zhuǎn)染混合物加入六孔板中搖勻,置于37℃恒溫細(xì)胞培養(yǎng)箱中,4~6 h更換α-MEM完全培養(yǎng)基。
將Y-PDLSCs接種至六孔板,待細(xì)胞匯合90%~95%時(shí)轉(zhuǎn)染,轉(zhuǎn)染前2 h對(duì)細(xì)胞換液,加入1.5 mL無雙抗無血清α-MEM培養(yǎng)基;將轉(zhuǎn)染復(fù)合物和質(zhì)粒復(fù)合物混勻,室溫靜置20 min,500μL轉(zhuǎn)染混合物加入6孔板中搖勻,置于37℃恒溫細(xì)胞培養(yǎng)箱中,4~6 h更換α-MEM完全培養(yǎng)基。
PDLSCs接種至6孔板中,待細(xì)胞匯合至80%時(shí)加入成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)基(含10 mmol/Lβ-甘油磷酸鈉、0.1μmol/L地塞米松、50mg/L維生素C、10%胎牛血清)。
成骨誘導(dǎo)28 d后,棄培養(yǎng)基,PBS沖洗,4%多聚甲醛固定30min,PBS沖洗2遍,加入茜素紅染液染色20 min,PBS沖洗2遍,置于鏡下觀察,每孔加入1 mL十六烷基吡啶,室溫放置15min,酶聯(lián)免疫檢測儀檢測540 nm波長的吸光度值。
Trizol提取PDLSCs總RNA,紫外分光光度儀檢測RNA濃度及純度,配比 20μL反轉(zhuǎn)錄體系(1000 ngRNA,4μL反轉(zhuǎn)錄預(yù)混液、ddH2O配平),反轉(zhuǎn)錄cDNA;配比10μL反應(yīng)體系(1μL的 cDNA、0.4μL目的基因上下游引物、5μL的 SYBR、3.2μL的ddH2O),以GAPDH為內(nèi)參。引物序列見表1。
表1 引物序列Tab 1 Primer sequences
成骨誘導(dǎo)7 d后,采用qRT-PCR檢測成骨相關(guān)基因ALPL、RUNX2、OCN的mRNA表達(dá)水平,結(jié)果顯示,與Y-PDLSCs相比,O-PDLSCs的成骨相關(guān)基因的mRNA表達(dá)水平均明顯降低(P<0.05)(圖 1A)。成骨誘導(dǎo)28 d后,茜素紅染色結(jié)果顯示,O-PDLSCs的礦化能力顯著降低(圖1B)。以上結(jié)果均表明,與YPDLSCs相比,O-PDLSCs的成骨分化能力降低。
圖1 Y-PDLSCs和O-PDLSCs的成骨分化能力比較Fig 1 Comparison of the osteogenic differentiation ability between Y-PDLSCs and O-PDLSCs
qRT-PCR檢測結(jié)果顯示,與Y-PDLSCs相比,OPDLSCs的PERK通路相關(guān)基因GRP78、CHOP、PERK以及ATF4 mRNA表達(dá)水平均明顯升高(P<0.05)(圖2)。
圖2 PDLSCs中PERK通路相關(guān)基因的表達(dá)Fig 2 The expression of PERK pathway related genes of PDLSCs
PERK siRNA轉(zhuǎn)染O-PDLSCs后,qRT-PCR檢測結(jié)果顯示,PERK siRNA轉(zhuǎn)染后,O-PDLSCs的PERK及PERK通路下游分子ATF4的mRNA表達(dá)水平均下降(P<0.05)(圖 3A)。PERK siRNA可有效抑制O-PDLSCs的PERK-ATF4通路。
PERK siRNA轉(zhuǎn)染O-PDLSCs后,進(jìn)行成骨誘導(dǎo)。成骨誘導(dǎo)7 d后,qRT-PCR結(jié)果顯示,抑制O-PDLSCs的PERK-ATF4通路后,成骨相關(guān)基因ALPL、RUNX2、OCN表達(dá)水平均升高(P<0.05)(圖 3B)。成骨誘導(dǎo)28 d后,茜素紅染色結(jié)果顯示,抑制 O-PDLSCs的PERK-ATF4通路后,礦化結(jié)節(jié)形成數(shù)量明顯增加(P<0.05)(圖 3C)。以上結(jié)果均表明,抑制 PERK-ATF4通路后,O-PDLSCs的成骨分化能力升高。
圖3 敲低PERK對(duì)O-PDLSCs成骨能力的影響Fig 3 The effects of knockdown of PERK on the osteogenic ability of O-PDLSCs
用PERK過表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染 Y-PDLSCs后,qRTPCR結(jié)果顯示,Y-PDLSCs的PERK及ATF4的表達(dá)水平均明顯升高(P<0.05)(圖 4A)。PERK過表達(dá)質(zhì)??娠@著激活Y-PDLSCs的PERK-ATF4通路。
PERK過表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染Y-PDLSCs后,進(jìn)行成骨誘導(dǎo)。成骨誘導(dǎo)7 d后,qRT-PCR結(jié)果顯示,激活YPDLSCs的PERK-ATF4通路后,成骨相關(guān)基因的mRNA表達(dá)水平均明顯下降(P<0.001)(圖 4B)。成骨誘導(dǎo)28 d后,茜素紅染色結(jié)果顯示,激活Y-PDLSCs的PERK-ATF4通路后,礦化結(jié)節(jié)形成數(shù)量減少(P<0.05)(圖 4C)。以上結(jié)果均表明,激活 PERK-ATF4通路可降低Y-PDLSCs的成骨分化能力。
圖4 過表達(dá)PERK對(duì)Y-PDLSCs成骨能力的影響Fig 4 The effects of overexpression of PERK on the osteogenic ability of Y-PDLSCs
PDLSCs因其具有自我更新及多向分化潛能等特性,為牙周再生治療提供了可靠來源。而增齡性因素對(duì)PDLSCs成骨分化的負(fù)向調(diào)控限制了其臨床應(yīng)用,并且是老年人牙槽骨骨質(zhì)疏松的重要因素。有研究報(bào)道,不同年齡受試者PDLSCs的成骨能力隨著年齡的增長顯著降低[3]。本研究發(fā)現(xiàn),相比于Y-PDLSCs,OPDLSCs的成骨相關(guān)分子ALPL、RUNX2、OCN在基因水平表達(dá)均降低,茜素紅染色結(jié)果也證實(shí)O-PDLSCs的成骨能力顯著降低。內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激 (endoplasmic reticulum stress,ERS)是指各種原因擾動(dòng)細(xì)胞內(nèi)穩(wěn)態(tài),使未折疊或錯(cuò)誤折疊蛋白質(zhì)在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔內(nèi)積累。UPR可減少細(xì)胞內(nèi)未折疊或錯(cuò)誤折疊蛋白的積累以減輕內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激[8]。內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激被認(rèn)為是衰老的標(biāo)志之一,參與了不同組織的衰老[15-17]。PERK-ATF4信號(hào)通路是 UPR的經(jīng)典通路之一。在老年大鼠視網(wǎng)膜中,PERK-ATF4信號(hào)通路被激活,ATF4、CHOP表達(dá)水平升高[18]。此外,PERKATF4通路也參與調(diào)控PDLSCs的成骨分化。較高濃度的TNF-α通過激活PERK-ATF4通路減弱PDLSCs的成骨能力[14,19]。在老年小鼠原代骨細(xì)胞中,UPR相關(guān)分子 ATF4、CHOP表達(dá)升高,導(dǎo)致骨形成減少[20]。但PERK-ATF4通路是否參與增齡相關(guān)PDLSCs成骨能力降低目前尚不明確。本研究證實(shí)O-PDLSCs中PERK-ATF4通路被激活。并在激活或抑制 YPDLSCs,O-PDLSCs中 PERK-ATF4通路后,檢測PDLSCs成骨能力的變化,證實(shí)了增齡性PDLSCs通過激活PERK-ATF4通路調(diào)控成骨分化能力。相反,也有研究報(bào)道,激活 PERK-ATF4通路有助于年輕PDLSCs的成骨分化[12]。另外,循環(huán)機(jī)械力作用可誘導(dǎo)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激并通過激活PERK-ATF4通路增強(qiáng)PDLSCs的成骨能力[13]。這種差異可能是由于UPR激活程度不同或細(xì)胞來源不同以及細(xì)胞所處微環(huán)境不同導(dǎo)致的,其具體的調(diào)控機(jī)制需要更全面深入的探索。
綜上,本研究證明了 PERK-ATF4通路在 OPDLSCs中激活并介導(dǎo)了增齡相關(guān)PDLSCs成骨能力的降低。本研究不僅為增齡相關(guān)PDLSCs成骨分化能力的降低提供了一種新的機(jī)制,也為老年患者的牙周再生提供了新思路。