薛蘇桐, 王先流, 易兵成, 郭煦然, 唐 寒, 沈炎冰, 張彥中
(東華大學(xué)化學(xué)化工與生物工程學(xué)院,上海 201620)
在全球范圍內(nèi),每年有成千上萬的患者因創(chuàng)傷、疾病、衰老等原因造成骨缺損,這在很大程度上影響了患者的健康和生活質(zhì)量。骨組織工程(BTE)技術(shù)可為解決臨床上傳統(tǒng)骨缺損治療方法中存在的各種不足提供最有潛力的解決方案。BTE的基本方法是將生物材料支架作為細胞和信號因子的載體來誘導(dǎo)成骨,或植入后從周圍骨組織募集細胞并使其原位生長和分化,最終形成新骨。由于骨組織是承力組織,力學(xué)刺激對細胞的成骨誘導(dǎo)分化起著重要作用[1],因此,在BTE生物材料支架的設(shè)計中,如果能使其具有合理施加力學(xué)刺激的功能,將為加速骨缺損修復(fù)和增強再生功效提供新的思路。
熱響應(yīng)類形狀記憶聚合物(SMPs)可通過形狀改變有效調(diào)節(jié)自身力學(xué)性能并實現(xiàn)微創(chuàng)植入,為發(fā)展力學(xué)活性BTE支架提供了新的材料選擇[2]?;赟MPs的BTE支架在回復(fù)過程中若與周圍骨組織接觸,就會對骨細胞施加力學(xué)刺激并通過力學(xué)轉(zhuǎn)導(dǎo)機制調(diào)控細胞的成骨行為[3],但SMPs通常存在生物活性不佳、力學(xué)性能不足等問題[4],因此需要通過不同的方式(如采用無機納米填料[5])對其進行有效增強改性。
氧化石墨烯(GO)作為一種二維納米光熱轉(zhuǎn)換材料[6],不僅楊氏模量高、易于表面功能化,而且可促進細胞黏附和增殖[7]。近年來,已有研究將GO用于增強聚合物的力學(xué)性能[8]、形狀記憶性能[9]和生物功能[10]。如Liu等[11]證明乳酸-己內(nèi)酯共聚物(PLCL)形狀記憶纖維在負載0.5%(質(zhì)量分?jǐn)?shù),下同)的GO后,可使拉伸楊氏模量提高28.4%,形狀回復(fù)應(yīng)力提高28.3%;將骨髓間充質(zhì)干細胞(BMSCs)接種在GO/PLCL纖維支架上培養(yǎng)14 d后,其成骨標(biāo)志物的分泌量也明顯提高。Huang等[12]將GO與四臂聚乙二醇-聚己內(nèi)酯嵌段共聚物(4A-PEG-PCL)纖維支架進行光交聯(lián)后,不僅改善了支架的力學(xué)性能和形狀記憶性能,還促進了小鼠胚胎成骨細胞前體細胞(MC3T3-E1)成骨相關(guān)基因的表達。這些研究表明在SMPs中引入GO能有效增強其力學(xué)性能及成骨誘導(dǎo)性能,但GO納米片層尺寸對力學(xué)增強效果、形狀記憶性能和成骨誘導(dǎo)性能的影響尚鮮見報道。
本課題組前期已證明左旋聚乳酸(PLLA)/聚(3-羥基丁酸酯-co-3-羥基戊酸酯)(PHBV)(PLLA/PHBV)復(fù)合纖維膜具有良好的形狀記憶性能和生物相容性[13]。在此工作基礎(chǔ)上,本文首先對不同片層大小GO的化學(xué)結(jié)構(gòu)和片層尺寸進行表征,然后通過電紡方法將不同片層尺寸的GO負載到PLLA/PHBV超細纖維中形成GO@PLLA/PHBV復(fù)合纖維膜,并對所制備的復(fù)合纖維膜的形貌、組成、熱性能、力學(xué)性能及形狀記憶性能進行系統(tǒng)的表征,最后通過體外細胞實驗評估細胞相容性和成骨誘導(dǎo)性能。
GO:上海理工大學(xué)提供,依據(jù)其片層尺寸的小、中、大依次命名為sGO、mGO和1GO;PLLA:Mw=1.0×105,濟南岱罡生物材料有限公司;PHBV:Mw=5.2×105,寧波天安生物材料有限公司;六氟異丙醇(HFIP):分析純,上海凌峰化學(xué)試劑有限公司。
采用拉曼光譜儀(Raman,美國Thermo Fisher Scientific公司DXR2xi型)對GO的化學(xué)結(jié)構(gòu)進行表征,選擇He-Ne激光發(fā)射器,發(fā)射功率為17 mW、波長為633 nm。
采用場發(fā)射掃描電鏡(FESEM,日本日立公司S-4800型)對分散于HFIP中、經(jīng)1 h超聲處理的不同片層尺寸的GO進行形貌觀察和拍照,操作電壓為5 kV,倍數(shù)為4 000倍。通過ImageJ軟件測量FESEM圖片中的GO片層面積。
常溫下,首先將不同片層尺寸GO加入HFIP中超聲(冰?。? h;接著在70 °C下加入PHBV,攪拌約15 min使其分散,再加入PLLA 攪拌過夜形成 GO@PLLA/PHBV 紡絲液(m(PLLA)/m(PHBV)=7∶3,m(GO)/m(PLLA/PHBV)=1%,m(GO@PLLA/PHBV)/V(HFIP)=0.08 g/mL);然后通過電紡絲方法將紡絲液制備成復(fù)合纖維膜,紡絲參數(shù)如下:電壓為13 kV,接收距離為15 cm,注射速率為0.8 mL/h,濕度為50%~70%,室溫;最后將所制備的復(fù)合纖維膜放入真空干燥箱中干燥72 h以上備用。
采用FESEM和透射電子顯微鏡(TEM,日本電子株式會社JEM-2100型)觀察復(fù)合纖維膜的形貌,并用ImageJ軟件測量纖維直徑;用拉曼光譜儀對復(fù)合纖維膜進行結(jié)構(gòu)表征;用熱重(TG)分析儀(德國NETZSCH公司TG209 F1型)對復(fù)合纖維膜進行GO含量分析,氮氣保護,升溫速率為10 °C/min;用X射線衍射(XRD)儀(日本理學(xué)株式會社SAXSessmc2型)對復(fù)合纖維膜進行結(jié)晶度分析,管電壓為40 kV,管電流為200 mA,掃描速率為 3(°)/min,掃描范圍為 5°~60°,Cu 靶;用差示掃描量熱(DSC)儀(德國 NETZSCH 公司 DSC-822 型)確定復(fù)合纖維膜的玻璃化轉(zhuǎn)變溫度(Tg),氮氣保護,氣流速率設(shè)定為20 mL/min,升溫速率設(shè)定為10 °C/min,溫度范圍為 0 ~ 120 °C。
通過動態(tài)熱機械分析(DMA)儀(美國TA儀器公司Q800型)在26 °C下測試復(fù)合纖維膜的拉伸性能與形狀記憶性能。首先將纖維膜在47 °C熱平衡2 min;接著以0.2 MPa/min的拉伸速率將應(yīng)力從0提高到2.0 MPa(變形階段);然后以 5 °C/min 的降溫速率冷卻至 0 °C,將應(yīng)力卸載至 0(固定階段);最后以 5 °C/min 的升溫速率將溫度升至47 °C誘發(fā)形狀回復(fù)(回復(fù)階段)。重復(fù)上述過程3次并記錄數(shù)據(jù)。形狀回復(fù)率(Rr)和形狀固定率(Rf)分別按公式(1)和公式(2)確定:
其中,εDeform是變形和冷卻過程中的最大應(yīng)變,εFinal是加熱后的回復(fù)應(yīng)變,εBegin是初始應(yīng)變,εFix是0 °C下的固定應(yīng)變。
為檢測形狀回復(fù)應(yīng)力,首先將尺寸為50 mm × 10 mm × 0.07 mm的纖維膜樣品(樣品數(shù)n≥ 3)置于47 °C的水浴中拉伸100%后迅速轉(zhuǎn)移至0 °C冰浴中進行塑形固定,然后將塑形后的纖維膜樣品夾持在自制的形狀回復(fù)應(yīng)力測試裝置上,在47 °C的水浴中檢測纖維膜的形狀回復(fù)應(yīng)力[14]。
為了解各復(fù)合纖維膜中引入GO后帶來的熱響應(yīng)敏感性,用808 nm激光器在1.3 W/cm2的光強下照射纖維膜樣品(50 mm × 20 mm × 0.07 mm,n≥ 3)55 s,通過紅外熱像儀測溫并繪制溫度-時間關(guān)系曲線,獲得升溫速率。
按每孔1 × 104個的細胞密度將BMSCs分別種植在各復(fù)合纖維膜上;在特定時間點(1、3、6 d)吸去培養(yǎng)基后,加入磷酸鹽緩沖液(PBS)清洗3次;避光條件下加入300 μL含CCK-8試劑(Cell Counting Kit-8 細胞計數(shù)試劑)的培養(yǎng)基,在細胞培養(yǎng)箱(力康生物醫(yī)療科技控股有限公司HF90型)中培養(yǎng)3 h;每孔取100 μL加入到96孔板中,用酶標(biāo)儀(美國Thermo Fisher Scientific公司MK3型)檢測450 nm處的吸光度(OD)。
通過細胞骨架和細胞核染色了解細胞的鋪展情況,步驟為:將細胞按每孔3 × 104個的細胞密度分別種植在各復(fù)合纖維膜上,培養(yǎng)3 d后吸去培養(yǎng)基,加入PBS清洗3次;每孔加入200 μL多聚甲醛固定液固定20~30 min,用PBS清洗3次;每孔加入400 μL聚乙二醇辛基苯基醚(Triton X-100)通透10 min后吸除,PBS清洗3 次;避光將羅丹明-鬼筆環(huán)肽(5 μg/mL)按每孔 400 μL 加入,30 min 后吸除,PBS 清洗 3 次;然后將 4,6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI,1 μg/mL)按每孔 400 μL 加入,15 min后吸除,PBS 清洗 3 次;最后用熒光顯微鏡(日本Nikon公司Nikon 80i型)觀察并拍照。
成骨分化:將細胞按每孔3 × 104個的細胞密度分別種植在各復(fù)合纖維膜上,培養(yǎng)14 d后進行堿性磷酸酶(ALP)染色和定量檢測。ALP染色步驟為:吸去多余培養(yǎng)基后用PBS清洗3次;每孔加入200 μL多聚甲醛固定液固定20 ~ 30 min,之后用PBS清洗3次;參照ALP顯色試劑盒配制染色工作液,每孔加入200 μL工作液并在室溫下避光孵育20 min后用去離子水清洗3次;將染色后的纖維膜置于載玻片上在倒置熒光顯微鏡上觀察染色結(jié)果并拍照。ALP定量步驟為:吸去培養(yǎng)基,用Triton X-100裂解液將細胞裂解30 min,之后在1 000 r/min下將裂解液離心5 min;取30 μL上清液加入96孔板中,參照ALP測定試劑盒的說明,每孔加入50 μL反應(yīng)液后,在37 °C水浴中溫?zé)崽幚?5 min;最后加入150 μL顯色劑,用酶標(biāo)儀檢測520 nm處的OD值。
鈣沉積:將BMSCs按每孔3 × 104個的細胞密度分別種植在各復(fù)合纖維膜上,培養(yǎng)14 d后進行茜素紅(ARS)染色和定量檢測,從而對BMSCs的鈣沉積進行分析。ARS染色步驟為:吸去多余培養(yǎng)基后用PBS清洗3次,加入異丙醇溶液(體積分?jǐn)?shù)為60%)將細胞固定2 min后,用PBS清洗3次;加入200 μL ARS染色液染色20 min直至孔板內(nèi)出現(xiàn)橘紅色,之后用去離子水清洗至無色后在倒置熒光顯微鏡上觀察鈣沉積情況。ARS定量步驟為:在每孔中加入500 μL氯化十六烷基吡啶溶液(體積分?jǐn)?shù)為10%)孵育30 min后將染料洗脫,取200 μL洗脫液轉(zhuǎn)移至96孔板中,用酶標(biāo)儀檢測570 nm處的OD值。
采用Origin 8.0對數(shù)據(jù)進行單因素方差分析,以評價樣品之間是否存在顯著性差異(*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001)。
用拉曼光譜儀對GO的化學(xué)結(jié)構(gòu)(圖1(a))進行表征,拉曼光譜如圖1(b)所示。從圖1(b)可以看出,在1 349 cm?1和1 598 cm?1處分別出現(xiàn)石墨烯類二維納米片結(jié)構(gòu)典型的特征D峰和G峰[15],且這些特征峰的譜帶強度也表現(xiàn)出對GO片層尺寸的依賴性,但sGO、mGO和lGO的拉曼圖譜中,D峰與G峰的強度比值(ID/IG)較接近,分別為0.64、0.70和0.69,表明不同片層尺寸GO的氧化程度相似[16]。
通過FESEM對超聲前后不同片層尺寸GO進行形貌觀察(圖1(c))。超聲分散處理可使不同尺寸GO獲得較好分散,但各GO的片層尺寸均有顯著減小,sGO、mGO、lGO的片層尺寸分別由超聲處理前的(3.3 ±3.8)μm2、(6.7 ± 3.9)μm2、(29.1 ± 25.0)μm2減小至(1.9 ± 2.1)μm2、(5.4 ± 3.6)μm2、(21.3 ± 16.5)μm2。值得注意的是,雖然超聲作用可使sGO、mGO及l(fā)GO的橫向尺寸減小,但各GO在超聲處理后依舊保持小、中、大3種尺寸的差異性。
圖1 GO 的(a)化學(xué)結(jié)構(gòu),(b)Raman 光譜圖及(c)FESEM 形貌圖Fig.1 (a) Chemical structure,(b) Raman spectra and (c) FESEM images of GO
復(fù)合纖維膜的FESEM形貌觀察如圖2(a)所示,各組纖維取向隨機、表面光滑、無明顯串珠等缺陷,PLLA/PHBV、sGO@PLLA/PHBV、mGO@PLLA/PHBV及 lGO@PLLA/PHBV的直徑分別為(1.25 ± 0.31)μm、(0.92 ± 0.26)μm、(1.29 ± 0.31)μm 及(1.05 ± 0.21)μm。有少量的 sGO 和 mGO“鑲嵌”在纖維膜表面或內(nèi)部,而 lGO因片層尺寸較大將纖維“包裹”起來,這些結(jié)果與通過TEM觀察到的GO在纖維膜上的形式一致(圖2(b))。
圖2 復(fù)合纖維膜的(a)FESEM和(b)TEM形貌圖(白色箭頭所指為GO)Fig.2 (a) FESEM and (b) TEM images of fibrous composite membranes (The white arrows point to GO)
從復(fù)合纖維膜的拉曼光譜分析結(jié)果(圖3(a))可知,PLLA/PHBV在2 937 cm?1和3 000 cm?1處的特征峰比較明顯[16],而負載GO后,從mGO@PLLA/PHBV和lGO@PLLA/PHBV的拉曼譜圖上可觀察到GO的sp3雜化相對應(yīng)的D峰(1 349 cm?1處)和sp2碳原子平面振動相對應(yīng)的G峰(1 584 cm?1處)[15],但由于拉曼光譜強度對GO片層尺寸的依賴性,GO的D峰和G峰在sGO@PLLA/PHBV復(fù)合纖維膜的拉曼譜圖中不易觀察到(放大后可見)。熱重分析結(jié)果顯示,不同纖維膜中所負載GO的質(zhì)量分?jǐn)?shù)約1%(圖3(b))。
圖3 復(fù)合纖維膜的(a)拉曼光譜圖、(b)熱失重曲線、(c)XRD 圖譜和(d)DSC 圖譜Fig.3 (a) Raman spectra, (b) TG curves, (c) XRD patterns and (d) DSC curves of the fibrous composite membranes
從復(fù)合纖維膜的 XRD圖譜(圖3(c))可知,GO的摻入可使 PLLA/PHBV的結(jié)晶度顯著降低,sGO@PLLA/PHBV、mGO@PLLA/PHBV、lGO@PLLA/PHBV的結(jié)晶度從最初的57.24%分別降低至15.61%、16.59%及20.41%,尤以sGO對PLLA/PHBV結(jié)晶性的影響最為明顯。這可能是由于在聚合物凝聚態(tài)下,均勻分散的GO導(dǎo)致分子鏈運動速率降低[17],阻礙結(jié)晶作用增強。雖然摻入GO使聚合物結(jié)晶的活化能降低會有利于聚合物的結(jié)晶,但鄰近的GO會阻礙聚合物微晶的生長,導(dǎo)致結(jié)晶度降低[9]。
從復(fù)合纖維膜的DSC圖譜(圖3(d))可知,在PLLA/PHBV中摻入不同尺寸的GO后,Tg略有降低,以引入sGO的復(fù)合纖維膜下降最大。這是因為相同質(zhì)量分?jǐn)?shù)下,尺寸越小的GO越易于分散和導(dǎo)熱,在較低的溫度下就能實現(xiàn)相轉(zhuǎn)變,導(dǎo)致PLLA/PHBV的Tg降低[9]。較低的Tg可以降低SMPs支架因回復(fù)溫度過高帶來的細胞損傷風(fēng)險[18]。
復(fù)合纖維膜的拉伸楊氏模量結(jié)果(圖4(a))顯示,相比于 PLLA/PHBV 的楊氏模量(24.0 ± 0.3)MPa,當(dāng)摻入 sGO、mGO 和 lGO 后,對應(yīng)纖維膜的楊氏模量分別提高至(53.8 ± 5.9)MPa、(41.9 ± 6.4)MPa和(30.6 ± 4.2)MPa。這是因為GO尺寸越小,范德華相互作用和π-π共軛越弱,更容易在基體中均勻分散,有利于纖維力學(xué)性能的提高[19]。
復(fù)合纖維膜的形狀固定率和形狀回復(fù)率結(jié)果(圖4(b))表明,PLLA/PHBV的Rf為96%左右,而當(dāng)摻雜sGO后Rf顯著提高至98%以上,這可能是因為摻雜sGO的復(fù)合纖維膜具有更高的儲能模量,即更多的可被“凍結(jié)”的軟鏈,因此具有更高的Rf[20]。從Rr結(jié)果看,PLLA/PHBV復(fù)合纖維膜與摻雜有mGO、lGO的復(fù)合纖維膜的Rr均為50% ~ 80%,而當(dāng)摻雜sGO后Rr可提高至100%左右,這與GO尺寸較小易于在基體中分散有關(guān)[19],分散性良好的GO可提高聚合物的導(dǎo)熱性能和儲能模量,有助于提高形狀回復(fù)率[9,21]。
圖4 復(fù)合纖維膜的(a)拉伸楊氏模量、(b)形狀固定率和形狀回復(fù)率、(c)最大回復(fù)應(yīng)力和(d)升溫速率Fig.4 (a)Tensile Young's modulus,(b) shape fixation rate and shape recovery rate,(c) ultimate recovery stress and (d)the heating rates of fibrous composite membranes
從復(fù)合纖維膜形狀回復(fù)應(yīng)力的測試結(jié)果(圖4(c))可以看出,摻入GO后,可使復(fù)合纖維膜的最大回復(fù)應(yīng)力升高,且摻入GO的尺寸越小,對分子鏈的限制越強,儲能模量增加,聚合物的形狀回復(fù)應(yīng)力越高[22]。
從復(fù)合纖維膜的溫度敏感性結(jié)果(圖4(d))可以看出,在同樣的光照條件下,摻雜有sGO的復(fù)合纖維膜具有最快的升溫速率,意味著高的熱響應(yīng)敏感度,這是因為sGO分散性好,可使聚合物基體的受熱更均勻,受熱范圍更廣[23],這一結(jié)果對外源光熱刺激響應(yīng)的形狀記憶材料的應(yīng)用具有重要意義[24]。
細胞增殖結(jié)果如圖5(a)所示,在培養(yǎng)3 d和6 d后,mGO@PLLA/PHBV和lGO@PLLA/PHBV上的細胞數(shù)量明顯多于PLLA/PHBV和sGO@PLLA/PHBV的細胞數(shù)量(*p< 0.05),說明摻雜較大尺寸GO更有利于細胞增殖。這與mGO、lGO在纖維表面的分布狀態(tài)有關(guān),更多的黏附位點有利于細胞增殖[16,25]。
通過細胞骨架染色(圖5(b))可揭示與細胞形態(tài)有關(guān)的細胞內(nèi)超微結(jié)構(gòu),相比于PLLA/PHBV和sGO@PLLA/PHBV,BMSCs在mGO@PLLA/PHBV和lGO@PLLA/PHBV上的鋪展面積更大,尤以在lGO摻雜的復(fù)合纖維膜上的鋪展面積最大。這可能是因為曝露在纖維表面的lGO可為細胞提供更多的黏附位點,有利于細胞的鋪展[16]。
ALP檢測結(jié)果(圖5(c))表明,與 PLLA/PHBV相比,BMSCs在 sGO@PLLA/PHBV、mGO@PLLA/PHBV及l(fā)GO@PLLA/PHBV上的ALP分泌量分別提高了36%、57%和92%(圖5(d)),其中以摻雜有l(wèi)GO的復(fù)合纖維膜的促進作用最為明顯。
圖5 BMSCs在復(fù)合纖維膜上(a)培養(yǎng) 1、3、6 d的增殖情況;(b)培養(yǎng) 3 d的骨架染色圖;培養(yǎng) 14 d后(c)ALP 和 ARS的染色圖及(d)定量測定結(jié)果Fig.5 (a) Proliferation assayed at 1, 3, 6 d;(b) Images of cytoskeleton staining at 3 d;(c) ALP and ARS staining and (d) quantitative measurements for 14 d of BMSCs cultured on the fibrous composite membranes
ARS檢測結(jié)果顯示(圖5(c)),與 PLLA/PHBV 相比,BMSCs在 sGO@PLLA/PHBV、mGO@PLLA/PHBV及l(fā)GO@PLLA/PHBV上的鈣沉積分別增加了70%、75%和133%(圖5(d)),同樣,摻雜有l(wèi)GO的復(fù)合纖維膜的促鈣沉積作用最顯著,這一結(jié)果與ALP染色結(jié)果相一致。
以上結(jié)果說明,PLLA/PHBV復(fù)合纖維中引入lGO后可形成的黏附位點更多,從而顯著促進PLLA/PHBV對BMSCs的成骨分化誘導(dǎo)作用[25,26]。
(1)采用電紡方法制備了摻雜不同片層尺寸GO的PLLA/PHBV復(fù)合纖維膜,各組纖維均形貌良好,尺寸較小的sGO、mGO可“鑲嵌”在纖維表面或內(nèi)部,而lGO則是將纖維“包裹”起來。
(2)摻入sGO有利于提高PLLA/PHBV復(fù)合纖維膜的力學(xué)性能和形狀記憶性能。
(3)摻入lGO更有利于提高PLLA/PHBV復(fù)合纖維膜的細胞相容性及對BMSCs的成骨分化誘導(dǎo)作用。