趙如皓,丁俊男,于少鵬,王 慧,史傳奇,張 志,3,孟 博
(1黑龍江濕地生態(tài)與環(huán)境研究重點實驗室,哈爾濱 150086;2黑龍江大學(xué)現(xiàn)代農(nóng)業(yè)與生態(tài)環(huán)境學(xué)院,哈爾濱 150080;3廣東工業(yè)大學(xué)先進制造學(xué)院,廣東揭陽 515231)
植物的生長過程中不僅受到生物脅迫,同時還會受到多種環(huán)境脅迫,包括鹽堿、干旱、高溫、有毒金屬、澇漬等。眾多非生物脅迫中,土壤鹽分含量過高是一個廣泛存在并嚴重影響農(nóng)業(yè)生產(chǎn)的世界性環(huán)境難題。據(jù)聯(lián)合國糧農(nóng)組織2021年發(fā)布的世界土壤地圖顯示全球鹽漬化土壤面積已超過8.33×109hm2。中國鹽漬化土地面積約為1.72×107hm2,其中鹽漬化耕地約有9.21×106hm2,且面積呈逐年增加的趨勢[1]。僅東北地區(qū)的土壤鹽堿化面積約為3.84×106hm2,占東北地區(qū)土地總面積的3.1%[2]。研究表明,土壤NaCl脅迫會嚴重影響作物植株的生長發(fā)育[3]、干物質(zhì)累積[4]、光合作用[5]、細胞滲透調(diào)節(jié)[6]等生理代謝活動,其中光合作用被認為是植物受NaCl脅迫影響最顯著的生理過程[7]。
大豆是原產(chǎn)于中國的重要經(jīng)濟油料作物,是中國人民重要的植物蛋白來源。而野生大豆分布廣泛且類型豐富,具有高含硫氨基酸、高蛋白、多莢和抗逆性強等優(yōu)點。作為栽培大豆(Glycine max)的野生近緣種可為豆科植物的育種提供珍貴的基因資源[8]。挖掘利用耐鹽堿植物可以有效提高鹽堿地作物種植的產(chǎn)量,避免土壤次生鹽堿化改善土壤環(huán)境[1],有著不可估量的生態(tài)效益和廣闊的應(yīng)用發(fā)展前景。
在具體作物中,NaCl脅迫誘導(dǎo)的抗性機制往往互相促進并具有協(xié)同作用,這也反映了植物抗鹽機制的復(fù)雜性[9],目前對野生大豆或栽培大豆耐鹽性鑒定的研究已有許多報道,但對野生大豆抗鹽機制的研究并沒有形成統(tǒng)一的結(jié)論,且以往研究中少量指標不能全面反映野生大豆的耐鹽機制響應(yīng)情況[10],NaCl脅迫條件下野生大豆生長發(fā)育及光合特性的響應(yīng)還需進一步研究。本實驗研究了0%、0.2%、0.4%、0.6%、0.8%NaCl脅迫對野生大豆的生長發(fā)育和光合特性的影響。旨在了解野生大豆幼苗的耐鹽機制,為野生大豆耐鹽機制的闡明、耐鹽大豆品種的選育以及鹽堿地的開發(fā)與利用供理論依據(jù)。
本試驗于2020年10—12月在哈爾濱學(xué)院黑龍江省寒區(qū)濕地生態(tài)與環(huán)境研究重點實驗室進行。供試野生大豆材料(編號:LY-10-25)由黑龍江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院耕作與栽培研究所大豆室提供。將精選成熟飽滿、大小相對一致的野生大豆種子經(jīng)含量為0.5%的NaClO溶液浸泡消毒后,于無菌培養(yǎng)皿中泡種10 h,并置于28℃、光照12 h的恒溫培養(yǎng)箱中催芽后,均勻播種到培養(yǎng)瓶中,每瓶5株;在培養(yǎng)瓶中加入質(zhì)量分數(shù)為0%(CK)、0.2%、0.4%,0.6%和0.8%共5個濃度梯度的NaCl溶液,每天更換NaCl溶液。將培養(yǎng)瓶置于光照強度200~300 μmol/(m2·s)、光周期 12/12 h(光/暗)的培養(yǎng)室內(nèi)培養(yǎng),播種45天后進行生長指標和光合參數(shù)的測定。
生長指標的測定:將培養(yǎng)幼苗洗凈后測定地上部株高,將地上部與地下部分別放鋁盒內(nèi)殺青(105℃,30 min)、烘干(60℃,30 h)至恒重后稱其生物量,得到植株地上部、地下部生物量和總生物量(地下部生物量與地下部生物量之和),均以單株為標準計算。采用乙醇浸泡提取法測定野生大豆葉片的葉綠素a(Chl a)、葉綠素b(Chl b)含量[11],并計算總?cè)~綠素含量(總Chl=Chl a+Chl b)和葉綠素a/b(Chl a/b),測定5次重復(fù)。
葉綠素?zé)晒鈪?shù)的測定:用暗適應(yīng)夾對各處理組野生大豆幼苗葉片進行0.5 h暗適應(yīng),然后采用便攜式脈沖調(diào)制熒光儀FMS-2(Hansatch公司,英國),參照Hu等方法[12]測定PSⅡ最大光化學(xué)效率(Fv/Fm)和電子傳遞速率(ETR)、光化學(xué)淬滅系數(shù)(qP)和非光化學(xué)淬滅系數(shù)(NPQ);測定不同濃度處理野生大豆幼苗葉片ФPSⅡ,ETR,qP和NPQ等葉綠素?zé)晒鈪?shù)的光響應(yīng)曲線[13],由FMS-2儀器施加不同光強,其中不同光強下各葉綠素?zé)晒鈪?shù)值的計算方法見公式(1)~(4)。
式中PFD代表光強,單位為μmol/(m2·s)。
分別采用硫代巴比妥酸比色法和磺基水楊酸-酸性茚三酮法測定大豆葉片中的丙二醛(MDA)和脯氨酸含量[14-15]。
采用單因素方差分析方法和最小顯著差異法,分析數(shù)據(jù)之間的差異。利用Excel 2014軟件和SPSS 22.0軟件,對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析。
整體來看,NaCl脅迫明顯抑制了野生大豆的生長(見表1)。野生大豆的株高、地上部分生物量、地下部分生物量以及總生物量均隨鹽濃度的升高呈下降趨勢。0.2%NaCl濃度處理組各指標與CK組差異不顯著(P<0.05),0.4%、0.6%、0.8%NaCl濃度處理組各指標與CK組差異顯著。不同濃度處理組之間,0.2%NaCl脅迫濃度處理組與0.4%、0.6%、0.8%NaCl濃度處理組各指標差異顯著,0.8%NaCl濃度處理組除株高外各指標均與其他濃度組差異顯著。
表1 NaCl脅迫對野生大豆幼苗生長特性的影響
株高是植物受脅迫后表現(xiàn)最直觀的因子。當NaCl濃度為0.2%時,野生大豆株高的下降不顯著,約為對照組的2.69%,在NaCl濃度為0.8%,野生大豆株高比對照組顯著下降27.53%。
NaCl脅迫處理下,野生大豆幼苗的地上部生物量隨脅迫濃度的升高而呈現(xiàn)降低的趨勢。NaCl濃度為0.2%時,野生大豆地上部生物量比對照組下降9.52%,地下部分生物量比對照組下降11.11%;0.8%NaCl濃度處理組與對照組相比地上生物量下降約33.33%;地下部分生物量比對照組下降55.56%。同等濃度NaCl脅迫下,野生大豆地下部分生物量受NaCl脅迫的抑制更強。
如圖1所示,在NaCl脅迫處理下,供試材料野生大豆的葉綠素總含量、葉綠素a含量以及葉綠素b含量均呈現(xiàn)隨脅迫濃度升高而降低的趨勢。與對照組相比0.2%NaCl處理組葉綠素含量下降不顯著,其中葉綠素a下降12.66%,葉綠素b下降2.56%,總?cè)~綠素含量下降10.22%。0.8%NaCl處理組葉綠素含量則顯著低于對照組;其中葉綠素a和葉綠素b分別較對照組下降了31.72%、18.54%(P<0.05)。葉綠素含量a/b隨濃度的增高降低后小幅升高。在濃度為0.4%時達到最低值2.54。
圖1 NaCl脅迫對野生大豆葉片葉綠素含量的影響
由圖2可知,丙二醛含量隨脅迫濃度的升高而升高,在0%、0.2%、0.4%、0.6%、0.8%時,丙二醛含量分別為2.04、2.13、2.34、2.67、2.86 μmol/g。當 NaCl濃度為0.2%時,丙二醛含量增長不顯著,增幅約為對照組的4.41%;脅迫濃度為0.8%時,丙二醛含量達到最高值2.86 μmol/g,較對照組的顯著增長40.20%。當NaCl濃度為0.2%時,脯氨酸含量增長幅度不顯著(P<0.05),約為對照組9.31%;NaCl濃度為0.8%時,脯氨酸含量達到最高值21.69 μg/g,較空白組的顯著增長132.23%。
圖2 NaCl對大豆葉片丙二醛和脯氨酸的影響
本試驗中,供試材料野生大豆最大光化學(xué)效率隨NaCl脅迫濃度的升高先上升后下降(表2)。在NaCl濃度為0.2%時,最大光合效率上升1.24%,但差異不顯著(P<0.05)。NaCl濃度為0.4%時,野生大豆的最大光合效率較對照組下降0.25%。當NaCl濃度為0.6%時,最大光合效率下降1.49%。NaCl濃度達到最大0.8%時最大光化學(xué)效率降至最低值,較對照組下降6.26%。表明較低濃度(0.2%及以下)的NaCl脅迫對野生大豆的光合效率有輕微的促進作用;高濃度(0.4%及以上)NaCl脅迫則顯著抑制了野生大豆的光化學(xué)效率。
表2 NaCl脅迫對野生大豆幼苗葉片葉綠素?zé)晒馓匦缘挠绊?/p>
電子傳遞速率是體現(xiàn)植物葉片PSII反應(yīng)中心的電子捕獲效率的重要指標[16]。本實驗中,野生大豆的電子傳遞速率隨NaCl濃度的升高而降低。NaCl濃度為0.2%時,電子傳遞速率較空白組下降2.27%,差異不顯著(P<0.05)。NaCl濃度為0.8%時,電子傳遞速率較空白組顯著下降47.21%。表明0.2%及以下的低濃度的NaCl對野生大豆的電子傳遞速率的抑制不顯著;0.4%及以上高濃度NaCl則顯著抑制了野生大豆的電子傳遞速率。
光化學(xué)猝滅系數(shù)是體現(xiàn)植株光合中心將捕獲的光能用于光化學(xué)反應(yīng)的能力的重要指標,非光化學(xué)猝滅系數(shù)則反映了植株將過剩光能轉(zhuǎn)化為熱能釋放的能力,是光合系統(tǒng)的自我保護機制[17]。葉片光化學(xué)淬滅系數(shù)隨NaCl濃度的升高而降低,0.8%濃度處理組qP值最低,較對照組下顯著下降36.65%。非光化學(xué)淬滅系數(shù)隨NaCl濃度的升高呈現(xiàn)先降低后升高的趨勢,0.2%NaCl脅迫時NPQ小幅度下降但與對照組差異不顯著,脅迫濃度進一步提升后NPQ開始上升,在0.8%NaCl脅迫時NPQ較對照組顯著升高74.76%。
由圖3可以看出,在光照強度為0~400 μmol/(m2·s)間時,各濃度NaCl脅迫對植株葉綠素?zé)晒忭憫?yīng)曲線影響差異相對較小,隨著光照強度的增強不同處理組間各項指標的差異逐漸增大。同一濃度下ФPSⅡ隨光照強度的增大而下降。光照強度增至1200 μmol/(m2·s)時各處理ФPSⅡ降至最低值。在低光照強度(0~400 μmol/(m2·s))、NaCl濃度為0.2%時,ФPSⅡ高于空白對照。光強進一步增加后,各濃度NaCl脅迫處理組ФPSⅡ均低于空白對照。在光照強度 1200 μmol/(m2·s)、NaCl濃度0.8時,植株ФPSⅡ顯著下降,約為對照組的63.19%。qP方面,除0.2%NaCl濃度處理組出現(xiàn)先小幅增高后下降的趨勢外,其他各組隨光照強度的增大而下降并均在光照強度為1200 μmol/(m2·s)時達到最低值。在低光照強度(0~400 μmol/(m2·s))內(nèi)、NaCl濃度為0.2%時,qP高于空白對照,光強進一步增加后各濃度NaCl脅迫處理組qP均低于空白對照。NPQ呈現(xiàn)與其相反的趨勢,隨光照的增強而升高。在較低光照強度(0~400 μmol/(m2·s))時,各處理組NPQ隨著光照強度的增加而緩慢的上升。當光照強度進一步增加,NPQ增長速率加快。同一NaCl濃度下ETR隨光照強度的增加呈上升趨勢。對照組的ETR增長幅度大于各濃度脅迫組,各組在光強達到800 μmol/(m2·s)后,增長速度減緩,其中0.8%NaCl脅迫組在光照強度達到800 μmol/(m2·s)后,ETR值趨于穩(wěn)定。
圖3 NaCl脅迫對野生大豆幼苗葉片葉綠素?zé)晒忭憫?yīng)曲線的影響
NaCl脅迫是植物遭受的常見非生物脅迫之一,會對植物的多種生理過程造成傷害[18]。本研究表明,NaCl脅迫影響下野生大豆的株高降低、地上地下干物重以及總干物重積累減少。低濃度NaCl脅迫對野生大豆的抑制作用不顯著,高濃度時則顯著抑制了野大豆的生長發(fā)育。在本實驗中地下部分干物質(zhì)累積與地上部分相比受到的影響更大,可能在于地下根際部分是最直接接觸NaCl脅迫的部分,因此受NaCl抑制更顯著。
葉綠素含量能直接影響作物碳水化合物的合成,是光合特性的重要量度,也是反映葉片質(zhì)量的主要指標之一[19]。本研究中隨鹽濃度升高,總?cè)~綠素含量、葉綠素a含量及葉綠素b含量均下降,表明NaCl脅迫對葉綠素的合成具有抑制作用,且同等NaCl濃度下,葉綠素a含量較葉綠素b下降幅度更大。其原因可能是葉綠素a較葉綠素b更不穩(wěn)定,易受到活性氧作用分解[20],導(dǎo)致NaCl脅迫對葉綠素a的影響更顯著。
NaCl脅迫條件下,植物光合作用受到抑制,碳同化能力下降產(chǎn)生活性氧自由基,造成膜脂過氧化并生成MDA[21],故MDA含量可反映植物細胞膜脂過氧化的程度[22]。大量研究表明,植物葉片MDA含量會隨鹽濃度升高而增加[23-24]。在本實驗中,不同濃度處理組的野生大豆葉片MDA含量均高于空白對照,說明NaCl脅迫導(dǎo)致野生大豆不同程度的膜質(zhì)過氧化,但0.2%NaCl脅迫下,MDA含量升高不顯著,脅迫濃度進一步升高后,MDA含量也顯著升高,0.6%~0.8%NaCl脅迫下MDA含量顯著高于對照組以及其他處理組,表明該濃度NaCl脅迫對野大豆造成嚴重膜損傷,使野大豆膜質(zhì)過氧化程度顯著加劇,MDA作為植物過氧化的產(chǎn)物隨之增加,這與賀莉等[19]的研究結(jié)果一致。
NaCl脅迫會造成植物脫水,細胞滲透失衡,而脯氨酸能參與植物細胞內(nèi)滲透調(diào)節(jié)過程,是維持細胞滲透平衡的保護劑[12]。相關(guān)學(xué)者認為在逆境條件下水稻、綠豆等植物會累積脯氨酸[25]。本研究中,野生大豆的脯氨酸含量隨NaCl脅迫濃度的升高而升高,表明NaCl脅迫下野生大豆會增加幼苗葉片中脯氨酸含量,以提高細胞吸水保水的能力,減輕NaCl脅迫對自身的影響。這與王麗燕等[26]的研究結(jié)果一致。
葉綠素?zé)晒夥治龅玫降闹T多PSII光化學(xué)效率參數(shù),與光合作用過程緊密相關(guān),可快速、直接反映植物對不同環(huán)境條件的響應(yīng),并判斷植物光體系受脅迫的嚴重程度[27]。最大光化學(xué)效率代表了植物光合機構(gòu)最大光能轉(zhuǎn)化效率,是植物發(fā)生光抑制的敏感指標,體現(xiàn)了植株葉片的光合能力與PSII受傷害的程度[28]。本研究結(jié)果表明,低濃度的NaCl脅迫對野大豆光合效率的影響不顯著。NPQ在0.2%NaCl脅迫下達到了最低值,表明植株內(nèi)過剩光能轉(zhuǎn)化為熱能釋放的生理活動減少,其原因可能是0.2%以下的低濃度NaCl脅迫使電子傳送速率受到輕微抑制,而最大光化學(xué)效率小幅提升,使葉片內(nèi)過剩光能減少,最終導(dǎo)致NPQ降低。有研究表明,植物的葉綠素?zé)晒馓匦栽贜aCl脅迫下易受到光照強度的影響[29],探究植物在NaCl脅迫下對光強的適應(yīng)能力,能為鹽堿化耕地實際生產(chǎn)提供部分參考[30]。本研究中,各濃度處理組實際光合效率隨光照強度的增加而下降。在光照強度為0~200 μmol/(m2·s)時,0.2%NaCl脅迫處理組野生大豆葉片ФPSⅡ略高于空白對照組;但隨光照強度進一步增加,各鹽濃度處理組ФPSⅡ顯著下降并低于空白組,且光照越強,不同濃度NaCl脅迫導(dǎo)致的ФPSⅡ下降幅度越大,表明過強的光照會加劇NaCl脅迫對野生大豆光合作用的抑制。其原因可能是強光會損傷野大豆光合機構(gòu)的活性[31],NaCl脅迫抑制PSll的修復(fù)[32],因此較高的光照強度會加劇鹽分毒害的程度,這與朱新廣等[33]的研究結(jié)果一致。
本實驗中,0.4%NaCl脅迫條件下,野生大豆的多數(shù)參數(shù)指標與對照組差異顯著,這說明0.4%的鹽濃度可能是其生長發(fā)育、生理及光合NaCl脅迫的臨界鹽濃度,0.4%以及以上濃度的NaCl脅迫超出了野大豆的自我調(diào)節(jié)能力,會對其生長造成嚴重抑制,對光合反應(yīng)中心造成嚴重的脅迫損害。
受試驗周期限制,本次實驗亦有不足之處,僅展示了NaCl脅迫對光合特性主要指標的影響,未涉及氣孔導(dǎo)度、蒸騰速率等反應(yīng),后續(xù)實驗將補充檢測指標,進一步加入脅迫相關(guān)基因表達量的檢測與分析。此外,盡管已有的研究顯示強光會加劇NaCl脅迫對野大豆的迫害,但兩者的協(xié)同關(guān)系及作用區(qū)別并不明確,且本實驗中弱光條件下0.2%NaCl脅迫對野生大豆ФPSⅡ有促進作用,其背后原因需進一步研究。
本實驗中,0.2%及以下的低濃度NaCl脅迫對野生大豆生長發(fā)育抑制不顯著,且野大豆能通過自身的調(diào)節(jié)機制保持略高于對照組的光化學(xué)效率,體現(xiàn)了野大豆的耐鹽性。0.4%及以上的高濃度NaCl脅迫導(dǎo)致野生大豆株高顯著下降,干物質(zhì)累計顯著減少,幼苗葉片光化學(xué)效率顯著降低,并影響各熒光參數(shù)對光的響應(yīng)。野生大豆的生長發(fā)育及光合特性中多數(shù)指標在0.4%NaCl脅迫條件下大幅改變,推測0.4%的鹽濃度可能是其生長發(fā)育、生理及光合NaCl脅迫的臨界鹽濃度。同濃度NaCl脅迫處理下野大豆地上部分較地上部分受到的抑制作用更大,葉綠素a較葉綠素b受NaCl脅迫抑制作用更大。
在低光照強度(0~200 μmol/(m2·s))下 ,低濃度(0.2%)NaCl脅迫處理組實際光化學(xué)效率高于對照,但光照強度進一步加劇后,對照組高于各濃度NaCl脅迫處理組,且光照越強不同濃度NaCl脅迫導(dǎo)致的ФPSⅡ下降幅度越大,證明低光照環(huán)境中0.2%以下的低濃度NaCl脅迫能促進植物的光化學(xué)效率,但強光會加劇NaCl脅迫對野生大豆植株損害。